Name: Dissectie van organen van de Adult zebravis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-03-04T16:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 18 s
Description: Leer de dissectie van organen bij volwassen zebrafish voor ontwikkelingsbiologisch onderzoek. Deze methode toont systematische verwijdering van huid, spieren en interne organen zoals gonaden, hart en hersenen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dit werk werd ondersteund door NIH subsidie ​​R01 HD050901 aan MCM en American Cancer Society Postdoctoral Fellowship # PF-05-041-01-DDC naar TG.

<ol><li> Een mannelijke zebravissen zullen eerst worden ontleed, gevolgd door een vrouwelijke vis. Voor het begin van de dissectie, verdooft een vis in 0,2% tricaïne en dan euthanaseren door incubatie in ijs water gedurende 15 minuten. </li><li> Begin met het zachtjes tikken van de vis droog op een papieren handdoek en het op een dissectie mat. Extern, zebravis hebben een rug-, anale en staartvinnen en gekoppeld borstvinnen en buikvinnen (figuur 1). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Volwassen mannelijke vissen met vinnen gelabeld. </li><li> Speld de vis aan de ontleden mat door het vlezige deel van de staart en het ventrale deel van de oogkas. </li><li> Snip de huid op de buik van de vis net anterieur van de anaalvin. Snijd de huid en de onderliggende spieren langs de buik van de aarsvin naar de operculum (de harde die meer dan de kieuw) (figuur 2, stap 1). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Stappen in het verwijderen van huid en lichaam muur spier interne organen bloot te leggen. </li><li> Verwijder vervolgens het operculum en de borstvin, inclusief de borst gordel (de dikke, benige streek aan de voet van de fin) (Figuur 2, stap 2). Snijd de huid en de onderliggende spieren beginnen van boven de nu bloot kieuw achterzijde langs de zijkant van de vis en dan naar beneden naar de anaalvin (figuur 2, stap 3). </li><li> Verwijder voorzichtig de huid en de onderliggende spieren van de kant van de vis. Veel van de inwendige organen zijn nu zichtbaar (zie figuur 3). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Volwassen mannelijke vissen met het lichaam wand-en spier verwijderd waardoor de visualisatie van de interne organen. </li><li> De testes zijn lang, wit, gepaarde organen die verbonden zijn aan de dorsale lichaamswand. Verwijder een testis en plaats deze in een schotel van PBS. Onderzoek de testis met gereflecteerde licht van de testes (figuur 4), die cysten bevatten met verschillende stadia van de ontwikkeling van kiemcellen van spermatagonia tot spermatiden (Leal et al.., 2009) te visualiseren. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig4.jpg" alt="Figuur 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 4"> Figuur 4. Dissectie van een testis. De witte rondachtig structuren zijn de testes. </li><li> Verwijder vervolgens het gastro-intestinale systeem van de lichaamsholte van de vis. De lever kan worden geïdentificeerd door zijn grote omvang, gelobde morfologie, tannish kleur, en uitgebreide vascularisatie. De galblaas, een groene doorschijnende met vloeistof gevulde zak, en de milt, die helder rood wordt weergegeven, zijn te vinden in de ingewanden. </li><li> Scheid de darm van de rest van de organen en rek het uit. De voorste, midden en achterste delen van de darm worden bepaald door de hoogte van de epitheliale plooien (Wallace et al., 2005).. </li><li> Leg een stukje van de darm in PBS en observeer de epitheliale plooien met behulp van doorvallend licht. </li><li> Vervolgens onderzoekt de zwemblaas. De zwemblaas bestaat uit een achterste kamer, die is aan de slokdarm via de pneumatische buis, en een voorste kamer, die is naar het binnenoor aangesloten via de Weberiaanse apparaat (Finney et al., 2006).. </li><li> Verwijderen en gooi de zwemblaas. Losmaken van de vis-en re-pin het ventrale zijde bovenaan is om de nier, die is gelegen langs de dorsale lichaamswand ontleden. De nier is een doorschijnend roze structuur in verband met de dorsale aorta en gepigmenteerde cellen. De nier is verdeeld in hoofd, lichaam en staart regio's (figuur 5). Ontleden van een stukje van de nier en plaats het in PBS. Plagen elkaar de nieren weefsel om de nierbuisjes onthullen. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig5.jpg" alt="Figuur 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 5"> Figuur 5. Locatie van het hoofd, lichaam en staart nieren langs de dorsale lichaamswand. </li><li> Ontleden een vrouwelijke vis. Zoals eerder beschreven, euthanaseren de vis in ijs water en dep het droog is voordat het aan de pinning ontleden mat. Verwijder het vel van de kant van de vis, zoals eerder aangetoond. De eierstok is een bilobed structuur die in het lichaam holte opgeschort door een gevasculariseerde mesovarium. </li><li> Verwijder een lob van de eierstok, plaats het in PBS, en onderzoeken met doorvallend licht. De eicellen kunnen uit elkaar worden geplaagd met behulp van fijne naalden en dan geënsceneerde (Figuur 6, Selman et al.., 1993). Fase I eicellen zijn ongeveer 10 - 150 micron in omvang en doorschijnend. Fase II eicellen zijn circa 150 - 350 micron in omvang en wordt gedefinieerd door de verschijning van corticale granules. Fase III eicellen zijn 350 tot 750 micron groot en ondoorzichtig te wijten aan de accumulatie van dooier. Volwassen stadium IV en V eicellen zijn doorzichtig en over het algemeen niet gevonden in de eierstokken van de vrouwtjes die onlangs hebben gepaard. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig6.jpg" alt="Figuur 6" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 6"> Figuur 6. Live stadium I, II en III eicellen waargenomen onder eenontleden microscoop met doorvallend licht. </li><li> Vervolgens ontleden het hart van de vis. Het hart bevindt zich posterior en ventraal op de kieuw. Begin met het uitsnijden van het hart en alle omliggende weefsel en te plaatsen in PBS. Voorzichtig ontleden weg het weefsel rondom het hart, zorg dat u de delicate atrium schade. </li><li> Plaats de ontleed hart in Ringer-oplossing om de hartslag te observeren. Identificeer het atrium, ventrikel, en de bulbus arteriosus (figuur 7, Hu et al., 2001).. <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig7.jpg" alt="Figuur 7" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 7"> Figuur 7. Ontleed volwassen hart. </li><li> Voltooi de dissectie door het verwijderen van de hersenen van de vis. Begin met het unpinning de vis en het verwijderen van het hoofd met een scheermesje. Verwijder zoveel weke delen mogelijk van de ventrale zijde van de schedel met een tang. Verwijder de ogen met behulp van kleine lente schaar. Open te breken van de schedel en verwijder het bot van de ventrale zijde van de hersenen. Plaats nu het hoofd in een schotel van PBS en verwijder de huid en schedel botten van de dorsale zijde van de hersenen. </li><li> Identificeer de olfactorische bollen, telencephalon, habenula, optische Tectum, cerebellum en merg (figuur 8, Wullimann et al., 1996;. Schilling, 2002). <img src="/files/ftp_upload/1717/1717fig8.jpg" alt="Figuur 8" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 8"> Figuur 8. Ontleed volwassen zebravis hersenen. Dorsaal aanzicht, anterior naar boven. </li></ol>

<ol><li>Finney, J. L., Robertson, G. N., McGee, C. A., Smith, F. M., Croll, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+Autonomic+Innervation+of+the+Swim+Bladder+in+the+Zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp+Neurol%22%5BJournal%5D)">Structure and Autonomic Innervation of the Swim Bladder in the Zebrafish (Danio rerio).</a> J Comp Neurol. 495, 587-606 (2006).</li>
<li>Hu, N., Yost, H. J., Clark, E. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+morphology+and+blood+pressure+in+the+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Anat+Rec%22%5BJournal%5D)">Cardiac morphology and blood pressure in the adult zebrafish.</a> Anat Rec. 264, 1-12 (2001).</li>
<li>Leal, M. C., Cardoso, E. R., Nóbrega, R. H., Batlouni, S. R., Bogerd, J., França, L. R., Schulz, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histological+and+stereological+evaluation+of+zebrafish+%28Danio+rerio%29+spermatogenesis+with+an+emphasis+on+spermatogonial+generations%5BTitle%5D)+AND+%22Biol+Reprod%22%5BJournal%5D)">Histological and stereological evaluation of zebrafish (Danio rerio) spermatogenesis with an emphasis on spermatogonial generations.</a> Biol Reprod. 81, 177-187 (2009).</li>
<li>Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+morphology+of+larval+and+adult+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%3A+A+Practical+Approach+%28The+Practical+Approach+Series%29%22%5BJournal%5D)">The morphology of larval and adult zebrafish.</a> Zebrafish: A Practical Approach (The Practical Approach Series). Nusslein-Volhard, C., Dahm, R. , Oxford University Press. (2002).</li>
<li>Selman, K., Wallace, R., Sarka, A., Qi, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stages+of+oocyte+development+in+the+Zebrafish%2C+Brachydanio+rerio%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Morphol%22%5BJournal%5D)">Stages of oocyte development in the Zebrafish, Brachydanio rerio.</a> J. Morphol. 218, 203-224 (1993).</li>
<li>Wallace, K. N., Akhter, S., Smith, E. M., Lorent, K., Pack, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+growth+and+differentiation+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Dev%22%5BJournal%5D)">Intestinal growth and differentiation in zebrafish.</a> Mech Dev. 122, 157-173 (2005).</li>
<li>Wullimann, M. F., Rupp, B., Reichert, H. Neuroanatomy of the zebrafish brain : a topological atlas. , Birkhäuser Verlag. (1996).</li>
</ol>

Experimenten op dieren werden uitgevoerd in overeenstemming met de richtlijnen en voorschriften uiteengezet door de Universiteit van Pennsylvania Institutional Animal Care en gebruik Comite.

Reagentia: 0,2% tricaïne (ethyl-3-aminobenzoaat) 200 mg poeder tricaïne 97,9 ml water DD ~ 1 ml 1 M Tris (pH 9) Pas de pH tot 7,0 Fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) 4,0 g NaCl 0,1 g KCl 100 ml 0,1 M PO 4 Buffer, pH 7,3 150 ml dH 2 O Ringers-oplossing 6.7g NaCl 0,2 g KCl 0,2 g CaCl 2 1,2 g Hepes Een LH 2 O Pas de pH op 7,2 Uitrusting: Ontleden schotel met mat Electron Microscopy Sciences catalogus # 70540 Vannas voorjaar schaar Fijn Science Tools catalogus # 91500-09

dissectie van organen van de adult zebravis

Dissection of Organs from the Adult Zebrafish

In de afgelopen 20 jaar is de zebravis een krachtige modelorganisme voor het begrijpen van gewervelde dieren ontwikkeling en ziekte. Hoewel de experimentele analyse van het embryo en de larve is uitgebreid en de morfologie is goed gedocumenteerd, zijn beschrijvingen van de volwassen zebravissen anatomie en studies van de ontwikkeling van de volwassen structuren en organen, samen met de technieken voor het werken met volwassenen ontbreekt. De organen van de larve ondergaat belangrijke veranderingen in hun algemene structuur, morfologie, en anatomische locatie tijdens de larvale tot volwassen overgang. Extern, de transparante larve ontwikkelt zijn karakteristieke volwassen gestreepte pigment patroon en de gepaarde buikvinnen, terwijl intern de organen ondergaan enorme groei en remodeling. Daarnaast heeft de bipotential gonaden primordium ontwikkelt zich tot een testis of eierstokken. Dit protocol geeft een groot aantal van de organen van de volwassen en toont methoden voor dissectie van de hersenen, gonaden, gastro-intestinale systeem, hart en nieren van de volwassen zebravissen. De ontleed organen kunnen worden gebruikt voor het in situ hybridisatie, immunohistochemie, histologie, RNA-extractie, eiwit analyse en andere moleculaire technieken. Dit protocol zal helpen bij de verbreding van studies in de zebravis om de verbouwing van de larvale organen, de morfogenese van organen die specifiek zijn voor de volwassen en de andere onderzoeken van de volwassen orgaansystemen op te nemen.

Dit protocol beschrijft een procedure voor het identificeren en ontleden van organen van de volwassen zebravissen.

Dissectie van organen van de Adult zebravis

In de afgelopen 20 jaar is de zebravis een krachtig modelorganisme geworden voor het begrijpen van de ontwikkeling en ziekten van gewervelde dieren. Hoewel experimentele ...

Gedurende de afgelopen 20 jaar is de zebravis een krachtig modelorganisme geworden voor het begrijpen van de ontwikkeling en ziekten van gewervelde dieren. Hoewel de morfologie van het embryo en de larve uitgebreid is gedocumenteerd, ontbreken beschrijvingen van de volwassen zebravis, de anatomie en technieken voor het werken met volwassenen. Het laboratorium van Mary Mullin aan de University of Pennsylvania bestudeert de ontwikkeling van de gonaden en ontleedt routinematig de eierstokken en teelballen van volwassen vissen.Dit protocol demonstreert de dissectie van de gonaden, evenals de identificatie en dissectie van de overige belangrijkste orgaansystemen. Om te beginnen wordt een vis geanestheseerd en geëuthanaseerd, waarna deze met spelden op een dissectiemat wordt vastgezet. De huid en de onderliggende spieren worden van de vis verwijderd om het hart, de lever, de darmen, de gonaden en de zwemblaas bloot te leggen.De inwendige organen worden uit de lichaamsholte verwijderd. Voor verdere onderzoeking of experimenten zal Tripti Gupta, uit het laboratorium van Mary Mullins van de afdeling cel- en ontwikkelingsbiologie aan de University of Pennsylvania, veel van de organen van de volwassen vis identificeren en demonstreren hoe deze uit een volwassen zebravis kunnen worden gedisseceerd. Voor de duidelijkheid en om de dissectie te vergemakkelijken, zullen de testikels, het gastro-intestinale systeem en de nier worden gedisseceerd uit een mannelijke zebravis, waarna de eierstokken, het hart en de hersenen zullen worden gedisseceerd uit een vrouwelijke vis.Om de hoeveelheid voedsel in de darm te verminderen, mag de vis de dag vóór de dissectie niet gevoed worden. Er zal een mannelijke zebravis worden gedissecteerd.Ten eerste heeft u een dissectiemat, Venice Spring-scharen, pincetten, dissectienaalden, een schaaltje met PBS en een vis nodig die is geanestheseerd en geëuthanaseerd. Dep de vis voorzichtig droog met een papieren handdoek en leg hem op zijn zij. Op een dissectiemat is te zien dat zebravissen een enkele rugvin en aarsvin hebben, en gepaarde buikvinnen en borstvinnen.Gebruik dissectiepinnen om de vis op de dissectiemat vast te pinnen via het vlezige deel van de staart en het ventrale deel van de oogkas. Knip met de veerschaar de huid op de buik van de vis net anterieur van de anaalvin door. Snijd de huid en de onderliggende spier langs de buik door, van de anaalvin tot aan de harde bedekking over de kieuwen, het operculum genoemd.Gebruik de schaar en de pincet om het operculum en de borstvin uit te snijden, inclusief het dikke benige gebied aan de basis van de vin, de borstgordel genoemd. Verwijder deze om de kieuwen bloot te leggen. Snijd de huid en de onderliggende spieren door, beginnend vanaf boven de blootgestelde kieuw in posterieure richting langs de zijkant van de vis, en vervolgens naar beneden tot aan de anaalvin.Verwijder voorzichtig de huid en de onderliggende spieren aan de zijkant van de vis om de interne organen bloot te leggen. De testes zijn lange, witte, gepaarde organen die vastzitten aan de dorsale lichaamswand. Verwijder een testis en plaats deze in een schaaltje met PBS op kamertemperatuur. Verwijder het vet dat aan de testis vastzit.Bestudeer de testis met gereflecteerd licht onder een dissectiemicroscoop om de zaadbuisjes te visualiseren, welke cysten bevatten met verschillende stadia van zich ontwikkelende kiemcellen, van spermatogonia tot spermatiden. Verwijder vervolgens het maagdarmstelsel uit de lichaamsholte van de vis; de galblaas, een groen doorschijnend met vloeistof gevuld zakje, en de milt, die helderrood van kleur is, bevinden zich binnen de viscera. De lever kan worden geïdentificeerd aan de grote omvang, de gelobde morfologie, de beige kleur en de uitgebreide vascularisatie.Scheid de darm van de overige organen en strek deze uit. De anterieure, midden- en posterieure regio's van de darm worden gedefinieerd door de hoogte van de epitheliale plooien, waarbij de anterieure regio de hoogste is. Plaats een stuk darm in PBS en observeer de epitheliale plooien onder de microscoop met behulp van doorgelaten licht.Onderzoek nu de zwemblaas. De zwemblaas bestaat uit een achterkamer, die via de pneumatische gang verbonden is met de slokdarm, en een voorkamer, die via het apparaat van Ariën verbonden is met het binnenoor. Verwijder de zwemblaas en gooi deze weg, haal de speldjes uit de vis en spel deze met de ventrale zijde naar boven vast om de nier te dissekeren.De nier is een doorschijnende roze structuur die langs de dorsale lichaamswand is gelegen en geassocieerd is met de aorta dorsalis en gepigmenteerde cellen. De nier is verdeeld in de kop-, lichaam- en staartregio. Oké, dus we hebben de kop, het lichaam en de staart van de nier.Dit is de aorta en dit zijn de gepigmenteerde cellen. Disseceer een stukje van de nier en plaats dit in PBS onder de microscoop. Scheid het nierweefsel met de naalden om de niertubuli zichtbaar te maken.Voor de dissectie van een vrouwelijke vis heeft u dezelfde instrumenten nodig als voorheen, aangevuld met enkele fijne naalden, een scheermesje en een schaaltje met ringersoplossing. Voor de dissectie van het hart dept u de geëuthanaseerde vis droog en spelt u deze vast op de dissectiemat. Gebruik, zoals eerder beschreven, dezelfde technieken om de huid van de zijkant van de vrouwelijke vis te verwijderen.De eierstok is een tweekwabstructuur die door een gevasculariseerd mesenterium in de lichaamsholte is opgehangen. Verwijder één kwab van de eierstok en plaats deze in PBS. Onderzoek de eierstok met invallend licht onder de microscoop.De cellen kunnen met fijne naalden uit elkaar worden getrokken en vervolgens, op basis van hun grootte en uiterlijk, aan stadia worden toegewezen. Dissekeer vervolgens het hart uit de vis. Het hart bevindt zich posterieur en ventraal ten opzichte van de kieuw.Begin met het uitsnijden van het hart en al het omliggende weefsel en plaats dit in PBS onder de microscoop. Dissekeer voorzichtig het weefsel rondom het hart weg, waarbij u er alert op bent het delicate atrium niet te beschadigen. Plaats het gedissekeerde hart in ringer-oplossing en zet het onder de microscoop.Om de hartslag waar te nemen, identificeert u het atrium, het ventrikel en de bulbus arteriosis. Om bij de hersenen te komen, pinnen oudt u de vis los en verwijdert u de kop met het scheermesje. Verwijder met een pincet zoveel mogelijk zacht weefsel van de ventrale zijde van de schedel.Identificeer het chiasma opticum en verwijder vervolgens de ogen met kleine veerschaartjes. Breek met de pincet de schedel open en verwijder het bot aan de ventrale zijde van de hersenen. Knip de hersenzenuwen door met de veerschaartjes.Verplaats de kop indien nodig naar een schaaltje met PBS. Keer de kop om en verwijder onder de microscoop de huid en de schedelbeenderen aan de dorsale zijde van de hersenen; identificeer de bulbi olfactorii. Benoem het cephalon, de ULA optic tum, het cerebellum en de magula.Hier zijn de bulbi olfactorii, het teal cephalon, de ula, de optic tum, het cerebellum en de medulla, het hart, het gastro-intestinale systeem, de gonaden, de zwemblaas, de nier en de hersenen. Deze zijn gedisseceerd uit volwassen zebravissen. Deze organen kunnen nu worden gebruikt voor in situ hybridisatie, immunohistochemie, histologie, RNA-extractie of andere moleculaire technieken.

dissection-of-organs-from-the-adult-zebrafish

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

De zebravis nier is de thuisbasis van zowel de nier-en hematopoietische volwassen stamcellen / progenitorcellen, en vormt een uitstekende gelegenheid om deze celtypen en hun nakomelingen studie in een gewerveld modelorganisme. Hier tonen we een gedetailleerde dissectie procedure die de onderzoeker in staat stelt te identificeren en chirurgisch te verwijderen van de volwassen zebravissen nieren, die kunnen worden gebruikt voor toepassingen zoals celisolatie, transplantatie, en expressie studies...

Dissectie van de Adult zebravis Kidney

Een duidelijke, gestandaardiseerde methode voor dissectie en isolatie van de zebravis hart op meerdere ontwikkelingsstadia worden beschreven. Annotatie en kwantificatie technieken worden ook besproken.

Hart Dissection in larvale, jeugdige en volwassen zebravis, Danio rerio</em

Deze video beschrijft de techniek van het isoleren van de darm om de intestinale opname van bioactieve stoffen te evalueren. In dit monster isoleren we de darm van een volwassen zebravis om de opname van immunostimulantia te analyseren.

Volwassen zebravis darm dissectie: een techniek om samengestelde absorptie te analyseren

Deze video beschrijft een techniek om het hart te isoleren van een zebravis in meerdere ontwikkelingsstadia om hartontwikkeling, rijping en veroudering te bestuderen.

Hartdissectie: een methode om zebravis hartontwikkeling te observeren

Deze video beschrijft de techniek van microdissection van de hersenen van een volwassen zebravis. Deze methode helpt bij het verkrijgen van hele hersenen afgeleide neuorospheres die verder kunnen worden bestudeerd.

Zebrafish Brain Disissection: Een techniek van vis neurobiologie

Processen als proliferatie, patroon, differentiatie en axon begeleiding kan gemakkelijk worden gemodelleerd in de zebravis ruggenmerg. In dit artikel beschrijven we een montageprocedure voor zebravis embryo's die visualisatie van deze gebeurtenissen optimaliseert.

Dissectie en horizontale bevestiging van de zebravis embryo&#39;s: Analyse van Spinal Cord Development

Het gebruik van zebravissen voor cardiovasculair onderzoek breidt zich uit naar onderzoek naar volwassen harten. Voor deze toepassingen is snelle en eenvoudige isolatie van hartweefsels essentieel om postmortale veranderingen te voorkomen en om een voldoende aantal monsters te verkrijgen. Hier beschrijven we een snelle en reproduceerbare methode voor het dissecteren van harten van volwassen zebravissen.

Herstel van de Adult zebravis Harten voor High-throughput Toepassingen

Hier presenteren we een protocol voor het isoleren gonadale weefsel van larvale zebravis, die onderzoeken zebravis geslachtsdifferentiatie en het onderhoud vergemakkelijkt.

Dissectie van larvale zebravis Gonadale Tissue

Hier bespreken we een methode-protocol waarmee een gemakkelijke analyse van de volwassen tg(fli:EGFP) zebrafish retinale therapieën als een snel uitlezing in instellingen van lange termijn vasculaire pathologieën gekoppeld aan neoangiogenesis en structurele veranderingen.

Bestuderen van Diabetes door de ogen van een vis: Microdissection, visualisatie en analyse van de volwassen tg(fli:EGFP) Zebrafish Retinal therapieën

Dit protocol beschrijft de procedure voor het verwijderen van de ventrale kwab van de lever bij volwassen zebravissen om de studie van leverregeneratie mogelijk te maken.

Gedeeltelijke hepatectomie bij volwassen zebravissen

Het huidige protocol beschrijft de acute isolatie van levensvatbare cardiale en vasculaire gladde spiercellen van volwassen, juveniele, larvale en embryonale zebravissen (Danio rerio), geschikt voor elektrofysiologische studies.

Isolatie van cardiale en vasculaire gladde spiercellen van volwassen, juveniele, larvale en embryonale zebravissen voor elektrofysiologische studies

Leer de dissectie van organen bij volwassen zebrafish voor ontwikkelingsbiologisch onderzoek. Deze methode toont systematische verwijdering van huid, spieren en interne organen zoals gonaden, hart en hersenen.

Dissectie van organen van de Adult zebravis

Meer video's verkennen