Name: Chromosomale Spread Voorbereiding van menselijke embryonale stamcellen voor Karyotypering (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-09-04T11:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 42 s
Description: Leer de chromosomale spread-voorbereiding van menselijke embryonale stamcellen voor karyotypering. Deze methode detecteert chromosomale afwijkingen en waarborgt genetische integriteit voor therapeutische toepassingen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

APPARATUUR <ul><li> Weefselkweek incubator, 37 ° C, 5% CO 2 </li><li> Centrifuge </li><li> Set van micropipettors (100, 100μL) </li><li> Waterbad 37 ° C </li><li> Waterbad 90 ° C tot bron van stoom water </li><li> Fasecontrastmicroscoop </li></ul> EERSTE STAP Behandeling van de cellen met colcemid In deze procedure hebben we de hESC lijn H9 gekweekt op muis embryonale fibroblasten (MEF) geïnactiveerd met mitomycine C (Sigma) en onderhouden DMEM/F12 (Invitrogen), aangevuld met 20% knock-out serum vervanging (KSR, Gibco) en 8ng/mL van fibroblast groeifactor (FGF-2, R &amp; D). Met het oog op een groot aantal metafasen spreads te verkrijgen, is het raadzaam om culturen te gebruiken met een hoge mitotische index, waarin er veel delende cellen. <ol><li> Neem de cultuur kolf van de incubator en in de laminaire stroming, voeg Colcemid bij een uiteindelijke concentratie van 0,1 ug / ml. </li><li> Zet de kolf aan de incubator en wacht drie uur, zodat de remmer kan mitotische metafase arrestatie op, wanneer de chromosomen goed zijn gecondenseerd en kunnen gemakkelijk zichtbaar onder de microscoop te veroorzaken. </li></ol> Bevestiging van de cellen <ol start="3"><li> Haal het medium en voeg tripsin / EDTA 0,05% voldoende is om de cellen bedekken. Laat cellen om incuberen gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur en vervolgens inactiveren van het enzym door het toevoegen van kweekmedium met serum of door simpelweg het toevoegen van serum naar de cellen. OPMERKING: Het is belangrijk om ervoor te zorgen dat een enkele cel suspensie is ontstaan ​​om goede metafase spreads te verkrijgen. </li><li> Overdracht van de cellen om een 15 ml centrifugebuis en centrifugeer bij 122 g gedurende 5 minuten. </li><li> Verwijder het supernatant, waardoor ongeveer 200 ml, en zachtjes resuspendeer de pellet door te tikken op de buis, zoals in de video. Zorg ervoor dat de cellen zijn goed gescheiden, dus je kunt niet visualiseren geen klonten in de oplossing. </li><li> Vervolgens moet 5 ml van de hypotone oplossing (KCl 75mm) voorverwarmd tot 37 ° C, langzaam, door de buiswand als in de volgende beschrijving. Toevoegen Voeg eerst 3 ml, draai de buis in een horizontale positie alleen maar om de cellen dan mengen met de hypotone oplossing van de resterende 2 ml toe te voegen en warm te houden bij 37 ° C gedurende 15 minuten. NB: Op dit punt van de hypotone oplossing zal een verhoging van de cellulaire volume oorzaak en helpen om de chromosomen ontwarren. De tijd van incubatie is belangrijk om goede chromosoom spreads te verwerven. Als de timing te lang is, kan de cel membraan barsten te vroeg en de chromosomen zijn verloren. Als het te kort is, kan het moeilijk zijn om chromosoom verspreidt verkrijgen omdat de celmembraan kan niet verstoren. </li><li> Voeg 3 druppels van de oplossing fixatief (methanol / ijsazijn 3:1), voorzichtig omkeren de buis om het fixeermiddel oplossing te mengen met de cellen en centrifugeer bij 122 g gedurende 5 minuten zonder pauze. OPMERKING: De fixatief oplossing moet vers worden gemaakt. LET OP: Het is belangrijk om het centrifugeren te gebruiken zonder te breken naar de cellen natuurlijk verloop te vermijden, voorkomen van het verlies van het materiaal. </li><li> Verwijder het supernatant, waardoor ongeveer 200 ml, en zachtjes resuspendeer de pellet door te tikken op de bodem van de buis. LET OP: Nogmaals, zorg ervoor dat de cellen zijn goed gescheiden, dus je kunt niet visualiseren geen klonten in de oplossing. </li><li> Voeg de eerste 3 ml fixatief oplossing, langzaam door de buiswand, terwijl je draait de buis. Keer de buis in een horizontale positie alleen maar om de cellen te mengen, en dan meer 2 ml van de oplossing fixeermiddel toe te voegen door de buiswand om de cellen neer te halen. Voorraad bij 4 ° C gedurende de nacht. OPMERKING: De vaste cellen kunnen worden opgeslagen in fixeermiddel oplossing voor maanden bij 4 ° C. Naast het beschermen cellen in hun gezwollen toestand, het fixeermiddel oplossing verwijdert lipiden en proteïnen denatureert. Deze gebeurtenissen maken de celmembraan fragiel en, als gevolg daarvan, maken het chromosoom gemakkelijk verspreidt. </li></ol> REINIGEN VAN DE objectglaasjes Voordat u begint met het maken van uw chromosoom verspreidt zorg ervoor dat uw dia&#39;s goed zijn schoongemaakt of u kunt een aantal kernen te verliezen en ook metafasen. Deze stap is ook belangrijk als je wilt elke hybridisatie techniek 9 proberen. <ol><li> Plaats de glaasjes in een bekerglas met 6M HCl gedurende minstens 3 uur bij kamertemperatuur. </li><li> Na deze tijd, wassen dia&#39;s in stromend water gedurende 10 minuten. </li><li> Spoel de glaasjes in gedestilleerd water en laat ze drogen op kamertemperatuur. </li><li> Nu is de dia&#39;s kunnen worden opgeslagen in 96% ethanol en gedroogd met een niet-pluizende direct voorafgaand aan gebruik. </li></ol> OPMERKING: Voor in situ hybridisatie methoden, kan de dia&#39;s niet worden opgeslagen voor meer dan 2 dagen in 96% ethanol TWEEDE STAP Wassen van de cellen <ol start="10"><li> Op de volgende dagen, centrifuge de cellen bij 122 g gedurende 5 minuten zonder pauze. </li><li> Discard het supernatant waardoor ongeveer 200 ml. Resuspendeer de pellet door zachtjes flicking de buis daarna langzaam 5 ml verse fixatief oplossing (methanol / ijsazijn 3:1) toe te voegen, door de buiswand, terwijl het draaien van de buis. Herhaal dit was nog 2 keer stap voor een totaal van drie wasbeurten. OPMERKING: De fixatief oplossing moet vers worden gemaakt. </li></ol> De voorbereiding van de dia&#39;s <ol start="12"><li> Bij de laatste centrifugatie stap laat voldoende hoeveelheid oplossing aan de cel pellet homogeniseren en het verkrijgen van een voldoende dichtheid van cellen in de dia&#39;s (zie figuur 1). </li><li> Voeg 20 tot 30 ul van celsuspensie op een schone, droge dia door het verplaatsen van de pipet dicht en parallel aan het oppervlak. Als het fixeermiddel oplossing verdampt, het oppervlak van de slide wordt korrelig. </li><li> Onmiddellijk bloot de dia, naar boven, in de stoom van heet water (90 °) gedurende 30 seconden om ertoe leiden dat de cellen op te blazen. NB: Op dit moment is de methanol uit het fixeermiddel oplossing verdampt, wat resulteert in een verhoogde concentratie van azijnzuur, die samen met het water stimuleert de chromosoom verspreiden. </li><li> Kijk eens naar een fase contrast microscoop alleen om te controleren of de concentratie, alsook de cel distributie is goed (zie figuur 1). </li><li> Nu de dia&#39;s staan ​​klaar om gebruikt te worden om de set van chromosomen door de cytogenetica benaderingen als G-banding (Giemsa), vis, lucht of CGH te controleren. </li></ol> BELANGRIJK TIPS Hoe kiest u een geschikte metafase worden geanalyseerd Het kiezen van ronde en geïsoleerde metafasen (figuur 2D), kan u vermijden overweegt valse aneuploïdieën als de winst van de chromosomen die door twee of meer verspreidt onderling vermengd of het verlies van chromosomen gegenereerd door een lanceerde chromosoom. Zo is, vermijdt het kiezen van metafasen de buurt van kernen, omdat sommige chromosomen kunnen worden verborgen door hen (figuur 2A en 2B). Trouwens, kijk voor ronde metafasen en zorg ervoor dat elk chromosoom is gescheiden van de metafase (figuur 2C). Feeder cellen en de hESC karyotype Voor G-banding en SKY-analyse, is de aanwezigheid van feeder-cellen in hESC cultuur niet bemoeien met de resultaten, omdat de feeder-cellen zijn niet onder een scheidslijn staat (geïnactiveerd door mitomycine C of bestraling) en zal geen deel uitmaken van de metafase bevolking. Echter, voor de toepassing van de FISH techniek in interfase kernen, verdient het de voorkeur om de bevolking te scheiden van hESC feeder cellen door het oogsten van de koloniën handmatig voordat trypsinisatie voor FISH-analyse. <img border="0" src="/files/ftp_upload/1512/1512fig1tmb.jpg" alt="Figuur 1" /> Figuur 1: Hoe weet de juiste cel dichtheid in de dia&#39;s. Beelden van fase-contrast-microscoop in 10x doelstelling. (A) De cel dichtheid is te hoog. De pijlen wijzen naar spreads metafase te sluiten van de kernen. (B) is een glijbaan met een goede celdichtheid. De cirkels geven metafasen verspreidt zich geïsoleerd van kernen of andere metafasen. Gelieve <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1512/1512fig1.jpg">Klik hier</a> voor een grotere versie van figuur 1 te zien. <img border="0" src="/files/ftp_upload/1512/1512fig2tmb.jpg" alt="Figuur 2" /> Figuur 2: Hoe een adequate metafase worden geanalyseerd te kiezen. Chromosomen zijn gekleurd met DAPI en de beelden verkregen door een fluorescentiemicroscoop in 100x objectief. (A) (B) Vermijd metafasen de buurt van kernen (aangegeven door de pijlen) (C) en metafasen niet rond dat de huidige chromosomen gescheiden (cirkel). (D) Een ronde metafase is een goed metafase worden geanalyseerd. Gelieve <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1512/1512fig2.jpg">Klik hier</a> voor een grotere versie van figuur 2 te zien.

<ol><li>Thomson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282 (5391), 1145-1145 (1998).</li>
<li>Draper, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recurrent+gain+of+chromosomes+17q+and+12+in+cultured+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Recurrent gain of chromosomes 17q and 12 in cultured human embryonic stem cells.</a> Nat Biotechnol. 22 (1), 53-53 (2004).</li>
<li>Maitra, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+alterations+in+cultured+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">Genomic alterations in cultured human embryonic stem cells.</a> Nat Genet. 37 (10), 1099-1099 (2005).</li>
<li>Mitalipova, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preserving+the+genetic+integrity+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Preserving the genetic integrity of human embryonic stem cells.</a> Nat Biotechnol. 23 (1), 19-19 (2005).</li>
<li>Buzzard, J. J., Gough, N. M., Crook, J. M., Colman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Karyotype+of+human+ES+cells+during+extended+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Karyotype of human ES cells during extended culture.</a> Nat Biotechnol. 22 (4), 381-381 (2004).</li>
<li>Caisander, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosomal+integrity+maintained+in+five+human+embryonic+stem+cell+lines+after+prolonged+in+vitro+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Chromosome+Res%22%5BJournal%5D)">Chromosomal integrity maintained in five human embryonic stem cell lines after prolonged in vitro culture.</a> Chromosome Res. 14 (2), 131-131 (2006).</li>
<li>Imreh, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+culture+conditions+favoring+selection+of+chromosomal+abnormalities+in+human+ES+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biochem%22%5BJournal%5D)">In vitro culture conditions favoring selection of chromosomal abnormalities in human ES cells.</a> J Cell Biochem. 99 (2), 508-508 (2006).</li>
<li>Robin-Wesselschmidt, J. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRobin-Wesselschmidt%2C+JL+%22Human+Stem+Cell+Manual%22">Human Stem Cell Manual</a>. Loring, J. F., Robin-Wesselschmidt, J. L., Robin-Wesselschmidt, S. chwartz , Elsevier's Science & Technology Rights. California. 59-59 (2007).</li>
<li>Rooney, D. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRooney%2C+DE+%22Human+Cytogenetics%22">Human Cytogenetics</a>. , Third Edition, Oxford University Press. (2001).</li>
<li>Heslop-Harrison, P., Schwarzacher, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHeslop-Harrison%2C+P+%22Practical+in+situ+hybridization%22">Practical in situ hybridization</a>. Heslop-Harrison, P., Schwarzacher, T. , BIOS Scientific Publishers. Oxford. 51-51 (2000).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te verklaren.

De voorbereiding van chromosoom spreads is een cruciale stap voor een succesvolle analyse van de genetische status van embryonale stamcellen door routinematig technieken zoals G-banding, en meer geavanceerde technieken zoals FISH, hemel en CGH. Deze procedure kan worden toegepast voor veel soorten cellen door het variëren van de periode van colcemid incubatie, die afhankelijk is van de celcyclus lengte. Voor de kolonies van embryonale stamcellen, we wachten drie uur, terwijl voor embryoid in...

<table><tbody><tr><td>15 ml centrifugebuis</td><td>Techno Plastic Products</td><td>91015</td><td></td></tr><tr><td>Colcemid Karyo MAX</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>15212-012</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Isofar</td><td>721</td><td></td></tr><tr><td>IJszuur</td><td>Isofar</td><td>100</td><td></td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Isofar</td><td>208</td><td></td></tr><tr><td>Kaliumchloride (KCl)</td><td>Merck &amp;amp; Co., Inc.</td><td>104.931.000</td><td></td></tr><tr><td>Objectglas</td><td>Bioslide</td><td>7105-1</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4799</td><td></td></tr></tbody></table>

chromosomale spread voorbereiding van menselijke embryonale stamcellen voor karyotypering

Chromosomal Spread Preparation of Human Embryonic Stem Cells for Karyotyping

Hoewel de menselijke embryonale stamcellen (hESC) is aangetoond dat een stabiele diploïde karyotype 1 aanwezig is, hebben vele studies blijkt dat, afhankelijk van de kweekomstandigheden ze gevoelig zijn voor chromosomale afwijkingen zoals het toevoegen van geheel of delen van de chromosomen te verwerven. Inderdaad, tijdens langdurige cultuur, karyotypic veranderingen waargenomen als enzymatische of chemische dissociatie worden gebruikt 2,3,4, terwijl de handleiding dissectie van kolonies voor de passage behoudt een stabiele karyotype 5. Trouwens, veranderingen in de omgeving, zoals het verwijderen van feeder-cellen lijken ook de genetische integriteit van hESC 3,6 compromis. Zodra chromosomale veranderingen van invloed kunnen zijn cellulaire fysiologie, van cruciaal belang gezien hESC is het karakteriseren van de genetische integriteit van hESC in vitro als een essentieel instrument in de embryogenese studies en drugs testen. Verder is het voor de toekomstige therapeutische doeleinden chromosomale veranderingen zijn een echte zorg omdat het vaak is gekoppeld aan kanker. Hier laten we een eenvoudige en handige methode om een hoge kwaliteit chromosoom spreads te verkrijgen voor verdere analyse van de chromosomen die door G-banding, FISH, lucht of de CGH technieken 7,8. Wij raden u aan de chromosomale-status routinematig met tussenpozen van vijf passages in om het uiterlijk van translocaties en aneuploïdieën te controleren Priscila Britto en Rafaela Sartore droegen evenzeer voor het papier.

Karyotypering is een eenvoudige en nuttige techniek op grote schaal gebruikt voor het opsporen van genetische veranderingen. Hier beschrijven we een stap voor stap protocol voor het chromosoom verspreiden bereiding van menselijke embryonale stamcellen voor het toezicht op de chromosomale status van deze cellen behouden in cultuur.

Chromosomale Spread Voorbereiding van menselijke embryonale stamcellen voor Karyotypering

Hoewel is aangetoond dat menselijke embryonale stamcellen (hESC) een stabiel diploïd karyotype vertonen 1, hebben veel studies gerapporteerd dat, afhankelijk van de kweek...

Introductie. Hallo. Wij komen van het Institute of Biometrical Science aan de Federal University of Faja in Brazilië. In deze video bereiden we chromosoomspreidings van menselijke embryonale stamcellen voor om mogelijke chromosoomafwijkingen te detecteren. Hoewel is aangetoond dat menselijke embryonale stamcellen een stabiel karyotype vertonen, hebben diverse studies gerapporteerd dat ze, afhankelijk van de kweekcondities, vatbaar worden voor het verkrijgen van chromosoomafwijkingen, zoals de toevoeging van gehele chromosomen of delen daarvan.De karakterisering van de genetische integriteit van HASS in vitro is cruciaal, aangezien dit essentieel is voor embryogenese-studies en medicijntesten. Bovendien zijn chromosomale veranderingen een reëel punt van zorg voor toekomstige therapeutische voorstellen, omdat deze vaak geassocieerd worden met carcinogenese. Laten we beginnen.Behandeling van de cellen met ate In deze procedure maken we hiervan gebruik. De acht tot negen heeft in F 12 gekweekt, aangevuld met 20% no count serum replacement en 80 tot negen gram per milliliter fibroblast groeifactor. Begin met het verwijderen van de kweekfles uit de incubator en voeg onder een laminaire f

chromosomal-spread-preparation-human-embryonic-stem-cells-for

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

De differentiatie van ESC samenvalt met cel-type specifieke veranderingen in de structuur en samenstelling van het chromatine. De detectie van deze veranderingen geeft waardevolle inzichten in de mechanismen die stemcellness en celdifferentiatie te definiëren. Chromatine immunoprecipitatie (ChIP) vormt een waardevolle methode om de moleculaire mechanismen die ten grondslag liggen stamcellen differentiatie ontleden.

Chromatine immunoprecipitatie van menselijke embryonale stamcellen

De micro-ontleed explantaten techniek is een robuuste en betrouwbare methode voor het isoleren van proliferatieve skeletspieren cellen van jonge, volwassen of embryonale spieren als bron van skeletspieren stamcellen. Uniek, zijn deze cellen zijn klonaal ontleend aan de skeletspieren stamcellijnen gebruikt voor in vivo transplantatie te produceren.

Volwassen en embryonale skeletspier Microexplant Cultuur en isolatie van de skeletspieren Stem Cells

Spectral Karyotypering (SKY) is een geavanceerde cytogenetica techniek om genomische en chromosomale afwijkingen te identificeren. Deze techniek profiteert van chromosoom schilderkunst probes, waarmee indeling van alle chromosomen. SKY kan ook worden aangegeven complexe chromosoomafwijkingen en de segregatie defecten in muizen en mensen met diverse ziekten, waaronder polycystische nierziekte.

Spectral Karyotypering naar chromosoomafwijkingen bij mensen en muizen Studie met polycysteuze nierziekte

Chromosomen kunnen worden geïsoleerd uit levende cellen zoals lymfocyten of huidfibroblasten en organismen, met inbegrip van mensen of muizen. Deze chromosoom preparaten kunnen verder worden gebruikt voor routinematige G-banding en moleculaire cytogenetische procedures zoals fluorescentie in situ hybridisatie (FISH), vergelijkende genomische hybridisatie (CGH) en spectrale karyotypering (SKY).

Chromosoom Voorbereiding Van gekweekte cellen

Enkele cel genexpressie test is noodzakelijk om inzicht stamcel heterogeniteiten.

Profilering Individuele menselijke embryonale stamcellen door kwantitatieve RT-PCR

Reporter cellijnen bieden een middel om te visualiseren, te volgen en te isoleren cellen van belang zijn van de heterogene populatie. Echter, gen targeting met gebruikelijke homologe recombinatie in humane embryonale stamcellen is inefficiënt. Hierin beschrijven we richten CNS middenhersenen specifieke transcriptiefactor PITX3 locus met EGFP met zink-vinger nuclease verbeterde homologe recombinatie.

Zink-vinger Nuclease Enhanced gentargeting in menselijke embryonale stamcellen

Hoewel prolifererende polyploïde cellen noodzakelijk zijn om chromosomale instabiliteit van polyploïde cellen te analyseren, is het niet eenvoudig om dergelijke cellen te creëren vanuit niet-getransformeerde menselijke cellen. Het huidige rapport beschrijft relatief eenvoudige procedures om proliferatieve tetraploïde cellen te vestigen, vrij van een diploïde populatie, afkomstig van normale menselijke fibroblasten.

Oprichting van Proliferatieve Tetraploïde Cellen uit niet-getransformeerde humane fibroblasten

Meiose is het ontwikkelings proces waaraan gameten worden gevormd door een ronde van DNA-replicatie en twee opeenvolgende ronden van chromosoom segregatie. Zoogdieren meiose kan worden onderzocht met behulp van een techniek ter voorbereiding Meiotische chromosoom spreads. Hier tonen we een methode voor te bereiden oppervlak-spread kernen van muis spermatocyten.

Voorbereiding van Meiotische chromosoom verspreidt van muis spermatocyten

Dit protocol beschrijft de Capture Hi-C-methode die wordt gebruikt om de 3D-organisatie van megagebaseerde gerichte genomische regio's met hoge resolutie te karakteriseren, inclusief grenzen van topologisch associërende domeinen (TAD's) en chromatine-interacties op lange afstand tussen regulerende en andere DNA-sequentie-elementen.

Ontcijferen van 3D-chromatineorganisatie met hoge resolutie via Capture Hi-C

We rapporteren een DNA-FISH metafaseverspreidingsprotocol dat visueel het aantal locuskopieën en locatie binnen het genoom detecteert. Deze aanpak maakt enkelcelresolutie van amplificatietoestanden mogelijk, specifiek in kankercellijnen die extrachromosomaal DNA bevatten en gebieden homogeen kleuren.

DNA-FISH-metafase verspreidt zich om extrachromosomaal DNA te onderscheiden van homogene kleuringsgebieden in menselijke kankercellijnen

Leer de chromosomale spread-voorbereiding van menselijke embryonale stamcellen voor karyotypering. Deze methode detecteert chromosomale afwijkingen en waarborgt genetische integriteit voor therapeutische toepassingen.

Chromosomale Spread Voorbereiding van menselijke embryonale stamcellen voor Karyotypering

Meer video's verkennen