13 februari 2011
Beschrijven we een protocol om te observeren en cel-rollen trajecten te analyseren op asymmetrische receptor-patroon substraten. De resulterende gegevens zijn nuttig voor de engineering van receptor-patroon substraten voor label-free cell scheiding en analyse.
Dit protocol observeert en analyseert de rolltrajecten van cellen op asymmetrische receptorpatronen om de ontwikkeling van receptorpatroon-substraten voor labelvrije cellscheiding en -analyse te faciliteren. Begin met het microcontactprinten van PEG-moleculen op een gouden substraat om afwisselende patronen van zelfgeassembleerde monolagen te creëren, gevolgd door het opvullen van het substraat met P-selectine-receptoren. Integreer vervolgens het substraat in de flowkamer. Laat de HL 60-cellen door de kamer stromen.
Neem een beeldsequentie op van de rollende interactie van HL 60-cellen op P-selectinepatronen en analyseer de beelden die uit de video zijn geconverteerd. De trajecten van de rollende celrand, de trackinglengte en de rollingsnelheden op het vlak, de regio en de rand kunnen worden verkregen met behulp van een MATLAB-programma. Deze methode kan inzicht verschaffen in hoe HO 60-cellen bewegen op asymmetrische receptorpatronen in een shear-flow.
Dit kan worden toegepast voor het kwantificeren van andere interacties aan het celoppervlak, directe analyse van de cellen door hun trajecten op receptorpatronen te observeren, en voor het ontwerp van micro-footing-apparaten voor celscheiding. Microcontactprinten wordt gebruikt om afwisselende patronen van zelfgeassembleerde monolagen van peg-moleculen op het gouden substraat te creëren.
Inkteer eerst de PDMS-stempel met een vijf millimolaire PEG-oplossing in ethanol. Laat het oppervlak 20 minuten drogen. Plaats de stempel voorzichtig gedurende 40 seconden op het goudoppervlak en zorg ervoor dat er een goed contact is tussen het goudoppervlak en de stempel.
Er is geen overdruk vereist. Spoel het oppervlak met ethanol en droog dit onder een stroom stikstof. Gebruik nu een perfusiekamer om de substraten drie uur lang bij kamertemperatuur te incuberen met een 15 µg/mL P-selectine oplossing om de overige gebieden te patroneren met P-selectine, spoel de kamer, en vul de oppervlakken vervolgens gedurende één uur aan met 1 mg/mL BSA om aspecifieke interacties te blokkeren.
Spoel het oppervlak af met DPBS-buffer voordat het celrollexperiment wordt uitgevoerd. Assembleer de doorstroomkamer en laat vervolgens een suspensie van 10⁵ cellen per milliliter HL 60-cellen over de patroonoppervlakken in een rechthoekige doorstroomkamer stromen, waarbij de receptorpatronen een hellingshoek van 10 graden hebben.
Bij een kamertemperatuur van 24,5 °C. Stel de spuitpomp in om een stroomsnelheid van 75 µL per minuut te genereren met een overeenkomstige laminaire schuifspanning van 0,5 dyn/cm². Leg nu met een omgekeerde microscoop en een gemonteerde camera het rollen van HL 60 vast.
Interacties met adhesieve p-selectine en substraten. Gebruik een 4x objectief met een snelheid van één frame per seconde gedurende 300 seconden. Voer drie onafhankelijke experimenten uit.
Presenteer de gegevens als het gemiddelde en de standaarddeviatie van de gemiddelde waarden die uit elk experiment zijn verkregen. Microscopiebeelden zijn geconverteerd vanuit de video van HL 60.Rolling. Interacties met adhesieve p-selectine en substraten tonen heldere en donkere regio's die respectievelijk overeenkomen met p-selectinereceptoren en PEG-regio's.
Sporen worden hier afgebakend met behulp van een aangepast MATLAB-programma. De hellingshoek van de rand was 10 graden en de schuifspanning was 0,5 dines per vierkante centimeter. Verdere analyses zijn gebaseerd op de distributie van de lengte van de randsporing, de gemiddelde waarde van de lengte van de randsporing, evenals VE en VP, de rolsnelheden op de rand en binnenin de banden.
Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u de celbanen op de asymmetrische receptorpatronen kunt onderzoeken.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol observeert en analyseert celroltrajecten op asymmetrische receptorpatronen om de ontwikkeling van substraten met receptorpatronen voor labelvrije celscheiding en -analyse te faciliteren.
Inzicht in de rolltrajecten van cellen op asymmetrische receptorpatronen maakt het rationele ontwerp van labelvrije microfluïdische scheidingsapparaten mogelijk. Dit protocol levert kwantitatieve gegevens over de randvolglengte en de rol-snelheid onder een gedefinieerde schuifspanning, wat voorspellende modellering van celgedrag in stroming ondersteunt. Dergelijke inzichten verminderen de empirische iteratie bij het ontwerpen van apparaten voor celzuivering en workflows voor fenotypische analyse.
De methode past binnen de vroege ontdekkingsfase om assay-ontwikkeling en de generatie van preklinische tools te ondersteunen, in het bijzonder voor targets waarbij adhesie onder stroming een functionele readout is.