Name: Tekening Bloed van Ratten via de v. saphena en door Cardiac punctie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-08-23T00:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 27 s
Description: Leer twee bloedafnamemethoden bij ratten: de vena saphena en hartpunctie. Deze technieken zijn essentieel voor farmacokinetisch onderzoek en minimaliseren dierenleed tijdens het verzamelen van monsters.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Tekening Bloed van Ratten via de v. saphena en door Cardiac punctie Let op: Alle procedures moeten worden goedgekeurd door dier uw instituut de zorg en het gebruik van commissie. 1. Bloed te trekken uit de vena ader <ol><li> Deze procedure wordt uitgevoerd zonder verdoving en moet door twee personen, een die zorgt voor de rat, en een die verricht de trekking. </li><li> Maak een kegel uit een handdoek of houd de rat met een knaagdier omgang handschoenen, het verlaten van een achterste ledematen blootgesteld. </li><li> Scheren van de achterkant van het been met een elektrische trimmer totdat de vene zichtbaar is. Shave een groot genoeg gebied, zodat er geen haren in contact komen met de prikplaats. Gebruik een kleine hoeveelheid niet-geurende lotion de hand aan de niet-geschoren haar weg te houden van de prikplaats. </li><li> Maak een compressie-punt aan de onderkant van het been naar de vena ader uitpuilen (vergelijkbaar met het gebruik van een tourniquet bij het opstellen bloed van een mens of een groot dier) te maken. Prik de ader met behulp van een 20G naald en schep het bloed als het gaat met behulp van een microvette. Pompen met het been zal helpen trekken meer bloed. Als je voldoende bloed verzameld, het bezit van een schoon kompres op de prikplaats om het bloeden te stoppen. </li></ol> 2. Bloed af te nemen door het hart doorboren <ol><li> Deze procedure vereist anesthesie en is terminal. Dieren moeten onmiddellijk worden gedood aan het einde van een cardiale lekke band. </li><li> Bereid een 5 ml spuit met een naald 23G1. </li><li> Diep anesthesize de rat en controleer voor anesthesie door het ontbreken van spontane beweging, trage ademhaling, en het uitblijven van een reactie op prikkels (zoals knijpen een teen). Om ervoor te zorgen langdurige anesthesie, plaats een spuit met een papieren handdoek gedrenkt in vluchtige anesthetica op de neus van de rat tijdens de procedure. </li><li> Leg de rat op zijn rug, van u af. </li><li> Als u rechtshandig bent, plaats je linker wijsvinger op het niveau van de laagste ribben, zonder toepassing van enige druk. Het hart zal worden gevestigd ~ 1 cm boven dit punt, iets naar rechts. </li><li> Het houden van uw spuit op een hoek van 45 graden, steek de naald tussen twee ribben en kijk uit naar een druppel bloed te komen in de naald. Dit is een indicatie dat u zich in het hart. Zonder dat je je spuit, trek aan de zuiger om de spuit te vullen. Zodra de spuit vol is, voorzichtig los te koppelen van de naald en maak het leeg in een buis. De spuit kan dan opnieuw worden bevestigd aan de naald voor het tekenen van meer bloed. Het moet mogelijk zijn tot 5-10 ml bloed trekken uit een 120 tot 180 g rat. </li><li> Meteen laten inslapen van de rat. </li></ol>

<ol><li>Van Herck, H., Baumans, V., Brandt, C. J. W. M., Boere, H. A. G., Hesp, A. P. M., Van Lith, H. A., Schurink, M., Beynen, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sampling+from+the+retro-orbital+plexus%2C+the+saphenous+vein+and+the+tail+vein+in+rats%3A+comparative+effects+on+selected+behavioural+and+blood+variables%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Blood sampling from the retro-orbital plexus, the saphenous vein and the tail vein in rats: comparative effects on selected behavioural and blood variables.</a> Laboratory Animals. 35, 131-139 (2001).</li>
<li>Luzzi, M., Skoumbourdis, E., Baumans, V., Conte, A., Sherwin, C., Kerwin, A., Lang, T., Morton, D., Barley, J., Moreau, E., Weilenmann, R. F., Reinhardt, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collecting+blood+from+rodents%3A+a+discussion+by+the+laboratory+animal+refinement+and+enrichment+forum%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Technology+and+Welfare%22%5BJournal%5D)">Collecting blood from rodents: a discussion by the laboratory animal refinement and enrichment forum.</a> Animal Technology and Welfare. 4, 99-102 (2005).</li>
<li>Angelow, O., Schroer, R. A., Heft, S., James, V. C., Noble, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+two+methods+of+bleeding+rats%3A+the+venous+plexus+of+the+eye+versus+the+vena+sublingualis%5BTitle%5D)+AND+%22Jounal+of+Applied+Toxicology%22%5BJournal%5D)">A comparison of two methods of bleeding rats: the venous plexus of the eye versus the vena sublingualis.</a> Jounal of Applied Toxicology. 4, 258-260 (2006).</li>
<li>Beeton, C., Wulff, H., Barbaria, J., Clot-Faybesse, O., Pennington, M., Bernard, D., Cahalan, M. D., Chandy, K. G., Beraud, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+blockade+of+T+lymphocyte+K%2B+channels+ameliorates+experimental+autoimmune+encephalomyelitis%2C+a+model+for+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad%22%5BJournal%5D)">Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis.</a> Proc. Natl. Acad. , 13942-13947 (2001).</li>
<li>Beeton, C., Pennington, M. W., Wulff, H., Singh, S., Nugent, D., Crossley, G., Khaytin, I., Chen, C. Y., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+effector+memory+T+cells+with+a+selective+peptide+inhibitor+of+Kv1.3+channels+for+therapy+of+autoimmune+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Targeting effector memory T cells with a selective peptide inhibitor of Kv1.3 channels for therapy of autoimmune diseases.</a> Mol. Pharmacol. , 1369-1381 (2005).</li>
<li>Beeton, C., Wulff, H., Standifer, N. E., Azam, P., Mullen, K. M., Pennington, M. W., Kolski-Andreaco, A., Wei, E., Grino, A., Counts, D. R., Wang, P. H., LeeHealey, C. J., Andrews, B. S., Sankaranarayanan, A., Homerick, D., Roeck, W. W., Tehranzadeh, J., Stanhope, K. L., Zimin, P., Havel, P. J., Griffey, S., Knaus, H. G., Nepom, G. T., Gutman, G. A., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kv1.3+channels+are+a+therapeutic+target+for+T+cell+mediated+autoimmune+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Kv1.3 channels are a therapeutic target for T cell mediated autoimmune diseases.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. , 17414-17419 (2006).</li>
<li>Beeton, C., Barbaria, J., Devaux, J., Benoliel, A. -M., Gola, M., Sabatier, J. -M., Bernard, D., Crest, M., Beraud, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+blocking+of+voltage-gated+K%2B+channels+treats+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+and+inhibits+T-cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation.</a> J. Immunol. , 936-944 (2001).</li>
<li>Devaux, J., Forni, C., Beeton, C., Barbaria, J., Beraud, E., Gola, M., Crest, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myelin+basic+protein-reactive+T+cells+induce+conduction+failure+in+vivo+but+not+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Myelin basic protein-reactive T cells induce conduction failure in vivo but not in vitro.</a> Neuroreport. , 317-320 (2003).</li>
<li>Beeton, C., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+and+monitoring+of+adoptive+delayed+type+hypersensitivity+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Induction and monitoring of adoptive delayed type hypersensitivity in rats.</a> Journal of Visualized Experiments. 8, (2007).</li>
</ol>

Tekening bloed uit de vene is een handige manier om kleine hoeveelheden bloed te krijgen zonder verdoving. Als herhaald bemonstering noodzakelijk is, controleer regelgeving om ervoor te zorgen u niet al te veel bloed trekken uit een rat. Tekening bloed door hart-prik is een handige manier om grote hoeveelheden bloed te krijgen, maar dit is een terminal procedure. Het dier moet worden gedood aan het einde van het bloed te trekken. Deze technieken (zoals alle technieken op levende dieren) moet eerst worden gedaan in de aanwezi...

<table><tbody><tr><td>Naald 20G 1/2</td><td>Instrument</td><td>BD Biosciences</td><td>305176</td><td>Voor het puncteren van de vena saphena</td></tr><tr><td>Microvette 300</td><td>Instrument</td><td>Sarstedt Ltd</td><td>20.1308.100</td><td>Voor het afnemen van bloed uit de vena saphena</td></tr><tr><td>Elektrische trimmer</td><td>Instrument</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>CLP-32130</td><td></td></tr><tr><td>Naald 23 G 1</td><td>Instrument</td><td>BD Biosciences</td><td>305145</td><td>Voor hartpunctie</td></tr><tr><td>5 ml plastic spuit, slip tip</td><td>Instrument</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-826-12</td><td>Voor hartpunctie</td></tr></tbody></table>

tekening bloed van ratten via de v. saphena en door cardiac punctie

Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture

Tekening bloed van knaagdieren is noodzakelijk voor een groot aantal zowel in vitro als in vivo studies. Sites van het bloed trekt talrijk zijn in knaagdieren: retro-orbitale sinus, halsader, kaak ader, vene, hart. Elke techniek heeft zijn voor-en nadelen, en sommige zijn niet goedgekeurd niet meer in sommige landen (bijvoorbeeld retro-orbitale trekt in Nederland). Een bespreking van verschillende technieken voor het tekenen van het bloed zijn verkrijgbaar 1-3. Hier presenteren we twee technieken voor het tekenen van bloed van ratten, elk met hun specifieke toepassingen. Bloed trekken uit de vena ader, mits het goed wordt gedaan, induceert minimale leed bij dieren en vereist geen verdoving. Deze techniek maakt herhaalde trekt van kleine hoeveelheden bloed, zoals nodig is voor farmacokinetisch onderzoek 4,5, het bepalen van plasma chemie, of het bloedbeeld 6. Cardiale punctie staat de inzameling van grote hoeveelheden bloed van een enkel dier (tot 10 ml bloed kunnen worden getrokken uit een 150 g rat). Deze techniek is daarom erg nuttig als een terminal procedure bij het opstellen bloed uit de vena zou niet een voldoende grote steekproef. We maken gebruik van cardiale lekke band toen we nodig hebben voldoende hoeveelheden van serum van een specifieke stam van ratten aan T-lymfocyten lijnen groeien in vitro 4-9.

Het bloed trekt nodig zijn in een groot aantal studies, bijvoorbeeld om de farmacokinetiek profiel van een verbinding studie. Hier laten we zien hoe om bloed te trekken uit ratten met behulp van twee technieken: het bloed te trekken uit de vena ader of door het hart doorboren.

Tekening Bloed van Ratten via de v. saphena en door Cardiac punctie

Het afnemen van bloed bij knaagdieren is noodzakelijk voor een groot aantal zowel in vitro als in vivo studies. De locaties voor bloedafname bij knaagdieren zijn talrijk: ...

Hallo, ik ben Christine Beaton. Ik ben assistent-onderzoeker in het lab van George Chen bij de afdeling Fysiologie en Biofysica aan de University of California in Irvine. En in de video die u nu gaat bekijken, krijg ik hulp van Adriana Garcia, een promovendus in het laboratorium.Ik ga u twee technieken laten zien voor het afnemen van bloed bij ratten. De eerste techniek die we zullen laten zien is hoe u bloed afneemt uit de vena saphena. Dit is een zeer nuttige techniek als u kleine hoeveelheden bloed van een rat wilt afnemen zonder anesthesie.Bijvoorbeeld wanneer u een farmacokinetische studie uitvoert, waarbij kleine hoeveelheden bloed nodig zijn die op regelmatige intervallen worden afgenomen. De tweede techniek die we zullen demonstreren is bloedafname via een hartpunctie. Dit is een terminale techniek, waardoor de rat aan het einde van de bloedafname moet worden geëuthanaseerd.Het voordeel van deze techniek is echter dat er veel grotere hoeveelheden bloed kunnen worden verkregen, namelijk enkele milliliters. Zodra we het gebied hebben voorbereid, brengen we een gewone huidlotion aan, voornamelijk om te voorkomen dat er losse haren in de tube terechtkomen en het bloed laten sto

drawing-blood-from-rats-through-saphenous-vein-cardiac

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Chronische catheterisatie van de bloedvaten in de rat is vaak nodig voor de toediening van stoffen, het verkrijgen van bloed steekproef over een periode van tijd of voor directe bewuste bloeddrukmetingen. Femorale arteriële catheterisatie van de rat en de bijbehorende metingen van de bloeddruk in de bewuste dier zal worden aangetoond.

Femorale arteriële en veneuze catheterisatie voor bloedafname, Drug Administration en bewust Bloeddruk en hartslag metingen

Bloedmonsters zijn nuttig voor het beoordelen van biomarkers van fysiologische toestanden of ziektes in vivo. Hier beschrijven we de methodologie om bloed te bemonsteren uit de laterale staarsafvoerende ader bij de rat. Deze methode levert snelle monsters met minimale pijn en invasiviteit.

Bloedafname van de Lateral staartader van de Rat

Hier beschrijven we een eenvoudige staart veneuze bloedmonsters methode bij niet-verdoofd ratten met behulp van een systeem van de buisjes opzuigen. Deze methode vermindert het risico van directe blootstelling aan bloed en vereenvoudigt meerdere bemonstering van een enkele Venapunctie.

Herhaald bloedinzameling van staart ader van niet-verdoofd ratten met een systeem voor het verzamelen van vacuüm bloed

Hier presenteren we een protocol voor het verzamelen van bloedmonsters van de rat subclavian ader.

Subclavian ader punctie als een alternatieve methode van bloed monster collectie bij ratten

Gedetailleerde microchirurgische technieken zijn aangetoond om een langerlopend jugulair aderkannulatieratmodel vast te stellen voor sequentiële bloedafname bij hetzelfde dier. Fysiologische en hematologische parameters zijn gecontroleerd tijdens de herstelfase van de rat. Dit model is toegepast om de farmacokinetiek van oraal toegediend polyfenol te bestuderen zonder stress bij dieren te veroorzaken.

Microchirurgische vaardigheden voor het vaststellen van permanente jugulaire ader cannulatie bij ratten voor seriële bloedafname van oraal toegediend geneesmiddel

Het huidige protocol beschrijft een eenvoudige en efficiënte methode voor de real-time en dynamische verzameling van rattenhartbloed met behulp van de microdialysetechniek.

Dynamische continue bloedextractie uit het rattenhart via niet-invasieve microdialysetechniek

Hier presenteren we een protocol om snelle, eenvoudige en betrouwbare alternatieven voor bloedafname te bieden voor het rattenmodel. We beschrijven drie verschillende bloedafnamemethoden, afhankelijk van de context: staartaderpunctie onder anesthesie of op een bewust dier en dorsale penisaderpunctie onder anesthesie.

Gemodificeerde staartader en penisaderpunctie voor bloedafname in het rattenmodel

Hier presenteren we een combinatie van effectieve rattenbeperking en subclavia-aderpunctiemethoden die snelle, veilige en herhaalde bloedafname bij ratten zonder verdoving mogelijk maken.

Bloedafname van subclavia-aderen bij bewuste ratten

Subclavia-cardiale punctie is een eenvoudige, betrouwbare methode om terminaal bloed bij muizen af te nemen. Het is eenvoudig te bedienen en zorgt voor monsters van hoge zuiverheid.

Bloedafname van het hart via subclavia-punctie bij muizen

De Amerikaanse degenkrab, Limulus polyphemus, is misschien wel de meest handige bron voor grote hoeveelheden bloed van een ongewervelde. Het bloed is eenvoudig in samenstelling, met slechts een cel-type in de algemene circulatie, de granulaire Amebocyte, en slechts drie overvloedige eiwitten in het plasma, hemocyanine, de C-reactieve proteïnen en α2-macroglobuline. Bloed wordt verzameld vanuit het hart en het bloed cellen en plasma worden gescheiden door centrifugeren.

Bloedafname van de Amerikaanse Horseshoe Crab, Limulus Polyphemus

Leer twee bloedafnamemethoden bij ratten: de vena saphena en hartpunctie. Deze technieken zijn essentieel voor farmacokinetisch onderzoek en minimaliseren dierenleed tijdens het verzamelen van monsters.

Tekening Bloed van Ratten via de v. saphena en door Cardiac punctie

Meer video's verkennen