Name: Nauwkeurige en eenvoudige meting van de pro-inflammatoire cytokine IL-1β met behulp van een volbloed stimulatie Assay (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-01T18:45:00.000+00:00
Duration: 6 min 29 s
Description: Leer een eenvoudige immunoassay om pro-inflammatoire cytokines, met name IL-1β, te meten in patiënten met autoinflammatoire fenotypen. Deze methode gebruikt LPS-stimulatie van volbloedculturen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit onderzoek werd ondersteund door de Intramurale Research Program van het Nationaal Instituut van artritis en spier-en huidziekten van de National Institutes of Health.

1. Het verzamelen van volbloed <ol><li> Verkrijgen van een minimum van 10 ml perifeer bloed uit de getroffen zowel individuen als leeftijd en geslacht gematchte gezonde controles. Veneus bloed moet worden verzameld in natrium Vacutainer bloedafnamebuisjes, in plaats van het gebruik van andere anticoagulantia zoals EDTA, en omgekeerd een paar keer een goede mengsel met de natrium-heparine te verzekeren. Merk op dat 10 ml is het minimale volume van de volbloed die nodig zijn voor plating monsters in duplo voor deze test. </li><li> De monsters moeten zo snel mogelijk verwerkt worden na inzameling voor de beste resultaten. Echter, gehepariniseerd bloed worden bewaard bij kamertemperatuur onder dim verlichting voor maximaal 24 uur tot klaar om te worden verwerkt (2). </li></ol> 2. Voorbereiding van de volbloed <ol><li> Centrifuge alle bloedmonsters bij 3000 toeren per minuut (met rem uitgeschakeld) gedurende tien minuten bij kamertemperatuur. Zonder de buffy coat, kan het plasma worden afgehaald bij de top en opgeslagen voor andere experimentele doeleinden. Plasma monsters kunnen tijdelijk worden opgeslagen bij -20 ° C of -80 ° C voor lange termijn opslag </li><li> Zodra plasma wordt verzameld, gewassen monsters door resuspenderen de rode bloedcellen (RBC) pellet en buffy coat met serum vrij (onvolledige) RPMI 1640 media (bij omgevingstemperatuur). Voorzichtig pipet het mengsel in de collectie buizen en over te dragen aan een 50 ml conische buis. </li><li> Volume tot 50 ml met onvolledige RPMI 1640 media cultuur en voorzichtig de buizen om een ​​homogeen mengsel te creëren omkeren. Centrifugeer monsters bij 3000 toeren per minuut (met rem uitgeschakeld) gedurende tien minuten. Ervoor zorgen dat er een duidelijke scheiding, zuig het supernatant, zorg dat u de buffy coat verstoren. Herhaal deze procedure 2-4 keer om ervoor te zorgen dat alle verontreinigingen en gebonden cytokines voorafgaand worden verwijderd om de stimulatie. </li><li> Na de laatste wasbeurt, zodat resuspendeer de RBC pellet en buffycoat dat het totale volume is 20 ml (voor 10 ml van volbloed in eerste instantie getrokken) met onvolledige RPMI 1640 media. Het totale volume kan worden aangepast op basis van het volume van het bloed in eerste instantie getrokken. </li><li> Met behulp van de Cellometer Vision, kan verdund bloed worden geteld zonder lyseren RBC's door te kiezen voor de witte bloedcellen optie met acridine oranje (AO). Voeg een deel verdund bloed met een deel AO en de belasting 20 pi van de 1:1 mengsel in een wegwerp-telkamer. De uiteindelijke concentratie van AO na verdunning moet worden 1μg/mL. </li><li> Dienovereenkomstig aan te passen met onvolledige RPMI 1640 media tot een uiteindelijke concentratie cel van 2,0 x 10 6 cellen / ml. </li></ol> 3. Stimulatie van volbloed <ol><li> De test vereist een minimum van vier voorwaarden (elke opgemaakt in tweevoud): ongestimuleerde, toevoeging van LPS alleen, toevoeging van ATP alleen, en tot slot LPS plus ATP bij elkaar opgeteld. Voeg 1 ml van de bereide 2,0 x 10 6 cellen / ml verdund volbloed in de juiste putje van een 24-well weefselkweek plaat. </li><li> De stimulerende middelen moet worden opgelost en getogen op kamertemperatuur voor het begin van de stimulatie test. Gevriesdroogde LPS en ATP moet worden gereconstitueerd volgens de instructies van de fabrikant. Na reconstitutie, kan LPS en ATP verder worden verdund om een ​​goede voorraad concentratie met behulp van onvolledige RPMI 1640 media. </li><li> Voeg LPS aan de LPS alleen als de LPS plus ATP goed zodat de uiteindelijke werking concentratie van LPS is 1 ug / ml. De totale stimulatie tijd is 3 uur. Echter, is volbloed gestimuleerd met LPS gedurende 2 uur en 40 minuten. Monsters moeten worden geplaatst in een incubator bij 37 ° C en 5% CO 2. </li><li> ATP is toegevoegd gedurende de resterende 20 minuten van de 3 uur stimulatie periode. Voeg ATP aan de ATP alleen en de LPS en ATP goed en plaats monsters in incubator. De uiteindelijke werking concentratie van ATP is 2 mm. </li><li> Na de drie uur incubatietijd, het verzamelen van supernatantia door aliquoting elk monster in een 1,5 ml microcentrifugebuis en vervolgens gecentrifugeerd monsters op 10000 rpm gedurende 2 minuten bij kamertemperatuur. Breng de bovenstaande vloeistoffen naar een andere set van 1,5 microcentrifuge buizen. </li><li> Monsters kunnen direct worden getest of tijdelijk opgeslagen bij -20 ° C of -80 ° C voor opslag op lange termijn. </li></ol> 4. Cytokine Assay <ol><li> Monsters die worden bevroren moeten op kamertemperatuur evenwicht voor de analyse. Cytokine concentraties voor IL-1βcan worden beoordeeld met behulp van verschillende methoden. We maken gebruik van de Bio-plex Pro menselijk cytokine x-plex test met de Bio-Plex 200 systeem, volgens de instructies van de fabrikant. In dit protocol zijn wij specifiek op het meten van IL-1β, maar we gebruiken deze multiplex cytokine test om gelijktijdig meerdere cytokinen te meten in een test met het voordeel van het gebruik van een kleine steekproef volume. </li></ol> 5. Representatieve resultaten Analyse van de IL-1β de productie op een succesvolle stimulatie met LPS en ATP toont een doe-se antwoord afhankelijk van het aantal cellen wordt gestimuleerd. We hebben ontdekt dat 2,0 x 10 6 cellen / ml is een voldoende concentratie om een optimale en meetbare concentratie van IL-1β evenals andere cytokines (figuur 2) te produceren. Volbloed assays zijn nuttig bij het bestuderen van patiënten die aanwezig zijn met autoinflammatory manifestaties. Deze patiënten kunnen vertonen een defect in het aangeboren immuunsysteem, dat kan worden gekenmerkt door overproductie van IL-1β (in vergelijking met controles) na stimulatie met LPS alleen (figuur 3). <img src="/files/ftp_upload/2662/2662fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Representatief beeld van de AO kleuring voor kernhoudende witte bloedcellen wordt gebruikt om de cel concentratie te bepalen in verdunde volbloedmonsters. <img src="/files/ftp_upload/2662/2662fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. IL-1β gemeten productie in volbloed supernatanten van een gezonde donor na stimulatie met LPS op het vergroten van cel-concentraties. Monsters werden getest in drievoud. <img src="/files/ftp_upload/2662/2662fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Representatieve resultaten van IL-1β secretie gemeten in volbloed supernatanten van twee gezonde normale controles en twee patiënten met IL-1β-geassocieerde autoinflammatory manifestaties.

<ol><li>Martinon, F., Mayor, A., Tschopp, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+inflammasomes%3A+guardians+of+the+body%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The inflammasomes: guardians of the body.</a> Annu Rev Immunol. 27, 229-265 (2009).</li>
<li>Thurm, C. W., Halsey, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+cytokine+production+using+whole+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Immunol%22%5BJournal%5D)">Measurement of cytokine production using whole blood.</a> Curr Protoc Immunol. 66, 7-18 Forthcoming.</li>
<li>Mariathasan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryopyrin+activates+the+inflammasome+in+response+to+toxins+and+ATP%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cryopyrin activates the inflammasome in response to toxins and ATP.</a> Nature. 440, 228-232 (2006).</li>
<li>Gabay, C., Lamacchia, C., Palmer, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-1+pathways+in+inflammation+and+human+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Rheumatol%22%5BJournal%5D)">IL-1 pathways in inflammation and human diseases.</a> Nat Rev Rheumatol. 4, 232-241 (2010).</li>
<li>Franchi, L., Elgenbrod, T., Muñoz-Planillo, R., Nuñez, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+inflammasome%3A+a+caspase-1-activation+platform+that+regulates+immune+responses+and+disease+pathogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">The inflammasome: a caspase-1-activation platform that regulates immune responses and disease pathogenesis.</a> Nat Immunol. 3, 241-247 (2009).</li>
<li>Sims, J. E., Smith, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+IL-1+family%3A+regulators+of+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">The IL-1 family: regulators of immunity.</a> Nat Rev Immunol. 2, 89-102 (2010).</li>
<li>Haug, R., Joø, G. B., Westvik, A. B., Kierulf, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemokine+production+and+pattern+recognition+receptor+%28PRR%29+expression+in+whole+blood+stimulated+with+pathogen-associated+molecular+patterns+%28PAMPs%5BTitle%5D)+AND+%22Cytokine%22%5BJournal%5D)">Chemokine production and pattern recognition receptor (PRR) expression in whole blood stimulated with pathogen-associated molecular patterns (PAMPs.</a> Cytokine. 32, 304-315 (2005).</li>
<li>Netea, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+requirement+for+the+activation+of+the+inflammasome+for+processing+and+release+of+IL-1bin+monocytes+and+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Differential requirement for the activation of the inflammasome for processing and release of IL-1bin monocytes and macrophages.</a> Blood. 113, 2324-2335 (2009).</li>
<li>Latz, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+inflammasomes%3A+mechanisms+of+activation+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Opin+Immnol%22%5BJournal%5D)">The inflammasomes: mechanisms of activation and function.</a> Curr Opin Immnol. 22, 28-33 (2010).</li>
<li>Masters, S. L., Simon, A., Aksentijevich, I., Kastner, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Horror+autoinflammaticus%3A+the+molecular+pathophysiology+of+autoinflammtory+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Horror autoinflammaticus: the molecular pathophysiology of autoinflammtory disease.</a> Annu Rev Immunol. 27, 621-668 (2009).</li>
</ol>

De gehele beschreven bloed-test is een eenvoudige methode die beter nabootst fysiologische omstandigheden in vergelijking met andere technieken die celisolatie en uitgebreide steekproef verwerking en manipulatie zou vereisen. Deze methode maakt gebruik van de Cellometer Vision met AO te witte bloedcellen tellen in volbloed en daarom biedt een manier om nauwkeurig te standaardiseren op basis van samples cel aantallen. Er dient te worden opgemerkt dat voor deze test, vol bloed moet worden getr...

<table><tbody><tr><td>Bloedafnamebuizen met natriumheparine</td><td>BD Biosciences</td><td>366480</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 medium</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>21870-100</td><td></td></tr><tr><td>Acridine Orange</td><td>Invitrogen</td><td>A3568</td><td></td></tr><tr><td>Cellometer Vision</td><td>Nexcelom Bioscience</td><td></td><td>Neem contact op met het bedrijf voor informatie over het instrument</td></tr><tr><td>Cellometer telkamers voor cellen</td><td>Nexcelom Bioscience</td><td>CHT4-SD100</td><td></td></tr><tr><td>24-well weefselkweekplaat</td><td>Corning</td><td>3524</td><td></td></tr><tr><td>Ultra Pure &lt;em&gt;E. coli&lt;/em&gt; K12 LPS</td><td>Invitrogen</td><td>tlrl-eklps</td><td></td></tr><tr><td>Adenosine 5&amp;#180;-trifosfaat dinatriumzouthydraat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A26209</td><td></td></tr><tr><td>Bio-plex 200 systeem</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Neem contact op met het bedrijf voor informatie over het instrument</td></tr><tr><td>Bio-Plex Pro human cytokine x-plex assay</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>x-plex assays worden op maat gemaakt op basis van de opgegeven cytokinen van belang</td></tr></tbody></table>

nauwkeurige en eenvoudige meting van de pro-inflammatoire cytokine il-1β met behulp van een volbloed stimulatie assay

Accurate and Simple Measurement of the Pro-inflammatory Cytokine IL-1&beta; using a Whole Blood Stimulation Assay

Inflammatoire processen als gevolg van de afscheiding van oplosbare mediatoren door immuuncellen, leiden tot verschillende manifestaties in de huid, gewrichten en andere weefsels, alsmede gewijzigde cytokine homeostase. Het aangeboren immuunsysteem speelt een cruciale rol in het herkennen van ziekteverwekkers en andere endogene gevaar stimuli. Een van de belangrijkste cytokines vrijgegeven door aangeboren immuuncellen is Interleukine (IL) -1. Daarom maken we gebruik van een volbloed stimulatie test om de secretie van inflammatoire cytokines te meten en in het bijzonder van de pro-inflammatoire cytokine IL-1β 1, 2, 3. Patiënten met genetische disfuncties van het aangeboren immuunsysteem waardoor autoinflammatory syndromen vertonen een overdreven versie van volwassen IL-1β na stimulatie met LPS alleen. Met het oog op het aangeboren immuunsysteem component van de patiënten die zich presenteren met inflammatoire-geassocieerde aandoeningen te evalueren, gebruiken we een specifieke immunoassay om cellulaire immuunresponsen te detecteren pathogeen-geassocieerde moleculaire patronen (PAMPs), zoals de gram-negatieve bacteriële endotoxine, lipopolysaccharide (LPS ). Deze PAMPs worden herkend door pathogeen herkenning receptoren (PRRS), die worden gevonden op de cellen van het aangeboren immuunsysteem 4, 5, 6, 7. Een primaire signaal, LPS, in combinatie met een tweede signaal, ATP, noodzakelijk is voor de activering van de inflammasome, een multiprotein complex dat pro-IL-1β processen om haar rijpe, bioactieve vorm 4, 5, 6, 8, 9, 10. De volbloed-test vereist slechts een minimale steekproef manipulatie tot cytokine productie te beoordelen in vergelijking met andere methoden die arbeidsintensieve isoleren en kweken van specifieke celpopulaties vereisen. Deze methode onderscheidt zich van andere volbloed stimulatie testen, maar eerder dan verdunnen monsters met een verhouding van RPMI media, voeren we een witte bloedcel direct tellen van verdund volbloed en daarom, het stimuleren van een bekend aantal witte bloedcellen in cultuur 2. De resultaten van deze bijzondere bloed-test aantonen dat er een nieuwe techniek bruikbaar in het ontrafelen van de patiënt cohorten die zich presenteren met autoinflammatory pathophysiologies.

Beschrijven we een simpele immunoassay om de productie van pro-inflammatoire cytokines, zoals IL-1 bèta productie, bij patiënten met autoinflammatory fenotypes te meten. Door het activeren van cellen in volbloed culturen met pathogeen-geassocieerde moleculaire patronen, in het bijzonder met lipopolysaccharide, kan cytokine secretie gemakkelijk worden geëvalueerd in volbloed supernatants.

Nauwkeurige en eenvoudige meting van de pro-inflammatoire cytokine IL-1β met behulp van een volbloed stimulatie Assay

Ontstekingsprocessen als gevolg van de secretie van oplosbare mediatoren door immuuncellen leiden tot diverse manifestaties in de huid, gewrichten en andere weefsels ...

Het algemene doel van deze procedure is het meten van pro-inflammatoire cytokinen die worden geproduceerd in een stimulatie-assay met volbloed. Eerst worden de cellulaire componenten van het volbloed door middel van centrifugatie uit het plasma geïsoleerd, waarna de witte bloedcellen worden geteld met behulp van eine-oranje kleuring. Vervolgens worden de cellen uitgeplaat en gestimuleerd met LPS, gevolgd door een TP, om cytokineproductie op te wekken door cellen die microbiële patroonherkenningsreceptoren dragen. De kweeksupernatanten worden vervolgens verzameld op specifieke tijdstippen na het begin van de stimulatie.Ten slotte worden de cytokinenconcentraties in de supernatanten gemeten met een multiplex-assay in een 96-wells plaat. Met deze eenvoudige methode kunnen variaties in de concentraties van pro-inflammatoire cytokinen, geproduceerd door gestimuleerde cellen van verschillende donoren, snel worden beoordeeld. Deze methode is bijzonder nuttig voor het identificeren van cytokine-gemedieerde inflammatoire ziekten bij patiënten die pathologisch anti-inflammatoire manifestaties vertonen, in het bijzonder in situaties waarin het verkrijgbare bloedvolume beperkt is.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden bij het meten van cytokinenconcentraties is dat de Luminex-gebaseerde technologie gelijktijdige metingen van meerdere cytokinen mogelijk maakt met behulp van slechts een klein monstervolume. Verzamel monsters met 10 milliliter of meer veneus bloed van getroffen personen, evenals van gezonde controles die qua leeftijd en geslacht overeenkomen; zorg ervoor dat de monsters worden verzameld in Vacutainer-bloedafnamebuizen met natriumheparine, en voeg geen EDTA of andere anticoagulantia toe, aangezien deze de assay zullen verstoren. Verwerk de monsters zo snel mogelijk na afname. Indien nodig kunnen de monsters tot 24 uur worden bewaard bij kamertemperatuur onder gedimde lichtomstandigheden.Centrifugeer de bloedmonsters gedurende 10 minuten bij 3000 RPM bij kamertemperatuur met de rem uitgeschakeld. Verwijder na centrifugatie het plasma van de bovenkant van de buisjes, waarbij u voorzichtig bent om de buffy coat-laag met mononucleaire cellen niet te verstoren. Resuspendeer de buffy coat en het onderliggende pellet van rode bloedcellen in serumvrij RPMI-medium bij kamertemperatuur om de cellen te wassen door het mengsel voorzichtig te pipetteren.Breng vervolgens de cellen van de opvangbuis over naar een conische buis van 50 milliliter. Vul het volume aan tot 50 milliliter met RPMI en keer elke buis voorzichtig om om te mengen. Centrifugeer de cellen nogmaals bij 3000 RPM gedurende 10 minuten.Suctor vervolgens het supernatant af, waarbij u er goed op let het celpellet niet te verstoren. Herhaal deze wasstap twee tot vier keer om contaminanten te verwijderen en celgebonden cytokinen te elimineren. Nadat de cellen zijn gewassen, resuspendeert u deze in serumvrij RPMI tot een totaalvolume van 20 milliliters. Om de cellen te tellen, brengt u 20 microliters van een één-op-één mengsel van monster en acridine orange aan in een wegwerpsoter vision chamber. Acridine orange, gebruikt in een eindconcentratie van 1 microgram per milliliter, kleurt uitsluitend kernhoudende witte bloedcellen, waardoor deze kunnen worden onderscheiden van rode bloedcellen.Tel alleen de D-positieve cellen zodra er een celgetal is verkregen. Resuspendeer de monsters in serumvrij RPMI om een uiteindelijke concentratie van 2 miljoen cellen per milliliter te bereiken. Label voor elk monster dubbele putjes van een 24-wells plaat met de te testen experimentele condities.In dit geval zijn de condities ongestimuleerd, alleen LPS, alleen a TP en LPS plus a TP. Voeg één milliliter verdunde cellen toe aan elke well en voeg LPS toe aan de betreffende wells tot een eindconcentratie van één microgram per milliliter. Incubeer de monsters gedurende twee uur en 40 minuten bij 37 °C in een incubator met 5% koolstofdioxide. Voeg na deze initiële incubatieperiode a TP toe tot een eindconcentratie van twee millimolair in de wells met alleen a TP en LPS plus a TP. Incubeer de platen vervolgens nog 20 minuten bij 37 °C.Zodra de tweede incubatie is voltooid, brengt u de cellen uit elke put over naar een aparte, vooraf gelabelde microcentrifugebuis van 1,5 milliliter. Centrifugeer de monsters 2 minuten bij 10.000 RRP M bij kamertemperatuur en breng vervolgens het supernatant uit elke buis over naar een nieuwe, vooraf gelabelde EOR-buis. Het supernatant kan direct op cytokines worden geanalyseerd of bevroren worden bewaard om de concentraties van IL one beta of andere cytokines te bepalen. In de monsters gebruiken we de bio plex pro, human cytokine X plex met het Bio Plex 200-systeem.Volgens de instructies van de fabrikant. In deze figuuranalyse van de productie van IL-1β na stimulatie van normale cellen uit volbloed met LPS, ATP of beide stimuli samen, is een respons op LPS plus ATP zichtbaar, waarvan de omvang afhankelijk is van het aantal gestimuleerde cellen. In tegenstelling tot gezonde controles onthullen volbloedassays van patiënten met autoinflammatoire pathologieën een verhoogde productie van IL-1β na LPS-stimulatie, zelfs zonder de exogene toevoeging van ATP. Vergeet niet dat het werken met menselijke lichaamsvloeistoffen zoals bloed uiterst gevaarlijk kan zijn en dat er altijd universele voorzorgsmaatregelen moeten worden genomen bij het uitvoeren van deze procedure.

accurate-simple-measurement-pro-inflammatory-cytokine-il-1-using

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

This video demonstrates the quantification of inflammatory mediators during infection by incubating human lung-tissue-derived immune cells with Haemophilus influenzae. Flow cytometry is used to measure cytokine fluorescence in labeled lymphocytes, correlating with the production of pro-inflammatory cytokines in response to bacterial infection.

Quantification of Inflammatory Mediators in Infected Human Tissue-Derived Cells

This video demonstrates the quantification of immune mediator levels in neonatal human nasal mucosal lining fluid extract. An electrochemiluminescence-based multiplex assay system measures these mediators by evaluating the intensity of emitted light when they are excited.

Quantification of Immune Mediator Levels in Human Mucosal Lining Fluid

Dendritische cellen (DCs) scheiden IL-1β reactie op TLR8 erkenning van synthetische purine, R848, gevolgd door NLRP3 inflammasome activering met nigericine derhalve IL-1β kunnen worden gebruikt om NLRP3 inflammasome te meten. Intracellulaire cytokine kleuring, immunoblotting en ELISA worden gebruikt om NLRP3 inflammasome priming en activering van IL-1β expressie nauwkeurig te meten.

Activering en waardering van NLRP3 inflammasome activiteit met behulp van IL-1β in Human Monocyt-afgeleide dendritische cellen

Analyse van de traanfilm cytokines helpt bij het bestuderen van verschillende oogbeschadigingen en/of ziekten. Kraal gebaseerd multiplex assays zijn eenvoudig en gevoelige en activeer het testen van meerdere doelen in monsters met kleine volumes. Hier beschrijven we een protocol voor scheur film cytokine profielen met behulp van een kraal gebaseerd multiplex assay.

Kraal gebaseerd Multiplex Assay voor analyse van Tear Cytokine profielen

Dit protocol beschrijft de kwantificering van meerdere cytokine doelen tegelijkertijd in weefselkweek supernatant gestimuleerd muis splenocytes met behulp van multiplex kraal gebaseerde immunoassay platform en een stroom cytometer verkregen.

Multiplex Cytokine profilering van gestimuleerd muis Splenocytes met behulp van een kraal cytometrische gebaseerde Immunoassay Platform

Hier presenteren we een protocol om te beschrijven van de ontwikkeling en validatie van een enkel molecuul matrix digitale Analyse ELISA, waarmee de ultra gevoelige detectie van alle IFN-α subtypen in menselijke specimens.

Ontwikkeling en validatie van een Ultrasensitive enkel molecuul Array digitale Enzyme-linked Immunosorbent Assay voor menselijk Interferon-α

Hier beschrijven we een eencellige proteomic aanpak om te evalueren van immuun fenotypische en functionele (intracellulaire cytokine inductie) veranderingen in het perifere bloedmonsters geanalyseerd via massale cytometry.

Eencellige analyse van Immunophenotype en Cytokine productie in perifere bloed via massale Cytometry

Het gebruik van referentiereagentia voor cytokine-afgifte zorgt voor meer reproduceerbare en gestandaardiseerde in vitro veiligheidsprofielen van immunotherapeutische monoklonale antilichamen. Hier beschrijven we hoe cytokine-afgiftetests kunnen worden gebruikt naast een referentiereagenspanel om de veiligheid van sommige therapeutische monoklonale antilichamen te voorspellen.

Gebruik van referentiereagentia om de robuustheid van cytokine-afgiftetests te bevestigen voor de voorspelling van de veiligheid van monoklonale antilichamen

Het protocol beschrijft een geavanceerd microfluïdisch platform om de cytokinesecretiedynamiek van individuele menselijke perifere mononucleaire bloedcellen kwantitatief te meten. Het platform meet tot drie cytokines parallel (IL-6, TNFα en IL-1β) voor elke individuele cel die wordt gestimuleerd met lipopolysaccharide als voorbeeld.

Microfluïdische benadering om gelijktijdige en sequentiële cytokinesecretie van individuele polyfunctionele cellen op te lossen 

Op volbloed gebaseerde immunoassays bieden een gemakkelijk en hulpbronnenefficiënt hulpmiddel om antigeenspecifieke immuniteit te analyseren voor diagnostische en onderzoeksdoeleinden. Dit artikel biedt een geoptimaliseerd volbloedprotocol met dubbele co-stimulatie voor uitgebreide analyse van de immuniteit van de gastheer tegen schimmel- en virale pathogenen, inclusief een versie met een laag volume voor pediatrische patiënten en kleine dieren.

Volbloedtest met dubbele co-stimulatie voor antigeenspecifieke analyse van de immuniteit van de gastheer tegen schimmel- en virale pathogenen

Leer een eenvoudige immunoassay om pro-inflammatoire cytokines, met name IL-1β, te meten in patiënten met autoinflammatoire fenotypen. Deze methode gebruikt LPS-stimulatie van volbloedculturen.

Nauwkeurige en eenvoudige meting van de pro-inflammatoire cytokine IL-1β met behulp van een volbloed stimulatie Assay

Meer video's verkennen