Name: Fabricage van myogene Engineered Tissue constructen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-01T00:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 43 s
Description: Leer de fabricage van collageen-gebaseerde weefselconstructen met skeletmyoblasten voor hartreparatie. Deze methode maakt elektrische geleiding tussen boezels en kamers mogelijk als alternatief voor pacemakers bij volledig hartblok.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk wordt ondersteund door subsidies voor onderzoek van de National Institutes of Health (HL068915, HL088206), een nieuwe onderzoeker Award van de Thrasher Research Fund, en bijdragen aan het hartgeleiding Fonds op Children&#39;s Hospital Boston.

Deel 1: Monteer de bouw gietmallen <ol><li> Gebruik een scheermesje met silicone (VWR) te halveren en het snijd ze in 3 cm lange stukken. </li><li> Plaats een druppel van implantaat-grade RTV silicone lijm (Rhodia) op de binnenkant van elk uiteinde van de slang. </li><li> Plaats snel een klein stukje (1 cm x 1 cm) van polyester mesh (McMaster-Carr) op de silicone lijm te laten vallen en af ​​te stemmen op het uiteinde van de slang. Dit zal een licht verhoogd en vlakke ondergrond voor de bouw van bevestiging. Herhaal dit voor het andere uiteinde. </li><li> Laat de mal bij kamertemperatuur drogen gedurende 3 dagen. Het is nuttig tot 20 à 30 mallen te maken op een moment, omdat deze in wezen voor eenmalig gebruik. </li><li> Zodra de lijm volledig droog is, bewaar deze mallen in een bekerglas gevuld met 70% ethanol totdat ze nodig zijn. Deze stap zal helpen Steriliseer de mallen en het eindproduct is weergegeven in figuur 1. </li></ol> Deel 2: Voorbereiding voor myoblast celisolatie <ol><li> Verdun 1 mg Laminine (Sigma) in 250 ml 0,22 um filter-gesteriliseerd fosfaat-gebufferde zoutoplossing (PBS) met 1% penicilline / streptomycine (Invitrogen) en 1% fungizone (Invitrogen). </li><li> Coat 150 mm kultuurplaten (BD Falcon) met 4 ml van de verdunde oplossing van Laminine stap 1,1 en incuberen bij 37 º C gedurende ten minste 4 uur voor beplating van de primaire skelet myoblasten. </li><li> Maak de myoblast medium door het mengen van Ham&#39;s F-10 voedingsstoffen Mengsel (Sigma) met 20% FBS (Atlanta Biologicals), 5 ng / L basic fibroblast groeifactor (Promega), 1% penicilline / streptomycine (Invitrogen), en 1% fungizone ( Invitrogen). </li><li> Bereid de skeletspieren spijsvertering oplossing door het oplossen van 1 g van ~ 295 U / mg Collagenase 2 (Worthington) in 100 ml 2,4 U / mL Dispase-2 (Roche). Voeg 0,037 g CaCl 2 en meng goed. Filter steriliseren de spijsvertering buffer met behulp van een 0,2 um filter schijf gemonteerd op een 10 ml spuit en op te slaan porties bij -20 ° C. Plaats de hoeveelheid die nodig is voor het weefsel spijsvertering bij 37 ° C, samen met de myoblast media. </li></ol> Deel 3: myoblast isolatie van skeletspieren <ol><li> Met behulp van een tang en kleine scharen, verwijder paraspinale spieren van dode neonatale Lewis ratten door het snijden van de rug langs het ruggenmerg, peeling de rug van de huid en fascia lagen en vervolgens weg te snijden van de spieren. </li><li> In een weefselkweek kap, plaats de uitgesneden spieren in een 50 ml conische buis (BD Falcon) gevuld met 40 ml 1X Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) (Invitrogen) op ijs. Laat de spier strips om zich te vestigen op de bodem van de buis en voorzichtig het grootste deel van de vloeistof en bloed overblijfselen door een vacuüm zuigen verwijderen met een steriel Pasteur pipet in een cultuur kap (Baker). </li><li> Giet de geoogste spier stukken op een 150 mm cultuur schaal en haal zo veel van de resterende vloeistof mogelijk met afzuiging. Met behulp van twee single-randen scheermesjes gehakt het weefsel tot een dikke pasta. Giet voorverwarmde vertering oplossing op de pasta en breng het mengsel op een verse 50 ml buis met behulp van een pipet van 10 ml. Tijdens de enzymatische vertering, is het weefsel af en toe getritureerd (zonder bubbelen), met een 10 ml pipet gemonteerd op een draadloze Pipette-Aid (Drummond). Nogmaals, laat het weefsel om zich te vestigen en verwijder de overtollige vloeistof. </li><li> Plaats de buis op een schommelende platform en verteren bij 37 º C gedurende ongeveer 30 minuten. </li><li> Zodra de spier wordt vloeibaar gemaakt, laat de oplossing door een 70 um cel zeef (BD Falcon) en gecentrifugeerd bij kamertemperatuur gedurende 10 min bij 600 xg (Beekman GP). Met een Pasteur pipet en zuig, verwijder zoveel mogelijk van de vloeistof als mogelijk en resuspendeer de pellet met 10 ml warm myoblast medium. </li><li> Pre-bord van de cellen op een ongecoate 150 mm weefselkweek plaat gedurende 15 minuten te helpen verwijderen fibroblasten. </li><li> Breng de cellen die nog niet zijn aangesloten op de laminine-gecoate cultureware en verdunnen zodat er een plaat voor elke 1 tot 2 ratten pups. Plaats de plaat in een vochtige incubator ingesteld op 37 ° C met 5% CO 2. </li></ol> Deel 4: Casting ontworpen weefsel constructen (5 ml) <ol><li> Na 1 tot 2 dagen, verwijdert u 10 van de 150 mm myoblast weefselkweek platen uit de couveuse, tweemaal spoel ze met 37 ° C 1X PBS en voeg 4 ml warme 0,05% trypsine-EDTA voor elk bord. Zet de platen om de incubator gedurende 5 minuten. </li><li> Oogst de vrijstaande myoblasten van de platen in de cultuur motorkap en het verzamelen van de vloeistof in een 50 ml buis (BD Falcon). Gebruik 10 ml myoblast medium om alle van de platen spoelen en dit te combineren met de cellen in de centrifugebuis. Pellet de cellen bij kamertemperatuur gedurende 10 min bij 600 xg (Beckman GP) en verwijder overtollige vloeistof zoals beschreven in stap 3.5. </li><li> Resuspendeer de myoblast cellen in 1,6 ml myoblast medium en leg ze op ijs. </li><li> Met behulp van een tang, verwijder voorzichtig 4 construeren mallen uit stap 1,5 en twee keer spoel ze af met 1X PBS. Afzuiging korting op alle sporen van PBS met een Pasteur pipet voor het plaatsen van elke vorm in een 6-well weefsel culture plaat (BD Falcon). </li><li> Verzamel de andere reagentia die nodig zijn voor de bouw van de voorbereiding (10x Ham&#39;s F10, antibiotica, type 1 collageen [3,9 mg / ml] [6] en Matrigel ™) op ijs en houd myoblast media bij 37 º C. Combineer 500 pL 10x Ham&#39;s F10, 100 ul penicilline / streptomycine, 100 ul fungizone, 1,6 ml collageen, en 750 ul Matrigel ™ in een 15 ml conische buis. Meng de oplossing voor 10 sec met behulp van een Mini-Vortexer (VWR) ingesteld op 10 en op ijs. </li><li> Voeg vervolgens 80 pi van NaHCO 3 en de myoblast schorsing van stap 3.3 toe aan het mengsel van stap 3.5. Vortex het gehele mengsel voor 10 sec en terug de buis om het ijs emmer voor een paar minuten aan de oplossing van de bubbels. </li><li> Voorzichtig wierp het mengsel in de vormen voordat het begint te stollen met behulp van een pipet van 10 ml. Elke vorm houdt ongeveer 1 ml van de stroperige vloeistof. Probeer te voorkomen dat er luchtbellen tijdens deze procedure. </li><li> Breng voorzichtig de plaat met de cast bouwt aan de incubator. Na ~ 30 minuten, verwijder de gestolde construeert uit de incubator en zorgvuldig myoblast medium toe te voegen aan elke well ter dekking van het weefsel te bouwen. Zet de plaat in de broedstoof (figuur 2). </li></ol> Deel 5: Representatieve resultaten Wanneer dit protocol juist wordt uitgevoerd, de myoblast-bevattende weefsel construct is klaar voor de in vivo implantatie (dwz wanneer verwijderd uit de matrijs) of voor verdere in-vitro-analyses na 2 dagen. <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure1.jpg" alt="" /> Figuur 1. Voorbeelden van voltooide bouw van mallen (zie stap 1.5). <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure2.jpg" alt="" width="400" height="321" /> Figuur 2. Een gestolde myoblast-die weefsel te bouwen [1]. <img src="/files/ftp_upload/1137/Figure3.jpg" alt="" /> Figuur 3. H &amp; E gekleurde coupes van een myoblast-bevattende weefsel te bouwen. &quot;A&quot; toont een langsdoorsnede en &quot;B&quot; toont een dwarsdoorsnede.

<ol><li>Choi, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+conduction+through+engineered+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Cardiac conduction through engineered tissue.</a> Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).</li>
<li>Rando, T. A., Blau, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+mouse+myoblast+purification%2C+characterization%2C+and+transplantation+for+cell-mediated+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Primary mouse myoblast purification, characterization, and transplantation for cell-mediated gene therapy.</a> J Cell Biol. 125 (6), 1275-1287 (1994).</li>
<li>Blau, H. M., Webster, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+human+muscle+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of human muscle cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 78 (9), 5623-5627 (1981).</li>
<li>Powell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+human+bioartificial+muscles+expressing+a+foreign+recombinant+protein+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered human bioartificial muscles expressing a foreign recombinant protein for gene therapy.</a> Hum Gene Ther. 10 (4), 565-577 (1999).</li>
<li>Vandenburgh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+skeletal+muscle+organoids+for+reversible+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered skeletal muscle organoids for reversible gene therapy.</a> Hum Gene Ther. 7 (17), 2195-2200 (1996).</li>
<li>Gallop, P. M., Seifter, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+Properties+of+Soluble+Collagens%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Preparation and Properties of Soluble Collagens.</a> Methods in Enzymology. 6, 635-641 (1963).</li>
</ol>

Experimenten op dieren werden uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen en voorschriften uiteengezet door de Institutional Animal Care en gebruik Comite op Children&#39;s Hospital Boston in te stellen.

De mallen waarin het weefsel te bouwen zullen worden geworpen kan worden gemaakt in elke gewenste vorm en grootte, maar er moet ten minste twee punten van bevestiging. Anders, de matrix en cellen vormen een bolvormige structuur en de cellen sterven. In het huidige protocol beschrijven we het gebruik van een polyester mesh voor dit doel, maar we hebben ook met succes gebruikt roestvrij staal gaas. Uiteraard zal grotere vormen vereisen meer cellen en een groter volume van de andere ingrediënten. Bij het maken van de malle...

<table><tbody><tr><td>Siliconenslang</td><td>VWR international</td><td>60985-724</td><td></td></tr><tr><td>Siliconenlijm</td><td>Rhodia Silicones</td><td>MED ADH 4300 RTV</td><td></td></tr><tr><td>Polyester gaas</td><td>McMaster-Carr</td><td>93185T17</td><td></td></tr><tr><td>Laminine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L2020</td><td></td></tr><tr><td>Nutrient Mixture F-10 HAM</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N6908</td><td></td></tr><tr><td>Foetaal runderserum</td><td>Atlanta Biologicals</td><td>S11550</td><td></td></tr><tr><td>Penicilline/streptomycine</td><td>Invitrogen</td><td>15140</td><td></td></tr><tr><td>Fungizone</td><td>Invitrogen</td><td>15290-018</td><td></td></tr><tr><td>Dispase-2</td><td>Roche Group</td><td>10295825001</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase 2</td><td>Worthington Biochemical</td><td>46H8863</td><td></td></tr><tr><td>Basische fibroblastengroeifactor</td><td>Promega Corp.</td><td>G5071</td><td></td></tr><tr><td>150 mm weefselkweekschalen</td><td>BD Biosciences</td><td>353025</td><td></td></tr><tr><td>0,05% (1X) Trypsine-EDTA</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25300</td><td></td></tr><tr><td>1X Hanks Balanced Salt Solution</td><td>Invitrogen</td><td>14170-112</td><td></td></tr><tr><td>7,5% NaHCO&lt;sub&gt;3&lt;/sub&gt;</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25080-094</td><td></td></tr><tr><td>70 &amp;mu;m celzeef</td><td>BD Biosciences</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>6-wells platen</td><td>BD Biosciences</td><td>353046</td><td></td></tr><tr><td>50 mL conische buis</td><td>BD Biosciences</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>15 mL conische buis</td><td>BD Biosciences</td><td>352099</td><td></td></tr><tr><td>0,2 &amp;mu;m filter</td><td>Nalge Nunc international</td><td>194-2520</td><td></td></tr></tbody></table>

fabricage van myogene engineered tissue constructen

Fabrication of Myogenic Engineered Tissue Constructs

Ondanks het feit dat elektronische pacemakers zijn levensreddende medische hulpmiddelen, hun prestaties op lange termijn bij pediatrische patiënten kan problematisch zijn als gevolg van de beperkingen die worden opgelegd door kleine een kind grootte en hun onvermijdelijke groei. Bijgevolg is er een werkelijke behoefte aan innovatieve therapieën die specifiek ontworpen voor pediatrische patiënten met hartritmestoornissen. Wij stellen voor dat een geleidende biologisch alternatief dat bestaat uit een op basis van collageen matrix die autologously-afgeleide cellen beter kunnen aanpassen aan de groei, verminderen de noodzaak voor terugkerende operaties, en sterk verbeteren van de kwaliteit van leven voor deze patiënten. In de huidige studie beschrijven we een procedure voor het opnemen van de primaire skelet myoblast cel culturen binnen een hydrogel matrix van de mode een chirurgisch-implanteerbare weefsel te bouwen dat zal dienen als een elektrische leiding tussen de bovenste en onderste kamers van het hart. Uiteindelijk verwachten we gebruik van dit type van gemanipuleerde weefsel aan atrioventriculaire elektrische geleiding te herstellen in kinderen met een compleet hartblok. In het licht van dat, we isoleren myoblasten van de skeletspieren van neonatale Lewis ratten en plaat ze op laminine-coated weefselkweek gerechten met een aangepaste versie van vastgestelde protocollen<sup&gt; [2, 3]</sup&gt;. Na een tot twee dagen, zijn gekweekte cellen verzameld en vermengd met antibiotica, type 1 collageen, Matrigel ™ en NaHCO<sub&gt; 3</sub&gt;. Het resultaat is een viskeuze, uniforme oplossing die kan worden gegoten in een mal van bijna elke vorm en grootte<sup&gt; [1, 4, 5]</sup&gt;. Voor onze weefsels constructies maken we gebruik van type 1 collageen geïsoleerd uit foetaal lam huid met behulp van standaardprocedures<sup&gt; [6]</sup&gt;. Zodra het weefsel heeft gestolde bij 37 ° C, cultuur media wordt zorgvuldig toegevoegd aan de plaat tot het construct is ondergedompeld. De kunstmatige weefsel wordt dan toegestaan ​​om verder te condenseren door uitdroging voor nog 2 dagen, op welk punt is nu klaar voor<em&gt; In vitro</em&gt; Beoordeling of chirurgische-implantatie.

Hier tonen we de fabricage van op basis van collageen, weefsel constructen die het skelet myoblasten. Deze 3-D ontworpen constructies kunnen worden gebruikt om weefsels te vervangen of repareren<em&gt; In vivo</em&gt;. Voor ons doel, hebben we deze als een atrioventriculaire elektrische leiding voor de reparatie van complete hartblok<sup&gt; [1]</sup&gt;.

Fabricage van myogene Engineered Tissue constructen

Hoewel elektronische pacemakers levensreddende medische hulpmiddelen zijn, kan hun prestatie op lange termijn bij pediatrische patiënten problematisch zijn vanwege ...

Deze procedure begint met het oogsten van skeletspierweefsel van neonatale Lewis Wraths. Uit dit weefsel isoleren we myoblastcellen. Deze myoblasten worden gedurende twee dagen gekweekt in weefselkweekschalen, waarna ze worden geoogst en gemengd in een mengsel voor een weefselconstruct op basis van collageen.Dit mengsel wordt zorgvuldig met een pipet in een mal overgebracht die is ondergedompeld in kweekmedium en vervolgens geïncubeerd bij 37 °C. Hallo, ik ben Christina Pesach van het laboratorium van Douglas Cowan van de afdeling Anesthesiologie van het Children's Hospital, Boston en de Harvard Medical School. Vandaag laten we u een procedure zien voor het creëren van myogeen engineered weefsel.We gebruiken deze procedure om weefsel te fabriceren voor inplanting in het hart. Ons doel is om een elektrische verbinding te creëren tussen de bovenste en onderste hartkamers als alternatieve therapie voor de implantatie van een pacemaker bij kinderen met een volledige hartblokkade. Laten we beginnen.In het construct wordt een gietvorm gebruikt om vorm te geven aan het chirurgisch implanteerbare weefselconstruct op basis van collageen. In deze video wordt het proces voor het creëren van e

fabrication-of-myogenic-engineered-tissue-constructs

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Werkwijzen voor het bereiden een injecteerbare gel matrix van gedecellulariseerde weefsel en het injecteren van het in rat...

Productie van biologisch verkregen Injecteerbare Materialen voor myocard Tissue Engineering

Engineered spierweefsel heeft een groot potentieel in de regeneratieve geneeskunde, als de ziekte model en ook als een alternatieve bron voor vlees. Hier beschrijven we de constructie van een spier construct, in dit geval van muis myoblast progenitor cellen en stimulering van elektrische pulsen.

Techniek skeletspier weefsel van muizen myoblast progenitorcellen en toepassing van elektrische stimulatie

De generatie van uitgelijnde myocardiale weefsel is een belangrijke voorwaarde voor het aanpassen van de recente ontwikkelingen in de stamcel biologie om klinisch bruikbare doeleinden. Hierin beschrijven we een microcontact afdrukken benadering voor de nauwkeurige controle van cellulaire vorm en functie. Met behulp van zeer zuivere populaties van embryonale stamcellen afgeleid cardiale voorlopercellen, we dan het genereren van anisotrope functionele myocardium.

Generatie van Aligned Functionele myocardweefsel Door microcontact afdrukken

Dit model systeem gaat uit van een myofibroblast-bevolkte fibrine gel die kan worden gebruikt om endogene collageen (her) inrichting real-time op een niet-destructieve manier te bestuderen. Het modelsysteem is zeer instelbaar, als het kan worden gebruikt met verschillende bronnen van cellen, medium additieven, en kan gemakkelijk worden aangepast aan specifieke behoeften.

Techniek Fibrine-based Tissue constructen van myofibroblasten en Application of Constraints en Zeef to Cell en collageen (Re) organisatie Induce

Voor het creëren van hoog georganiseerde structuren van complex weefsel, moet men meerdere materiaal- en celtypen samenvoegen tot een geïntegreerd composiet. Dit combinatoire ontwerp bevat orgaanspecifieke gelaagde cellagen met twee verschillende biologisch afgeleide materialen die een sterke vezelachtige matrixbasis bevatten, en endotheelcellen voor het bevorderen van de vorming van nieuwe bloedvaten.

Tissue engineering: Bouw van een Meercellige 3D Steiger voor de levering van Layered Cell Sheets

In dit werk presenteren we een techniek voor de snelle fabricage van levend vasculair weefsel door directe cultivatie van collageen, gladde spiercellen en endotheelcellen. Daarnaast wordt een nieuw protocol beschreven voor de mechanische karakterisering van gefabriceerd vasculair weefsel.

Engineering 3D Cellularized Collageen Gel voor Vasculaire Tissue Regeneration

Tot op heden worden defecten in dik weefsel meestal gereconstrueerd door autologe weefselflaps of geconstrueerde weefsels aan te brengen. In dit protocol presenteren we een nieuwe methode voor het maken van een gevasculariseerd weefselflap met een autologe steel, die dient als alternatief voor autologe flaps.

Engineered Gevasculariseerd Muscle Flap

Dit protocol beschrijft een platform voor het fabriceren van zelf geassembleerde weefsel ringen in verschillende afmetingen met behulp van een aangepaste 3D-gedrukte kunststof schimmel. PDMS negatieven worden genezen in de 3D-gedrukte mal; vervolgens is agarose gegoten in de uitgeharde PDMS negatieven. Cellen worden overgeënt in de resulterende agarose putten waar ze in weefsel ringen aggregaat.

Fabricage van aangepaste Agarose putten voor het zaaien van de cellen en weefsel Ring zelf-assemblage met behulp van 3D-gedrukte mallen

Dit manuscript beschrijft een gedetailleerd protocol om arrays van 3D menselijke skeletspierenmicrotissues en minimaal invasieve downstream in situ assays van functie te produceren, inclusief contractiele kracht en calciumbehandelingsanalyses.

Beoordeling van functionele statistieken van de gezondheid van skeletspieren in microtissues van menselijke skeletspieren

Dit protocol biedt methoden voor het genereren van 3D-gemanipuleerde hart- en skeletspierweefsels en beschrijft het gebruik ervan in preklinische screeningsmodaliteiten voor geneesmiddelen. De beschreven methoden maken gebruik van een magnetisch detectiesysteem om de gelijktijdige beoordeling van 24 weefsels parallel te vergemakkelijken.

Preklinische geneesmiddelentests in schaalbare 3D-gemanipuleerde spierweefsels

Er wordt een reproduceerbare methode gepresenteerd om 3D-myocardiale weefsels te genereren die smelt-elektrospinnende schrijf- (MEW), polycaprolacton (PCL)-steigers en fibrinehydrogels combineren met hiPSC-afgeleide cardiomyocyten en fibroblasten. Deze techniek biedt nauwkeurige controle over de steigerarchitectuur en kan worden toegepast bij preklinische geneesmiddelentests en modellering van hartaandoeningen.

3D generatie van menselijk myocardweefsel met behulp van smeltelektrospinning schrijven van polycaprolactonsteigers en hiPSC-afgeleide hartcellen

Leer de fabricage van collageen-gebaseerde weefselconstructen met skeletmyoblasten voor hartreparatie. Deze methode maakt elektrische geleiding tussen boezels en kamers mogelijk als alternatief voor pacemakers bij volledig hartblok.

Fabricage van myogene Engineered Tissue constructen

Meer video's verkennen