Name: Isolatie van Mouse buikholte Cellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-28T16:45:00.000+00:00
Duration: 4 min 32 s
Description: Leer een betrouwbare methode voor het isoleren van peritoneale holtecellen uit muizen voor immunologisch onderzoek. Deze techniek levert 5 tot 10 miljoen cellen op voor fenotypische en biochemische analyses.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd mede ondersteund door de NIH subsidie ​​AI069358 en de BloodCenter Research Foundation.

<ol><li> Voordat u begint met het proces, de volgende items dienen te worden om verzameld en voorbereid: <ul><li> Ijs </li><li> 5ml spuit met 27g naald </li><li> 5ml spuit met 25g naald </li><li> Styrofoam blok en pinnen voor het monteren van de muis </li><li> Lade waarop de montage blok kan worden geplaatst </li><li> Schaar en pincet </li><li> Verzameling buizen </li><li> 70% ethanol </li><li> PBS met 3% foetaal kalf serum (FCS) (Pre gekoeld en bewaard op ijs) </li></ul></li><li> Euthanaseren van de muis, spray met 70% ethanol en monteer het op het piepschuim blok op zijn rug. </li><li> Met behulp van een schaar en pincet snijd de buitenste schil van het buikvlies en voorzichtig terug te trekken naar de binnenste huid aan de binnenkant van de buikholte bloot te leggen. </li><li> Injecteer 5 ml ijskoude PBS (met 3% FCS) in de buikholte met behulp van een 27g naald. Langzaam duw de naald in het buikvlies dat evenwel niet tot doorboren alle organen. </li><li> Na injectie, zachtjes masseren het buikvlies naar alle aangesloten cellen in het PBS-oplossing te verwijderen. </li><li> Plaats een 25 g naald, schuine rand op, gekoppeld aan een 5 ml spuit in het buikvlies en het verzamelen van de vloeistof tijdens het verplaatsen van de punt van de naald voorzichtig om te voorkomen dat verstopt raakt door het vetweefsel of andere organen. Verzamel zoveel mogelijk vocht en breng de verzamelde celsuspensie in buisjes op ijs bewaard na het verwijderen van de naald van de spuit. Optioneel: Herhaal stap 4-6 </li><li> Maak een incisie in de binnenste huid van het buikvlies en terwijl de huid met een pincet te gebruiken een plastic Pasteur pipet om de resterende vloeistof te verzamelen uit de holte. </li><li> Als in stap 6 of 7 zichtbaar besmet bloed wordt gedetecteerd dan het verontreinigde monster moet worden weggegooid. </li><li> Spin van de verzamelde celsuspensie bij 1500 rpm gedurende 8 minuten, gooi het supernatant en resuspendeer de cellen in de gewenste media of PBS voor het tellen. </li></ol> Alternatief protocol om thioglycollate verkrijgen opgewekt macrofagen: Deze methode wordt gebruikt om een ​​hogere opbrengst van macrofagen te verkrijgen. <ol><li> Injecteer 5 ml van 3% (w / v) Brewer thioglycollate medium (7) in de buikholte van elke muis. </li><li> Wacht op 3-5 dagen, en ga verder met een vorige stap voor het verzamelen van de cellen. </li></ol> Vergeleken met de nonelicited aanpak, kan ongeveer 10 keer meer macrofagen worden verzameld. De enige zorg is dat macrofagen verkregen door deze procedure verschillen in sommige van hun fysiologische eigenschappen. Representatieve resultaten: Uit een ongemanipuleerde muis, kan 5-10 miljoen buikholte cellen worden verkregen met een goede isolatie protocol. Van alle levende cellen, 50-60% zijn B-cellen, ~ 30% macrofagen en 5-10% zijn T-cellen (Fig 1). <img src="/files/ftp_upload/1488/1488fig1.jpg" alt="Figuur 1" /> Figuur 1. Fenotype van cellen geïsoleerd uit de buikholte. Na afsluiting van de buikholte cellen ze werden gekleurd met anti-muis TCRβ-FITC, B220-PE-Texas rood, CD11b-Stille Oceaan blauw, CD23-PE-Cy7 en CD5-APC. Vertegenwoordiger van flowcytometrische plots tonen percentages van B-en T-cellen (een), macrofagen (b), B1 en B2 cellen (c) en B1a en B1b cellen (d).

<ol><li>Zhang, X., Goncalves, R., Mosser, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolation+and+characterization+of+murine+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">The isolation and characterization of murine macrophages.</a> Current Protocols in Immunology. , (2008).</li>
<li>Boes, M., Prodeus, A. P., Schmidt, T., Carroll, M. C., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+critical+role+of+natural+immunoglobulin+M+in+immediate+defense+against+systemic+bacterial+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">A critical role of natural immunoglobulin M in immediate defense against systemic bacterial infection.</a> J. Exp. Med. 188, 2381-2386 (1998).</li>
<li>Mc Daniel, L. S., Benjamin, W. H., Forman, C., Briles, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+clearance+by+anti-phosphocholine+antibodies+as+a+mechanism+of+protection+in+experimental+pneumococcal+bacteremia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Blood clearance by anti-phosphocholine antibodies as a mechanism of protection in experimental pneumococcal bacteremia.</a> J. Immunol. 133, 3308-3312 (1984).</li>
<li>Paciorkowski, N., Porte, P., Shultz, L. D., Rajan, T. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B1+B+lymphocytes+play+a+critical+role+in+host+protection+against+lymphatic+filarial+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">B1 B lymphocytes play a critical role in host protection against lymphatic filarial parasites.</a> J. Exp. Med. 191, 731-736 (2000).</li>
<li>Mercolino, T. J., Arnold, L. W., Hawkins, L. A., Haughton, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+mouse+peritoneum+contains+a+large+population+of+Ly-1%2B+%28CD5%29+B+cells+that+recognize+phosphatidyl+choline%3A+relationship+to+cells+that+secrete+hemolytic+antibody+specific+for+autologous+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Normal mouse peritoneum contains a large population of Ly-1+ (CD5) B cells that recognize phosphatidyl choline: relationship to cells that secrete hemolytic antibody specific for autologous erythrocytes.</a> J. Exp. Med. 168, 687-698 (1988).</li>
<li>O'Garra, A., Chang, R., Go, N., Hastings, R., Haughton, G., Howard, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ly-1+B+%28B-1%29+cells+are+the+main+source+of+B+cell+derived+interleukin+10%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Ly-1 B (B-1) cells are the main source of B cell derived interleukin 10.</a> Eur. J. Immunol. 22, 711-717 (1992).</li>
<li>Hoover, D. L., Nacy, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+activation+to+kill+Leishmania+tropica%3A+Defective+intracellular+killing+of+amastigotes+by+macrophages+elicited+with+sterile+inflammatory+agents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Macrophage activation to kill Leishmania tropica: Defective intracellular killing of amastigotes by macrophages elicited with sterile inflammatory agents.</a> J. Immunol. 132, 1487-1491 (1984).</li>
<li>Austin, P. E., McCulloch, E. A., Till, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+factor+in+L-cell+conditioned+medium+capable+of+stimulating+colony+formation+by+mouse+marrow+cells+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Characterization of the factor in L-cell conditioned medium capable of stimulating colony formation by mouse marrow cells in culture.</a> J. Cell Physiol. 77, 121-134 (1971).</li>
<li>Stanley, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+macrophage+colony-stimulating+factor%2C+CSF-1%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">The macrophage colony-stimulating factor, CSF-1.</a> Methods Enzymol. 116, 564-587 (1985).</li>
<li>Baumgarth, N., Chen, J., Herman, O. C., Jager, G. C., Herzenberg, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+B-1+and+B-2+cells+in+immune+protection+from+influenza+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Top.+Microbiol.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The role of B-1 and B-2 cells in immune protection from influenza virus infection.</a> Curr. Top. Microbiol. Immunol. 252, 163-169 (2000).</li>
<li>Baumgarth, N., Herman, O. C., Jager, G. C., Brown, L. E., Herzenberg, L. A., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B-1+and+B-2+cell-derived+immunoglobulin+M+antibodies+are+nonredundant+components+of+the+protective+response+to+influenza+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">B-1 and B-2 cell-derived immunoglobulin M antibodies are nonredundant components of the protective response to influenza virus infection.</a> J. Exp. Med. 192, 271-280 (2000).</li>
<li>Berland, R., Wortis, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Origins+and+functions+of+B-1+cells+with+notes+on+the+role+of+CD5%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Origins and functions of B-1 cells with notes on the role of CD5.</a> Annu. Rev. Immunol. 20, 253-300 (2002).</li>
</ol>

Isolatie van peritoneale holte cellen is een belangrijke techniek voor de studie van verschillende immuuncellen, voornamelijk macrofagen en specifieke B-cel subsets. Hoewel dit een eenvoudig proces, zijn er een aantal betrokken kritische stappen. Aanwezigheid van contaminerende bloed in de verzamelde monster moet worden vermeden om een ​​pure buikholte celpopulatie te verkrijgen. Euthanasie door cervicale dislocatie moet zorgvuldig worden gedaan om besmet bloed in de buikholte te vermijden. Als alternatief CO 2 kan worden gebruikt. Daarnaast moet tijdens de procedure goede zorg worden genomen om te voorkomen dat aanprikken van de blaas of enige andere organen in de buikholte. Herstellen de meeste van de geïnjecteerde vloeistof is ook belangrijk om de cel te geven. Deze procedure wordt op grote schaal gebruikt om de macrofagen biologie, omdat matige aantallen inwoner studie, kunnen niet-gestimuleerde macrofagen gemakkelijk verkregen worden uit de buikholte, in tegenstelling tot de moeizame taak van het onderscheid myeloïde voorlopercellen cellen in volwassen macrofagen in vitro, met behulp van macrofaag kolonie stimulerende factor (8 , 9). De macrofaag opbrengst van de buikholte kan worden verbeterd door gebruik te maken van de thioglycollate elicitatie methode, hoewel thioglycollate gebruik kunnen veranderen fysiologische eigenschappen van de macrofagen (7). B-cellen zijn een belangrijk onderdeel van ons immuunsysteem speelt cruciale rol in zowel de aangeboren en adaptieve immuniteit. Tussen de verschillende B-cel subpopulaties, B1 cellen bestaan ​​uit een unieke deelgroep van B-cellen die betrokken zijn bij aangeboren immuniteit, auto-immuniteit en immuunregulatie. B1 cellen zijn voornamelijk gelegen in de buikholte en zijn zelf aanvullen. Ze zijn een van de primaire producenten van natuurlijke IgM waarvan de eerste regel van de bescherming tegen een aantal virussen en bacteriën (10-12) biedt. B1-cellen zijn ook een belangrijke bron van IL-10 (6), dat is een belangrijk cytokine die betrokken zijn bij immuun regelgeving. Hoewel verschillende studies zijn gevoerd met de B1 cellen, er nog steeds ruimte is voor verdere evaluatie van hun contrasterende functies, in het bijzonder hun regulerende rol. Buikholte celisolatie methode biedt de unieke mogelijkheid om de functies van de B1 cellen te bestuderen.

<table><tbody><tr><td>Thioglycollaatmedium, Brewer-gemodificeerd</td><td>BD Biosciences</td><td>211716</td><td></td></tr></tbody></table>

isolatie van mouse buikholte cellen

Isolation of Mouse Peritoneal Cavity Cells

De peritoneale holte is een membraan-gebonden en met vloeistof gevulde buikholte van zoogdieren, die de lever, de milt, het grootste deel van het maag-darmkanaal en andere ingewanden bevat. Het herbergt een aantal van de immuuncellen waaronder macrofagen, B-cellen en T-cellen. De aanwezigheid van een groot aantal naïeve macrofagen in de buikholte is het een te verkiezen plaats voor het verzamelen van naïeve weefsel inwoner macrofagen (1). De peritoneale holte is ook belangrijk voor de studie van B-cellen als gevolg van de aanwezigheid van een unieke buikholte-ingezeten B-cel subset bekend als B1 cellen in aanvulling op de conventionele B2 cellen. B1-cellen worden onderverdeeld in B1a en B1b cellen, die kunnen worden onderscheiden door de oppervlakte-expressie van CD11b en CD5. B1-cellen zijn een belangrijke bron van natuurlijke IgM vroegtijdig bescherming tegen een groot aantal pathogenen (2-4). Deze cellen zijn autoreactieve in de natuur (5), maar hoe ze worden gecontroleerd tot autoimmuniteit te voorkomen, is nog niet geheel duidelijk. Integendeel, CD5<sup&gt; +</sup&gt; B1a cellen beschikken over een aantal regulerende eigenschappen op grond van hun IL-10 producerende capaciteit (6). Daarom buikholte B1-cellen zijn een interessant celpopulatie om te studeren vanwege hun verschillende functie en vele ongeadresseerde vragen in verband met hun ontwikkeling en regelgeving. De isolatie van peritoneale holte inwoner immuuncellen is lastig vanwege het ontbreken van een gedefinieerde structuur in de buikholte. Ons protocol beschrijft een procedure voor het verkrijgen van levensvatbare immuuncellen uit de buikholte van muizen, die vervolgens kan voor fenotypische analyse worden gebruikt door flowcytometrie en voor verschillende biochemische en immunologische assays.

De peritoneale holte in zoogdieren bevat verschillende immuun cel populaties cruciaal voor de aangeboren immuunrespons. Een efficiënte isolatie methode is vereist voor biochemische en functionele analyse van deze cellen. Hier bieden wij een uitgebreide methode voor de isolatie van de peritoneale holte cellen in de muis.

Isolatie van Mouse buikholte Cellen

De peritoneumholte is een door een membraan begrensde en met vloeistof gevulde abdominale holte van zoogdieren, die de lever, milt en het grootste deel van het maag-darmkanaal bevat...

De isolatie van cellen uit de peritoneale holte begint met het op de rug leggen van een geëuthanaseerde muis. De buitenste huid van het peritoneum wordt ingesneden en voorzichtig teruggetrokken om de binnenhuid bloot te leggen. PBS met 3% FBS wordt in de peritoneale holte geïnjecteerd, waarna het peritoneum voorzichtig wordt gemasseerd. De vloeistof die de peritoneale cellen bevat, wordt opgevangen en in een buisje van 15 milliliter op ijs geplaatst.De cellen worden één keer gewassen en geteld met een hemocytometer. Hallo, ik ben Oji van het lab van Dr. Bon bij het Blood Research Institute van het Blood Center of Wisconsin. Vandaag laten we u een procedure zien voor het isoleren van cellen uit de peritoneumholte van een muis.Wij gebruiken deze procedure in ons laboratorium om cellen te verkrijgen voor diverse fenotypische, biochemische en immunologische assays. In het bijzonder zijn we geïnteresseerd in peritoneale B-celpopulaties. Laten we beginnen.Bereid alle benodigde materialen voor voordat u begint met het isoleren van immuuncellen uit de peritoneumholte. Begin met het verzamelen van een ijsemmer, een spuit van 5 mL met een naald van 27 gauge, een spuit van 5 mL met een naald van 25 gauge, een piepschuimblok en pinnen voor het vastzetten van de muis. Zorg voorafgaand aan de dissectie voor een plateau om het montageblok op te plaatsen, een schaar, pincetten en opvangbuisjes.Koel PBS met 3% foetaal kalfsserum vooraf af. Houd dit en de opvangbuisjes gedurende het hele experiment op ijs. Na toediening van het anestheticum en passende euthanasie, besproei de muis met 70% ethanol en plaats deze op de rug op een styrofoam blok of dissectiepad. Snijd met een pincet en een schaar de buitenste huid van het peritoneum open.Trek de huid voorzichtig naar achteren om de binnenhuid die de peritoneale holte bekleedt bloot te leggen. Duw langzaam een naald van 27 gauge in het peritoneum, waarbij u er zorgvuldig op let geen organen te doorboren. Injecteer vijf milliliters ijskoud PBS in de peritoneale holte.Masseer nu voorzichtig het peritoneum om de cellen te stimuleren los te komen van de peritoneumwand en in de PBS-oplossing te vallen. Voorzie vervolgens een spuit van 5 ml met een naald van 25 gauge, met de schuine zijde naar boven, en steek de naald in het peritoneum. Verzamel zoveel mogelijk vloeistof om de celopbrengst te maximaliseren.Beweeg de tip tijdens deze handeling voorzichtig om te voorkomen dat vetweefsel of andere organen de naald verstoppen. Verwijder de naald en giet de celsuspensie in polypropyleen opvangbuisjes. Verzamel de resterende vloeistof uit de holte door een incisie te maken in de binnenste huid van het peritoneum.Gebruik een pincet om de huid open te houden terwijl u met een plastic posterior-pipet het resterende vocht opvangt. Centrifugeer vervolgens de celсусpensie gedurende acht minuten bij 1500 RPM, verwijder het supernatant en resuspendeer de cellen in vijf milliliter PBS. Tel de cellen met een hemocytometer.Met behulp van trypanblauw-uitsluiting kunnen de celaantallen worden bepaald. Gewoonlijk kunnen er vijf tot 10 miljoen cellen uit de peritoneumholte worden geïsoleerd van een onbehandelde muis. 50 tot 60% van de totale celpopulatie zal uit B-cellen bestaan.Ongeveer 40% zal bestaan uit macrofagen en granulocyten, en vijf tot 10% uit T-cellen. We hebben zojuist gedemonstreerd hoe u cellen uit de peritoneumholte van een muis kunt isoleren. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om de hoeveelheid bloed in de celpopulatie van de peritoneumholte te beperken door de muizen zorgvuldig te eutanaseren en geen organen in de peritoneumholte te doorprikken.Zorg ervoor dat alle monsters die besmet raken met bloed worden weggegooid. Dat was alles. Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experimenten.

isolation-of-mouse-peritoneal-cavity-cells

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Een sterk gezuiverde bereiding van de muis long dendritische cellen wordt beschreven. Specifieke aandacht wordt gegeven aan de isolatie van de conventionele dendritische cel subset.

Isolatie van Mouse Lung dendritische cellen

In this video, we demonstrate the isolation of lymphocytes from a harvested mouse Peyer's patch. The isolated lymphocytes can be used for further analysis.

Isolation of Lymphocytes from a Mouse Peyer&#39;s Patch

This video demonstrates a peritoneal lavage method for isolating mature connective tissue-type mast cells from the peritoneal cavity of adult mice. Upon isolating a mixture of primary immune cells from the peritoneal cavity, selective proliferation of mast cells is performed under appropriate culture conditions.

A Technique to Isolate Primary Mast Cells from a Murine Peritoneal Cavity

Er is een toenemende belangstelling voor het begrijpen van de immunologische functies van specifieke subpopulaties van cellen in platen van Peyer (PP), de primaire inductieve plaatsen van darm-geassocieerd lymfeweefsel. Hier schetsen we parallel protocollen voor de voorbereiding van PP enkele cel voorbereidingen voor flowcytometrische analyse en PP cryocoupes voor immunokleuring.

Isoleren En Immunokleuring Lymfocyten en dendritische cellen uit Patches Murine Peyer

We beschrijven hier een eenvoudig protocol om muis-peritoneale macrofagen te isoleren. Deze procedure wordt gevolgd door RNA-extractie om genexpressieanalyse uit te voeren na stimulatie van Toll-achtige receptoren.

Isolatie van muizen peritoneale macrofagen uit te voeren analyse van genexpressie Bij Toll-like receptoren Stimulatie

Hier presenteren we een protocol om te isoleren en te cultiveren lymfkliertest peritoneale mestcellen. Ook beschrijven we twee protocollen voor hun functionele karakterisering: een fluorescerende beeldvorming van intracellulaire gratis Ca2 + concentratie en een degranulatie kwantitatieve analyse gebaseerd op colorimetrische kwantificering van de vrijgegeven β-hexosaminidase.

Isolatie van mestcellen buikvlies afkomstige en hun functionele karakterisering met Ca2 +-beeldvorming en degranulatie vitrotests

Enterochromaffin (EG) cellen bestaan uit een kleine subset van gastro-intestinale epitheliale cellen. EG cellen zijn elektrisch prikkelbaar en vrij serotonine, nog moeilijkheden in kweken en het identificeren van de EG cellen hebben beperkte fysiologische studies. De methode die hier gepresenteerd wordt een primaire cultuur model vatbaar voor onderzoek van afzonderlijke cellen van de EG vastgesteld door electrofysiologie.

Hele cel electrofysiologie van primaire gekweekte lymfkliertest Enterochromaffin cellen

Hier schetsen en demonstreren we een protocol voor primaire muis lever sinusoïdale endotheelcel (LSEC) isolatie. Het protocol is gebaseerd op levercollageaseperfusie, niet-parenchymale celzuivering door centrifugeren met lage snelheid en CD146 magnetische kraalselectie. We fenotyperen en karakteriseren deze geïsoleerde LSEC's ook met behulp van flowcytometrie en scanning elektronenmicroscopie.

Isolatie en karakterisering van primaire leverbijholteelcellen van muizen

Hier presenteren we een protocol om muizendarmmesenchym te isoleren, inclusief telocyten. Deze kunnen worden gebruikt voor verschillende toepassingen, zoals co-cultuur met muis of van de mens afgeleide organoïden, om de groei te ondersteunen en de situatie in het oorspronkelijke weefsel beter weer te geven.

Isolatie van muizendarmmesenchym resulterend in een hoge opbrengst van telocyten

Het huidige protocol beschrijft de isolatie en kweek van beenmerg-afgeleide macrofagen van muizen.

Isolatie en cultuur van beenmerg-afgeleide macrofagen van muizen

Dit artikel beschrijft een methode voor magnetische isolatie op basis van kralen van endotheelcellen van muizen uit dermale lymfatische capillairen. De geïsoleerde lymfatische endotheelcellen kunnen worden gebruikt voor stroomafwaartse in-vitro-experimenten en eiwitexpressie-analyse.

Isolatie van dermale lymfatische endotheelcellen bij muizen

Leer een betrouwbare methode voor het isoleren van peritoneale holtecellen uit muizen voor immunologisch onderzoek. Deze techniek levert 5 tot 10 miljoen cellen op voor fenotypische en biochemische analyses.

Isolatie van Mouse buikholte Cellen

Meer video's verkennen