13 februari 2011
Beschrijven we een protocol om te observeren en cel-rollen trajecten te analyseren op asymmetrische receptor-patroon substraten. De resulterende gegevens zijn nuttig voor de engineering van receptor-patroon substraten voor label-free cell scheiding en analyse.
Dit protocol observeert en analyseert celroltrajecten op asymmetrische receptorpatronen om de ontwikkeling van receptorpatroon-substraten voor labelvrije scheiding en analyse van cellen te faciliteren; begin met microcontactprinten van PEG-moleculen op een gouden substraat om afwisselende patronen van zelfgeassembleerde monolagen te creëren, gevolgd door het opvullen van het substraat met P-selectine-receptoren. Integreer vervolgens het substraat in de flowkamer. Voer de HL 60-cellen de kamer in.
Registreer een beeldsequentie van de rollende interactie van HL 60-cellen op P-selectinepatronen en analyseer de beelden die uit de video zijn geconverteerd. De trajecten van de rollende celranden, de trackinglengte en de rollingsnelheden op het vlak, in de regio en aan de rand kunnen worden verkregen met behulp van een MATLAB-programma. Deze methode kan inzicht verschaffen in hoe HO 60-cellen bewegen op asymmetrische receptorpatronen in een shearflow.
Dit kan worden toegepast voor het kwantificeren van andere interacties op het celoppervlak, directe analyse van cellen door hun trajecten op receptorpatronen te observeren, en voor het ontwerp van micro-footing apparaten voor celscheiding. Microcontactdruk wordt gebruikt om afwisselende patronen van zelfgeassembleerde monolagen van peg-moleculen op het gouden substraat te creëren.
Inkt eerst de PDMS-stempel met een 5 mM PEG-oplossing in ethanol. Laat het oppervlak 20 minuten drogen. Plaats de stempel voorzichtig gedurende 40 seconden op het goudoppervlak en zorg voor een goed contact tussen het goudoppervlak en de stempel.
Er is geen overdruk vereist. Spoel het oppervlak met ethanol en droog dit onder een stroom stikstof. Incubeer nu de substraten met behulp van een perfusiekamer gedurende drie uur bij kamertemperatuur met een P-selectine-oplossing van 15 µg/mL om de overige gebieden te patroonvormen met P-selectine, spoel de kamer vervolgens en vul de oppervlakken aan met 1 mg/mL BSA gedurende één uur om aspecifieke interacties te blokkeren.
Spoel het oppervlak met DPBS-buffer voordat het cell rolling-experiment wordt uitgevoerd. Assembleer de flowkamer en laat vervolgens een suspensie van 10⁵ cellen per milliliter HL 60-cellen over de patroonoppervlakken in een rechthoekige flowkamer stromen, met inclinatiehoeken van 10 graden voor het receptorpatroon.
Bij een kamertemperatuur van 24,5 °C. Stel de spuitenpomp zo in dat er een stroomsnelheid van 75 µL per minuut wordt gegenereerd met een corresponderende laminaire schuifspanning van 0,5 dyn/cm². Registreer nu het rollen van HL 60 met een omgekeerde microscoop en een gemonteerde camera.
Interacties met adhesieve p-selectine en substraten. Gebruik een 4x objectief met een snelheid van één frame per seconde gedurende een periode van 300 seconden. Voer drie onafhankelijke experimenten uit.
Presenteer de gegevens als het gemiddelde en de standaarddeviatie van de gemiddelde waarden die uit elk experiment zijn verkregen. Microscoopbeelden zijn geconverteerd vanuit de video van HL 60.Rolling. Interacties met adhesieve p-selectine en substraten tonen heldere en donkere regio's die respectievelijk overeenkomen met de p-selectine receptor en de PEG-regio's.
De sporen worden hier afgebakend met behulp van een aangepast MATLAB-programma. De hellingshoek van de rand was 10 graden en de schuifspanning bedroeg 0,5 dines per vierkante centimeter. Verdere analyses richten zich op de distributie van de lengte van de randsporing, de gemiddelde waarde van de lengte van de randsporing, alsofzoals VE en VP, de rolgebaarsnelheden op de rand en binnenin de banden.
Na het bekijken van deze video heeft u een goed begrip van hoe u de celbanen op de asymmetrische receptorpatronen kunt onderzoeken.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit protocol observeert en analyseert celroltrajecten op asymmetrische receptorpatronen om de ontwikkeling van substraten met receptorpatronen voor labelvrije celscheiding en -analyse te faciliteren.
Inzicht in de rolltrajecten van cellen op asymmetrische receptorpatronen maakt het rationele ontwerp van labelvrije microfluïdische scheidingsapparaten mogelijk. Dit protocol levert kwantitatieve gegevens over de randvolglengte en de rol-snelheid onder een gedefinieerde schuifspanning, wat voorspellende modellering van celgedrag in stroming ondersteunt. Dergelijke inzichten verminderen de empirische iteratie bij het ontwerpen van apparaten voor celzuivering en workflows voor fenotypische analyse.
De methode past binnen de vroege ontdekkingsfase om assay-ontwikkeling en de generatie van preklinische tools te ondersteunen, in het bijzonder voor targets waarbij adhesie onder stroming een functionele readout is.