Name: Transplantatie van GFP-expressie blastomeren voor Live Beeldvorming van het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen in chimère zebravis embryos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-07-19T17:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 9 s
Description: Leer hoe je GFP-gelabelde blastomeren transpanteert in zebravisembryo's voor live-beeldvorming van netvlies- en hersenontwikkeling. Deze methode maakt het volgen van celgedrag in chimère embryo's mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Deze studie werd ondersteund door een National Institutes of Health (NIH) Core Grant (5P30EY008098) en de volgende middelen om XW: NIH Grant R01EY016099 en Onderzoek naar Blindness Career Development Award Prevent. Wij danken Kira Lathrop voor hulp bij confocale beeldvorming.

Dag 1. Voorbereiding 1. Stel vis kruis Stel paarsgewijze kruisingen van zebravis in de avond. Om te voorkomen dat willekeurige paring voor de gewenste tijd, gebruik verdelers om de mannelijke en vrouwelijke vissen in de paring cassettes te scheiden. GFP expressie transgene vis wordt gebruikt als een bron van donor blastomeren. De pt104 transgene lijn (Zou et al.., 2008), hier gebruikt, drukt GFP alomtegenwoordig onder de controle van de EF1 promotor. GFP expressie maakt visualisatie van de donor cellen door live-imaging. Andere transgene vis lijnen die geschikt zijn fluorescerende eiwitten te uiten kan worden gebruikt voor specifieke behoeften. 2. Bereid wigvormige agarose waterputten voor embryo houden Giet gesmolten 1% agarose, opgesteld op E3 ​​ei water (Westerfield, 2007), in een petrischaal. Float een plastic mal die wig-vormige uitsteeksels heeft op de agarose-oplossing en laat de agarose-oplossing volledig stollen. Verwijder voorzichtig de mal en dompel de agarose bed met E3 water. 3. Bereid transplantatie naalden Gebruik een verticale Needle trekker (David KOPF Instruments) op te stellen vermogen 11,5 tot naalden te maken door te trekken glazen capillaire pipetten (World precisie-instrument). Goede tips naald moet conus met lange schachten. Maal de naald tips op een hoek van 45 graden met een Micro Grinder (Marishige) tot schuine openingen van 40-45μm in binnendiameter worden verkregen (Fig. 1A). Op te ruimen van de naald tips, voeg een slang aan het stompe uiteinde van de naald, sluit de slang aan op een spuit, en dan zuigen en laat een 10% fluorwaterstofzuur oplossing totdat alle zichtbare resten verwijderd is. Vervolgens maak ze schoon met gedestilleerd water, gevolgd door 100% ethanol. De lucht drogen de naalden totdat alle ethanol verdampt. Het is belangrijk ervoor te zorgen dat de tips volledig droog zijn: resterende ethanol zal de naalden ruïne in de hoge-temperatuur-polijsten stap. Te verzachten en polijsten van de ruwe randen van de naald tips, bak de naald tips met de warmte die door de gloeidraad van een Micro vervalser (Marishige). Laat niet de naald tips de gloeidraad aanraken tijdens het polijsten. De hoeveelheid elektriciteit die langs de gloeidraad en de afstand tussen het filament en de naald tips kan worden aangepast om de gewenste verwarming omstandigheden te bereiken. De temperatuur mag niet te hoog: dit zal smelten en vervormen de naald tips. Nadat de ruwe randen worden afgevlakt, voorzichtig raak de gloeidraad met de naald en dan zachtjes weg te trekken van de gloeidraad van de naald tot een puntig uiteinde (Fig. 1B) te genereren. Een scherpe, gladde en schone naald is van cruciaal belang voor het verkrijgen van intacte blastomeren donor en voor niet te beschadigen de host embryo's. 4. Bereid een embryo-positionering probe Trek een glazen pipet boven een gasvlam tot een boete glazen sonde te verkrijgen met een gladgestreken einde. Deze sonde zal gebruikt worden om de embryo's positie in de juiste richting voorafgaand aan de transplantatie. Dag 2. Blastomeer transplantatie 1. Verzamel en dechorionate embryo's De volgende dag, verwijder de verdelers in het kruis cassettes te vissen laten om te paren. Plaats de embryo's in een petrischaal gevuld met water E3. Dan, dechorionate embryo's door handmatig te scheuren weg chorions van de embryo's met een paar fijne tang. Gebruik een glazen pipet met gebogen schacht zorgvuldig overdracht van de dechorionated embryo's in agarose putten. Vermijd elk contact van de embryo's met de lucht, die ervoor zorgen dat de embryo's te barsten. Laat de embryo's te ontwikkelen op 28,5 ° C in de agarose putten tot 3 uur na de bevruchting, of hpf. 2. Stel een transplantatie apparaat Terwijl de embryo's ontwikkelen, het opzetten van een transplantatie apparaat door het aansluiten van de transplantatie naald om de minerale olie gevulde micro-pompsysteem. Zorg ervoor dat het systeem niet lekt en er geen luchtbellen gevangen zitten in het systeem. Terug in het volledige transplantatie naald met minerale olie, behalve de 0,5 tot 1 ul van de ruimte aan het uiteinde opening. 3. Transplantatie van blastomeren Te verplanten blastomeren, gebruik dan een glas positionering sonde naar de blastomeer zijde van de 3-4-HPF embryo's naar boven te oriënteren. Dan, voorzichtig steek de transplantatie naald in een donor embryo en langzaam zuigen 50-20 blastomeren in de naald. Steek de blastomeer gevulde naald in een gastheer embryo en langzaam laat de blastomeren. De plaats waar de blastomeren worden vrijgegeven zal beïnvloeden, waar hun nakomelingen te lokaliseren in latere ontwikkelingsstadia. Aan het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen, laat cellen in het dier paal te analyseren. Tijdens de transplantatie, zorg ervoor dat de naald niet de lucht contact. Te minimaliseren mechanische beschadigingen, draagt ​​de ontvangende embryo's worden achtergelaten in de agarose putten op 28,5 ° C tot de volgende dag. Dan, transfer het mozaïek embryo's tot 24-well platen pre-gecoat met 0,5 ml van 1% agarose, met een embryo in elk putje. 1 ml van de E3 ei water wordt toegevoegd aan elke well. Om te voorkomen dat bacteriële infecties, voeg 10 ul van 100X penicilline en streptomycine naar de E3 ei water. Dag 3. Inbedding en live-beeldvorming van mozaïek embryo's 1. Inbedding embryo's Bereid 1,5% laag smeltpunt agarose (LMP) in E3 ei water en houd de oplossing in een 30 ° C waterbad. Overdracht een mozaïek embryo tot een FluoroDish weefselkweek schotel met een glazen bodem van 0.17mm dikte (World precisie-instrumenten). Verwijder overtollig water op de E3 embryo enkel bedekt met een minimale hoeveelheid van de E3 te verlaten. Voeg 30-50 ul gesmolten 1,5% LMP naar het embryo. Al snel de positie van de ogen of de hersenen met betrekking tot de glazen bodem dicht mogelijk vóór de agarose-oplossing stolt. Nadat de oplossing afgekoeld, voeg extra agarose oplossing om verder te verzekeren van de embryo's in plaats. Dan dompel de gestolde agarose blok met 2-3 ml E3 ei water. 2. Confocale Imaging Voor de confocale microscopie, is een water-immersie omgekeerde doelstelling (Olympus, PlanApo, 40 X/0.90 WLSM, Japan) met grote nadruk diepte worden gebruikt. Een druppel water wordt toegevoegd aan de doelstelling en plaats dan een FluoroDish weefselkweek schotel op de doelstelling. Aan imago-ontwikkeling, uit te voeren time-lapse imaging door het nemen van foto's van de embryo's om de 5 minuten. Afhankelijk van de aard van de experimenten moeten de tijdsintervallen tussen de opnamen worden aangepast. Representatieve resultaten Figuur 2 illustreert een representatieve 24-hpf mozaïek zebravis. GFP expressie benadrukt de donor cellen in het groen. De retinale neuro-epitheliale cellen beslaat het hele dikte van de retinale muur. De film toont de bewegingen van de donor cellen in de gastheer hersenen op 24 hpf. Merk op cellen morfologie de tijd veranderen. <img src="/files/ftp_upload/1924/1924fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Vormen van de transplantatie naald tips. A. De schuine opening van de punt van een naald was vrij van vuil na fluorwaterstofzuur wasbeurten. B. Een puntige einde werd gemaakt aan de naaldtip. <img src="/files/ftp_upload/1924/1924fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Visualisatie van GFP-expressie donor cellen in een chimère zebravis embryo's bij 24 hpf. Het linker paneel toont de GFP-signalen in de hersenen en netvlies. Het middelste paneel is een helder veld beeld van het embryo. Het rechter paneel toont de samengevoegde afbeelding. Film 1. Live in beeld brengen van GFP positieve donor cellen aangetoond dat de omvangrijke veranderingen in de morfologie van de hersenen neuro-cellen tijdens de ontwikkeling. De afzonderlijke frames van de film werden verzameld om de 5 minuten tussen 24 en 25 hpf. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1924/1924_Wei_Movie1.wmv">Klik hier om de film te bekijken</a> .

<ol><li>Zou, J., Lathrop, K., Sun, M., Wei, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intact+RPE+maintained+by+Nok+is+essential+for+retinal+epithelial+polarity+and+cellular+patterning+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Intact RPE maintained by Nok is essential for retinal epithelial polarity and cellular patterning in zebrafish.</a> Journal of Neuroscience. 28 (50), 13684-13695 (2008).</li>
<li>Westerfield, M. A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio). <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWesterfield%2C+M+%22THE+ZEBRAFISH+BOOK%22">THE ZEBRAFISH BOOK</a>. , 5th Edition, University of Oregon Press. Eugene. (2007).</li>
<li>Ho, R. K., Kane, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-autonomous+action+of+zebrafish+spt-1+mutation+in+specific+mesodermal+precursors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cell-autonomous action of zebrafish spt-1 mutation in specific mesodermal precursors.</a> Nature. 348, 728-730 (1990).</li>
<li>Catalano, A., Raymond, P., Goldman, D., Wei, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+dou+yan+Mutation+Causes+Patterning+Defects+and+Extensive+Cell+Death+in+the+Retina%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Dynamics%22%5BJournal%5D)">Zebrafish dou yan Mutation Causes Patterning Defects and Extensive Cell Death in the Retina.</a> Developmental Dynamics. 236 (5), 1295-1236 (2007).</li>
</ol>

In deze video tonen we een methode voor blastomeer transplantatie in het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen te analyseren in de zebravis. Dit protocol kan ook worden gebruikt om de ontwikkeling van andere weefsels en organen te analyseren door simpelweg het vrijgeven van de donor blastomeren overeenkomstige plaatsen in de ontvangende embryo&#39;s. De etikettering met GFP moleculen levert een schonere achtergrond dan labeling met fluorescente kleurstof-geconjugeerde Dextran (Ho en Kane 1990). Dit komt omdat het ...

E3 ei water: <ul><li> 5 mM NaCl </li><li> 0,17 mM KCl </li><li> 0,33 mM CaCl 2 </li><li> 0,33 mM MgSO 4 </li><li> 0,1% methyleenblauw </li></ul>

transplantatie van gfp-expressie blastomeren voor live beeldvorming van het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen in chimère zebravis embryo&#39;s

Transplantation of GFP-expressing Blastomeres for Live Imaging of Retinal and Brain Development in Chimeric Zebrafish Embryos

Cellen veranderen uitgebreid in hun locaties en vastgoed tijdens de embryogenese. Deze veranderingen worden geregeld door de interacties tussen de cellen en hun omgeving. Chimère embryo&#39;s, die zijn samengesteld uit cellen van verschillende genetische achtergrond, zijn grote hulpmiddelen om de cel-cel interacties gemedieerd door genen van belang te bestuderen. De embryonale transparantie van de zebravis in vroege ontwikkelingsstadia maakt directe visualisatie van de morfogenese van weefsels en organen op cellulair niveau. Hier tonen we een protocol om chimerisch netvlies en de hersenen in zebravis embryo&#39;s te genereren en te leven beeldvorming van de donor cellen uit te voeren. Het protocol heeft betrekking op de voorbereiding van de transplantatie naalden, de transplantatie van GFP-expressie donor blastomeren om GFP-negatieve gastheren, en het onderzoek van de donor cel gedrag onder wonen confocale microscopie. Met lichte wijzigingen, kan dit protocol ook gebruikt worden om de embryonale ontwikkeling van andere weefsels en organen in de zebravis studie. De voordelen van het gebruik van GFP te labelen donor cellen worden ook besproken.

Demonstreren we een protocol om chimere zebravis embryo&#39;s te genereren voor live-imaging cellulaire gedrag tijdens de embryogenese.

Transplantatie van GFP-expressie blastomeren voor Live Beeldvorming van het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen in chimère zebravis embryo&#39;s

Cellen ondergaan tijdens de embryogenese uitgebreide veranderingen in hun locatie en eigenschappen. Deze veranderingen worden gereguleerd door de interacties tussen de cellen en hun ...

Blairs zijn de embryonale cellen die worden gevormd tijdens de klievingsfase van de ontwikkeling. Hier worden GFP-gelabelde Blairs met behulp van een transplantatienaald van het ene zebravissenembryo naar het andere overgeplaatst. Deze methode maakt het mogelijk om het gedrag en het lot van Blairs met gewijzigde genetische achtergronden te volgen in een verder normaal embryo, of vice versa, middels live microscopische beeldvorming.Hallo, ik ben Dr. Zoran van het laboratorium van Dr. Shawe van de afdeling Ophthalmologie aan de Universiteit van Pittsburgh. Vandaag laten we u een procedure zien voor het transport van blastomeren in zebravissenembryo's. In ons laboratorium gebruiken we deze procedure om de ontwikkeling van het netvlies en de hersenen te bestuderen.Laten we beginnen. Stel 's avonds paargewijze kruisingen van zebravisjes op om willekeurige paring te voorkomen. Gebruik vóór het gewenste tijdstip scheidingswanden om de vrouwelijke en mannelijke vissen te scheiden. Hier.Transgene vissen die GFP tot expressie brengen, worden gebruikt als bron voor donorblastomeren. De transgene lijn PT 1 0 4 brengt GFP ubiquitair tot expressie onder controle van de EF one-promotor. Om de agros-wells voor te bereiden waarin de embryo's geplaatst worden, giet gesmolten 1% agros, bereid in E three-eiwater, in een Petrischaal. Laat een plastic mal met wigvormige uitsteeksels drijven op de agros-oplossing.Laat het vervolgens afkoelen. Om het voorzichtig te laten stollen, verwijdert u de mal en dompelt u het agros-bed in E three water. Bereid daarna de transplantatienaalden voor.Gebruik een verticale naaldtrekker bij een vermogensinstelling van 11,5 om glazen capillaire pipetten te trekken. Goede naaldpunten moeten taps toelopen met lange schachten. Slijp de naaldpunten onder een hoek van 45 graden met een microslijper totdat schuine openingen met een binnendiameter van 30 tot 40 micrometers zijn verkregen.Om de naaldpunten te reinigen, bevestigt u een slang aan het stompe uiteinde, verbindt u de slang met een spuit en zuigt u vervolgens een 10% waterstoffluoride-oplossing op en laat u deze weer los. Herhaal dit tot alle zichtbare resten zijn verwijderd. Was de punten met gedestilleerd water.Droog de naalden vervolgens met 100% ethanol aan de lucht totdat alle ethanol is verdampt. Het is belangrijk om ervoor te zorgen dat de punten volledig droog zijn. Residuele ethanol zal de naalden beschadigen tijdens het polijsten bij hoge temperaturen.Stap twee: om de ruwe randen van de naaldpunten te verzachten en te polijsten, worden deze verhit met de warmte die wordt gegenereerd door het filament van een microforger. Zorg ervoor dat de naaldpunten het filament niet raken tijdens het polijsten. De hoeveelheid stroom die door het filament vloeit en de afstand tussen het filament en de naald kunnen worden aangepast om de gewenste verhittingcondities te bereiken.De temperatuur mag niet te hoog zijn. Dit zou ervoor zorgen dat de naaldpunten smelten en vervormen nadat de ruwe randen zijn gladgestreken. Raak de verhitte filament voorzichtig aan met de naaldpunt en trek de filament vervolgens langzaam weg om een scherpe punt te creëren.Een scherpe, gladde en schone naald is cruciaal voor het verkrijgen van intacte donorblastocysten zonder de gastembryo's te beschadigen. Trek een glazen pipet over een gasvlam om een fijne glazen sonde met een afgerond uiteinde te maken. Deze sonde wordt gebruikt om de embryo's in de juiste oriëntatie te positioneren voorafgaand aan de transplantatie.Verwijder op de dag van het experiment de scheidingswanden in de kruiskassetten om de vissen te laten paren. Acht. Verzamel na 30 minuten 100 tot 200 embryo's door ze in een net te gieten. Plaats de embryo's in een Petrischaal gevuld met E three water.Verwijder vervolgens met een fijne pincet de omhulsels van de embryo's door de COR's handmatig weg te scheuren. Gebruik daarna een glazen pipet met een gebogen schacht om de omhulsel-bevatte embryo's voorzichtig over te brengen naar aros-wells. Zorg dat de embryo's niet in contact komen met lucht, omdat ze anders zullen knappen.Laat de embryo's zich ontwikkelen bij 28,5 °C in de aros-wells tot drie uur na bevruchting of HPF tijdens de ontwikkeling van de embryo's. Stel een transplantatieapparaat in door de transplantatienaald aan te sluiten op een met minerale olie gevuld micropompsysteem. Zorg ervoor dat het systeem niet lekt en dat er geen luchtbellen in het systeem aanwezig zijn.Vul de gehele transplantatienaald aan met minerale olie, behalve voor een ruimte van 0,5 tot 1 µL bij de opening van de tip. Haal de embryo's uit de incubator en plaats ze op de tafel van een microscoop om de blastome te transplanteren. Gebruik een glazen positioneringssonde om de kant van de blastome van de embryo's in het stadium van 3 tot 4 cellen naar boven te richten.Voer vervolgens de transplantatienaald voorzichtig in een donorembryo in en zuig langzaam vijf tot 20 blastomeren op in de naald, waarbij u erop let dat de naaldpunt tijdens de transplantatie geen contact maakt met lucht. Voer de met blastomeren gevulde naald in een gastembryo in en laat de blastomeren langzaam los. De plaats waar de blastomeren worden vrijgelaten, beïnvloedt waar hun nakomelingen zich in latere ontwikkelingsstadia lokaliseren; om de ontwikkeling van het netvlies en de hersenen te analyseren, moeten de cellen bij de animale pool worden vrijgelaten.Indien de ontwikkeling van andere weefsels en organen geanalyseerd moet worden, dienen dienovereenkomstig verschillende locatiepunten voor de vrijgave in overweging te worden genomen. Om mechanische beschadiging tijdens de transplantatie te minimaliseren, worden de gastembryo's tot de volgende dag in de agros-wells bij 28,5 °C gelaten. Verplaats vervolgens de mozaïekembryo's naar 24-wellplaten die vooraf zijn gecoat met 0,5 ml 1% aros en gevuld zijn met 1 ml E3-eiwater.Voeg aan elke put één embryo toe om bacteriële infecties te voorkomen met 10 µL van 100 x penicilline en streptomycine. Weeg voor elke put laagsmeltende agarose (LMP agarose) af, bereid dit voor en bewaar de oplossing in een waterbad van 30 °C. Breng een mozaïekembryo over naar een petri-schaal met een glazen bodem van 0,17 mm dik.Verwijder overtollig E3-water zodat het embryo net bedekt blijft. Voeg vervolgens snel 30 tot 50 µL gesmolten 1,5% LMP toe aan het embryo voordat de agarose-oplossing stolt. Positioneer het oog of het brein zo dicht mogelijk bij de glazen bodem.Nadat de oplossing is afgekoeld, wordt er extra agros-oplossing toegevoegd om de embryo's verder op hun plaats te fixeren. Dompel het gestolde agros-blok onder in twee tot drie milliliters E3-eiwater voor confocale microscopie. Er wordt een 40 x waterimmersie-objectief voor een omgekeerde microscoop met een grote scherptediepte gebruikt.Voeg een druppel water toe op het objectief, plaats een flora-petrischaal voor weefselkweek op de tafel en stel scherp voor beeldontwikkeling. Voer time-lapse imaging uit door elke vijf minuten foto's van de embryo's te maken. Afhankelijk van de aard van de experimenten kunnen de tijdsintervallen tussen de opnames worden aangepast.Hier wordt een representatief beeld van een 24 HPF zebravis getoond. GFP-expressie markeert de donorcellen in het groen. De neuro-epitheliale cellen van het netvlies beslaan de gehele dikte van de netvlieswand.Deze film toont de bewegingen van donorcellen in de hersenen van de gastheer na 24 HPF. Let op hoe de celmorfologieën in de loop van de tijd veranderen. Hier wordt gedemonstreerd hoe een transplantatie van de borstspiegel bij zebravis wordt uitgevoerd.Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat u voorzichtig een goede naald in het transplantaatgebied van de borst moet plaatsen. Dat was alles. Bedankt voor het kijken en veel succes met uw experiment.

transplantation-gfp-expressing-blastomeres-for-live-imaging-retinal

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

In deze video, demonstreren we een methode om de ontwikkeling van gewervelde hersenen te analyseren in levende zebravis embryo's bij enkele cel resolutie door confocale microscopie. Dit omvat de methode waarmee we injecteren van de single-cell zebravis embryo en vervolgens monteren en het imago van de zich ontwikkelende hersenen.

Live-Imaging van de zebravis embryonale Brain door confocale microscopie

Een stap-voor-stap handleiding voor gerichte chimerisch zebravis embryo's genereren door transplantatie op de blastula of gastrulastadium.

Het genereren van Chimère zebravis embryo&#39;s door transplantatie

Zebravis celtransplantatie maakt de combinatie van genetica en embryologie aan het weefsel specifieke hersenschimmen te genereren. Deze video toont gastrula geënsceneerde cel transplantaties die hebben onze lab naar de rol van astroglial bevolking en de specifieke begeleiding signalen tijdens commissuur vorming in de voorhersenen te onderzoeken.

Tissue Gerichte Embryonale Chimera: Zebravis gastrula Cell Transplantation

In deze video worden de technieken voor multicolor confocale time-lapse imaging en gerichte cel ablatie verstrekt. Time-lapse imaging wordt gebruikt om het gedrag van meerdere celtypen van belang te...

Multicolor Time-lapse imaging van transgene zebravis: Visualizing netvlies Stem Cells geactiveerd door middel van gerichte neuronale cellen Ablation

Stervende cellen zijn geëxtrudeerd uit epitheelweefsels door gezamenlijke contractie van naburige cellen zonder verstoring van de barrièrefunctie. De optische helderheid van ontwikkelen zebravis biedt een uitstekende systeem om extrusie visualiseren in levende epithelia. Hier beschrijven we methoden om te induceren en imago extrusie in het larvale zebravis epidermis op cellulair resolutie.

Live-Imaging van de Cel Extrusie van de opperhuid van de ontwikkelingslanden zebravis

Zebravis netvlies regeneratie is meestal onderzocht met behulp van vaste netvliezen. Echter, dynamische processen zoals interkinetic nucleaire migratie optreden tijdens de regeneratieve respons en vereisen voor live-cell imaging om de onderliggende mechanismen te onderzoeken. We beschrijven hier de cultuur en beeldvorming voorwaarden te controleren Interkinetic Nuclear Migratie (INM) in real-time met behulp van multiphoton microscopie.

Cultuur van volwassen transgene zebravis Retina Explantaten voor Live-cell imaging van Multiphoton Microscopy

Live volgen van individuele WT retinale voorlopers in verschillende genetische achtergronden maakt voor de beoordeling van de bijdrage van de cel niet-zelfstandige signalering tijdens de neurogenese. Hier, een combinatie van gen knockdown, chimeer generatie via embryo transplantatie en in vivo time-lapse confocale beeldvorming werd gebruikt voor dit doel.

In vivo beeldvorming van transgene Gene Expression Individuele retinale voorouders in chimère zebravis embryo&#39;s to Cell Nonautonomous Invloeden Studie

Een combinatie van de geavanceerde optische technieken van laser scanning microscopie met lange golflengte fluorescentie multi foton excitatie werd uitgevoerd om vast te leggen van real-time, hoge resolutie, driedimensionale beeldvorming van neurale crest migratie in GS (sox10:EGFP) en GS (foxd3:GFP) zebrafish embryo's.

Multi foton Time Lapse Imaging te visualiseren van ontwikkeling in realtime: visualisatie van migreren neurale kamcellen in Zebrafish embryo's

Dit protocol beschrijft een benadering voor in toto labeling en multidimensionale beeldvorming van zebravissen vroege oogontwikkeling. We beschrijven labeling, embedding en vierdimensionale (4D) beeldvorming met behulp van laserscannen confocale microscopie, en overwegingen voor het optimaliseren van de verwerving van datasets voor het ontleden van mechanismen van optische cupmorfogenese.

4-dimensionale beeldvorming van zebravis optic cup morfogenese

Dit werk beschrijft een protocol voor het modulaire Tol2-transgenesesysteem, een gateway-gebaseerde kloonmethode om transgene constructies in zebravisembryo's te creëren en te injecteren.

Het Zebrafish Tol2-systeem: een modulaire en flexibele gateway-gebaseerde transgenesebenadering

Hier presenteren we een protocol voor het transplanteren van cellen met een hoge ruimtelijke en temporele resolutie in zebravisembryo's en -larven in elk stadium tussen ten minste 1 en 7 dagen na de bevruchting.

Celtransplantatie met hoge resolutie bij embryonale en larvale zebravissen

Leer hoe je GFP-gelabelde blastomeren transpanteert in zebravisembryo's voor live-beeldvorming van netvlies- en hersenontwikkeling. Deze methode maakt het volgen van celgedrag in chimère embryo's mogelijk.

Transplantatie van GFP-expressie blastomeren voor Live Beeldvorming van het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen in chimère zebravis embryos (Video) | JoVE Journal

Transplantatie van GFP-expressie blastomeren voor Live Beeldvorming van het netvlies en de ontwikkeling van de hersenen in chimère zebravis embryo's

Meer video's verkennen