Name: Meten van de bloeddruk in Muizen met behulp van Volume Pressure Recording, een staart-cuff-methode (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-15T00:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 54 s
Description: Leer bloeddrukmeting bij muizen met de staart-cuff-methode Volume Pressure Recording. Deze niet-invasieve techniek maakt gelijktijdige metingen bij acht dieren mogelijk voor cardiovasculair onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol style="padding:5px;"><li> Apparatuur Set-up <ol style="padding:5px;"><li> Selecteer een gebied in het lab, waar de temperatuur is aan of hoger dan 20 ° C. </li><li> Vermijd plaatsen in de buurt van airconditioning ventilatieopeningen en / of lawaai. </li><li> Niet bloot te stellen het dier om te geuren die kunnen leiden tot irritatie en / of stress, zoals parfum, eau de cologne, chemicaliën en reinigingsmiddelen. </li><li> Zet de CODA Controller. </li><li> Zet de Warming Platform en ingesteld op niveau 3. Als de omgevingstemperatuur boven 25 ° C, begint op niveau 1 of 2. </li><li> Controller Diagnostics Test <ol style="padding:5px;"><li> Open de CODA-software. </li><li> Selecteer de CODA Device door erop te klikken. </li><li> Klik op &quot;Test Selected Device&quot;. </li><li> Selecteer de manchetten en kanalen om te testen en klik op &quot;Test&quot;. </li><li> Na de test is voltooid, sluit u het apparaat te testen venster. </li></ol></li></ol></li><li> Software Set-up <ol style="padding:5px;"><li> Beheer Personeel en Dieren <ol style="padding:5px;"><li> Het beheer van personeel <ol style="padding:5px;"><li> Selecteer Extra&gt; Beheer Personeel. </li><li> Klik op &quot;Onderzoeker 1&quot; om de naam te wijzigen. </li><li> Klik op de volgende rijen om extra onderzoekers toe te voegen. </li><li> Klik op &quot;Technici Tab&quot; te wijzigen of toe te voegen technici. </li><li> Klik op &quot;monsters Tab&quot; naar het dier naam voor gemakkelijke identificatie en om het dier te selecteren, rat of muis. </li><li> Klik op &quot;Animals Tab&quot; om het dier te type en de gevoeligheid aan te passen. </li></ol></li></ol></li><li> Nieuwe Experiment <ol style="padding:5px;"><li> Selecteer Bestand&gt; Nieuw&gt; Experiment </li><li> Begin een nieuw experiment <ol style="padding:5px;"><li> Voer de Experiment Naam. </li><li> Selecteer de sleutel onderzoeker. </li><li> Selecteer een Begin datum en klik op &quot;Next&quot;. </li></ol></li><li> Basis Sessie Info <ol style="padding:5px;"><li> Voer de Session Name </li><li> Stel &quot;Acclimatisering Cycles&quot; tot 5. Als u liever geen acclimatisering cycli, op nul gezet te nemen. Om te helpen bij het acclimatiseren van het dier aan de houder en manchetten, voeg extra cycli om uw experiment en het experiment gedurende 5 opeenvolgende dagen. </li><li> Set &quot;Aantal Sets&quot; op 1. </li><li> Stel &quot;Time Between Sets&quot; tot 30 seconden voor meerdere sets </li><li> Stel &quot;Cycles per Set&quot; tot 20 cycli. </li><li> Zet &quot;tussen de cycli&quot; tot 5 seconden en klik op &quot;Next&quot;. </li></ol></li></ol></li><li> Specimen Selectie <ol style="padding:5px;"><li style="list-style-type:none;"><ol style="padding:5px;"><li> Selecteer het monster uit het monster zwembad en deze toewijzen aan de eerste beschikbare kanaal en klik op &quot;Next&quot;. </li></ol></li><li> Sessie Parameters <ol style="padding:5px;"><li> Stel &quot;Maximum occlusiedruk&quot; aan 250mmHg. </li><li> Stel &quot;Deflatie Time&quot; tot 20 seconden voor muizen, 15 seconden voor ratten. </li><li> Stel &quot;Minimum Volume&quot; naar 15ul. </li><li> Stel &quot;Display Style&quot; om een ​​kanaal per grafiek. </li><li> Voeg extra onderzoekers en technici in en klik op &quot;Next&quot;. </li></ol></li><li> Sessie Script <ol style="padding:5px;"><li> Bekijk de Session Script en klik op &quot;Next&quot;. </li><li> Selecteer niet Voltooien totdat je de Animal Voorbereiding sectie. </li></ol></li></ol></li></ol></li><li> Dier Voorbereiding <ol style="padding:5px;"><li> Animal Set-up <ol style="padding:5px;"><li> Dier Holder <ol style="padding:5px;"><li> Om te trainen en te verbeteren dier acclimatisering, voeg extra cycli om uw experiment en het experiment gedurende vijf opeenvolgende dagen. U kunt ook helpen met acclimatisatie door het plaatsen van het dier in de houder gedurende 15 minuten gedurende 3 opeenvolgende dagen voorafgaand aan het eigenlijke onderzoek. </li><li> Plaats elk dier in een houder door het oppakken van het dier bij de staart en voorzichtig het plaatsen van het dier in de achterkant van de houder, die het open uiteinde van de neuskegel gezichten. Let op: de grootte van de dieren in verhouding tot de grootte van de geselecteerde houder. Het dier moet vrij kunnen betreden de houder. </li><li> Zorgvuldig zet de achterklep aan de houder door het rode schroefdop op de achterklep. Zorg moeten worden genomen om te voorkomen dat knijpen van de staart of enig andere lichaamsdelen, terwijl het veiligstellen van de achterklep. </li><li> Schuif de neus in de richting van de achterklep, het beperken van de beweging van het dier. De neus moet worden in een positie om het dier te beperken uit te draaien, terwijl in de houder. </li><li> Plaats de houder op de opwarming platform in de aangewezen positie. Als het testen van de dezelfde groep van dieren over een periode van tijd, moet u de houder positie draaien op de opwarming platform om consistentie en nauwkeurigheid van uw BP metingen te verbeteren. Laat het dier ten minste 5 minuten te acclimatiseren aan de houder. </li><li> Niet aanraken of hanteren van het dier, terwijl in de houder. De toegenomen contact kan irriteren het dier. </li><li> Laat nooit het dier in de houders zonder toezicht. </li></ol></li><li> Manchet Plaatsing <ol style = &quot;padding: 5px;&quot;&gt; <li> Draad de staart door middel van de &#39;Occlusie Cuff.&#39; Plaats deze manchet zo dicht mogelijk bij de basis van de staart als mogelijk, zonder kracht. </li><li> Zet de &#39;Occlusie Cuff Tubing &quot;in de inkeping aan de bovenkant achterkant van de houder. </li><li> Draad de staart door middel van de &#39;VPR Manchet &quot;, waardoor het binnen 2 mm van de&quot; Occlusie Cuff &quot;. </li><li> Zet de &#39;VPR Cuff Tubing &quot;in de inkeping aan de bovenkant achterkant van de houder. </li><li> Bevestig de manchetten aan de CODA Controller. </li></ol></li><li> Temperatuur dier <ol style="padding:5px;"><li> Laat het dier ten minste 5 minuten naar thermoregulate. </li><li> Vaak registreren de temperatuur van het dier met een infrarood thermometer. Het dier temperatuur moet 32 ​​tot 35 ° C. </li></ol></li></ol></li></ol></li><li> Experiment <ol style="padding:5px;"><li> Begin Experiment <ol style="padding:5px;"><li> Klik op &quot;Finish&quot; en het experiment zal onmiddellijk beginnen. </li></ol></li><li> Einde Experiment <ol style="padding:5px;"><li> Dier <ol style="padding:5px;"><li> Onmiddellijk verwijderen van het dier uit de mouwen en de houder. </li><li> Ga terug het dier om hun kooi na de &quot;Simple Session Summary Report&quot; wordt weergegeven. </li></ol></li><li> Data Collection <ol style="padding:5px;"><li> Na voltooiing van de laatste cyclus van de aanvaarde cycli automatisch worden weergegeven in spreadsheet-formaat binnen de CODA applicatie, klik op de &quot;Export naar Excel&quot; te klikken. </li><li> Selecteer de map waarin u het bestand in, de naam van het bestand en klik op &quot;Opslaan&quot;. </li><li> Open het Excel-toepassing en klik op &quot;Open&quot;. </li><li> Bekijk alle bestandstypen aan de &quot;. CSV-bestand opgeslagen&quot; weergeven, klikt u op het bestand. </li></ol></li><li> Data Processing <ol style="padding:5px;"><li> Er zijn verschillende manieren om de gegevens in het Excel-bestand te verwerken. Een veel voorkomende praktijk is het verkrijgen van het gemiddelde en de standaarddeviatie. </li><li> Verwijderen van metingen als de standaardafwijking groter is dan 30. </li><li> Daarnaast kunnen verworpen cycli worden bekeken en de gehele database kan eenvoudig worden geëxporteerd naar Excel. Raadpleeg de gebruikershandleiding voor meer informatie. </li></ol></li></ol></li></ol></li></ol>

De auteurs hebben niets te vermelden.

meten van de bloeddruk in muizen met behulp van volume pressure recording, een staart-cuff-methode

Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method

Het CODA 8-kanaals High Throughput Non-invasieve bloeddruk meet de bloeddruk in maximaal 8 muizen of ratten tegelijkertijd. Het CODA staart-cuff systeem maakt gebruik van Volume Pressure Recording (VPR) om de bloeddruk te meten door het bepalen van de staart bloedvolume. Een speciaal ontworpen drukverschiltransductor en een occlusie staart-cuff meten het totale bloedvolume in de staart, zonder de noodzaak om de individuele pulssignaal te verkrijgen. Speciale aandacht is geboden aan de lengte van de occlusie manchet om daaruit de meest nauwkeurige bloeddrukmetingen. VPR kan gemakkelijk verkrijgen metingen op een donkere huid knaagdieren, zoals muizen en C57Bl6 is MRI compatibel. Het CODA systeem biedt u met metingen van zes (6) verschillende bloeddruk parameters; systolische en diastolische bloeddruk, hartslag, gemiddelde bloeddruk, staart doorbloeding, en de staart bloedvolume. Metingen kunnen worden verricht op beide wakker of verdoofde muizen of ratten. Het CODA-systeem bestaat uit een controller, laptop computer, software, manchetten, dier houders, infrarood verwarming pads, en een infrarood thermometer. Er zijn zeven verschillende maten houder voor muizen zo klein als 8 gram aan ratten zo groot als 900 gram.

Het CODA 8-kanaals High Throughput Non-invasieve bloeddruk meet de bloeddruk in maximaal 8 muizen of ratten tegelijkertijd. Deze staart-cuff systeem maakt gebruik van Volume Pressure Recording (VPR) om de bloeddruk te meten door het bepalen van de staart bloedvolume.

Meten van de bloeddruk in Muizen met behulp van Volume Pressure Recording, een staart-cuff-methode

Het CODA 8-kanaals high-throughput systeem voor niet-invasieve bloeddrukmeting meet de bloeddruk in maximaal 8 muizen of ratten gelijktijdig. De CODA ...

Het woord coda is Italiaans voor staart. Het Coda-systeem voor niet-invasieve bloeddrukmeting maakt bloeddrukmetingen bij knaagdieren mogelijk, dankzij een gespecialiseerde volumedruksensor die veranderingen in het bloedvolume van de staart meet wanneer deze over de staart van een dier wordt geplaatst. Deze video demonstreert hoe u het systeem instelt, de dieren voorbereidt en gelijktijdig bloeddrukmetingen verzamelt voor acht dieren.Hallo, ik ben Anju Bala Krishnan, werkzaam in het laboratorium van Alan Dougherty bij het Cardiovascular Research Center van de University of Kentucky in Lexington. Vandaag tonen we u een procedure om de bloeddruk bij muizen te meten met behulp van volume-drukregistratie via de staartmanchetmethode. Wij gebruiken deze procedure in ons laboratorium om het cardiovasculaire systeem te bestuderen.Laten we beginnen. Om het CODA-systeem op te stellen, kiest u een plek in het laboratorium waar de kamertemperatuur stabiel is op 20 °C of hoger. Vermijd locaties nabij ventilatieroosters van de airconditioning; blootstelling van dieren aan harde geluiden of geuren kan irritatie of stress veroorzaken.De dierengeuren kunnen ook elk sterk parfum omvatten dat u mogelijk draagt. Zet de Coda-controller aan en vervolgens de verwarmingsplatforms, die zijn ingesteld op niveau drie. Als de kamertemperatuur boven de 25 °C ligt, start dan op niveau één of twee.Voer eerst de Controllerdiagnostiektest uit en open de Coda-software. Selecteer het Coda-apparaat door erop te klikken. Klik op test geselecteerde apparaat.Selecteer de mancheten en kanalen die getest moeten worden en klik op testen. Sluit het venster voor apparaattests nadat de diagnostische test van de controller is voltooid. Selecteer de code van de te gebruiken controller en klik vervolgens.Gebruik deze apparaten om de software in te stellen. Selecteer tools personeelsbeheer. Klik vervolgens op onderzoeker één.Klik op de volgende rijen om extra onderzoekers toe te voegen om de naam te wijzigen. Klik vervolgens op gegevens opslaan. Klik op het tabblad technici om technici te wijzigen of toe te voegen.Klik daarna op het tabblad 'specimens' om de dieren te benoemen voor een eenvoudige identificatie en om het diertype te selecteren. Klik vervolgens op 'save data'. Klik tot slot op het tabblad 'animals'.Om het diertype en de gevoeligheid te wijzigen, klikt u op gegevens opslaan en sluit u vervolgens het venster. Om een nieuw experiment te starten, selecteert u bestand Nieuw experiment. Voer de naam van het experiment in, selecteer de hoofdonderzoeker en selecteer een begindatum.Klik op volgende. De volgende stap is het invoeren van de basisinformatie van de sessie. Begin met het invoeren van de sessienaam en stel het aantal acclimatisatiecycli in op vijf; als u geen acclimatisatiecycli wilt opnemen, stelt u dit in op nul.Stel het aantal sets in op één, de tijd tussen sets op 30 seconden voor meerdere sets. Stel het aantal cycli per set in op 20 cycli en de tijd tussen cycli op vijf seconden. Klik vervolgens op next.Om te beginnen met de monsterselectie, selecteert u het monster uit de monsterpool en wijst u dit toe aan het eerste beschikbare kanaal. Klik vervolgens op 'volgende' om de sessieparameters in te stellen. Stel de maximale occlusiedruk in op 250 millimeters.Stel de kwikdeflatietijd in op 20 seconden. Stel voor muizen het minimumvolume in op 15 microliters en de weergavestijl op één kanaal per grafiek. U kunt eventueel ook extra onderzoekers en technici toevoegen.Klik vervolgens op volgende. Controleer het sessiescript en klik op volgende. Selecteer niet voltooien totdat u het gedeelte over de voorbereiding van het dier heeft voltooid, dat hierna wordt beschreven.U kunt nu de dieren ophalen en naast het CODA-bloeddrukmeetstelsel plaatsen. Let voordat u de dieren in de houders plaatst op de grootte van elk dier in verhouding tot de grootte van de geselecteerde houder. Het dier moet ongehinderd in de houder kunnen gaan.Plaats elk dier in een houder door het dier bij de staart op te pakken en voorzichtig in de achterzijde van de houder te plaatsen, die naar het open uiteinde van de neuskegel is gericht. Bevestig de achterklep zorgvuldig aan de houder door de schroef op de achterklep aan te draaien. Let erop dat de staart of andere lichaamsdelen niet bekneld raken bij het sluiten van de achterklep.Volgende dia. De neuskegel richting de achterklep. Hiermee wordt de beweging van het dier beperkt.De neuskegel moet in een positie staan die voorkomt dat het dier zich kan omdraaien. Plaats de houder, terwijl het dier erin bevindt, op het verwarmingsplatform. Laat het dier in de aangewezen positie ten minste vijf minuten wennen aan de houder.Raak het dier niet aan en hanteer het niet. Terwijl het dier zich in de houder bevindt, kan verhoogd contact het dier irriteren; laat het dier nooit onbeheerd in de houder achter. Om de occlusiemanchet voor de staart correct te plaatsen, rijgt u de staart door de occlusiemanchet en plaatst u de manchet zo dicht mogelijk bij de basis van de staart zonder kracht uit te oefenen.Rijg daarna de staart door de VPR-sensormanchet, waarbij deze binnen twee millimeter van de occlusiemanchet wordt geplaatst. Zet de slang vast in de inkeping aan de bovenachterzijde van de houder. De occlusiemanchet rond de staart wordt opgeblazen om de bloedtoevoer naar de staart te belemmeren.De occlusiemanchet wordt langzaam leeggelaten en de VPR-staartmanchet, voorzien van een speciaal ontworpen sensor, meet de fysiologische kenmerken van de terugkerende bloedstroom terwijl het bloed terugstroomt naar de staart. De VPR-sensormanchet meet de zwelling van de staart als gevolg van de arteriële pulsaties van de bloedstroom. De systolische bloeddruk wordt automatisch gemeten bij het eerste verschijnen van de staartzwelling.De diastolische bloeddruk wordt automatisch berekend zodra de stijgende zwelsnelheid in de staart stopt. Nadat alle dieren in de houders zijn geplaatst en de manchetten om hun staart zijn aangebracht, moeten ze ten minste vijf minuten krijgen om thermisch te reguleren. Noteer de temperatuur van de dieren.Met een infraroodthermometer moet de temperatuur van het dier gewoonlijk tussen de 32 en 35 °C liggen. Nu de dieren klaar zijn, kunnen we aan het experiment beginnen. Klik op voltooien om het experiment te starten.De rode lijn stelt de deflatie van de occlusieband en de VPR-sensormans voor. De blauwe lijn stelt de veranderingen in het bloedvolume van de staart voor. De eerste buiging van de blauwe lijn, het minimale veranderingspercentage, identificeert de systolische bloeddruk.Het tweede buigpunt van de blauwe lijn, de maximale veranderingssnelheid, identificeert de diastolische bloeddruk op het moment dat het experiment is beëindigd. Verwijder de dieren onmiddellijk uit de manchetten en de houder. Een eenvoudig verslag met de samenvatting van de sessie wordt weergegeven.De in het experiment verzamelde gegevens worden opgeslagen als een Excel-bestand. Er zijn verschillende manieren om de gegevens binnen het Excel-bestand te verwerken. Een gebruikelijke praktijk is het berekenen van het gemiddelde en de standaardafwijking en het verwijderen van metingen.Indien de standaarddeviatie groter is dan 30. Bovendien kunnen afgekeurde cycli worden bekeken en kan de gehele database eenvoudig naar Excel worden geëxporteerd. Raadpleeg het schriftelijke protocol en de gebruikershandleiding.Voor meer informatie: ik heb u zojuist laten zien hoe u de bloeddruk bij muizen niet-invasief kunt meten met behulp van volumedrukregistratie. Het is van groot belang om stress bij het dier te verminderen door deze procedure te volgen, om zo nauwkeurige en consistente metingen te verkrijgen. Dat is alles.Bedankt voor het kijken en veel succes met de experimenten.

measuring-blood-pressure-mice-using-volume-pressure-recording-tail

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Het meten van linker ventrikel druk (LV) in embryonale en neonatale muizen wordt beschreven. De druk wordt gemeten door het inbrengen van een naald is aangesloten op een met vloeistof gevulde transducer in de LV onder echografische begeleiding. Er moet worden normaal hartfunctie handhaven tijdens de experimentele protocol.

Het meten van linker ventrikel druk in de late embryonale en neonatale muizen

Deze film laat zien hoe systemische en lever hemodynamiek bij muizen te verwerven. De gehele controle omvat verkrijging van vitale parameters, systemische bloeddruk, centrale veneuze druk, gemeenschappelijk leverslagader stroomsnelheid en poortader druk en het portaal debiet in muizen.

Monitoring van Systemische en lever hemodynamische parameters in Muizen

We beschrijven een techniek voor het meten van de aortica-stijfheid uit zijn druk-diameter relatie in vivo bij muizen. De diameter van de aorta wordt geregistreerd door middel van echografie en de aortadruk wordt invasief gemeten met een solid-state drukkatheter. De bloeddruk wordt incrementeel gewijzigd en de resulterende diameter wordt gemeten.

Meten Oplopend stijfheid van de aorta In Vivo In Muizen met behulp van echografie

Hier presenteren we een protocol om eenvoudig en betrouwbaar de longdruk-volumecurve bij muizen te meten, waaruit blijkt dat het voldoende gevoelig is om fenotyische parenchymveranderingen in twee veelvoorkomende longaandoeningen, pulmonaire fibrose en emfyseem, te detecteren. Deze metrische biedt een middel om de structurele veranderingen in de long te kwantificeren met de zich ontwikkelende pathologie.

Meting van de druk-volume curve in muizenlongen

Dit artikel beschrijft de meting van de functionele capaciteit van de linker ventrikel bij muizen door middel van druk/volume analyse bij verschillende hartslagfrequenties.

Hartkatheterisatie in Muizen bij de Pressure Volume Relationship Meet: Onderzoek naar de Bowditch Effect

Dit manuscript beschrijft een gedetailleerd protocol voor het verzamelen van de druk-volume data van de muis.

Het meten van druk Volume Loops in de muis

Het doel van dit protocol is om de systemische bloeddruk te beoordelen bij bewuste, vrij bewegende muizen met behulp van implanteerbare radio-telemetrie-apparaten.

Langdurige Bloeddruk meten in vrij bewegende muizen met behulp van telemetrie

Hier beschrijven we een setup voor gelijktijdige opname elektrocardiogram en intra-arteriële bloeddruk (BP) in experimentele ratten, die kunnen worden gedaan met standaard uitrusting in dierlijke voorzieningen en kunnen worden toegepast op de fysiologische of farmacologische studies om te onderzoeken van pathogene of therapeutische mechanismen in cardiovasculaire geneeskunde.

Gelijktijdige electrocardiografie opname en invasieve bloed druk meting bij ratten

Dit protocol biedt een stapsgewijze procedure voor het uitvoeren van meervoudige intraveneuze toediening van bolusdoses en invasieve hemodynamische monitoring bij muizen. Onderzoekers kunnen dit protocol gebruiken voor toekomstige screening van therapeutische verbindingen voor hypertensie van de longslagader.

Meervoudige intraveneuze bolusdosering en invasieve hemodynamische beoordeling in een door hypoxie geïnduceerd model voor hypertensie van de longslagader van muizen

Dit is een gids voor het wijzigen van de vorm van glas micropipetten. In het bijzonder door gebruik te maken van warmte en luchtdruk van de taper is verbreed zonder verhoging van de tip opening, wat leidt tot een lagere weerstand pipet. Dit is essentieel voor het lage geluidsniveau opnamen van kleine cellen te verkrijgen, maar is nuttig in tal van toepassingen.

Druk polijsten pipetten voor verbeterde patch-clamp opnemen

Leer bloeddrukmeting bij muizen met de staart-cuff-methode Volume Pressure Recording. Deze niet-invasieve techniek maakt gelijktijdige metingen bij acht dieren mogelijk voor cardiovasculair onderzoek.

Meten van de bloeddruk in Muizen met behulp van Volume Pressure Recording, een staart-cuff-methode

Meer video's verkennen