Name: Een Multi-parametrische Islet Perifusion System binnen een Microfluïdische Perifusion Device (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-26T17:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: Leer een microfluïdische isletperifusiemethode voor gelijktijdige meting van insulinesecretie, calciuminflux en mitochondriale potentiaalveranderingen in muiseilandjes. Deze techniek verbetert het onderzoek naar pancreasfysiologie en diabetes.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door AAUW internationale gemeenschap om Adeola Adewola, NIH / NCRR (U42RR023245) naar Jose Oberholzer, en The Chicago Diabetes Project.

A. microfabricage van 3-laags microfluïdische perifusion apparaat Bottom Well Master Protocol (150 um diepe putten) <ol><li> Reinig de wafer met behulp van een scheermesje, indien nodig. Reinigen met aceton, methanol, en het IPA. Voer plasma behandeling bij 50 Watt voor 30 s. </li><li> Spin SU8-100 @ 2000 tpm. [Stap 1: 500 rpm, 10 s, 100 rpm / s, Stap 2: 2000 rpm, 30 s, 300 rpm / s]. [NB: doen de wafer niet vast met een pincet na het spinnen SU8] </li><li> Zachte bak de wafer bij 65 ° C gedurende 20 min en bij 95 ° C gedurende 50 minuten. </li><li> De wafer wordt blootgesteld aan UV-licht door middel van een gewenste masker. Dosis voor 150 micrometer lengte is 650 mJ / cm 2. </li><li> Na blootstelling bak de wafer bij 65 ° C gedurende 1 minuut en bij 95 ° C gedurende 12 minuten. </li><li> Ontwikkel de wafer in SU8 ontwikkelaar gedurende 15 minuten. </li></ol> Microkanaal Master Protocol (500 micrometer diepe putten) <ol><li> Reinig de wafer met behulp van een scheermesje, indien nodig. Reinigen met aceton, methanol, en het IPA. Voer plasma behandeling bij 50 Watt voor 30 s. </li><li> Spin SU8-2150 @ 1000 tpm. [Stap 1: 500 rpm, 10 s, 100 rpm / s, Stap 2: 1000 rpm, 30 s, 300 rpm / s]. </li><li> Zachte bak de wafer bij 65 ° C gedurende 15 min en bij 95 ° C gedurende 2 uur en 30 minuten. </li><li> De wafer wordt blootgesteld aan UV-licht door middel van een gewenste masker. Blootstelling dosis voor 650 micrometer lengte is 685 mJ / cm 2. </li><li> Na blootstelling bak de wafer bij 65 ° C gedurende 5 minuten en bij 95 ° C gedurende 35 minuten. </li><li> Ontwikkel de wafer in SU8 ontwikkelaar gedurende 20-30 minuten. </li></ol> PDMS-oplossing voorbereiding <ol><li> Polydimethylsiloxaan (PDMS) oplossing wordt bereid door grondig te mengen 10 delen van silicone elastomeer met 1 deel verharder van een standaard Sylgard 184 kit. </li><li> De belletjes gegenereerd in de PDMS oplossing tijdens het mengproces worden verwijderd met behulp van een vacuümexsiccator. </li><li> De bel-vrije PDMS oplossing wordt langzaam afgegeven op de SU8 meesters en een lege petrischaal voor de derde laag. </li><li> De temperatuur van de hete plaat is ingesteld op 75 ° C en de PDMS is uitgehard bij deze temperatuur gedurende 2 uur </li><li> Inlaten, stopcontacten en uitwisseling putten worden geslagen met behulp van de juiste maat perforator. </li><li> De lagen worden met elkaar verbonden op een glasplaatje (grootte 0,1 mm) met behulp van een handheld plasma-apparaat. </li></ol> B. Experimentele opstelling <ol><li> Flow 70% ethanol door middel van de micro-apparaat te steriliseren. Flow DI-water te wassen uit de ethanol. Perfuseren 50 ml van 0,5% BSA door het apparaat aan op niet-specifieke adsorptie van insuline te voorkomen dat de microkanaal muren. </li><li> De glucose ramp gradiënt en andere gradiënten gegenereerd door LabView software die communiceert met de spuit pompen zijn getest om te controleren of de hellingen stabiel zijn. </li><li> 25-30 muizen eilandjes werden geïncubeerd met 5 uM Fura-2/AM (een calcium-indicator, Molecular Probes, CA) en 2,5 uM Rhodamine 123 (Rh123, een mitochondriale potentials indicator, Sigma, MO) gedurende 30 minuten bij 37 ° C in Krebs-Ringer buffer (KRB) dat 2 mM glucose </li><li> De muizen eilandjes zijn zorgvuldig gepipetteerd in microfluïdische perifusion apparaat via de inlaat-poort. </li><li> De microfluïdische netwerk wordt dan ingesteld door het aansluiten van de inlaat naar de spuit pompen met behulp van Tygon slang en een Y-connector en het stopcontact om fractie verzamelaar. Het apparaat zit op een verwarmings-fase (37 ° C) op de microscoop en de inlaat buis wordt verwarmd op een kookplaat om de temperatuur van de kamer en de oplossing te houden bij 37 ° C. </li><li> Onmiddellijk na de installatie, zijn de muizen eilandjes perifused met KRB met 2 mM glucose gedurende 10 minuten en daarna een glucose-ramp (2 mm 25 mm) voor 25 minuten. </li><li> Time-lapse beelden worden verzameld en geanalyseerd om de 15 s door SimplePCI software. Het perifusate is ook verzameld elke minuut met behulp van een fractie collector aan de insuline secretie met behulp van ELISA kit te analyseren. </li></ol> Representatieve resultaten Muis eilandjes werden perifused met een lineaire gradiënt van 2-25 mM glucose. Zoals weergegeven in figuur 1, zijn calcium influx en afgifte van insuline die ontstonden na ongeveer 13 minuten van perifusion, wat overeenkomt met 6 mM glucose. Veranderingen in Mitochondriale mogelijkheden zijn eerder als verwacht gezien, op ongeveer 11 minuten. Deze data toont het voordeel van het gebruik van deze microfluïdische netwerk eilandje fysiologie karakteriseren. <img src="/files/ftp_upload/1649/1649fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Fysiologische reacties op cel stimulatie eilandje.

<ol><li>Mohammed, J. S., Wang, Y., Harvat, T. A., Oberholzer, J., Eddington, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+device+for+multimodal+characterization+of+pancreatic+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Microfluidic device for multimodal characterization of pancreatic islets.</a> Lab Chip. 9, 97-106 (2009).</li>
</ol>

Traditionele eilandje perifusion systemen (macroschaal en microschaal) hebben een aantal beperkingen, met inbegrip complex van opzet en ontwerp, een hoge technische eisen, en de moeite om door de gebruiker voorgeschreven chemische gradiënten te creëren in het systeem. De microfluïdische perifusion systeem hier beschreven overwint deze beperkingen met eenvoudige geometrie van ontwerp en fabricage. Nog belangrijker, kan dit systeem worden geïntegreerd met fluorescentie imaging benadering bepalen dat als een uniek instrume...

<table><tbody><tr><td>60ml spuiten</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fura-2 fluorescentiekleurstof</td><td>Molecular Probes, Life Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Rhodamine123 fluorescentiekleurstof</td><td>Molecular Probes, Life Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glucose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bovien serumalbumine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>30&quot; siliconeslangen</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>1/16 x 1/8in</td></tr><tr><td>1,5ml Eppendorf-buisjes</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Y-connectoren</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>1/16&amp;#8221; &amp;amp; 4mm</td></tr><tr><td>Spuitconnectoren</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>female luer plug 1/16&amp;#8221;</td></tr><tr><td>Rechte connectoren</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>1/16&amp;#8221;</td></tr><tr><td>Elleboogconnector</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td>1/16&amp;#8221;</td></tr><tr><td>Harvard spuitpomp</td><td>Harvard Apparatus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Perifusieapparaat</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Warmteplaat</td><td>PMC</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Thermometer</td><td>Omega Engineering, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fractiecollector</td><td>Gibson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipetteerder</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inverterende epiflorescentiemicroscoop</td><td>Olympus Corporation</td><td>IX71</td><td></td></tr><tr><td>Charge-coupled device</td><td>QImaging</td><td></td><td>Retiga-SRV, Fast 1394</td></tr></tbody></table>

een multi-parametrische islet perifusion system binnen een microfluïdische perifusion device

A Multi-Parametric Islet Perifusion System within a Microfluidic Perifusion Device

Een microfluïdische eilandje perifusion apparaat werd ontwikkeld voor de beoordeling van dynamische insuline secretie van verschillende eilandjes en gelijktijdige fluorescentie beeldvorming van calcium influx en mitochondriale potentiële veranderingen. Het apparaat bestaat uit drie lagen: eerste laag bevat een array van microschaal putten (500 micrometer diameter en 150 micrometer diepte) die helpen om de eilandjes te immobiliseren, terwijl blootgesteld te stromen en het maximaliseren van het blootgestelde oppervlak van de eilandjes, de tweede laag bevat een cirkelvormige perifusion kamer (3 mm diep, 7 mm diameter), en de derde laag bevat een inlaat-mixing kanaal dat fans voor injectie in de perifusion kamer (2 mm in de breedte, 19 mm in lengte en 500 micrometer lengte) voor het optimaliseren van het mengen efficiency voorafgaand aan het invoeren van de perifusion kamer. De oprichting van verschillende glucose gradiënten waaronder een lineaire, klokvorm, en vierkante vormen kunnen ook worden gecreëerd in de microfluïdische perifusion netwerk en is aangetoond.

Een microfluïdische eilandje perifusion apparaat werd ontwikkeld voor de beoordeling van dynamische insuline secretie van verschillende eilandjes en gelijktijdige fluorescentie beeldvorming van calcium influx en mitochondriale potentiële veranderingen.

Een Multi-parametrische Islet Perifusion System binnen een Microfluïdische Perifusion Device

Er is een microfluïdisch perifusieapparaat voor eilandjes van Langerhans ontwikkeld voor de beoordeling van de dynamische insulinesecretie van meerdere eilandjes en gelijktijdige fluorescentie ...

In deze presentatie introduceren we een op microfluïdica gebaseerd perfusiesysteem voor eilandjes van Langerhans voor de gelijktijdige meting van dynamische insulinesecretie, calciuminstroom en veranderingen in het mitochondriële potentieel van pancreaseilandjes als reactie op insulinesecretagoga. Het perfusiesysteem bestaat uit een microfluïdisch apparaat van drie lagen, spuitpompen en een fractiecollector. Door secretagoga geïnduceerde calciuminstroom en mitochondriële potentialen worden gevisualiseerd met behulp van een fluorescentiemicroscoopopstelling.Hoi, mijn naam is Ola, een onderzoeker uit het laboratorium van Dr. Val Holter van de afdeling Transplantatiechirurgie aan de Universiteit van Illinois in Chicago. Hoi, ik ben Don Lee, ook uit het laboratorium van Dr. Holter. Hoi, ik ben Tricia Hart, ook uit het laboratorium van Dr. Holter.Vandaag tonen we u een procedure voor gelijktijdige beeldvorming van het ooglid met behulp van een lineaire glucosegradiënt. We hebben deze procedure in ons laboratorium gebruikt om de visuele aspecten en de functie van het ooglid te bestuderen. Laten we beginnen.Het microfluïdische apparaat dat voor deze procedure wordt gebruikt, is samengesteld uit drie lagen uitgehard PDMS, geproduceerd via standaard fotolithografie. De eerste laag, vervaardigd vanuit een siliconen master, bevat de putjes van het microfluïdische apparaat die de oogjes voorzichtig op hun plaats houden, met een diepte van 150 micrometers en een diameter van 500 micrometers. De tweede laag bevat kanalen met een hoogte van 500 micrometers en een breedte van twee millimeters.Het midden van het kanaal is verbreed om de stroming te verspreiden voor een betere uitwisseling van de oplossing. In het apparaat wordt een uitwisselingsputje gemaakt door een gat van drie millimeter hoog en zeven millimeter breed in het midden van de laag te ponsen. De derde laag is een dikke plaat PDMS. Om deze laag voor te bereiden, ponst u aan beide zijden kleine gaten die uitlijnen met de inlaat en uitlaat van het kanaal.Op de tweede laag, zodra alle drie de lagen zijn gegenereerd, wordt de eerste laag aan een glazen objectglas gebonden met de putjes naar boven gericht. De tweede laag wordt vervolgens aan de eerste laag gebonden met de kanaalafstand naar boven. Ten slotte wordt de derde laag aan de tweede laag gebonden.Zodra de lagen zijn verbonden, is het apparaat klaar voor gebruik in experimenten. Steriliseer het microfluïdische apparaat door 70% ethanol door de kanalen van het apparaat te laten stromen, met behulp van een spuit van 10 milliliter gevuld met 70% ethanol en verbonden met de inlaatpoort van het apparaat via Tygon-slangen. Laat vervolgens, met dezelfde opstelling, gedeïoniseerd water stromen om de ethanol uit te spoelen.Zodra het apparaat is gesteriliseerd, plaatst u het op een verwarmde microscooptafel met behulp van tigon-slangen en verbindt u de spuitpompen die de oplossingen met hoge en lage glucoseconcentraties bevatten met een Y-connector. Sluit deze vervolgens aan op de inlaat van het microfluïdische apparaat. Verbind de uitlaat van het microfluïdische apparaat met een fractiecollector.Zorg ervoor dat de slang op een warmteplaat van 37 °C rust. Het is zeer belangrijk om de oplossingen gedurende het gehele experiment op fysiologische temperatuur te houden. Gebruik vervolgens het LabVIEW-programma om de glucosegradiënt te initialiseren die tijdens het experiment door het microfluïdische netwerk zal worden geperfuseerd.Deze software varieert de stroomsnelheid van twee glucoseoplossingen. Door de spuitpompen te regelen, kunnen hier verschillende glucosegradiëntprofielen worden gecreëerd: lineaire, klokvormige en vierkante glucosegradiëntprofielen. In dit experiment worden de resultaten getoond in vergelijking met de berekende verwachte waarden; hierbij zal een lineaire gradiënt van 2 mM tot 25 mM glucose worden gebruikt met een variërende stroomsnelheid van 0,01 mL/min van de twee glucoseoplossingen en een constante stroomsnelheid van 0,25 mL/min die het apparaat binnenkomt nadat de oplossingen zijn gemengd.Zodra het juiste gradiëntprofiel is geselecteerd, moet de stabiliteit van de gradiënt worden getest. Start eerst het gradiëntensysteem. Start vervolgens de fractiecollector en verzamel perfusaat in Eppendorf-buisjes van één milliliter.Test vervolgens met een glucometer de glucoseconcentratie in elke buis met behulp van Excel. Analyseer de resultaten die met de glucometer zijn verkregen. Vervang daarna de spuit met hoge glucoseconcentratie door een spuit met 0,5%BSA-oplossing in Krebs-Ringer-buffer en perfuseer 50 milliliters door het apparaat met een snelheid van één milliliter per minuut.Dit voorkomt aspecifieke adsorptie van insuline aan de wanden van het microkanaal om de nauwkeurigheid te waarborgen bij het later meten van de uitgescheiden insulinewaarden na perfusie met BSA. Vervang dit door de hoge glucose-oplossing reus. Suspendeer 25 tot 30 handmatig geselecteerde muis-eyelets in een 2 mM glucose Krebs-Ringer-buffer die de calciumindicator-kleurstof fira 2:00 AM en de mitochondriale potentiaal-indicator-kleurstof rumine 1 2 3 bevat, en incubeer gedurende 30 minuten bij 37 °C.Koppel na incubatie het apparaat los van het perfusiesysteem en laad de eilandjes voorzichtig in het microfluïdische apparaat door de tip van de pipet, met daarin de eilandjes, in de inlaatpoort te plaatsen en de eilandjes langzaam te dispenseren. Sluit het apparaat na het laden opnieuw aan op het perfusiesysteem. Let er hierbij op dat er geen luchtbellen worden geïntroduceerd. Start vervolgens de spuitpomp om de eilandjes te perfunderen met KRB dat 2 mM glucose bevat.In deze stap wordt de overtollige kleurstof uit het medium gewassen, en worden de excitatie- en emissiefiltersets en de belichtingstijden bepaald die tijdens het experiment worden gebruikt. Stel vervolgens de fractiecollector in om op intervallen van één minuut te verzamelen, terwijl de oogleden worden behandeld met de lage glucoseloplossing. Gebruik de tool voor het interessegebied (ROI) van de eenvoudige PCI-beeldvormingssoftware om de gebieden of oogleden te definiëren die u wilt fotograferen.Omcirkel daarnaast het achtergrondgebied dat zal worden afgetrokken nadat de cellen 10 minuten zijn gewassen, start de fractiecollector voor de glucosegradiënt en begin met de time-lapse imaging. Zet na 30 minuten de software en de spuitpomp voor hoge glucose uit. Ga door met perfusie met lage glucose om het effect van de hoge glucose uit te spoelen.Stop na 10 minuten de stroom van lage glucose door de spuitpomp uit te schakelen. Exporteer na de perfusie de gegevens naar Excel voor analyse. De hoeveelheid insuline die in het perfusaat is uitgescheiden, kan worden bepaald met een ELISA voor muis-eilanden.Er werd geperfuseerd met een lineaire gradiënt van twee tot 25 millimolair glucose, zoals hier wordt getoond. Calciuminstroom en insulinesecretie worden getriggerd na ongeveer 13 minuten perfusie, wat overeenkomt met zes millimolair glucose. Veranderingen in mitochondriële potentialen zijn eerder zichtbaar, zoals verwacht rond 11 minuten.Deze gegevens tonen het voordeel aan van het gebruik van dit microfluïdische netwerk om de fysiologie van de oogjes te karakteriseren. We hebben zojuist gedemonstreerd hoe ons microfluïdische parafusie-apparaat kan worden gebruikt voor de studie van de oogjesfysiologie. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om ervoor te zorgen dat er geen luchtbellen in het apparaat zitten, aangezien dit ertoe kan leiden dat de oogjes tijdens een experiment verschuiven.Verder kan de stroomsnelheid worden aangepast tot 1 ml per minuut zonder de oogjes te verstoren. Dat is alles. Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experiment.

a-multi-parametric-islet-perifusion-system-within-microfluidic

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Tonen we protocollen voor de productie en het automatiseren van elastomeer polydimethylsiloxaan (PDMS) op basis van microklep arrays dat er geen extra energie nodig te sluiten en zijn voorzien van photolithographically gedefinieerd precieze volumes. Een parallel subnanoliter-volume mixer en een geïntegreerd microfluïdische perfusie-systeem worden gepresenteerd.

Microfluïdische Chips Gecontroleerde met elastomeer microklep Arrays

Demonstreren we de fabricage van een eenvoudige microfluïdische apparaat dat kan worden geïntegreerd met standaard elektrofysiologie opstellingen om microschaal oppervlakken van een brein slice bloot in een goed gecontroleerde manier aan verschillende neurotransmitters.

Brain Stimulation Snijd met behulp van een Microfluïdische Netwerk en Standard Perfusie Kamer

Een methode om cultuur een endotheelcel monolaag het gehele inwendige oppervlak van een 3D microfluïdische apparaat met microvasculaire grootte kanalen (&lt;30 pm) beschreven.

Endothelialized Microfluidics voor het bestuderen van microvasculaire Interacties in Hematologische ziekten

Source: Vanegas, M. I., et al. Microinjectrode System for Combined Drug Infusion and Electrophysiology. J. Vis. Exp. (2019)This video demonstrates a microelectrode-based microfluidic device that delivers drug solution through a capillary tube, using an oil-based marker solution for precise volume tracking and enabling simultaneous neural recording and drug infusion.

Microfluidic-Based Microinjectrode System for Combined Drug Infusion and Electrophysiology

Microfluïdische zuurstofcontrole biedt meer dan alleen gemak en snelheid ten opzichte van hypoxische kamers voor biologische experimenten. Vooral wanneer geïmplementeerd via diffusie door een membraan, kan microfluïdische zuurstof gelijktijdige vloeistof- en gasfase-modulaties op microschaalniveau bieden. Deze techniek maakt dynamische multi-parametrische experimenten mogelijk, die cruciaal zijn voor het bestuderen van eilandjespathofysiologie.

Kwantitatieve en tijdelijke controle van zuurstof Micromilieu bij de Single Islet niveau

Het fabricageproces van een op PDMS gebaseerd, meerlaagse, microfluïdisch apparaat waarmee in vitro transcriptie-en vertalings Reacties (IVTT) gedurende langere perioden kunnen worden uitgevoerd, wordt beschreven. Bovendien wordt een uitgebreid overzicht gegeven van de hardware en software die nodig is voor het automatiseren en onderhouden van deze reacties voor langdurige duur.

Een Multilayer microfluidic platform voor de geleiding van langdurige cel-vrije genexpressie

Dit artikel presenteert een methode om een goedkoop, meerkanaals perfusiecelkweeksysteem te construeren en te gebruiken voor het meten van de dynamiek van secretie en absorptiesnelheden van opgeloste stoffen in cellulaire processen. Het systeem kan cellen ook blootstellen aan dynamische stimulusprofielen.

Multi-Stream Perfusion Bioreactor geïntegreerd met Outlet Fractionation voor dynamische celcultuur

Dit protocol beschrijft een methode voor de synchrone acquisitie en co-registratie van intracellulaire signaleringsgebeurtenissen en de secretie van insuline en glucagon door primaire menselijke pseudo-eilandjes met behulp van de adenovirale toediening van een cyclische adenosinemonofosfaat (cAMP) biosensor, een cAMP-verschildetector in situ (cADDis) en een microperifusiesysteem.

Menselijk pseudo-eilandsysteem voor synchrone beoordeling van fluorescerende biosensordynamica en hormoonsecretoire profielen

Real-time analyse van levend weefsel levert belangrijke functionele en mechanistische gegevens op. Dit artikel beschrijft de protocollen en kritische variabelen om te zorgen voor een nauwkeurige en reproduceerbare generatie van gegevens door een nieuw en pompvrij meerkanaals fluïdisch systeem dat een breed scala aan weefsel- en celmodellen onderhoudt en beoordeelt.

Onderhouden en beoordelen van verschillende weefsel- en celtypes van het oog met behulp van een nieuw pomploos fluïdisch systeem

Dit protocol beschrijft een herconfigureerbaar, op membraan gebaseerd celkweekplatform dat het open-well-formaat integreert met vloeistofstroommogelijkheden. Dit platform is compatibel met standaardprotocollen en maakt omkeerbare overgangen mogelijk tussen open-well en microfluïdische kweekmodi, om tegemoet te komen aan de behoeften van zowel technische als biowetenschappelijke laboratoria.

Statische barrièreweefselmodellen transformeren in dynamische microfysiologische systemen

De fabricage van een dubbellaags apparaat op basis van polydimethylsiloxaan (PDMS) voor de productie van combinatorische bibliotheken in water-in-olie-emulsies (pluggen) wordt hier gepresenteerd. De benodigde hardware en software die nodig zijn om de productie van stekkers te automatiseren, worden gedetailleerd beschreven in het protocol en de productie van een kwantitatieve bibliotheek van fluorescentiestekkers wordt ook gedemonstreerd.

Dubbellaags microfluïdisch apparaat voor de productie van combinatorische pluggen

Leer een microfluïdische isletperifusiemethode voor gelijktijdige meting van insulinesecretie, calciuminflux en mitochondriale potentiaalveranderingen in muiseilandjes. Deze techniek verbetert het onderzoek naar pancreasfysiologie en diabetes.

Een Multi-parametrische Islet Perifusion System binnen een Microfluïdische Perifusion Device

Meer video's verkennen