Name: High-density EEG-registraties van de vrij bewegende muizen met behulp van Polyimide op basis van micro-elektrode (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-11T21:10:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: Leer hoe u een polyimide-gebaseerde micro-elektrode-array implanteert op de schedel van een muis voor hoogdichtheids-EEG-registraties. Deze chirurgische methode verbetert de kwaliteit van elektrofysiologische data-acquisitie in neurowetenschappelijk onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ondersteund door KIST Grant (2E21510), Nationaal Honor Scientist programma van het Ministerie van Onderwijs, en de originele Technology Research Program for Brain Science door de National Research Foundation van Korea gefinancierd door het Ministerie van Onderwijs, Wetenschap en Technologie (2010 tot 0018944).

1. Overzicht C57BL/6J - 129S4/SvJae hybride muizen (12 ~ 15 weken oud) zijn verdoofd met ketamine (120 mg / kg ip) en xylazine (6 mg / kg, ip) cocktail. Staart of teen knijpen vooraf aan de operatie om de diepte van de anesthesie te inspecteren. De muis is vastgesteld door stereotaxische apparatuur (David Kopf Instruments, Model 902, Calif, USA). De hoofdhuid wordt ingesneden op de middellijn ongeveer 25 mm op de schedel bloot onder de lidocaïne behandeling voor vermindering van de pijn. Eventueel vuil op de schedel wordt geveegd door de zoutoplossing gedrenkte katoen tips om de hechting van de elektrode om de schedel te verbeteren. De bregma en lambda punten worden gemarkeerd en in hetzelfde horizontale vlak. De polyimide op basis van micro-elektrode array (PBM-array) is zodanig geplaatst dat de verticale middellijn van de middellijn van de schedel voldoet. De bregma punt moet worden gevestigd in het midden van de 5 e laag van de voorste van de PBM-array. Twee of drie microscrews worden gebruikt bij de nul ruimte in de rand van de schedel te helpen beveiligen van de positie van de elektrode met tandheelkundige cement. Voor stutten de PBM-array-aansluiting, hebben we de positie van een stut op het midden van het hoofd, en dek deze af met tandheelkundige cement. Na uitharding is de ingesneden huid gehecht, en ten minste 5 dagen worden gegeven voor herstel. Tijdens het herstel, zijn de muizen ondergebracht in afzonderlijke kooien met vrije toegang tot voedsel en water. Na het herstel, is het EEG-registratie uitgevoerd. Verzorging van dieren, chirurgische, en opnemen van procedures waren in overeenstemming met de richtlijnen voor de Institutionele Animal Care en gebruik Comite, na Act 1992 van de Korea Lab Animal Care verordeningen en bijbehorende richtlijnen. De PBM-arrays in dit manuscript werden gefabriceerd zoals beschreven door Choi. et. Al. 1 Neem contact op met de auteurs om dezelfde PBM-array te gebruiken in de video. 2. Procedure <ol><li> Bereid de gesteriliseerde chirurgische instrumenten en apparaten stereotaxische. </li><li> Verdoven van de muis met anesthesie (bijv. ketamine / xylazine met een dosis van 120 en 60 mg / kg ip, repectively). Staart of teen knijpen vooraf aan de operatie om de diepte van de anesthesie te inspecteren. </li><li> Monteer de muis op de stereotaxische apparaat door het plaatsen van oor bars in het oor van de muis kanaal en aanscherping op zijn plaats. De ogen kunnen worden bekleed met biocompatibele jelly (bijvoorbeeld vaseline) om de ogen niet uitdrogen door de operatie licht. Na vochtinbrengende van de muis het hoofd met 70% ethanol, scheren de vacht uit zijn hoofd. </li><li> Incise het hoofd ongeveer 25 mm met een hoofdhuid. Het is aan te bevelen om een ​​kleine hoeveelheid van 2% toe te passen lidocaïne hydrochloride onder de hoofdhuid. Knijp de huid met micro-klemmen (Fine Science Tools (USA), Inc, 18052-03, Calif, USA) om de incisie wijd open. </li><li> Veeg het resterende weefsel puin op de schedel met een zoutoplossing gedrenkte wattenstaafjes hechting van de PBM-array te verbeteren aan de schedel. Het gebruik van peroxide voor het verwijderen van het residu van het membraan is ook effectief. </li><li> Zoek de bregma en lambda punten op de schedel, en markeer ze met een basis van olie marker pen. Plaats de PBM-array, zodat de verticale middellijn voldoet aan de middellijn van de schedel zoals weergegeven in figuur 1. Plaats de bregma in het midden van de 5e laag van de voorste van de PBM-array met een druppel kraanwater. Wattenstaafje de film elektrode uit de mediaal naar lateraal zorgvuldig voor een betere hechting. Om de film te elektrode stok strakker om de schedel te helpen, moet de film elektrode helemaal droog op de schedel. De film elektrode moet nog worden vastgesteld op de schedel van Van der Waals kracht. Wanneer de elektrode herpositionering, een andere druppel leidingwater is nodig om de elektrode te voorkomen dat gescheurd. <img src="/files/ftp_upload/2562/2562fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. (Links) Een PBM-array op de muis schedel. De Voorwandinfarct-posterior as van PBM-array komt overeen met de lijn tussen bregma (BP) en lambda punten (LP). (Rechts) De vermeende elektrode posities op de hersenen van muizen oppervlak. De anatomie van de muis zijn gesegmenteerd van de 3-D MRI digitale atlas database van een volwassen C57BL/6J muizenhersenen geproduceerd in Brookhaven National Lab en de elektrode locaties zijn gemarkeerd volgens de stereotaxische meting. Grond (G) en referentie (Ref) elektroden zijn aangegeven in de figuur rechts. </li><li> Mark ten minste drie posities op de open ruimte van de schedel, en dan gaten in die locaties met behulp van een tandartsboor voor de positionering van de ondersteunende microscrews. Deze microscrews hebben een rol van scepter en mechanisch ondersteunen de tandheelkundig cement op de schedel. Extra voorzichtigheid is nodig tijdens het boren. Omdat de muis schedel bestaat uit dunne lagen, kunnen bloedingen zich gemakkelijk voordoen tijdens het boren. Bij het bloeden gebeurt, stop boren en breng een kleine hoeveelheid poeder hemostatische in het gat. </li><li> Breng de tandheelkundige acryl cement (Vertex-Dental, Vertex Self-Curing, Nederland) aan de PBM-array, anker schroeven, en de rest van de schedel te dekken. Bereid de tandheelkundige cement in een lijmachtige en visceuze condition. </li><li> Plaats een stijve stok als een stut op het midden van de kop met sterke lijm (bijvoorbeeld, Loctite, Henkel Loctite Corp, Dublin, Ierland). Zet dubbelzijdige plakband op de achterkant van de connector vliegtuig. Manipuleren van de PBM-array connector positie te verbinden met de punt van de veerpoot. De verticale afstand tussen de schedel en de connector moet meer zijn dan 5 mm. Plak de connector vliegtuig en de punt van de stok met sterke lijm voor een betere hechting. </li><li> Zorg ervoor dat de tandheelkundige cement volledig is uitgehard. Breng vervolgens de tandheelkundige acryl cement over de schedel en de achterkant van de connector vliegtuig aan op de connector aan de schedel te beveiligen. </li><li> Verwijder de micro-klemmen. Hechtdraad ingesneden huid met gesteriliseerd stiksels vezels. Haal de muis uit het apparaat. U van toepassing kunnen zijn extra tandheelkundige acryl cement om de blootgestelde schedel schild. Breng een antibioticum (Fucidin zalf, Dong Wha Apotheek, Zuid-Korea) rond de cement-en gehecht huid. </li><li> Plaats de muis in een gesteriliseerde kooi tot hij hersteld in de oorspronkelijke lichaamsgewicht (ongeveer 5 tot 7 dagen). Het wordt aanbevolen om geen kooi vrienden te introduceren. </li><li> Na herstel, sluit u de muis door een licht-gewicht printed circuit board (PCB) aan op de stofoploop van een multikanaals EEG-versterker systeem (Synamps 2, North Carolina, USA) in zijn eigen kooi. De verbindende lijnen moeten voorzichtig behandeld worden zodat het niet verstrikt raken. </li><li> Na 1 uur van gewenning, uitvoeren EEG opname. Scan 4.4. (North Carolina, VS) acquisitie software werd gebruikt in dit experiment. Een typische tijd trace set van de muis EEG is weergegeven in figuur 2. Het wordt aanbevolen om de video te loggen op het gedrag van de muis betrekking hebben. </li><li> Verkregen signaal kan worden geanalyseerd met behulp van MATLAB (MathWorks, Natick, MA, USA) om de topografische kaart hersenen produceren. Voorbeeld topografieën van EEG de macht kaart van muizenhersenen zijn weergegeven in figuur 3. </li></ol> 3. Representatieve resultaten Als de bovenstaande chirurgische procedures correct zijn uitgevoerd, zal 40 kanalen muis EEG-registratie met succes worden uitgevoerd zonder slecht kanalen. Volgende afbeeldingen tonen de vertegenwoordiger van ruwe EEG sporen en topografische kaarten. <img src="/files/ftp_upload/2562/2562fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Een voorbeeld van een spoor van EEG ervaren afwezigheid beslag geïnduceerd door middel van injectie γ-butyrolacton (GBL, 50mg/kg, ip). Rode balk geeft aan spike-wave-en ontladingen (SWDs) tijdens de afwezigheid aanval. De horizontale en verticale assen geven aan tijd en spanning, respectievelijk. Het nummer volgt het kanaal montage gedefinieerd in figuur. Een (rechts). <img src="/files/ftp_upload/2562/2562fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. De topografische kaarten geven de 2-6 Hz distributie. De waarde in de colorbar vertegenwoordigt de kleur schaal van de macht kaart. Tijdens de spike-wave-en ontladingen (SWDs) veroorzaakt door γ-butyrolacton (GBL, 50mg/kg, ip), de kracht in de grote frontoparietal corticale gebieden aanzienlijk toenemen in vergelijking met de kracht voordat GBL injectie (Baseline).

<ol><li>Choi, J. H., Koch, K. P., Poppendieck, W., Lee, M., Shin, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+Electroencephalography+in+Freely+Moving+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurophysiol%22%5BJournal%5D)">High resolution Electroencephalography in Freely Moving Mice.</a> J Neurophysiol. , Forthcoming.</li>
<li>Lee, M., Shin, H. S., Choi, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+recording+of+brain+activity+and+functional+connectivity+in+the+mouse+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Conf+Proc+IEEE+Eng+Med+Biol+Soc%22%5BJournal%5D)">Simultaneous recording of brain activity and functional connectivity in the mouse brain.</a> Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. , 2934-2936 (2009).</li>
</ol>

Hier rapport chirurgische en het opnemen van procedures om high-density EEG verwerven in vrij bewegende muizen. Deze methode stelt ons in staat om functionele brein kaarten te verkrijgen van de muis model om de moleculaire mechanismen van spontane ritmische 1,2 of event related hersenactiviteit te bestuderen. Overname van alle kanalen in de PBM-array is een noodzakelijke voorwaarde om hele brein in kaart brengen van te krijgen, maar het maken van een veilige contactpersoon voor elk kanaal is zeer uitdagend. Voor een duurzaam behoud consistente contact van het kanaal naar de schedel, zijn de volgende procedures die te vinden te zijn belangrijk. In de eerste plaats kan een weefsel puin op de schedel uit elkaar van de elektrode van de schedel. Daarom is het zeer belangrijk om de weefselstukjes te verwijderen met wattenstaafjes gesteriliseerd en opdrogen van de schedel oppervlak. Ten tweede, het vermogen van PBM-array die kan vasthouden aan de schedel oppervlak van der Waals kracht. Er wordt voorgesteld om een ​​druppel leidingwater op de schedel om water te laag te bouwen toe te passen voordat een PBM-array van toepassing op de schedel. Ten derde, de juiste viscositeit van tandheelkundige cement is erg belangrijk. Als het te vloeibaar is, kan een isolerende laag uit hoofde van de PBM-array. Als het te dicht, zal de tandheelkundige cement gemakkelijk uit elkaar vallen van de schedel door zijn eigen gewicht. Ten slotte moet ten minste drie ondersteunende microscrews worden ingeplant op de schedel aan de tandheelkundige cement strak gebonden aan de schedel te maken. De ondersteunende microscrews houden de tandheelkundige cement en zet de headstage, die essentieel is voor de lange termijn te bestuderen. De toepassing van PBM-array zal worden beperkt tot chronische studie met volwassen muizen door zijn grootte en gewicht. Gebaseerd op onze ervaring, muizen zwaarder dan 25 gram voldoende zijn om te gebruiken. Als verdere toepassingen, door de null ruimte tussen vestigingen in onze PBM-array, kan men invoeren secundaire elektroden voor opname of stimulatie doel.

<table><tbody><tr><td>&amp;#947;butyrolacton</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H7629-500G</td><td></td></tr></tbody></table>

high-density eeg-registraties van de vrij bewegende muizen met behulp van polyimide op basis van micro-elektrode

High-density EEG Recordings of the Freely Moving Mice using Polyimide-based Microelectrode

Elektro-encefalogram (EEG) geeft de gemiddelde elektrische activiteit van de neuronale populaties op grote schaal niveau. Het wordt algemeen gebruikt als een niet-invasieve brain controle-instrument in de cognitieve neurowetenschappen en een diagnostisch hulpmiddel voor epilepsie en slaapstoornissen in de neurologie. Echter, het onderliggende mechanisme van de EEG ritme generatie is nog onder de sluier. Recent geïntroduceerde polyimide-gebaseerde micro-elektrode (PBM-array) voor hoge resolutie muis EEG 1 is een van de onderzoeken naar de neurofysiologische vragen over EEG-signalen op basis van een rijke genetische hulpbronnen, dat de muis model bevat voor de analyse van complexe EEG generatie proces te beantwoorden. Deze toepassing van nanofabricated PBM-array voor muis-schedel is een efficiënt hulpmiddel voor het verzamelen van op grote schaal hersenactiviteit van transgene muizen en biedt aan de neurale correlaten om bepaalde EEG ritmes herkennen in combinatie met gedrag. Toch zijn ultra-dunne dikte en gespleten structuur leiden tot een probleem in de behandeling en implantatie van PBM-array. In de gepresenteerde video, zijn de voorbereiding en de operatie stappen voor de implantatie van PBM-array op een muis schedel stap voor stap beschreven. Behandeling en chirurgie tips om onderzoekers te helpen te slagen in de implantatie zijn ook aanwezig.

In dit artikel beschrijven we de chirurgische ingreep en behandeling tips voor implantatie van ultra-dunne polyimide-op basis van micro-elektrode array (PBM-array) in de muis schedel voor de aankoop van high-density encefalografie (EEG) in een muismodel.

High-density EEG-registraties van de vrij bewegende muizen met behulp van Polyimide op basis van micro-elektrode

Een elektro-encefalogram (EEG) geeft de gemiddelde elektrische activiteit van neuronale populaties op grote schaal weer. Het wordt veelvuldig gebruikt als een ...

Hallo, ik ben Mina Lee van het Gen Choice Laboratory in het Center for Neuroscience bij het Korea Institute of Science and Technology. Vandaag demonstreer we de conditie van high density EG in het mass model met een poly-gebaseerde micro-elektrodearray. De procedure omvat het klaarmaken van de instrumenten, het voorbereiden van de dieren voor de chirurgie en het uitvoeren van stereotactische chirurgie.Na de operatie voeren we een EEG-registratie uit en analyseren we vervolgens de gegevens. Laten we beginnen. Stel vóór aanvang van de operatie de stereotactische instrumenten en alle benodigde materialen klaar.De omgeving moet schoon zijn. Bereid de muis voor op de operatie. Ik zal de operatie van vandaag demonstreren met een 17 weken oude basic six black six J 1 29 s four S-V-J-A-E hybride muis.We kunnen ook muizen gebruiken die zwaarder zijn dan 25 gram. Anestheseer de muis via een IP-injectie van een cocktail bestaande uit 120 milligram per kilogram ketamine en zes milligram per kilogram xylazine. Knijp voorzichtig in de staart van de muis om te controleren of de muis voldoende diep geanestheseerd is om met de operatie te beginnen.Om de operatie te beginnen, monteer het dier in het stereotaxische apparaat. Plaats de oorstaven één voor één in de gehoorgang van de muis en draai deze vast. Breng wat methanol aan op de kop en scheer vervolgens het haar van de kop.Injecteer en maak een anterieur-posterieure incisie van tussen de ogen tot tussen de oren en de schedel. Knijp de huid van de muis samen met microklemmen om de incisie wijd open te houden. Verwijder alle resterende weefsels of membranen van de schedel met de gesteriliseerde wattenstaafjes.Plaats de markeerstift boven het hoofd. Markeer de BMA-lambdapunten. Verwijder vervolgens de markeerstift en markeer de punten met een fijne pen.Precies op het juiste punt. De kern. Breng de filmelektrode boven het hoofd en breng een druppel T-water aan op de schedel.Plaats de BMA in het midden van de vijfde laag van de Ontario van de poly best micro-elektrode array. Verwijder de film voorzichtig van mediaal naar lateraal met wattenstaafjes gedrenkt in gedestilleerd water. Wacht enkele minuten tot het volledig is gedroogd.Dit helpt bij een betere hechting. Zet drie markeringen met een pen op oliebasis in de overgebleven ruimte. Op deze markeringen zullen worden geboord.Wees zeer voorzichtig bij het boren van de gaten om te voorkomen dat de binnenkant wordt geraakt. Plaats de drie steriele stelschroeven op de schedel en draai ze aan tot ze stevig vastzitten. Meng een dikke batch vloeibaar tandcement en bedek hiermee de schroeven van de filmelektroden en de rest van de schedel.Maak een nieuwe batch en gebruik deze om de elektrode volledig te bedekken. Maak de schroeven opnieuw vrij om deze vast te zetten. Onthoud dat deze man zich niet onder de filmelektrode mag bevinden.Plaats een dubbele markering met tape op de achterkant van het connectorvlak. Bevestig een stevige stok als beugel op het midden van de schedel met een sterke lijm. In het experiment van vandaag gebruik ik de punt van een wattenstaafje voor deze stap met de stok; manipuleer de positie van de connector naar achteren tot deze contact maakt met de punt van het wattenstaafje.De afstand tussen de schedel en de connector moet meer dan vijf millimeter zijn. Bevestig het vlak van de connector aan de punt van het wattenstaafje met een sterke lijm. Bedek het overige open oppervlak met acrylaatcement.Verwijder na het uitharden van het cement de klemmen en roer aan de huid. Haal de muis uit de parus en dek de extra ruimte af. Breng met acrylaat tandcement antibiotisch natrium-ate aan rondom het cement en het hechtingsgebied.Plaats de muis in een eigen kooi en laat het dier vijf dagen herstellen. Sluit de muis aan op het EEG, start de opstelling en geef meer dan een uur de tijd voor habituatie. Voer na een uur de EEG-registratie uit; wij voerden de acquisitie van high-density EEG in een muismodel uit met een poly-gebaseerde micro-elektrodenarray.Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat de film electro Tri voorzichtig moet worden gehanteerd, omdat deze slechts zeven micrometer dik is. A, een druppel kraanwater is noodzakelijk wanneer u de elektrode herplaatst. Als u deze stap overslaat, kan de elektrode gemakkelijk draaien; zorg er bovendien voor dat acryl dentals met een hoge viscositeit niet onder de film doordringt.Na de opname voeren we een offline analyse uit met meth lab om verschillende hersengrafieken te tekenen voor een duidelijke visualisatie van de hersenactiviteit bij muizen. Dit zijn de representatieve multichannel EEG-signalen na GBL-injectie. Op het linkerpaneel ziet u de representatieve multichannel EEG-signalen na GBL-injectie op het rechterpaneel.Er worden hersentopografische kaarten gepresenteerd, zoals de gemiddelde vermogenstijdsvertraging, de gemiddelde pieksterkte en de gemiddelde waarschijnlijkheidskaart van het begin van de insulten. Dat is alles. Bedankt voor het kijken.

high-density-eeg-recordings-freely-moving-mice-using-polyimide-based

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

The video demonstrates the injection of mesh electronics probes into a mouse brain for stable long-term recordings at a single-neuron level. An anesthetized mouse with an exposed skull is secured on a stereotaxic frame, and the probe's mesh device region is injected into the brain through drilled holes. The probe's input-output pads are connected to a circuit, and recordings are obtained using a data acquisition system.

Injectable Mesh Electronics for Stable Single-Neuron Recordings in a Mouse Brain

Het begrijpen van de neurale substraten van gedrag vereist ensemble-opname van hersencircuits. Vanwege zijn genetische toepasbaarheid, biedt de muis een model voor het dissekeren van circuits en het nabootsen van ziekten. Hier wordt een methode beschreven voor het ontwerpen en fabriceren van geminiaturiseerde sondes die geschikt zijn voor het targeten van diepe hersenstructuren bij de muis.

Ontwerp en de fabricage van Ultralight Gewicht, verstelbare Multi-elektrode Probes voor elektrofysiologische registraties in Muizen

We presenteren methoden voor de constructie van elektroden om gelijktijdig extracellulaire neurale activiteit op te nemen en meerdere neuroactieve stoffen in de buurt van de opnameplaatsen bij wakkere muizen vrij te geven. Deze techniek maakt de gedetailleerde analyse van veronderstelde lokale synaptische input naar de belangrijke neuron mogelijk.

Extracellulaire van neuronale activiteit Gecombineerd met Microiontophoretic Toepassing van neuroactive stoffen in Awake Muizen

Instructies voor de goedkope constructie en chirurgische implantatie van een chronische transcraniële hoog-dichtheid elektro-encefalografische montage in muizen worden gegeven. Technieken voor signaalregistratie, extractie en verwerking worden ook beschreven.

High-density Elektro-Aankoop in een knaagdier Model met behulp van goedkope en Open-source Resources

We ontwierpen een droog-type 16 kanaals EEG sensor die niet-invasief, vervormbare en opnieuw bruikbaar is. Dit witboek beschrijft het gehele proces van productie de voorgestelde EEG elektrode signaal verwerking van visual evoked potentieel (VEP) signalen op een muis-hoofdhuid met behulp van een droge niet-invasieve multi-kanaals EEG sensor gemeten.

Visual Evoked potentiële opnamen in muizen met behulp van een niet-invasieve meerkanaals droge hoofdhuid EEG Sensor

Hier presenteren we een protocol aan record telemetrische electroencephalograms (hersenfotos) van de vrij bewegende biggen rechtstreeks in het varkenshok zonder het gebruik van een kalmerend middel, waardoor het mogelijk is graag typische EEG patronen tijdens non - REM-slaap, zoals spindel barst.

Noninvasive EEG opnamen vrij bewegen biggen

Het protocol beschrijft de methodologie van extracellulaire opname in de motorische cortex (MC) om extracellulaire elektrofysiologische eigenschappen te onthullen bij vrij bewegende bewuste muizen, evenals de gegevensanalyse van lokale veldpotentialen (LFP's) en spikes, wat nuttig is voor het evalueren van de neurale activiteit van het netwerk die ten grondslag ligt aan interessant gedrag.

Meerkanaals extracellulaire opname in vrij bewegende muizen

Een goedkoop elektro-encefalografisch registratiesysteem in combinatie met een millimetergrote spoel wordt voorgesteld om transcraniële magnetische stimulatie van het muizenbrein in vivo aan te sturen. Met behulp van conventionele schroefelektroden met een op maat gemaakt, flexibel, multi-elektrode arraysubstraat, kan multi-site opname worden uitgevoerd vanuit het muizenbrein als reactie op transcraniële magnetische stimulatie.

Goedkoop elektro-encefalografisch opnamesysteem gecombineerd met een millimetergrote spoel om het muizenbrein in vivo transcraniaal te stimuleren

Hier presenteren we twee protocollen voor de registratie van micro-elektrocorticografie met hoge dichtheid (μEcoG) bij ratten en muizen, inclusief chirurgische, implantatie- en registratiemethoden. μECoG-opnames worden uitgevoerd in combinatie met laminaire polytrode-opname in de auditieve cortex van de rat of met optogenetische manipulatie van neurale activiteit in de somatosensorische cortex van de muis.

Multischaalonderzoek van corticale verwerking door integratie van laminaire polytrodes en optogenetica met micro-elektrocorticografie bij knaagdieren

Dit protocol is ontwikkeld om een betrouwbaar en gemakkelijk toegankelijk systeem te creëren voor het registreren van vrij bewegende EEG van knaagdieren.

Een kosteneffectief en minimaal invasief protocol voor chronische multi-site elektro-encefalografie-opname bij vrij bewegende muizen

Leer hoe u een polyimide-gebaseerde micro-elektrode-array implanteert op de schedel van een muis voor hoogdichtheids-EEG-registraties. Deze chirurgische methode verbetert de kwaliteit van elektrofysiologische data-acquisitie in neurowetenschappelijk onderzoek.

High-density EEG-registraties van de vrij bewegende muizen met behulp van Polyimide op basis van micro-elektrode

Meer video's verkennen