Name: In vivo Ca 2 + - Beeldvorming van Mushroom Body neuronen tijdens Olfactorische Leren in de Honey Bee (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-08-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
Description: Leer calciumbeeldvorming in bijen voor onderzoek naar olfactorisch leren en neurale activiteit in de paddenstoellichamen. Deze methode onthult de neurale mechanismen van geheugen en gedrag.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk wordt gefinancierd door de DFG.

Bee Voorbereiding en Back-fill <ol><li> Catch honingbij voedermachines bij bijenkorf en chillen op het ijs voor immobilisatie. </li><li> Mount in plexiglas opname kamers 3. Fix ogen en thorax aan de wanden van de opname kamer met een laag smeltpunt harde was. </li><li> Trek glazen capillairen zoals vaak gebruikt voor elektrofysiologie en breken bij de tip om een ​​tip diameter van ca. verkrijgen. 10μm. Cover topje van de capillair met kleurstof pasta. Dye pasta bestaat uit een 10:01 mengsel van Fura-2 dextran en lysine altijd op de juiste tetramethylrodamine dextran. </li><li> Voor de kleuringsprocedure immobiliseren antennes met kleinigheden of n-eicosane. Verwijderen van een stuk van cuticula boven de hersenen en duw klieren en de luchtpijp naar de zijkant om de toegang tot de paddestoel lichaam mogelijk te maken. </li><li> Injecteer haarvaten in hetzij de soma of axonale gebied van paddestoelen lichaam neuronen. Dit kan gedaan worden de vrije hand of met behulp van een micro-manipulator. Vervolgens te herstellen cuticula stuk op het hoofd van capsule en draai antennes. </li><li> Feed bijen met 30% sucrose-oplossing alvorens ze op te slaan in een vochtige geval voor ten minste vier uur of &#39;s nachts bij 20 ° C. </li></ol> In vivo beeldvorming <ol><li> Voorkom bewegingen van de bijen bijvoorbeeld met een klein stukje spons die wordt gedrukt tegen de buik en vastgezet met een clip of tape om de opname kamer. </li><li> Om te voorkomen dat beweging van de hersenen als gevolg van het verpompen van de slokdarm, snijd een kleine incisie in de cuticula boven het labrum en trek de slokdarm en de omliggende solide structuren om het onder spanning zetten zonder beschadiging van de slokdarm 4. Dek af met twee componenten silicone. </li><li> Maak gaten met een naald en steek draadelektroden voor de opname van M17. </li><li> Verwijder de cuticula stuk, luchtpijp en klieren boven de hersenen. Zuigen heamolymph in het hoofd capsule met een stuk papier. </li><li> Vul de kop capsule met twee componenten silicone. Het is belangrijk dat de hersenen volledig is bedekt. </li><li> Plaats bij op het podium microscoop en plaats een druppel water op het oppervlak van de silicone om de dip doel van de microscoop onder te dompelen in de druppel. Focus op gekleurde neuronen. </li></ol> Geur en registratie van signalen Olfactometer: We maken gebruik van een computer gestuurde, custom built stimulatie-apparaat of &quot;olfactometer&quot;, zoals eerder beschreven door Galizia en Vetter 3. Geuren worden verdund in een constante luchtstroom richting van de antennes. Elke stimulus bestaat uit een 3s geur puls van 0,2 ml geur verzadigde lucht. De stimulatie protocol kan worden ingesteld in de opname-software TILLVision. Microscoop en Imaging set-up: We maken gebruik van een Zeiss fluorescentiemicroscoop. Beelden worden vastgelegd bij 25 ° C met een sampling-rate van 5 Hz met behulp van een TOT-Photonics beeldapparaat gemonteerd op de microscoop. Calcium signalen worden opgenomen via een X60, 0,9 W Olympus dip doelstelling met een Imago CCD camera (640x480 pixels, 4x weggegooid op de chip tot 160x120 pixels). Fura-2 is blij met monochromatisch licht van 380 nm golflengte 340 en voor ratiometrische metingen. Fluorescentie wordt gedetecteerd door middel van een 410nm dichroïde spiegel en een 440nm lange pass filter. De parameters voor de opname worden ingesteld in de opname-software. Elke meting duurt 10s en blootstelling tijd voor de twee golflengten kan worden aangepast aan de kleuring intensiteit in elk preparaat. M17-opname: De gradenboog spieren van de labium (M17) is extracellulair opgenomen op de gedragsreacties die verband houden met het leren controleren, dat wil zeggen de PER 5, 6. Injecteer een koperdraad in de spier dicht bij de monddelen. Injecteer aardelektrode in het oog. De spier potentialen worden versterkt met een custom build voorversterker, gedigitaliseerd en opgeslagen op een computer. Stimulus ontstaan ​​is veroorzaakt door de olfactometer. Data Analysis <ol><li> Tijdens het experiment: De opnames van de calcium signaal worden ingevoerd in een computer en opgeslagen. De opname-software TILLVision maakt een eerste inspectie van de signalen, zoals de berekening van de verhouding tussen de golflengtes (340nm/380nm) en de berekening van de deltaF (aftrekken van de basis). </li><li> Beeldverwerking wordt uitgevoerd met op maat geschreven programma&#39;s in IDL. Bereken ratio van Ca 2 + signalen van 340nm en 380 nm metingen voor elke pixel. Bepaal achtergrond fluorescentie (F) door gemiddeld meer dan frames voor de stimulus en aftrekken van de ratiometrische signaal (deltaF). </li><li> Om Region of Interest (ROI) te definiëren: Bereken gemiddelde van frames tijdens de stimulus en breng een low pass filter (3X3px). Om te zetten grijsschaal om valse kleuren schaal. Bepaal activiteit in neuronale structuren als activiteit plekken in valse kleuren foto&#39;s en definiëren als ROI. </li><li> Bereken temporele dynamiek van de actieve regio&#39;s door het gemiddelde van de pixels in de ROI over alle frames, zonder enige filtering of correctie. </li></ol> Samen met de Fura-2 dextraan vullen we de neuronen met de Muur kleurstof rhodamine dextran (&quot;mini Ruby&quot;). Beide kleurstoffen hebben hetzelfde molecuulgewicht, ze moeten samen worden geplaatst in de neuronen. Wide-field imaging maakt slechts een zeer beperkte ruimtelijke resolutie, daarom is het aan te raden om de gekleurde structuren te onderzoeken na het experiment met behulp van confocale scanning microscopie. <ol><li> Na de fysiologische metingen, ontleden hersenen en fixeren. </li><li> Spoel in PBS en stapsgewijze uitdrogen in ethanol en duidelijk in methyl salycilate. </li><li> Voor de confocale microscopie embed hersenen in methyl salycilate. </li><li> We maken gebruik van een Leica TCS SP2 microscoop. Excitatie golflengte is 543nm. </li><li> We scannen de hersenen met een lucht-of olie-immersie objectief en vergelijk de gekleurde structuren met de beeldgegevens. </li></ol> Representatieve resultaten: Als de kleuring en de voorbereiding was succesvol, het signaal in valse kleuren schaal, bijvoorbeeld in champignon lichaam alfa-kwab extrinsieke neuronen, uit zou kunnen zien zoals in figuur 1. De gedrags-respons (PER) kan worden berekend als piek frequentie tijdens de prikkel minus piek frequentie voor de stimulus (Figuur 2). De gebrandschilderde structuren kunnen worden onderzocht in meer detail met behulp van een confocale microscoop (figuur 3). <img src="/files/ftp_upload/1353/figure1_new.png" alt="Figuur 1" /> Figuur 1: Vertegenwoordiger Calcium Imaging signalen (stimulatie met heptanal). A: Bedrukte regio van de honingbij hersenen. B: Raw fluorescerende beeld als gezien door een X20 dip doelstelling op 380 nm excitatie golflengte, is de alfa-lob van de paddestoel lichaam beschreven in het paars. Kleurstof werd geïnjecteerd in de ventro-laterale rand van de alfa-lobben aan extrinsieke neuronen vlek. C: valse kleuren afbeelding afgeleid van de gemiddelde signaal, deltaF (340/380), tijdens de drie seconden stimulus, alpha-kwab beschreven in het paars, geselecteerd ROI geschetst in het zwart. D: Temporele dynamieken van de calcium signaal in reactie op de geur stimulatie, gemiddelde signaal uit de regio van belang zoals aangegeven in C. E: Temporele dynamieken van de calcium signaal in reactie op de sucrose stimulatie van de ipsi-en contra-laterale antenne respectievelijk de ROI aangegeven in C. <img src="/files/ftp_upload/1353/figure2_new.png" alt="" /> Figuur 2: Representatieve M17 reactie. Na olfactorische conditionering van de bij een uitbreiding van de proboscis wanneer de geur wordt aangeboden zonder beloning. Rode lijn geeft geur stimulus. Inzet: PER van de honingbij. <img src="/files/ftp_upload/1353/figure3_new.png" alt="" /> Figuur 3: representatief beeld stack. Na de beeldvorming experiment van de hersenen werd ontleed. Het neuron uit figuur 1 is gescand met behulp van een confocale microscoop met een X20 olie-immersie objectief, alfa-lob die in paars.

<ol><li>Joerges, J., Küttner, A., Galizia, C. G., Menzel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Representations+of+odors+and+odor+mixtures+visualized+in+the+honeybee+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Representations of odors and odor mixtures visualized in the honeybee brain.</a> Nature. 387 (6630), 285-288 (1997).</li>
<li>Rehder, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+honeybee%27s+proboscis+reflex+by+electromyiographic+recordings%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Insect+Physiol%22%5BJournal%5D)">Quantification of the honeybee's proboscis reflex by electromyiographic recordings.</a> J. Insect Physiol. 33, 501-507 (1987).</li>
<li>Galizia, C. G., Vetter, R. S. Optical Methods for Analyzing Odor-Evoked Activity in the Insect Brain. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aGalizia%2C+CG+%22Methods+in+Insect+Sensory+Neuroscience%22">Methods in Insect Sensory Neuroscience</a>. Christensen, T. A. , CRC Press. Boca Raton. 345-388 (2004).</li>
<li>Mauelshagen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+correlates+of+olfactory+learning+paradigms+in+an+identified+neuron+in+the+honeybee+brain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">Neural correlates of olfactory learning paradigms in an identified neuron in the honeybee brain.</a> J Neurophysiol. 69 (2), 609-625 (1993).</li>
<li>Kuwabara, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bildung+des+bedingten+Reflexes+von+Pavlovs+Typus+bei+der+Honigbiene+Apis+mellifica%2C+Hokaido+Univ%5BTitle%5D)+AND+%22Zool.+J.+Sci%22%5BJournal%5D)">Bildung des bedingten Reflexes von Pavlovs Typus bei der Honigbiene Apis mellifica, Hokaido Univ.</a> Zool. J. Sci. 13, 458-464 (1957).</li>
<li>Bitterman, M. E., Menzel, R., Fietz, A., Schafer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Classical+conditioning+of+proboscis+extension+in+honeybees+%28Apis+mellifera%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Psychology%22%5BJournal%5D)">Classical conditioning of proboscis extension in honeybees (Apis mellifera.</a> Journal of Comparative Psychology. 97 (2), 107-119 (1983).</li>
</ol>

In deze presentatie hebben we doorlopen alle stappen om te onderzoeken in vivo calcium signalen in de honingbij. We pasten deze techniek paddestoel lichaam neuronen, maar beeldvorming kan worden gedaan op alle neuronen waarvoor een kleuring techniek kan worden vastgesteld. Hebben we ons gericht op de neuronen in de olfactorische route van de honingbij. De experimenten zijn uitgevoerd in een donkere kamer. De set up is verlicht met een lange golf licht dat uit leugens van de optische waarneming bereik van de hon...

<table><tbody><tr><td>harde was met laag smeltpunt Deiberit 502</td><td>Dr. B&amp;#246;hme Sch&amp;#246;ps Dental GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>FURA-2 dextraankaliumzout, 10 000 MW</td><td>Invitrogen</td><td>F-3029</td><td>Beschermen tegen licht.</td></tr><tr><td>tetramethylrhodamine dextran 10 000 MW</td><td>Invitrogen</td><td>D-3312</td><td>Beschermen tegen licht.</td></tr><tr><td>n-eicosaan</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>21, 927-4</td><td></td></tr><tr><td>Kwik Sil adhesief</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>KWIK SIL</td><td></td></tr><tr><td>Imaging-opstelling</td><td>TILL Photonics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CCD-camera</td><td>Imago</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CED</td><td>Texas Instruments</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

in vivo ca 2 + - beeldvorming van mushroom body neuronen tijdens olfactorische leren in de honey bee

In vivo Ca2+- Imaging of Mushroom Body Neurons During Olfactory Learning in the Honey Bee

De in vivo en semi-in vivo voorbereiding voor Calcium beeldvorming is ontwikkeld in ons laboratorium door Joerges, Kuttner en Galizia meer dan tien jaar geleden, aan geur opgeroepen activiteit te meten in de antennale lob 1. Vanaf dat moment is het voortdurend verfijnd en toegepast op verschillende neuropiles in de bij hersenen. We beschrijven hier de voorbereiding die momenteel worden gebruikt in het lab om de activiteit te meten in champignon lichaam neuronen met behulp van een dextran gekoppeld calcium-gevoelige kleurstof (Fura-2). We retrogradely vlek paddestoel lichaam neuronen door het injecteren van kleurstof in hun axonen of soma regio. Wij richten ons op het verminderen van de invasiviteit, om een ​​voorbereiding waarin het nog steeds mogelijk om te trainen met behulp van de bij PER conditionering te bereiken. Wij zijn in staat om toezicht te houden en te kwantificeren de gedragsmatige respons door het opnemen van electro-myograms van de spier die de PER (M17) 2 controles. Na de fysiologische experiment de verbeelde structuren worden onderzocht in meer detail met behulp van confocale scanning microscopie om de identiteit van de neuronen te pakken.

Bijen kunnen worden geconditioneerd in een appetitief olfactorische leren paradigma (PER-conditioning). Het gebruik van geuren als prikkels, hebben we een methode waarin het gedrag wordt vastgelegd, terwijl tegelijkertijd Calcium Imaging wordt gebruikt om de geur oproept activiteit te meten in champignon lichaam neuronen<em&gt; In vivo</em&gt;.

In vivo Ca 2 + - Beeldvorming van Mushroom Body neuronen tijdens Olfactorische Leren in de Honey Bee

De in vivo en semi-in vivo preparatie voor calciumimaging is meer dan tien jaar geleden in ons laboratorium ontwikkeld door Joerges, Küttner en Galizia, om ...

Deze procedure begint met het fixeren van de bij in een registratiekamer. Er wordt een stukje cuticula van de kopcapsule verwijderd om geselecteerde structuren in de hersenen te kleuren. Calciumsignalen in de gekleurde neuronen worden in vivo geregistreerd met behulp van een wide-field imaging-opstelling.Tijdens de beeldvorming kan de bij worden gestimuleerd met geuren of door de toediening van sucrose aan de antenne. Op deze manier kan de bij worden geconditioneerd om de proboscis uit te strekken als reactie op een geur. De proboscisextensiereactie wordt gemonitord met behulp van elektromyogramregistraties van de M 17 spier.Na het beeldexperiment wordt het brein gedissecteerd voor een nadere bestudering van de gekleurde structuren met behulp van een confocale microscoop. Hallo, ik ben Melanie van het lab van rdo Mansel. Hallo, ik ben Anya, ook van het Mansel-lab.Vandaag laten we u een procedure zien voor in vivo calcium-imaging in het mushroom body van de honingbij. We gebruiken deze procedure in ons laboratorium om olfactorische codering en leergerelateerde plasticiteit in het brein van de honingbij te bestuderen. Laten we beginnen.Begin met het vangen van een honingbij-foerageur bij de ingang van de korf en immobiliseer deze vervolgens door hem op ijs te koelen. Monteer de bij daarna op een registratiekamer van plexiglas. Gebruik harde was met een laag smeltpunt om de ogen en het borststuk aan de wand te fixeren.Breek alle glazen capillairen aan de punt om een diameter van 10 microns te verkrijgen. Bedek de punt van de capillair met een pasta bestaande uit een mengsel van 10 op één van URA twee dextrine en fixeerbare Rodin dextrine. De geprepareerde capillair zal worden gebruikt voor kleuring.Om de kleuringsprocedure te starten, worden de antennes eerst geïmmobiliseerd met een koane. Open de kopcapsule boven het brein door een stukje cuticula te verwijderen en de klieren en trachea opzij te duwen, zodat het mushroom body toegankelijk wordt. Gebruik een stukje papier om de hemolymfe in de kopcapsule te absorberen.Om de neuronen van het mushroom body te kleuren, injecteert u de capillair in het soma of de dendritische regio van de neuronen. Plaats vervolgens het stukje cuticula terug op de kopcapsule en maak de antenne los. Voed de bij tot slot met een 30% sucrose-oplossing en bewaar deze in een piepschuimdoos, afgedekt met een natte keukendoek, gedurende ten minste vier uur of een nacht bij 20 °C.Nadat de voorbereiding van B is voltooid, kunnen we beginnen met de in vivo beeldvorming. Gebruik eerst een spons die aan de registratiekamer is bevestigd om te voorkomen dat de bij beweegt, door deze tegen het abdomen te drukken. Fixeer nu de antennes van de bij met een ioane om te voorkomen dat de hersenen bewegen door het pompen van de slokdarm.Maak een kleine incisie in de cuticula boven het labrum en trek voorzichtig de slokdarm en de omliggende vaste structuren naar buiten en bedek deze met tweekomponentensilicone. Gebruik vervolgens een naald om gaatjes te maken voor de inbrenging van draadelektroden die worden gebruikt om elektrogrammen van de protractormuskel van het labium te registreren. Verwijder het stukje cuticula, de trachea en de klieren boven het brein.Gebruik een stukje papier om het hemolymfe in de kopcapsule te absorberen om elektrogrammen van M 17 te registreren. Steek een koperdraad in de spier vlakbij de monddelen. Plaats een aardelektrode in het oog.Vul nu de kopcapsule met tweecomponentensiliconen. Zorg ervoor dat de hersenen volledig bedekt zijn. Plaats de bij op de objecttafel van de microscoop en breng een druppel water aan op het oppervlak van het silicone.Dompel het immersie-objectief van de microscoop in de druppel en stel vervolgens scherp op de neuronen op het preparaat. Nu de voorbereiding voor in vivo beeldvorming is voltooid, kunnen we de geurstimulatie en signaalregistratie beschrijven. Om geurstimuli aan de bij aan te bieden, gebruiken we een computergestuurde, op maat gemaakte olfactometer om geurstoffen te verdunnen in een constante luchtstroom.De geurstimulatie van de antenne bestaat uit een puls van drie seconden geverzadigde lucht. Voor calcium-imaging gebruiken we een Til Photonics imaging-opstelling, gemonteerd op een Zeiss fluorescentiemicroscoop, om beelden op kamertemperatuur op te nemen met een bemonsteringssnelheid van vijf hertz. Calciumsignalen worden geregistreerd via een X 60 0,9 W Olympus dip-objectief met een Ango CCD-camera, waarbij elke meting 10 seconden duurt.De spierpotentialen worden versterkt met een Grass-versterker en geregistreerd en gedigitaliseerd met een analoog-digitaal converter. Registraties van M 17 worden gebruikt om gedragsresponsen gerelateerd aan het leren te monitoren; zodra de signaalregistratie is voltooid, kunnen we overgaan naar morfologische analyse en reconstructie. Aangezien beide kleurstoffen die tijdens het terugvullen zijn gebruikt hetzelfde molecuulgewicht hebben.Ze zijn gecolokaliseerd in de neuronen. Widefield-imaging heeft een beperkte ruimtelijke resolutie, dus we gebruiken confocale scannende microscopie om de gekleurde structuren te onderzoeken. Disseceer na het experiment eerst de hersenen en fixeer deze gedurende de nacht in 4% formaldehyde bij vier graden Celsius; spoel ze de volgende dag af in PBS en dehydrateer ze vervolgens in ethanolstappen van 10 minuten in 50%, 70%, 90%, 99% en twee keer 10 minuten in 100%. Plaats de hersenen op een gegroefd objectglas met een druppel methylsalicylaat, dek dit af met een dekglas en plaats het vervolgens op de objecttafel van een confocale scannende microscoop.Scan de hersenen met een luchtobjectief en een digitale zoom van 1,1 tot 1,2 bij optische coupes van vier micrometer. Hier zien we de respons van extrinsieke neuronen van het mushroom body op geurstimulatie van de antennes, geregistreerd via een 60 x objectief en gevisualiseerd in valse kleuren. Het rode vierkant links stelt de duur van de geurstimulus voor.Na het experiment wordt het brein gedisseceerd en worden de gekleurde structuren gedetailleerder onderzocht met een confocale microscoop bij een 20 x vergroting. We hebben u hiermee laten zien hoe u neuronen van het mushroom body in de honingbij kunt afbeelden tijdens olfactorisch leren. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat experimenten met lichtgevoelige kleurstoffen in het donker moeten worden uitgevoerd.Dat was alles. Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experimenten. Tot ziens.

in-vivo-ca2-imaging-mushroom-body-neurons-during-olfactory-learning

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Deze video beschrijft in vivo calcium beeldvorming in Drosophila neuronen met behulp van GCaMP. De aanbevolen protocolclip laat zien hoe u veranderingen in GCaMP-fluorescentie van paddestoellichaamneuronen kunt registreren tijdens een olfactorisch conditioneringsexperiment.

Drosophila In Vivo Calcium imaging: een methode voor functionele beeldvorming van neuronale activiteit

This video demonstrates a method for in vivo calcium imaging using synaptically localized calcium sensors in flies. It outlines the steps for preparing the flies for microscopy, conducting olfactory conditioning, and visualizing odor-induced calcium influx.

In Vivo Calcium Imaging Using Synaptically Localized Calcium Sensors in Drosophila melanogaster

This video demonstrates a detailed immunostaining protocol to visualize phenotypic defects in the mushroom bodies of mutant Drosophila brains. The protocol involves using antibodies against Fas2, a protein involved in axonal guidance that facilitates the proper morphological and functional development of the mushroom body.

Visualizing Mushroom Body Neurons in Drosophila Brains via Immunostaining

Gelijktijdige extracellulaire langdurige opnames van twee verschillende hersengebieden neuropiles of twee verschillende anatomische traktaten werden opgericht in honingbijen. Deze opnamen kan de onderzoek temporele aspecten van neuronale verwerking in verschillende hersengebieden in het neuron en op het ensemble niveau in een dier gedragen.

Gelijktijdige Langdurige Recordings op Twee Neuronale Processing Fasen in Behaving Honingbijen

Na blootstelling aan specifieke omgevingsstressors, ondergaat de rondworm Caenorhabditis elegans een uitgebreide fenotyische plasticiteit om een stressbestendig 'dauer'-juveniel stadium te betreden. We presenteren methoden voor de gecontroleerde inductie en beeldvorming van neuroplasticiteit tijdens dauer.

In vivo beeldvorming van Dauer-specifieke neuronale Verbouwing in C. elegans

Dit manuscript beschrijft meerdere protocollen voor het toedienen van farmacologische middelen aan de bijen, waaronder eenvoudige niet-invasieve methoden voor vrij vliegende bijen, evenals meer invasieve varianten die precies gelokaliseerde behandeling van ingehouden bijen mogelijk.

Neurofarmacologische Manipulatie van ingetogen en vrij vliegende Honingbijen,<em&gt; Apis mellifera</em

Om te testen de remmende effecten van farmacologische agenten op phospholipase C (PLC) in verschillende gebieden van de hersenen van de honingbij, presenteren we een biochemische assay voor het meten van de PLC activiteit in die regio's. Deze bepaling zou kunnen zijn handig voor het vergelijken van PLC activiteit onder weefsels, alsook tussen de bijen verschillende gedragingen vertonen.

Detectie van Phospholipase C activiteit in de hersenen homogenaat van de honingbij

Hier presenteren we een protocol waarmee pre-en/of postsynaptisch calcium kan worden gevisualiseerd in de context van Drosophila leren en geheugen. In vivo calcium beeldvorming met behulp van Synaptisch gelokaliseerde calcium sensoren wordt gecombineerd met een klassieke olfactorische conditionerings paradigma zodanig dat de Synaptische plasticiteit onderliggende dit type associatief leren kan worden bepaald.

In vivo optische calcium beeldvorming van leren-geïnduceerde synaptische plasticiteit in Drosophila melanogaster

We beschrijven hier methoden voor het induceren en analyseren van olfactorische ervaring-afhankelijke remodellering van synaptische glomeruli van de antennekwab in de juveniele hersenen van Drosophila .

Ervaringsafhankelijke hermodellering van juveniele reukbare sensorische neuronen Synaptische connectiviteit van de hersenen in een kritieke periode in het vroege leven

Een belangrijke barrière voor het bestuderen van cellulaire activiteit tijdens cognitieve processen zoals leren en geheugen is het gebruik van anesthetica voor in vivo beeldvormingsvoorbereiding. Anesthesie schaadt het kortetermijngeheugen en de cognitie in meerdere modellen, waaronder Drosophila. Deze studie presenteert een unieke methode voor het bereiden van volwassen Drosophila voor in vivo beeldvorming zonder verdoving.

In vivo Beeldvorming van neurale activiteit bij onverdoofde Drosophila-volwassen vliegen

We presenteren calciumbeeldvormingsprotocollen voor een Drosophila-larvale olfactorische neuron, met behulp van een topische weefsellijm voor immobilisatie. Deze methode verbetert de stabiliteit en maakt betrouwbare in- en ex-vivo-experimenten mogelijk. Aangepaste R-scripts analyseren calciumsignalen en bieden een efficiënt platform voor gedetailleerd neurofysiologisch onderzoek.

In-vivo en ex-vivo calciumbeeldvorming van een reukcircuitneuron in de larve van de Drosophila melanogaster met een derde instar

Leer calciumbeeldvorming in bijen voor onderzoek naar olfactorisch leren en neurale activiteit in de paddenstoellichamen. Deze methode onthult de neurale mechanismen van geheugen en gedrag.

In vivo Ca ^{2 +} - Beeldvorming van Mushroom Body neuronen tijdens Olfactorische Leren in de Honey Bee

Meer video's verkennen