19 april 2011
Een eenvoudige en efficiënte methode te transformeren Physcomitrella pantens Protoplasten is beschreven. Deze methode is een bewerking van protocollen voor Physocmitrella Protonemal protoplast en Arabidopsis Bladmoes protoplast transformatie 1.
Het algemene doel van deze procedure is om SCO Metre Protoplasten te transformeren. Dit wordt bereikt door de planten eerst te verteren met Drizly. Vervolgens worden de protoplasten gewassen met mannitol om de drizly te verwijderen en vervolgens geïncubeerd met DNA en peg.
Ten slotte worden de getransformeerde protoplasten op plaatjes verspreid en geïncubeerd. Uiteindelijk kunnen resultaten worden verkregen. Die laten getransformeerde protoplasten zien die fluorescentiegelabelde eiwitten tot expressie brengen door middel van fluorescentiemicroscopie. De procedure zal worden gedemonstreerd door Y lu, een postdoc uit mijn laboratorium.
Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het effectief is en consistent protoplasten genereert die het eiwit van belang tot expressie brengen. Om mos Protoplasten te isoleren, begint u met het toevoegen van negen milliliter 8% mannitol in een petrischaal met behulp van een spatel. Plaats vijf tot zeven dagen oud mos van twee tot drie PP NH vier platen in de mannitol. Raadpleeg het bijbehorende schriftelijke protocol voor dit en aanvullende reagensrecepten. Voeg vervolgens drie milliliter 2% drizly toe en incubeer bij kamertemperatuur met zacht schudden gedurende één uur.
Filter de mixtuur door 100 micron gaas om een groene homogene suspensie te verkrijgen. Draai vervolgens het filtraat gedurende vijf minuten op 250 G. Gooi het supernatant heel voorzichtig weg.
Resuspendeer de protoplasten in 500 microliter 8% mannitol. Voeg vervolgens nog eens 9,5 milliliter 8% mannitol toe. Zorg ervoor dat de protoplasten volledig gesuspendeerd zijn.
Voer de wasstappen nog twee keer uit door de oplossing opnieuw te draaien bij 250 G gedurende vijf minuten. Gooi het supernatant weg en resuspendeer de protoplasten. Eerst in 500 microliter.
Vervolgens 9,5 milliliter 8% mannitol met behulp van een hemo cytometer. Tel het aantal protoplasten in 10 microliter van de suspensie om DNA te transformeren in de geïsoleerde protoplasten. Draai eerst de protoplastenmixtuur gedurende vijf minuten op 250 G.
Verwijder het supernatant, resuspendeer de protoplasten bij 1,6 miljoen per milliliter in MMG oplossing. Incubeer de suspensie bij kamertemperatuur gedurende 20 minuten. Voeg vervolgens 600 microliter van de Protoplasten oplossing toe in een kweekbuisje met 60 microgram DNA. Schud.
Voeg voorzichtig 700 microliter PEG calcium oplossing toe en schud. Incubeer het monster goed gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur gedurende deze wachttijd. Bedek PRMB platen met cellofaan.
Verdun vervolgens de suspensie met drie milliliter W vijf oplossing, draai gedurende vijf minuten op 250 G. Om de PEG te verwijderen, resuspendeer de protoplasten in twee milliliter PRMT plaat één milliliter per PRMB plaat bedekt met cellofaan. Bewaar de platen op 25 graden Celsius in een groeikamerbe.
Ten slotte, vier dagen na transformatie, verplaats de cellofaan naar verse selectie platen. Deze figuur toont een voorbeeld van 18 dagen oude planten geregenereerd uit protoplasten, getransformeerd met 15 microgram supergespiraliseerd plasma DNA, dat een hygromycine weerstandscassette draagt. Hier werden 30 microgram van dezelfde supergespiraliseerde plasmide DNA getransformeerd in protoplasten.
60 microgram plaid DNA werd in dit monster getransformeerd. En tenslotte werden deze planten geregenereerd uit protoplasten die werden getransformeerd met 120 microgram van dezelfde supergespiraliseerde plasma DNA die de hygromycine weerstandscassette draagt. De transformatie-efficiëntie wordt niet beïnvloed door DNA concentraties tot 60 microgram.
Hogere concentraties DNA zijn echter nadelig voor deze procedure. De gegevens geven aan dat deze methode consistente resultaten levert over een breed bereik van DNA hoeveelheden Eens semester. Deze techniek kan in drie uur worden uitgevoerd als deze goed wordt uitgevoerd.
Na dit proces kunnen aanvullende methoden zoals transient RNAi en gen knock-outs worden uitgevoerd om aanvullende vragen over genfunctie te beantwoorden.
Dit artikel beschrijft een eenvoudige en efficiënte methode voor het transformeren van protoplasten van Physcomitrella patens. De techniek is aangepast op basis van bestaande protocollen voor protoplastentransformatie en is erop gericht om consistent succesvolle resultaten te produceren.
PEG-gemedieerde transformatie van Physcomitrella patens-protoplasten maakt efficiënte en reproduceerbare genoverdracht mogelijk, wat high-throughput functionele genomica in plantensystemen ondersteunt. Deze mogelijkheid is essentieel voor vroege discovery-teams die genfuncties willen onderzoeken, targets willen valideren en de Pathway-elucidatie in een genetisch hanteerbaar model willen versnellen. De schaalbaarheid en het potentieel voor standaardisatie van deze methode maken haar waardevol voor genetische screening op portfolioniveau en mechanistische risicoreductie.
Dit transformatieprotocol past binnen het continuüm van vroege ontdekking tot lead-identificatie en maakt genetische manipulatie, target-validatie en assay-ontwikkeling in plantmodellen mogelijk.