Name: In situ kwantificering van beta-celmassa in Muizen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-07T17:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 50 s
Description: Leer in situ kwantificering van beta-celmassa in muizen met GFP-gelabelde cellen en fluorescentiemicroscopie. Deze methode ondersteunt diabetesonderzoek door insulineproducerende cellen te visualiseren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

De studie wordt ondersteund door US Public Health Service Grant DK-081527, DK-072473 en DK-20595 aan de Universiteit van Chicago Diabetes Research and Training Center (Animal Models Core), en een geschenk van de Kovler Family Foundation.

Deel 1: Voorbereiding van Monsters <ol><li> Plaats een muis onder een dissectie microscoop, verwijder dan de hele alvleesklier, samen met de twaalfvingerige darm en de milt nog steeds verbonden, en plaats de organen op een vooraf gewogen glasplaatje. Verwijder de twaalfvingerige darm door te snijden zijn bindweefsel langs de kant waar het wordt gebonden aan de alvleesklier. Knippen en verwijder de milt en overtollige vet op de alvleesklier tot de alvleesklier is volledig geïsoleerd op de dia. (Pancreas vet is te onderscheiden door de witte kleur, als onderscheiden van de iets donkerder en leerlooier kleur van de pancreas weefsel.) </li><li> Plaats een dekglaasje (grote dekglas 50x75mm; standaard dekking glas 25x75mm) over de alvleesklier, zodat het helemaal bedekt is. Gebruik een gewicht (bijvoorbeeld een zwaar boek), aan de alvleesklier tussen de glijbaan en het deksel plat. Afhankelijk van het gewicht, afvlakking van de alvleesklier duurt ongeveer vijf minuten. </li><li> Verwijder het gewicht. Als de pancreas is goed plat tegen de glijbaan, plaatst u deze in 4% paraformaldehyde (PFA) bij 4 ° C gedurende de nacht. In de ochtend, verwijder de dekglaasjes en goed de hele alvleesklier bloot te stellen aan PFA gedurende de dag (6-8 uur). Als de alvleesklier niet goed vast, laat het blijven in de PFA langer, mogelijk 's nachts. Breng de dia's om de container met 1% Triton x-100 in fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) 's nachts. De volgende dag, overdracht van de dia's naar de container van verzadigde sucrose voor 1-2 dagen. Dan overdracht van de dia's aan een container van 100% glycerol totdat het weefsel is verwijderd, die het mogelijk maakt voor de optimale resolutie van TL-signalen; weefsel clearing duurt ongeveer 1-3 dagen. (De fluorescerende signalen kunnen aanhouden weken en zelfs maanden, maar beeldvorming moet snel worden uitgevoerd na het weefsel is vrijgemaakt voor een optimale resolutie.) </li><li> Bewaar de alvleesklier in een donkere en koele plaats met het oog op het orgel en de fluorescerende signalen te behouden. </li></ol> Deel 2: Imaging en kwantificeren van de beta-cel gebied in de intacte alvleesklier <ol><li> Met behulp van een tang of een gehandschoende handen, neemt u de schuif uit de container met 100% glycerol. Bereiden op de foto voor de beeldvorming door afvegen teveel glycerol en uitsluitend het schoonmaken van de achterkant van het deksel glas met ethanol. </li><li> Open de StereoInvestigator software (MicroBrightField, Williston, VT) en selecteer de 2x objectief voor imaging muizen pancreata ouder dan 3 weken op grote glazen dia's, of het 10x objectief voor imaging muizen pancreata die jonger zijn dan drie weken geperst tussen twee 25mm dekglaasjes. Visualiseer het beeld om door het leven om de afbeelding (Image → Live Image). Selecteer een belichtingstijd die duidelijk toont het GFP-gelabelde beta-cellen. (Onderbelicht het beeld sluit kleinere eilandjes en de beta-cellen, terwijl het beeld overbelichten zorgt voor extra valse signalen.) </li><li> Klik ergens op het scherm om een ​​referentiepunt te richten en een contour rond de hele alvleesklier te tekenen door te gaan. Start het Virtual Slice proces (Afbeelding → Acquire Virtual Slice). Bepalen en kies de beste focal plane dat wil zeggen, het vliegtuig met het hoogste aantal zichtbare en gerichte eilandjes en beta-cellen op de Z-as door te bladeren de focus knop. Eenmaal gekozen, StereoInvestigator legt automatisch het beeld op het scherm. Met de gemotoriseerde fase, de Virtual Slice-functie legt opeenvolgend elk optisch paneel als een aparte beeld binnen de getrokken contour (Fig. 1A) en combineert alle van ze als een samengevoegde afbeelding (Fig. 1B). Virtual Slice beeldvorming maakt gebruik van een epifluorescerende configuratie wil zeggen, groothoek filters die het mogelijk maakt de camera vast te leggen alle signalen aanwezig zijn op een bepaalde diepte, ook als die niet perfect in focus, zodat het uiteindelijke Virtual Slice is een geïntegreerde tweedimensionale afbeelding die niet is een maximum projectie van de drie-dimensionale reconstructie van de gehele alvleesklier. Gemiddelde Virtual Slice scantijd is 30 minuten per sample, maar kan tot een uur voor een grote alvleesklier. </li><li> Na het opslaan van het beeld, beginnen de analyse van de openstelling van het beeld met ImageJ. Als de afbeelding laden afwerking en verschijnt op het scherm, open en lopen de Virtual Slice analyse macro ( <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1970/Supplementary_material%201.pdf">Aanvullend materiaal een</a> ). </li><li> Volg de stap-voor-stap instructies die door de macro. Elimineer ongewenste artefacten gecreëerd door lichtverstrooiing met de "Magic Wand 'en' Select Area" tools. Controleer en aftrekken onnodige achtergrond van de afbeelding. Bepaal de straal van de grootste eilandje met de "Line" tool, zodat de daaruit voortvloeiende Rolling Ball functie kan effectief te verwijderen autofluorescentie en verstrooid licht. Testen en selecteren de meest geschikte "lage drempel" om de fluorescerende signalen van kleine eilandjes en clusters van beta-cellen vast te leggen (&lt;3x10 4 um 2). Testen en selecteren de meest geschikte "hoge drempel" om de fluorescerende signalen van eilandjes vast te leggen. Voer de kwantificering van de Virtual Slice, die metenen produceren een lijst van eilandje oppervlakte, omtrek, circulariteit en Feret de diameter. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1970/1970Fig1A.jpg" alt="Figuur 1a" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1a"> Figuur 1A Virtual Slice beeldanalyse van de volledige distributie van de beta-cellen in een intacte volwassen pancreas Beelden van afzonderlijke optische panelen van een mannelijke muizen alvleesklier op 10-wk genomen uit hoofde van een 2x doelstelling. De beelden zijn van de volledige distributie van de eilandjes, zelfs kleine clusters van beta-cellen (&lt;10 cellen). <img src="/files/ftp_upload/1970/1970Fig1B.jpg" alt="Figuur 1b" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1b"> Figuur 1B Virtual Slice beeldanalyse van de volledige distributie van de beta-cellen in een intacte volwassen pancreas Een geïntegreerde virtuele slice met de dorsale alvleesklier aan de rechterkant en de ventrale alvleesklier aan de linkerkant. Schaal bar is 5 mm. Representatieve resultaten Vakkundig de voorbereiding van een pancreas voor de Virtual Slice imaging zal zorgen voor een effectieve kwantificering van alle GFP-gelabelde beta-cellen in een hele alvleesklier als een Virtual Slice beeld met helder en duidelijk eilandjes. Succesvolle Virtual Snijd beeldvorming van de gehele alvleesklier in situ biedt de middelen om te onderzoeken en te kwantificeren van de beta-cellen, niet alleen de individuele en de totale oppervlakte eilandje, maar ook eilandje grootteverdeling, regionale analyses, en groeipatronen ook. Terwijl ImageJ handhaaft de capaciteit om gelijktijdig detecteren alle beta-cellen in de analyse van de Virtual Slice beelden, maar kan ook bepalen welke bèta-cellen te kwantificeren door het beperken van de analyse tot bepaalde eilandje maten (per gebied of diameter), of per locatie. Een standaard analyse sluit artefacten zoals puin kleiner is dan een enkele beta-cel (&lt;170 um 2) en registreert de oppervlakte, omtrek (de afstand rond een gebied), rondheid (een zekere mate van rondheid, waarbij 1,0 staat voor een perfecte cirkel), Feret en de diameter van (de langste afstand binnen een gebied) voor elk eilandje ontdekt. Virtual Slice analyse is in staat het verbeteren virtuele slice afbeeldingen door het gebruik van Watershed segmentatie, wat onderscheidt en scheidt overlappende eilandjes in afzonderlijke eilandjes op basis van hun vormen. De analyse levert verder een reeks gedetailleerde beelden, dit omvat maskers van de beelden onder zowel lage als hoge intensiteit (Fig. 1C), een overzicht van alle veronderstelde eilandjes, die elk individueel genummerd en vermeld in een tabel met bijbehorende informatie (Fig . 1D), en de oorspronkelijke Virtual Slice afbeelding (Fig. 1B). Merk op dat eventuele technische vooringenomenheid bij de keuze van drempelwaarden kan tot gevolg hebben de kwantificering van de eilandjes door het opnemen van gratis licht omliggende grote structuren, of door vermindering van het aantal kleine eilandjes, in het bijzonder zwakke signalen uit kleine deeltjes. <img src="/files/ftp_upload/1970/1970Fig1C.jpg" alt="Figuur 1C" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="figuur 1c"> Figuur 1C Virtual Slice beeldanalyse van de volledige distributie van de beta-cellen in een intacte volwassene pancreas Een masker van de fluorescerende deeltjes in de virtuele slice. Kleurcodes: [1] blauw: lage intensiteit fluorescentie; [2] groen: intermediate intensiteit fluorescentie, en [3] rood: een hoge intensiteit fluorescentie. <img src="/files/ftp_upload/1970/1970Fig1D.jpg" alt="Figuur 1D" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="figuur 1d"> Figuur 1D Virtual Slice beeldanalyse van de volledige distributie van de beta-cellen in een intacte volwassen pancreas Kwantificering van de afzonderlijke eilandjes / clusters van de beta-cellen. Merk op dat elk eilandje (met inbegrip van kleine clusters van beta-cellen) is genummerd, met de informatie zoals gespecificeerd in een bijbehorende grafiek. Vier parameters werden genomen voor elke structuur: (1) gebied, (2) perimeter, (3) circulariteit: een zekere mate van rondheid, waar het nummer 1.0 staat voor een perfecte cirkel, en (4) Feret de diameter van: de langste afstand binnen een gebied. Merk op dat # 706 de analyses resolutie schermen met een oppervlakte van slechts een paar beta-cellen. Watershed segmentatie detecteert groepen van naburige eilandjes, zoals aangegeven de ene, en op passende wijze onderscheidt hen als afzonderlijke eilandjes (eilandjes 1554, 1555 en 1556). <img src="/files/ftp_upload/1970/1970Fig1E.jpg" alt="Figuur 1e" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="figuur 1e"> Figuur 1E Virtual Slice beeldanalyse van de volledige distributie van de beta-cellen in een intacte volwassen pancreas 3-dimensionale plot van de virtuele slice-analyse, waarbij de assen van oppervlakte, omtrek en de diameter van Feret. Elke stip staat voor een eilandje.

<ol><li>Miller, K., Kim, A., Kilimnik, G., Moka, U., Jo, J., Periwal, V., Hara, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Islet+formation+during+the+neonatal+development+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Islet formation during the neonatal development in mice.</a> PloS One. 4, E7739-E7739 (2009).</li>
<li>Kilimnik, G., Kim, A., Jo, J., Miller, K., Hara, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+pancreatic+islet+distribution+in+situ+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Quantification of pancreatic islet distribution in situ in mice.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 297, E1331-E1338 (2009).</li>
<li>Hara, M., Wang, X., Kawamura, T., Bindokas, V. P., Dizon, R. F., Alcoser, S. Y., Magnuson, M. A., Bell, G. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+mice+with+green+fluorescent+protein-labeled+pancreatic+beta+-cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Transgenic mice with green fluorescent protein-labeled pancreatic beta -cells.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 284, E177-E183 (2003).</li>
<li>Hara, M., Dizon, R. F., Glick, B. S., Lee, C. S., Kaestner, K. H., Piston, D. W., Bindokas, V. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+pancreatic+beta-cells+in+the+intact+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Endocrinol+Metab%22%5BJournal%5D)">Imaging pancreatic beta-cells in the intact pancreas.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 290, E1041-E1047 (2006).</li>
</ol>

De analyse van Virtual Slice beelden van eilandjes en beta-cel clusters in de intacte alvleesklier zorgt voor een grote weergave van de gehele verdeling van de eilandjes. Ontwikkelingen en veranderingen in het totaal eilandje verdeling over de tijd kan dus worden bestudeerd en vergeleken. Zo'n voorbeeld wordt gedemonstreerd in onze analyse van de eilandjes van Langerhans formatie (1). Een uitgebreide analyse van neonatale muizen pancreata op verschillende tijdstippen (P1-P21) heeft aangetoond dat eilandjes worden gevorm...

<table><tbody><tr><td>Pincet</td><td>Miltex Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Schaar</td><td>F.S.T.</td><td>14001-13</td><td>01n2</td></tr><tr><td>Schaar</td><td>F.S.T.</td><td>14072-10</td><td>02s5</td></tr><tr><td>Groot objectglas</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>71862-01</td><td>75x51x1.2mm</td></tr><tr><td>Groot dekglas</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>260462</td><td>50x75mm</td></tr><tr><td>Objectglas</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-550-15</td><td>25x75x1.0mm</td></tr><tr><td>Dekglas</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-458-5M</td><td>75x25mm</td></tr><tr><td>Dekglas</td><td>Erie Scientific</td><td></td><td>25mm cirkel</td></tr><tr><td>Fluorescentiemicroscoop</td><td>Olympus Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissectiemicroscoop</td><td>Olympus Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stereo Investigator</td><td>MBF Bioscience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MIP-GFP muizen</td><td>Jackson Laboratory</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

in situ kwantificering van beta-celmassa in muizen

In situ Quantification of Pancreatic Beta-cell Mass in Mice

Traceren veranderingen van specifieke cel populaties in gezondheid en ziekte is een belangrijk doel van het biomedisch onderzoek. Het proces van de controle pancreatische beta-cel-proliferatie en eilandje groei vormt een bijzondere uitdaging. We hebben een methode ontwikkeld om de distributie van beta-cellen vast te leggen in het intacte pancreas van transgene muizen met fluorescentie-gelabeld beta-cellen met een macro geschreven voor ImageJ (rsb.info.nih.gov / ij /). Na de pancreas dissectie en weefsel clearing wordt de hele alvleesklier vastgelegd als een virtuele slice, waarna de GFP-gelabelde beta-cellen worden onderzocht. De analyse omvat de kwantificering van de totale bèta-cel gebied, eilandje aantal en de grootte distributie met verwijzing naar specifieke parameters en locaties voor elk eilandje en voor kleine clusters van beta-cellen. De gehele verdeling van de eilandjes kunnen worden uitgezet in drie dimensies, en de informatie van de distributie op de grootte en vorm van elk eilandje staat een kwantitatieve en kwalitatieve vergelijking van de veranderingen in de totale beta-cel gebied in een oogopslag.

Het volgende protocol schetst het proces van het pancreas dissectie voor virtuele slice beeldvorming, en de daaropvolgende kwantificering van alle GFP-gelabelde beta-cellen in de gehele alvleesklier.

In situ kwantificering van beta-celmassa in Muizen

Het volgen van veranderingen in specifieke celpopulaties bij gezondheid en ziekte is een belangrijk doel van biomedisch onderzoek. Het proces van het monitoren van pancreatische ...

Het begrijpen van de proliferatie van pancreatische bètacellen en de groei van eyletten is een belangrijk aspect van diabetesonderzoek. In dit video-artikel wordt de beeldvorming en analyse van een volledige muizenpancreas gedemonstreerd met behulp van muizen met GFP-expresserende bètacellen; de pancreas wordt verwijderd uit een geëuthanaseerde muis en platgelegd op een glazen objectglas. Het pancreatische weefsel wordt geklaard door opeenvolgende behandeling met paraformaldehyde, Triton X, sucrose en glycerol met behulp van fluorescentiemicroscopie.Er wordt een afbeelding of een virtuele coupe van de pancreas gemaakt. Vervolgens wordt de afbeelding geanalyseerd om het aantal, de grootte en de distributie van de eilandjes in de pancreas te bepalen. Hallo, ik ben German Kilimnik van het lab van Dr.RA in het Department of Medicine aan de University of Chicago.Ik ben Abraham Kim, ook van het HAR Lab. Vandaag laten we u een procedure zien voor het verkrijgen van inzicht in de beeldvorming en kwantificering van alle bètacellen in een muizenpancreas. Wij gebruiken deze procedure in ons laboratorium om de structuur, ontwikkeling en vorming van muis-islets te bestuderen.Laten we beginnen.

in-situ-quantification-of-pancreatic-beta-cell-mass-in-mice

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Het testen in vitro β-celfunctie met geïsoleerde eilandjes van Langerhans muis is een belangrijke component in de studie van diabetes pathofysiologie en therapie. Terwijl veel downstream applicaties beschikbaar zijn, dit protocol beschrijft specifiek de meting van intracellulaire cyclische adenosine monofosfaat (cAMP) als een essentiële parameter bepalen van β-cel functie.

Een methode voor muis eilandjes van Langerhans Isolatie en intracellulaire cAMP Bepaling

Het doel van dit protocol is om dynamisch contrastversterkte magnetische resonantie beeldvorming (DCE-MRI) toe te passen voor ortotopische pancreatische tumor xenografts bij muizen. DCE-MRI is een niet-invasieve methode om de microvaten in een doelweefsel te analyseren en is nuttig om de vasculaire respons in een tumor na een nieuwe therapie te beoordelen.

Dynamisch contrast versterkte MRI van een orthotope pancreaskanker Muis Model

Hier presenteren we de methodologie om belangrijke verbindingsbevattende poly(melkzuur-co-glycolzuur) (PLGA) microsferen te genereren en toe te dienen aan intacte muis-eilandjes in cultuur met daaropvolgende immunofluorescentie-analyse van β-cel proliferatie. Deze methode is geschikt voor het bepalen van de werkzaamheid van kandidaat β-cel mitogenen.

Aanhoudende toediening van β-cel mitogenen om Intact Mouse Islets<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Bioafbreekbare poly (melkzuur-co-glycolzuur) Microspheres

We beschrijven een protocol voor de echografie geleide implantatie van Murine-afgeleide alvleesklier ductaal adenocarcinoom cellijnen rechtstreeks in de inheemse tumor site. Deze aanpak resulteerde in alvleesklier tumoren detecteerbaar door echografie scannen binnen 2-4 weken van injectie, en aanzienlijk verminderd de proportie tumor cel zaaien op de peritoneale muur in vergelijking met chirurgische orthotopic implantatie.

Echografie-geleide Orthotopic implantatie van Murine pancreatic Ductal adenocarcinoom

Dit protocol beschrijft de chirurgische generatie van orthotopic alvleesklier tumoren en de snelle vertering van vers geïsoleerde lymfatische alvleesklier tumoren. Na de spijsvertering kunnen levensvatbare immuuncelpopulaties worden gebruikt voor verdere downstream-analyse, inclusief ex-vivo stimulatie van T-cellen voor intracellulaire cytokine detectie door Flowcytometrie.

Generatie van Orthotopic alvleesklier tumoren en ex vivo karakterisering van tumor-Infiltrerende T cel cytotoxiciteit

Deze studie presenteert de toepassing van levende pancreasweefselplakken op de studie van eilandjesfysiologie en eiland-immuuncelinteracties.

Observeren van eilandjesfunctie en eiland-immuuncelinteracties in levende pancreasweefselplakken

Dit protocol schetst twee methoden voor de kwantitatieve analyse van mitofagie in pancreas-β-cellen: ten eerste een combinatie van celdoorlatende mitochondriën-specifieke kleurstoffen en ten tweede een genetisch gecodeerde mitofagie-reporter. Deze twee technieken vullen elkaar aan en kunnen worden ingezet op basis van specifieke behoeften, waardoor flexibiliteit en precisie mogelijk zijn bij het kwantitatief aanpakken van mitochondriale kwaliteitscontrole.

Complementaire benaderingen om mitofagieflux in pancreas-β-cellen te ondervragen

Intraperitoneale toediening van geneesmiddelen is een veilige en effectieve niet-invasieve benadering voor het induceren van pancreasletsel. Deze studie vergeleek vijf verschillende intraperitoneale injectieprotocollen bij muizen om verschillende gradaties van pancreasletsel te induceren en stelde een model van ernstig pancreasletsel vast om de pathologische veranderingen en behandelingsstrategieën voor ernstige acute pancreatitis (SAP) te onderzoeken.

Het voorbereiden van een muizenmodel van ernstige acute pancreatitis via een combinatie van caeruleïne en lipopolysaccharide intraperitoneale injectie

We beschrijven een methode om tumor-infiltrerende lymfocyten (TIL's) van muizen te gebruiken door middel van flowcytometrie voor adoptieve celoverdracht. Dit protocol heeft tot doel de specifieke cytotoxiciteit van TIL's tegen tumoren in een syngene alvleesklierkanker muismodel te verifiëren en inzicht te verschaffen in de ontwikkeling van adoptieve celtherapieën voor alvleesklierkanker.

Op flowcytometrie gebaseerde isolatie en therapeutische evaluatie van tumor-infiltrerende lymfocyten in een muismodel van alvleesklierkanker

Deze studie maakt gebruik van multi-kleuring fluorescentie-gebaseerde markers van celdood en apoptose in combinatie met confocale microscopie om cytokine-geïnduceerde apoptose en β-celspecifieke dood in pancreaseilandjes te beoordelen. Het onthult ruimtelijke en temporele veranderingen in celdood en apoptose als reactie op extracellulaire stimuli.

Geïsoleerde behandeling van pancreaseilandjes en meting van apoptose

Wij bieden een minimaal invasief protocol voor de intramusculaire transplantatie van pancreasstamceleilandjes afkomstig van menselijke stamklieren in immunodeficiënte muizen voor in vivo implantatie en downstream analyse.

Intramusculaire transplantatie van menselijke pluripotente stamcel-afgeleide alvleesklierendocriene cellen bij muizen

Leer in situ kwantificering van beta-celmassa in muizen met GFP-gelabelde cellen en fluorescentiemicroscopie. Deze methode ondersteunt diabetesonderzoek door insulineproducerende cellen te visualiseren.

In situ kwantificering van beta-celmassa in Muizen

Meer video's verkennen