Name: Het testen van oppervlakte-expressie van receptoren Chemosensory in heterologe cellen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-02-23T17:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 55 s
Description: Leer hoe je oppervlakte-expressie van chemosensorische receptoren detecteert in HEK293T-cellen met live cell staining en immunofluorescentie-microscopie. Deze methode is essentieel voor neurobiologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken de leden van de Matsunami laboratorium voor kritische lezing van dit manuscript.

1. Procedure: De procedure bestaat uit drie delen uitgevoerd over een totale tijd van 3 dagen: de overdracht van cellen, transfectie en immunocytochemie, een stap uitgevoerd per dag. Overdracht en transfectie van cellen over de eerste twee dagen moet worden uitgevoerd in steriele omstandigheden in een laminaire stroming kamer. Dag 1: Overdracht van HEK293T cellen voor oppervlakte-expressie test. <ol><li> Medium voor de overdracht (M10): Mix minimum essentieel medium aangevuld met 10% (in volume) foetaal runderserum in steriele toestand in. </li><li> Grow cellen om een ​​gewenste confluentie in een 100mm cultuur plaat, afhankelijk van het aantal platen nodig is in te stellen. Het is belangrijk om vast te stellen de fractie van de cellen worden overgebracht naar overwoekerd of schaarse cellen te voorkomen: bijvoorbeeld van een 100% confluent 100 mm schaal, kan men ongeveer 3% over te dragen aan een 35 mm schaal tot ongeveer 30% confluentie te verkrijgen in de laatste. </li><li> Voorafgaand aan de overdracht van cellen, in de steriele laminaire stroming kamer, jas 22 X 22 mm glazen dekglaasjes met steriele poly D lysine (1 mg / ml) en plaats een in elke 35 mm cel cultuur schotel, gecoate zijde omhoog voor plating cellen (figuur 1 ). Laat de oplossing om te drogen voor 5 - 10 minuten. Tijdens dit interval kan de UV-bron in de laminaire kamer worden ingeschakeld om de dekglaasjes steriliseren, indien gewenst. Poly D lysine helpt heterologe cellen vasthouden aan de dekglaasjes. </li><li> Voor de overdracht van cellen, zuigen uit de bestaande media in de 100mm schaal, was door zorgvuldig toe te voegen 8 ml steriel PBS, aspireren PBS en trypsinize de cellen met behulp van 3 ml 0,05% trypsine-EDTA; wanneer de cellen los van de schotel, verder enzymatische reactie te blokkeren door het toevoegen van 5 mL M10. Vermaal de cellen en de overdracht vereiste volume om een ​​steriele conische buis; centrifuge bij 200 g gedurende 5 minuten om pellet de cellen. Aspireren uit supernatant met trypsine-EDTA, waardoor de pellet van de cellen intact. Voor de overdracht van de cellen tot 35 mm gerechten, voeg 1 mL M10 voor elk gerecht en vermaal om de cellen te scheiden. Voeg 1 ml van de geresuspendeerde cellen om elk gerecht. Incubeer cellen een nacht bij 37 ° C, 5% CO 2. <img src="/files/ftp_upload/2405/2405fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Coat 22 X 22 mm glas dekglaasjes met poly D lysine en plaats een gecoate zijde in elke 35 mm schaal. </li></ol> Dag 2: Transfectie van HEK293T cellen. <ol><li> 18-24 uur na de overdracht van de cellen zijn klaar voor transfectie van de receptor te worden getest. Gebruik receptor en RTP1S gekloneerd in zoogdieren expressievector PCI, bereid uit bacterieculturen gebruik van Qiagen Miniprep Kit volgende beschreven protocol vóór 4. Gebruik receptoren die terminaal N getagd met 20 aminozuren lang rhodopsine epitoop te immunokleuring te vergemakkelijken. </li><li> Gebruik 1000ng van receptor construct, 250 ng van RTP1S bouwen en 50 ng van de groene fluorescentie eiwit elke transfectie. Voer transfectie met behulp van Lipofectamine 2000, als per fabrikanten handleiding. </li></ol> Dag 3: immunocytochemie aan de celoppervlak-receptoren bevlekt te visualiseren. <ol><li> Voorafgaand aan het starten, voor te bereiden vlekken en wassen oplossingen en koel ze tot 4 ° C. Vlekken medium: Minimum Essential Medium, 45 ml; Fetal Bovine Serum, 5 ml; HEPES (1M), 500 pi (eindconcentratie 10mm); natriumazide (1.5M), 500 pi (eindconcentratie 15mm). Was de oplossing: HBSS, 500 ml; HEPES (1M), 5 ml (eindconcentratie 10mm); natriumazide (1.5M), 5 ml (eindconcentratie 15mm). Beide oplossingen kunnen worden opgeslagen bij 4 ° C voor hergebruik. Bereid door verdunning van antilichamen oplossingen vereist antilichamen in de kleuring medium 100-voudig. </li><li> Start immunochemie voor oppervlakte kleuring voor geurstof receptoren ongeveer 24 uur na transfectie. Om levende cellen kleuring, de experimentele set-up moet worden gekoeld tot 4 ° C uit te voeren: vul een grote bevatte met ijs en dep het oppervlak van ijs om het te maken zo gelijk mogelijk, plaats een dienblad op het ijs en spuit het met 70% ethanol. Knip een stuk parafilm (kleiner dan de lengte van de lade) en plak deze op de ethanol gespoten lade, om een ​​glad oppervlak te verkrijgen. Breng de glazen dekglaasjes met getransfecteerde cellen op de parafilm, een voor een, cel kant naar boven, met een pincet. Laag elk dekglas met 100 ul koude primaire kleuroplossing, extruderen voorzichtig vanuit een hoek van de slip (figuur 2). Nadat gelaagdheid van alle dekglaasjes met antilichaam oplossing, dek de bak om te voorkomen dat opdrogen van de oplossing in de lucht. Het uitvoeren van de primaire incubatie gedurende 45-60 minuten. </li><li> Na de lagere incubatie, snel overbrengen dekglaasjes naar de originele 35mm cultuur gerechten, met de media. Aspireren de media en voorzichtig voeg 2 ml gekoeld wasoplossing van de rand van de schotel tegen het verlies van cellen van het dekglas. Aspireren de wasoplossing en herhaal twee tot drie wasbeurten te voltooien. Aan het eind van de derde wassen, niet zuigen de wasoplossing uit. </li><li> Bereid secundair antilichaam solutiop in de kleuring media en breng de dekglaasjes van de was-oplossing naar een nieuw aangebracht parafilm laag in dezelfde lade. Weer voorzichtig extruderen 100 pi van antilichamen oplossing voor elke laag dekglas, vanaf de hoek, zoals de primaire incubatie. Het uitvoeren van secundaire incubatie gedurende 30 - 45 minuten en transfer terug naar de wasoplossing in de originele 35 mm gerechten. Eens te meer, was de dekglaasjes drie keer zo beschreven. </li><li> Aspireren wasoplossing van de laatste wasbeurt en voeg 2 ml 1% gekoeld paraformaldehyde. Fix cellen in gekoelde 1% paraformaldehyde oplossing, op ijs gedurende 15 minuten. </li><li> Monteer de dekglaasjes op schone microscoop glasplaatjes met behulp van montage reagens Mowiol, met de cel naar beneden en voorzichtig sluiten alle luchtbellen (figuur 3). Zodra Mowiol lucht wordt gedroogd, voorzichtig te wassen dekglaasjes door toevoeging van gedistilleerd water op het oppervlak en aspireren onmiddellijk. <img src="/files/ftp_upload/2405/2405fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Layer elk dekglaasje met 100 ul koude primaire kleuroplossing. <img src="/files/ftp_upload/2405/2405fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. De dekglaasjes beneden de berg met de cel kant op schoon glas microscoopglaasjes met behulp van Mowiol montage reagens. </li></ol> 2. Representatieve resultaten: Levende cellen vlekken in staat stelt een aan eiwitten op het oppervlak van cellen te visualiseren, op transfectie van receptoren met chaperonnes (in dit geval geurstof receptor Olfr62, met Receptor vervoeren Protein RTP1S) (figuur 4). Celoppervlak kleuring van receptoren wordt gekenmerkt door punctata patroon van de vlekken (Figuur 4B, inzet). Vlekken uitgevoerd ongepaste kan leiden tot een hogere ruis, waardoor het moeilijk is voor de waarnemer naar de echte oppervlakte vlekken te onderscheiden van lawaai. <img src="/files/ftp_upload/2405/2405fig4.jpg" alt="Figuur 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 4"> Figuur 4. Transfectie van receptoren met chaperonnes zorgt voor de visualisatie van eiwitten op het oppervlak van cellen met behulp van live cell vlekken. Transfectie van de geurstof receptor Olfr62 alleen (A) en transfectie van Olfr62 met RTP1S chaperone (B). GFP expressie niveaus dienen als een transfectie controle (A 'en B').

<ol><li>Buck, L., Axel, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+multigene+family+may+encode+odorant+receptors%3A+a+molecular+basis+for+odor+recognition%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A novel multigene family may encode odorant receptors: a molecular basis for odor recognition.</a> Cell. 65, 175-187 (1991).</li>
<li>Malnic, B., Hirono, J., Sato, T., Buck, L. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combinatorial+receptor+codes+for+odors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Combinatorial receptor codes for odors.</a> Cell. 96, 713-723 (1999).</li>
<li>Saito, H., Kubota, M., Roberts, R. W., Chi, Q., Matsunami, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RTP+family+members+induce+functional+expression+of+mammalian+odorant+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">RTP family members induce functional expression of mammalian odorant receptors.</a> Cell. 119, 679-691 (2004).</li>
<li>Zhuang, H., Matsunami, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluating+cell-surface+expression+and+measuring+activation+of+mammalian+odorant+receptors+in+heterologous+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Evaluating cell-surface expression and measuring activation of mammalian odorant receptors in heterologous cells.</a> Nat Protoc. 3, 1402-1413 (2008).</li>
</ol>

Elke stap moet worden uitgevoerd zorgvuldig te prominent en onderscheidend oppervlak vlekken zorgen. Het gehele kleuring proces moet worden uitgevoerd in koud (op ijs), en de lade waarop de dekglaasjes worden gelegd dient vooraf te worden gekoeld om te gebruiken om ervoor te zorgen cellen in leven te blijven. Bovendien fixatie wordt gedaan aan het eind van het oppervlak beitsen. Dit staat in schril contrast met de interne kleuren waar fixatie voorafgaat vlekken op de celmembraan permeabilize aan primaire en secundaire a...

<table><tbody><tr><td>Dekglas 22 X 22 mm (#1)</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>72200-11</td><td></td></tr><tr><td>Foetaal runderserum</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>16000</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Invitrogen</td><td>11668-019</td><td></td></tr><tr><td>Minimal essential medium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M4655</td><td>Met L-glutamaat, Earle&amp;rsquo;s zout en bicarbonaat</td></tr><tr><td>Mowiol</td><td>Calbiochem</td><td>475904</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde</td><td>EMS</td><td>19208</td><td></td></tr><tr><td>Hanks Balanced Salt Solution (HBSS) 1X </td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>14025</td><td>Met calciumchloride en magnesiumchloride</td></tr><tr><td>HEPES-bufferoplossing</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>15630</td><td></td></tr><tr><td>Phosphate Buffer Saline (PBS)</td><td>Cellgro</td><td>21-040-CV</td><td>Zonder calcium en magnesium</td></tr><tr><td>Poly-D-lysine hydrobromide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7280</td><td></td></tr><tr><td>Natriumazide</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>SX0299-1</td><td></td></tr><tr><td>Kweekschaal voor weefselcultuur 35 X 10 mm</td><td>Falcon BD</td><td>353801</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA </td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>25300</td><td>0.05%</td></tr></tbody></table>

het testen van oppervlakte-expressie van receptoren chemosensory in heterologe cellen

Assaying Surface Expression of Chemosensory Receptors in Heterologous Cells

De levendige wereld van geuren is erkend door het gevoel van reukzin. Reukzin bij muizen wordt gemedieerd door een repertoire van ongeveer 1200 G-eiwit gekoppelde receptoren (GPCR&#39;s) 1, die verondersteld dat vluchtige odorant moleculen binden en het omzetten van de extracellulaire signaal om in een intracellulaire signaal door koppeling met G-eiwit Gαolf. Binding van de geurstoffen aan de receptoren wordt beschouwd als een combinatorische regel, dat is een geurstof, kan binden verschillende receptoren en een receptor kan verschillende geurstoffen te binden in verschillende mate 2 te volgen. Biochemische, signalering en ligand binding studies zijn geschikt uitgevoerd voor de meeste GPCR&#39;s met behulp van heterologe cellen. Maar van heterologe cellen gebruiken voor de studie van odorant receptoren, was uitgesloten voor een lange tijd geleden op transfectie ze niet exporteren naar de oppervlakte. Saito et al. hebben aangetoond dat een membraan passeren Receptor Transport Protein (RTP) familie begeleiders verhoogde expressie zien in de olfactorische sensorische neuronen en treden op als begeleiders om het verkeer odorant receptoren aan de oppervlakte in heterologe cellen, bij gelijktijdige samen getransfecteerd 3. Voor het uitvoeren van biochemische assays voor het gebruik van heterologe receptoren cellen, moet men eerst nagaan of de receptor vertoont robuuste oppervlakte-expressie in de cel lijn. Dit kan worden getest door overexpressie van de receptoren met de begeleider RTP1S, gevolgd door live-cell kleuring om fluorescent label het extracellulaire domein of een tag in het extracellulaire domein exclusief. Hier laten we zien een protocol voor het uitvoeren van live cell vlekken die kunnen worden gebruikt om de geurstof receptoren gemakkelijk te detecteren op het oppervlak van HEK293T cellen. Daarnaast kan het ook worden gebruikt om de analyse voor oppervlakte-expressie van andere chemosensory receptoren of GPCR&#39;s.

Hier laten we zien een protocol voor het uitvoeren van live cell vlekken die kunnen worden gebruikt om de geurstof receptoren gemakkelijk te detecteren op het oppervlak van HEK293T cellen. Daarnaast kan het ook worden gebruikt om de analyse voor oppervlakte-expressie van andere chemosensory receptoren of GPCR&#39;s.

Het testen van oppervlakte-expressie van receptoren Chemosensory in heterologe cellen

De levendige wereld van geuren wordt waargenomen door het reukvermogen. Reuk bij muizen wordt gemedieerd door een repertoire van ongeveer 1200 G-proteïnegekoppelde receptoren ...

Het algemene doel van deze procedure is om aan te tonen hoe de oppervlakte-expressie van chemosensorische receptoren kan worden gedetecteerd met behulp van levende celkleuring in HEK 2 93 T-cellen; dit wordt bereikt door de cellen eerst op met poly-D-lysin gecoate dekglasjes in kweekschalen te plaatsen. De tweede stap van de procedure is het transfecteren van DNA in de HEK 2 93 T-cellen. De derde stap van de procedure is het uitvoeren van de levende celkleuring met behulp van primaire en fluoro four-geconjugeerde secundaire antilichamen.De laatste stap van de procedure is het fixeren van de gekleurde cellen en het plaatsen van dekglasplaatjes. Uiteindelijk kunnen resultaten worden verkregen die de lokalisatie van receptoren op het celloppervlak aantonen via immunofluorescentiemicroscopie. Deze methode stelt ons in staat om chemosensorische receptoren te detecteren die zijn getransporteerd naar het celloppervlak van heterologe cellen zoals HK 2 93 T. Een visuele demonstratie van deze methode zal de belangrijkste stappen aangeven die nauwkeurig moeten worden gevolgd om de cellen in leven te houden voor zelfkleuring van de cellen.Personen die nog niet bekend zijn met deze methode kunnen stappen zoals het overbrengen, hanteren en monteren van het dekglas lastig vinden. Met enige oefening wordt de techniek echter eenvoudig. Met een aangepast protocol dat gebruikmaakt van een cgen-kolom wordt het plasma-DNA van de receptor en de receptor gezuiverd. Voor immunokleuring zorgt het transporteren van proteïne RT TP one, gekloond in een expressievector PCI, ervoor dat de gecoate receptor terminaal is gelabeld met een 20 aminozuren lange row-epitope om de adhesie van de cellen te vergemakkelijken.Coat glazen dekglasjes met 1 mg/mL poly-D-lysine en plaats de dekglasjes met de gecoate zijde naar boven in 35 mm celluulteelkschalen om aan de lucht te laten drogen in de steriele laminaire flowkast. Plat HTK-2 93T-cellen uit tot een dichtheid van ongeveer 30% in 1 mL M10-medium, waarbij u ervoor zorgt dat er geen luchtbel tussen het dekglasje en de celluulteelkschaal gevangen raakt. Incubeer bij 37 °C en 5% CO2 gedurende 18 tot 24 uur. Bereid voor elke transfectie een DNA-mengsel van 1000 ng receptorconstruct, 250 ng RTP1s-construct en 50 ng GFP-construct.Transfect de cellen met lipectomy 2000 volgens de instructies van de fabrikant. Bereid het kleurmedium door natriumazide en hippies toe te voegen aan M 10. Dit kan gedurende enkele maanden bij vier graden Celsius worden bewaard.Bereid vervolgens een wasbuffer voor van 15 millimolair natriumazide en 10 millimolaire HEIS. In koude HBSS kan de wasbuffer gedurende enkele maanden bij vier graden Celsius worden bewaard. Om de kleuring in de koude lijn uit te voeren, wordt een plateau met parfum vijf minuten op ijs geplaatst.Breng de glazen dekglasjes met de cellen naar boven, die getransfecteerde cellen bevatten, over naar het paraform vanaf de hoek van het dekglasje. Voeg voorzichtig 100 µL koud primair antilichaam toe, verdund in kleuringsmedium. Incubeer gedurende 60 minuten bij kamertemperatuur. Was nu de cellen in de oorspronkelijke 35 millimeter kweekschalen door afwisselend koude wasoplossing toe te voegen en af te zuigen.Herhaal dit twee keer. Incubeer op dezelfde wijze het SI three geconjugeerde secundaire antilichaam gedurende 30 minuten. Voer drie keer wassingen uit in de 35 millimeter schaaltjes.Fixeer slut 이르cellen tot slot met een gekoelde 1% Paraformaldehyde-oplossing. Let er hierbij op dat er geen luchtbellen ontstaan. Monteer de dekglasjes met de celzijde naar beneden op microscopische objectglazen met behulp van mole; spoel het oppervlak van de dekglasjes met gedestilleerd water om zoutafzettingen te verwijderen.Over het algemeen, zoals bij de OL FFR 62 en RTP's, wordt een celoppervlakkleuring van receptoren gekenmerkt door een punctate verschijning van het fluorescentiesignaal van het geconjugeerde antilichaam. Zodra deze techniek beheerst is, kan deze worden gebruikt om 32 tot 40 dekglasjes te kleuren in slechts twee en een halve tot drie uur. Bij het uitvoeren van deze procedure met meerdere dekglasjes is het belangrijk om de overdracht en de start van de antilichaamincubatie per dekglasje te doen om te voorkomen dat de cellen uitdrogen.

assaying-surface-expression-chemosensory-receptors-heterologous

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Source: de March, C. A. et. al., Real-time In Vitro Monitoring of Odorant Receptor Activation by an Odorant in the Vapor Phase. J. Vis. Exp. (2019)This video demonstrates the method to monitor the real-time activation of odorant receptors in recombinant mammalian cells using luminescence measurement. Odorant binding triggers G-protein activation and cAMP production, activating glosensor proteins that emit luminescence upon substrate binding, providing a quantitative measure of receptor response.

Real-Time Monitoring of Odorant Receptor Activation in Recombinant Cells

Aanhoudende activering van remmende G-eiwit gekoppelde receptoren leidt tot een sensibilisering van adenylylcyclase signalering. Om de essentiële moleculaire pathways identificeren nonbiased stappen noodzakelijk zijn, maar deze strategie vereist de ontwikkeling van een schaalbare celgebaseerde cAMP overgevoeligheid assay. Hierin beschrijven we een overgevoeligheid test voor kleine moleculen en siRNA screening.

Drug-geïnduceerde Overgevoeligheid van adenylylcyclase: Assay stroomlijning en miniaturisatie voor Small Molecule en siRNA screening Toepassingen

Olfactorische receptor activering patronen coderen geur identiteit, maar het gebrek aan gepubliceerde gegevens identificeren geurstof liganden voor zoogdieren reukreceptoren belemmert de ontwikkeling van een alomvattend model van geur codering. Dit protocol beschrijft een werkwijze voor zeer snelle identificatie van olfactorische receptor liganden en kwantificering van receptoractivering vergemakkelijken.

High-throughput analyse van zoogdieren reukreceptoren: Meting van de Receptor Activering via Luciferaseactiviteit

Karakterisering van de functie van odorant receptoren serveert een onmisbaar onderdeel in het proces van deorphanization. Beschrijven we een methode voor het meten van de activering van odorant receptoren in real time via een kamp assay.

Live-cel meting van Odorant Receptor activering met behulp van een Real-time cAMP Assay

Een facile fluorescentie-bepaling is bedoeld om te evalueren van de doeltreffendheid van amino-acyl-tRNA-synthetase/tRNA paren integratie van niet-canonieke aminozuren (ncAAs) in eiwitten uitgedrukt in zoogdiercellen. De toepassing van ncAAs op het bestuderen van de G-eiwit gekoppelde receptoren (GPCRs) wordt beschreven, met inbegrip van foto-crosslinking toewijzing van bindende sites en bioorthogonal GPCR etiketten op levende cellen.

Optimaliseren van de genetische opneming van chemische sondes in GPCRs voor foto-crosslinking kartering en Bioorthogonal scheikunde in levende cellen van zoogdieren

Fysiologisch, worden odorant receptoren geactiveerd door odorant moleculen in de fase van de damp ingeademd. Echter, meest in vitro systemen gebruiken vloeibare fase odorant stimulatie. Hier presenteren we een methode waarmee in vitro bewaking in real-time van odorant receptor activering op odorant stimulatie in damp fase.

Real-Time In Vitro Monitoring van Odorant Receptor activering door een Odorant in de damp-fase

Dit artikel presenteert een methode voor de studie van glutamaat receptor (glur) handel in gezien primaire hippocampal culturen. Met behulp van een antilichaam-voedende benadering voor het etiket van endogene of overexpressie receptoren in combinatie met farmacologische benaderingen, deze methode maakt het mogelijk voor de identificatie van moleculaire mechanismen regulering van GluR oppervlakte expressie door modulerende processen voor internalisatie of recycling.

Een aanpak van antilichamen voeding te bestuderen glutamaat receptor handel in Dissociated primaire Hippocampal culturen

Hier presenteren we een geoptimaliseerd protocol om snel en semiquantitatief ligand-receptor interacties in trans te meten in een heterologe celsysteem met behulp van fluorescentiemicroscopie.

Transcellulaire interacties meten via eiwitaggregatie in een heterologe celsysteem

Het artikel beschrijft de methoden en reagentia die nodig zijn om hybridisatiekettingreactie-RNA, whole-mount fluorescentie in situ hybridisatie (HCR, RNA, WM-FISH) uit te voeren om inzicht te krijgen in de ruimtelijke en cellulaire resolutie van chemosensorische receptorgenen in de muggenantenne en maxillaire palp.

Hybridisatie Kettingreactie RNA Whole-Mount Fluorescentie In situ Hybridisatie van chemosensorische genen in olfactorische aanhangsels van muggen

Dit protocol beschrijft expressie en kwantificatie van neuronale nicotinische acetylcholinereceptoren met behulp van de zoogdier-Neuro-2a-cellijn. pH-gevoelige fluorescentielabels en confocale microscopie maken een nauwkeurige evaluatie mogelijk van receptorlokalisatie bij het plasmamembraan ten opzichte van die in pH-neutrale intracellulaire compartimenten, wat de studie van nAChR-transport en farmacologische modulatie vergemakkelijkt.

Lokalisatie van plasmamembraan en intracellulaire neuronale nicotinische acetylcholinereceptoren met behulp van kwantitatieve beeldvorming in zoogdiercellen

Leer hoe je oppervlakte-expressie van chemosensorische receptoren detecteert in HEK293T-cellen met live cell staining en immunofluorescentie-microscopie. Deze methode is essentieel voor neurobiologisch onderzoek.

Het testen van oppervlakte-expressie van receptoren Chemosensory in heterologe cellen

Meer video's verkennen