Name: Elektrode Fabrication en Implantatie in Aplysia californica Voor Multi-channel Neurale en gespierd Recordings in Intact, Vrij Behaving Dieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-04T17:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 37 s
Description: Leer elektrodefabricage en implantatie in Aplysia californica voor multikanaal neurale en spieropnames. Deze methode maakt real-time monitoring van neuromusculaire controle tijdens voedingsgedrag mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij dankbaar erkennen de steun van de NIH (NS047073 tot HJC). We zijn ook dankbaar dat Catherine Kehl voor haar vroege experimenten met Kwik-Sil, die moedigde ons aan om het te gebruiken voor onze applicatie.

1. Electrode Fabrication <ol><li> Voor het maken van de elektrode, gebruik van een schaar om een ​​stuk van de email-coating 0,001 inch diameter roestvrij staaldraad ongeveer 2 meter lang snijden. Bevestig een kleine bal van stopverf aan elk uiteinde van de draad, vouw de draad in de helft, en draai de uiteinden om een ​​twisted pair te creëren, een zogenaamde differentieel elektrode. </li><li> Tape de beide uiteinden van de draad te ontrafelen voorkomen. Maak vier differentiële elektroden, het gebruik van een andere kleur van de tape voor elke differentiële elektrode voor identificatie (Figuur 1A). </li><li> Twist twee van de differentiële elektroden bij elkaar, waardoor er twee centimeter getwist aan de ene kant en 1 cm aan de andere kant. Herhaal dit met de resterende paar van differentiële elektroden (figuur 1B). </li><li> Samen Twist beide sets van twee differentiële elektroden, en zorg ervoor dat de uiteinden nog getwist. Houden de elektrode in de montage en toe te passen huishoudelijke siliconen lijm op de kruising van de vier differentieel elektroden, zodat de uiteinden vrij. Hang en laat de lijm drogen minstens 4 uur (figuur 1C). </li><li> Te isoleren van de takken, leg de elektrode montage op een plat, beweegbaar, oppervlak, een stuk hout. Ventilator uit de uiteinden en zet ze met tape. Gebruik een klein stukje plastic om de elektrode montage verheffen vlak voor takken, en dat met tape veilig te stellen. </li><li> Op een dissectiemicroscoop een tang om de vacht van de takken met siliconen lijm. De 1-inch lange uiteinden zullen worden in het dier, dus ze moeten een zeer dunne laag lijm hebben. Laat de lijm drogen gedurende minstens 3 uur. </li><li> Verkorten van de 1-inch lange uiteinde van een differentieel elektrode tot twee centimeter. Op elke draad, verwijder dan 1 cm van siliconen en email. Curl een blote draad in een haak voor opname. Buig de andere draad omhoog en weg van de haak, deze zal dienen als de aarddraad. Herhaal dit voor de resterende drie elektroden. </li><li> Selecteer een van de vier elektroden op het 2 inch einde. Gebruik een tang om siliconen schrapen en uit glazuur, het blootstellen van 1 cm van de blote roestvrij staaldraad op elk van de twee draden. Soldeer een gouden connector aan elk van de twee draden. Gebruik een stukje plakband lab aan het einde een veilige en een scheiding tussen de grond en het opnemen van pinnen te houden. Herhaal dit voor de resterende drie elektroden. </li><li> Bevestig een 1-2cm bal van de siliconen lijm op de kabel, ongeveer 1,5 centimeter van de haak einde aan de elektroden verankeren binnen het dier. Laten drogen ten minste een uur (figuur 1D). <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Elektrodesamenstellen Fabrication. (A) Single differentieel elektrode bestaande uit een gevouwen en gedraaide draad met de uiteinden vastgezet met tape. (B) Twee differentieel elektroden elkaar gedraaide, waardoor er niet getwist ruimte aan de uiteinden. Verschillende kleuren tape of een andere markering moet worden gebruikt om de uiteinden te identificeren. (C) Alle vier differentieel elektroden gecombineerd in een enkele elektrode montage vormt een enkele kabel met aparte takken van de afzonderlijke elektroden op elk uiteinde, gemarkeerd met verschillende kleuren van de tape. (D) definitieve vorm van de elektrode montage. Aan de linkerkant, zijn er gekruld haken voor opnames en de grond draden voor elk differentieel elektrode. Aan de rechterkant, hebben gouden connector pinnen is gesoldeerd aan de kabels voor aansluiting op de versterker. Een verankering bal van siliconen lijm is ook geplaatst naar de linkerkant van de montage. </li></ol> 2. De voorbereiding van Animal voor implantatie <ol><li> Selecteer een gezond dier dat weegt ongeveer 350-450g. In reactie op kleine stukjes van zeewier, moet het dier te genereren bijt met intervallen van tussen de 3 tot 5 seconden. De complete operatie met elektrode implantatie duurt ongeveer een uur. </li><li> Om het dier verdoven, te injecteren met 30% w / v isotone MgCl 2. Om te voorkomen dat het verlies van hemolymfe en MgCl 2, kan de plaats van injectie worden gecoat in superlijm voordat u de naald. <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Schematische weergave van hoe het dier is gespeld voor de elektrode implantatie, en de locatie van de incisie (aangegeven met een bar). </li><li> Leg de verdoofde dier in een dissectie bakje met haar voet naar beneden. Tegenover het dier hoofd op, verschuiving van de kieuw gebied aan uw linkerhand zodanig dat het dier is gedeeltelijk op zijn kant, leunend weg. Vastpinnen de voorste tentakels (figuur 2). </li><li> Plaats de lade op het podium van een dissectiemicroscoop. Het faillissement van de lade op ongeveer een 20 graden hoek naar het hoofd verheffen en de hemolymfe in de staart te verzamelen, weg van de incisie. </li><li> Met behulp van dissectie schaar, lichtjes beginnen een incisie aan uw rechterkant van de Eyespot en uit te breiden tot een 1,5 cm naar voren. Gebruik retractors aan de randen van de lade om de incisie open te houden (zie figuur 2; opmerking bar bij Eyespot aangeeft incisie). </li><li> Bloot te leggen van de buccale massa, een tang om het heldere membraan eronder liftde huid en te gebruiken schaar om een ​​opening die overeenkomen met de belangrijkste incisie te snijden. Tuck de randen van het membraan in de oprolmechanismen. </li></ol> 3. Electrode Implantatie <ol><li> Plaats de elektrode montage op een micromanipulator en verplaats het over incisie van het dier. </li><li> De radular zenuw is het meest moeilijk te bereiken, en moet eerst worden benaderd. Er zijn twee opties voor toegang tot de radular zenuw. </li><li> De eerste optie, die de voorkeur verdient, is om te kijken onder de buccale ganglion tussen BN1 en BN2. Als er een tak van de radular zenuw zichtbaar is, gebruik fijne punt pincet gebogen in een haak op te tillen uit de tak (figuur 3, lus van RN onder ganglion label 1). </li><li> Als er een tak van de radular zenuw is niet toegankelijk boven de spier, een tweede optie is om toegang te krijgen via een kleine incisie in I2 naast het bindweefsel aan de voet van de buccale ganglion (figuur 3, RN onder spier label 2). De incisie in I2 moet gaan door middel van twee lagen van het I2 spier. Vasthouden aan de rand van de spier incisie met rechte tang en gebruik de tang verslaafd te trekken uit een RN tak. </li><li> Terwijl u de zenuw met de aangesloten tang, gebruik dan een andere set van een tang om de elektrode haken op de zenuwen te manipuleren. </li><li> Gebruik de micromanipulator aan de haak te verhogen, zodat de zenuw wordt opgetild uit de buurt van de buccale massa en duidelijk van andere zenuwen of weefsel. Niet uitrekken van de zenuw. </li><li> Droog de elektrode met behulp van een Kim-wipe of zuig de overtollige vloeistof met een spuit. Water spanning kan de zenuw te storten op zichzelf, of een waterslot te vormen onder de zenuw. In beide gevallen moet het gebied volledig worden gedroogd alvorens lijm wordt toegepast. </li><li> Breng een kleine schar van superlijm, waar de basis van de haak is in contact met de bodem van de zenuw. Breng een druppel Aplysia zoutoplossing of hemolymfe naar de secondelijm in te stellen. Als de lijm nat is er niets moet worden verplaatst als het krijgen van lijm tussen de draad en zenuw zou blokkeren de elektrische aansluiting. </li><li> Weer droog de haak. Mix Kwik-Sil lijm op een ice-pack. </li><li> Gebruik de punt van een pen om een ​​kleine hoeveelheid van de Kwik-Sil lijm toe te passen, volledig bedekt alle blootgestelde draad van de haak, maar niet de aarde draad. </li><li> Laat de lijm op te zetten voor ongeveer 5 minuten, bijstelling van de lijm als deze trekt weg van delen van de haak. De lijm wordt ingesteld als het niet meer plakt bij aanraking met de pen (Figuur 4 toont de uiteindelijke configuratie). </li><li> Zodra de radular zenuw elektrode is ingesteld, kan de I2 spier worden benaderd. In het gebied tussen BN1 en BN2, gebruikt u de aangesloten tang te haken en om twee banden van de I2 spier te scheiden van de rest van de spier door zachtjes te trekken de banden omhoog. Bevestig de elektrode volgens dezelfde procedure. </li><li> Buccale zenuwen 2 en 3 zijn gemakkelijk toegankelijk en elektroden zijn bevestigd met dezelfde procedure. </li><li> Als alle elektroden zijn bevestigd, schuift u de elektrode assemblage in het dier tot aan de siliconen anker. </li><li> Suture de incisie gesloten rond de uitstekende elektrode-kabel, waardoor het anker in het dier. Superlijm de steken om een ​​goede afdichting te garanderen. </li><li> Steek de gouden connector tips op het andere uiteinde van de elektrode in een kleine blok van piepschuim. Ga terug het dier naar de hoofdtank in een belucht isolatie container voor het herstel 's nachts. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Een schematische voorstelling van de Aplysia voedselopname-apparaat bekend als de buccale massa. Getoond worden de buccale zenuwen (BN1, BN2, BN3), de radular zenuw (RN), die uit de bodem van de buccale ganglion, dan duikt onder de spier, en de locatie op de I2 spier waar de elektrode is aangesloten. <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig4.jpg" alt="Figuur 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 4"> Figuur 4. Schematische weergave van een elektrode bevestigd aan een zenuw (of spier) en gelijmd op hun plaats. Merk op dat de de-geïsoleerde regio van de gekrulde haak is in direct contact met de zenuw (of spier), verankerd op zijn plaats met superlijm, en elektrisch geïsoleerd van het vloeibaar medium met behulp van Kwik-Sil. Merk ook op dat de deinsulated tip van de massa-elektrode is blootgesteld aan de vloeistof medium. 4. Opname <ol><li> Wennen de dieren in een container belucht hij is aangesloten om de opname apparatuur voor minimaal 1,5 uur. Monitor van het signaal, terwijl het dier acclimatiseren om te controleren of alle elektroden werken en dat het geluidsniveau laag zijn. </li><li> Gebruik een videocamera om eetgedrag te nemen tijdens het gebruik van de computer naar signalen van de neurale en gespierd elektroden op te nemen. Synchroniseer de video-en elektrode-opnamen met behulp van een blokgolf signaal dat een digitaal loket in de camera te bekijken controles, terwijl er tegelijkertijd wordt opgenomen als een extra kanaal op de computer in Axoscope. </li><li> Feeding gedrag wordt uitgelokt door de technieken die debeschreven in Morton en Chiel 1993. </li></ol> Hoewel ongewervelde dieren geen formele goedkeuring van een institutioneel gebruik van dieren en zorg commissie, hebben we ervoor gezorgd dat alle behandelingen van Aplysia schade te minimaliseren en lijden van het dier, en dat alle chirurgische technieken worden uitgevoerd terwijl het dier volledig verdoofd. Representatieve resultaten <img src="/files/ftp_upload/1791/1791fig5.jpg" alt="Figuur 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 5"> Figuur 5. (A) Gelijktijdig vier kanaals recording van een spier (de gradenboog spier I2), en van drie buccale zenuwen (de radular zenuw, RN, buccale zenuw 2, BN2 en buccaal zenuw 3, BN3) tijdens een slikken reactie. (B) Een stilstaand beeld uit de gelijktijdige video-opname van de vrij te gedragen dier als hij slikt een voorgesneden zeewier strip (0,5 cm breed), die is gemarkeerd op 0,5 cm intervallen met witte banden, zodat de bewegingen gemakkelijk gevisualiseerd als Het dier voedt.

<ol><li>Lu, H., Chestek, C. A., Shaw, K. M., Chiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+extracellular+stimulation+of+individual+neurons+in+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neural+Eng%22%5BJournal%5D)">Selective extracellular stimulation of individual neurons in ganglia.</a> J. Neural Eng. 5, 287-309 (2008).</li>
<li>Morton, D. W., Chiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+buccal+nerve+activity+that+distinguishes+ingestion+from+rejection+can+be+used+to+predict+behavioral+transitions+in+Aplysia%5BTitle%5D)+AND+%22J+Comp.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">In vivo buccal nerve activity that distinguishes ingestion from rejection can be used to predict behavioral transitions in Aplysia.</a> J Comp. Physiol. A. 172, 17-32 (1993).</li>
<li>Warman, E. N., Chiel, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+technique+for+chronic+single+extracellular+recording+in+freely+behaving+animals+using+pipette+electrodes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">A new technique for chronic single extracellular recording in freely behaving animals using pipette electrodes.</a> J. Neurosci. Methods. 57, 161-169 (1995).</li>
<li>Ye, H., Morton, D. W., Chiel, H. J., J, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((nbsp%3BNeuromechanics+of+multifunctionality+during+rejection+in+Aplysia+californica%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">nbsp;Neuromechanics of multifunctionality during rejection in Aplysia californica.</a> J. Neurosci. 26, 10743-10755 (2006).</li>
</ol>

Een belangrijke innovatie die heeft deze opnames succesvol is het combineren van de elektroden in een kabel. Twee elektrode opnames zijn gebruikt geweest, maar uitbreiding naar vier afzonderlijke elektroden resulteerde in de vorming van chirurgische adhesies die vaak het dier voorkomen van het maken van normale voeding bewegingen. Het combineren van de elektroden in een kabel vermindert het grootste deel van de elektroden in het dier, dat op zijn beurt vermindert de immuunrespons en laat het dier te bewegen vrijer. ...

<table><tbody><tr><td>Met glazuur gecoat roestvrijstalen draad</td><td>California Fine Wire Company</td><td></td><td>0.001D, coating h</td></tr><tr><td>Household Silicone II Lijm</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kwik-Sil Kleefstof</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Duro Qwik-Gel secondelijm</td><td>Henkel Corp</td><td></td><td></td></tr><tr><td>A-M Systems model 1700 versterker</td><td>A-M Systems</td><td></td><td>Filterinstellingen: 100-1000Hz zenuwen, 10-1000Hz I2 spier</td></tr><tr><td>Axoscope 10.1</td><td>Molecular Devices</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gouden connector-pennen</td><td>Bulgin</td><td>SA3148/1</td><td></td></tr><tr><td>Gouden connector-sockets</td><td>Bulgin</td><td>SA3149/1</td><td></td></tr></tbody></table>

elektrode fabrication en implantatie in aplysia californica voor multi-channel neurale en gespierd recordings in intact, vrij behaving dieren

Electrode Fabrication and Implantation in Aplysia californica for Multi-channel Neural and Muscular Recordings in Intact, Freely Behaving Animals

Het opnemen van belangrijke zenuwen en spieren van de<em&gt; Aplysia</em&gt; Tijdens het voeden gedrag stelt ons in staat om de patronen van neurale controle studie in een intact dier. Gelijktijdig opnemen van meerdere zenuwen en spieren geeft ons precieze informatie over de timing van neurale activiteit. Vorige opname methoden hebben gewerkt voor twee elektroden, maar de studie van extra zenuwen of spieren nodig zijn te combineren en het gemiddelde van de opnames van meerdere dieren, waardoor het moeilijk is om fijne details van de timing en fasering te bepalen, vanwege de variabiliteit van de respons op respons, en van dier naar dier. Implanteren van vier afzonderlijke elektroden heeft een zeer lage kans op succes te wijten aan de vorming van verklevingen die dieren te voorkomen van het uitvoeren van normale voeding bewegingen. We ontwikkelden een nieuwe methode van de elektrode fabricage, dat het grootste deel van de elektroden in het dier waardoor normale voeding bewegingen vermindert. Met behulp van een combinatie van lijm om de elektroden resultaten bevestigen in een meer betrouwbare isolatie van de elektrode, die langer duurt, waardoor het mogelijk om voor periodes zo lang als een week. De fabricage techniek die we beschrijven kan worden uitgebreid tot een aantal extra elektroden te nemen, en zou van toepassing zijn op gewervelde dieren.

Een techniek is beschreven voor het implanteren van vier<em&gt; In vivo</em&gt; Elektroden aan de neuromusculaire controle van voedingsgedrag in monitor<em&gt; Aplysia californica</em&gt;.

Elektrode Fabrication en Implantatie in Aplysia californica Voor Multi-channel Neurale en gespierd Recordings in Intact, Vrij Behaving Dieren

Het registreren van signalen uit belangrijke zenuwen en spieren van Aplysia tijdens het voedingsgedrag stelt ons in staat om de patronen van neurale aansturing in een intact dier te bestuderen. ...

Om de elektrode-assemblage voor multichannel in vivo registraties te maken, worden vier differentiële elektroden vervaardigd en samen getwijnd, waarbij de individuele differentiële elektroden uiteenlopen. Aan het uiteinde wordt het gebouteviseerde dier vastgepind en wordt er een incisie gemaakt naast de oogvlek. De doelnerven en -spieren worden gelokaliseerd en de elektroden worden bevestigd met een druppel secondelijm aan de basis van de haak, om vervolgens te worden geïsoleerd met quick seal afdichtingsmiddel.Hallo, ik ben Miranda Collins van het laboratorium van Dr. Halal Thiel van de afdeling biologie aan de Kiss Western Reserve University. Vandaag laat ik u een procedure zien voor het assembleren en implanteren van elektroden voor in vivo registraties in SIA, Californië. Wij gebruiken deze procedure in ons laboratorium om de neuromusculaire controle van het voeden en sia te bestuderen.Laten we beginnen. Om de elektrode te maken, gebruikt u een schaar om een stuk geëmailleerd roestvrijstalen draad met een diameter van 0,001 inch van ongeveer twee voet lang af te knippen. Bevestig aan elk uiteinde van de draad een klein bolletje kneedbaar materiaal.Vouw de draad dubbel en draai

electrode-fabrication-implantation-aplysia-californica-for-multi

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

We zien hoe veranderingen in de intracellulaire vrije calciumconcentratie en synaptische werkzaamheid kan gelijktijdig monitoren in een ganglion bereiding...

Volgen van veranderingen in de intracellulaire calciumconcentratie en Synaptic werkzaamheid in de Mollusc<em&gt; Aplysia</em

We beschrijven een techniek om extracellulair op te nemen en te stimuleren van zenuwen, spieren, en individuele geïdentificeerde...

Een<em&gt; In Vitro</em&gt; Voorbereiding voor het uitlokken en opnemen Feeding Motor Programma&#39;s met Fysiologische Mutaties in<em&gt; Aplysia californica</em

This video demonstrates a technique for implanting an electrode assembly into a mouse brain. The assembly contains bipolar electrodes to record activity from the hippocampus and a reference electrode to obtain baseline activity from the cerebellum. An anesthetized mouse is placed on a stereotaxic frame, and the electrode assembly is implanted in the target brain region. The animal is then allowed to recover before performing electrophysiological recording.

Implantation of an Electrode Assembly in a Mouse Brain for Electrophysiological Recording

In dieren met grote geïdentificeerde neuronen...

Extracellulair Het identificeren van Motor Neuronen voor een Muscle Motor Pool in<em&gt; Aplysia californica</em

Implanteren georganiseerde arrays van microwires voor gebruik in een enkele eenheid elektrofysiologische opnames presenteert een aantal technische uitdagingen. Methoden voor het uitvoeren van deze techniek en de apparatuur die nodig zijn beschreven. Ook is het nuttig gebruik van de georganiseerde Microwire arrays op te nemen van verschillende neurale subregio's met een hoge ruimtelijke selectiviteit besproken.

Een procedure voor het implanteren van georganiseerde Arrays van microwires voor Single-unit Opnamen in Awake, Gedragen Dieren

Zeeslak Aplysia californica is veel gebruikt als een neurobiologisch model voor de studies op cellulaire en moleculaire basis van gedrag. Hier wordt een methodologie beschreven voor het verkennen van het zenuwstelsel van Aplysia voor de elektrofysiologische en moleculaire analyses van enkele neuronen van geïdentificeerde neurale circuits.

Aplysia Ganglia voorbereiding voor elektrofysiologische en moleculaire analyses van enkele neuronen

Deze studie introduceert een methode voor het gelijktijdig opnemen van lokale veld potentieel in de hersenen, elektrocardiogrammen, electromyograms en signalen voor een vrij bewegend rat te ademen. Deze techniek, die experimentele kosten vermindert en vereenvoudigt gegevensanalyse, zal bijdragen aan het begrip van de interacties tussen de hersenen en perifere organen.

Gelijktijdige opnamen van corticale lokale veld Potentials, elektrocardiogram Electromyogram en ademhaling ritme van een vrij bewegende Rat

Hieronder beschreven is een methode voor implantatie van meerdere polymeer elektrode arrays in anatomisch verre hersengebieden voor chronische elektrofysiologische opname in vrij bewegende ratten. Voorbereiding en chirurgische implantatie worden gedetailleerd beschreven, met de nadruk op ontwerpprincipes om de aanpassing van deze methoden voor gebruik bij andere soorten te begeleiden.

Chronische implantatie van meerdere flexibele polymeer elektrode arrays

Hier gepresenteerd is een protocol voor de productie van een implanteerbaar systeem voor in vivo chronologische registratie van opgeroepen en spontane elektromyografische potentialen. Het systeem wordt toegepast op het onderzoek naar reinnervation van laryngeale spieren na zenuwletsel.

Een implanteerbaar systeem voor chronische in vivo elektromyografie

We beschrijven hier een methode voor het fabriceren van Ti3C2 MXene micro-elektrode arrays en ze te gebruiken voor in vivo neurale opname.

Fabricage van Ti3C2 MXene Microelectrode Arrays voor In Vivo Neural Recording

We hebben een vereenvoudigde en kosteneffectieve aanpak ontwikkeld voor de fabricage van elektroden en hebben opnames gemaakt van signalen in meerdere regio's bij vrij bewegende muizen. Door gebruik te maken van optogenetica, naast elektrofysiologie in meerdere regio's en registratie van calciumsignalen, kon de onthulling van neuronale activiteiten in verschillende regio's in het aanvalsaanmaakmodel worden vastgesteld.

Een geïntegreerde methode voor het maken van flexibele en handige elektrofysiologische optrodes voor in-vivo-opname in meerdere regio's

Leer elektrodefabricage en implantatie in Aplysia californica voor multikanaal neurale en spieropnames. Deze methode maakt real-time monitoring van neuromusculaire controle tijdens voedingsgedrag mogelijk.

Elektrode Fabrication en Implantatie in Aplysia californica Voor Multi-channel Neurale en gespierd Recordings in Intact, Vrij Behaving Dieren (Video) | JoVE Journal

Elektrode Fabrication en Implantatie in Aplysia californica Voor Multi-channel Neurale en gespierd Recordings in Intact, Vrij Behaving Dieren

Meer video's verkennen