Name: Fabricatie van elektrochemische-DNA Biosensoren voor de Reagentless detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 15 s
Description: Leer de fabricage van elektrochemische DNA-biosensoren voor reagentloze detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen in complexe biologische matrices zoals bloed en serum.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dit werk werd gefinancierd door een subsidie ​​(OPP1015402) van de Bill and Melinda Gates Foundation door de Grand Challenges Explorations Initiative, en door de NIH door middel van subsidies GM062958-01 en 2R01EB002046. Dit werk werd uitgevoerd in een deel onder de auspiciën van het Amerikaanse ministerie van Energie door Lawrence Livermore National Laboratory onder contract DE-AC52-07NA27344.

1. Instellen van de Stage <ol><li> De aankoop van de relevante, chemisch gemodificeerd probe DNA van een aangepaste oligonucleotidesynthese bedrijf, zoals Biosearch Technologies (Novato, CA) of Midland Certified (Midland, TX). De sonde wordt gewijzigd tijdens de synthese door de toevoeging van een C6-thiol in zijn 3'-uiteinde en een redox-actieve methyleenblauw op zijn 5'-uiteinde. </li><li> Los van de probe-DNA in fosfaat gebufferde zoutoplossing pH 7,4 tot een concentratie van 200 uM en controleer de concentratie door het meten van de absorptie ervan bij 260 nm met behulp van een spectrofotometer. Door de methyleenblauw-groep op de DNA-probe de oplossing moet een zichtbare blauwe tint. </li><li> Vers voor te bereiden 1 ml van een 10 mM oplossing van tris (2-carboxyethyl) fosfine TCEP in gedestilleerd, gedemineraliseerd water (DI-water). In onze ervaring, deze TCEP oplossingen nog vers voor een week wanneer ze worden bewaard in het donker bij 4 ° C. </li><li> Ter beperking van eventuele disulfide bindingen die aanwezig kunnen zijn in de probe DNA-oplossing, combineren een pi van de probe DNA stockoplossing met 2 pl van de TCEP oplossing en meng voorzichtig met een pipet. Incubeer dit mengsel gedurende een uur in een donkere, gekoelde container. De aanvankelijk blauwe oplossing moet duidelijk worden als de TCEP reversibel vermindert de methyleenblauw. Als de oplossing niet duidelijk geworden, herhaal dan de procedure met behulp van een verse TCEP oplossing of, eventueel, bij kamertemperatuur. </li><li> Na een uur verdunnen de verminderde DNA-probe-oplossing met 1 ml buffer, dit zal het verdunnen tot een concentratie van 200 Nm. Later zul je incuberen een set gouden schijf elektroden in 200 pi gedeelten van deze verdunde oplossing probe. </li><li> Vers voor te bereiden ten minste 2 ml van 2mm mercaptohexanol in fosfaat gebufferde zoutoplossing. </li></ol> 2. Sensor Voorbereiding <ol><li> Combineer 0,05 micron alumina poeder met water op een fijne poetsdoek. Poolse een reeks van gouden schijf elektroden (CH Instruments, Austin, TX) door te drukken op het goud oppervlak stevig in de natte doek, en bewegen ze in een cijfer acht patroon voor ongeveer drie minuten per elektrode. </li><li> Spoel de gepolijste elektroden met DI-water en dompel ze in Eppendorf buisjes gevuld met dezelfde. Sonificeer vijf minuten om eventuele resterende alumina poeder te verwijderen. </li><li> Plaats de elektroden in een 0,5 M zwavelzuur oplossing, plak ze op een potentiostaat samen met een platina teller en zilver / zilverchloride referentie-elektrode, en uitvoeren van een reeks van voltammogrammen te oxideren, te verminderen, en elektrochemisch reinigen hun oppervlakken. Naar aanleiding van dit uitvoeren van een seconde elektrochemische schoonmaken in een oplossing van 0,01 M KCl in 0,1 M zwavelzuur. De fijne details van deze reiniging procedures vindt u in onze Nature protocollen papier 1, en ​​in de aanvulling op deze video. </li><li> Schik een set van 2 ml Eppendorf buizen in een rek en vul elk met 200 pi van de probe DNA-oplossing. De concentratie van de probe DNA in deze oplossing zal bepalen de dichtheid waarmee de sonde DNA's pack op de sensor oppervlak. Prestaties van de sensor is sterk afhankelijk van de sonde dichtheid, met de optimale dichtheid variërend van een sensor de architectuur naar de volgende. De probe concentratie gebruikt bij deze stap moet dus worden geoptimaliseerd voor elk nieuw type sensor 2. Voor de sonde architecturen we hebben onderzocht tot op heden, de sonde DNA-concentraties die we gebruiken in deze stap variëren van 15 nM tot 2 micrometer, met 200 nM als een typische waarde. </li><li> Spoel de gouden schijf elektroden met DI-water, en ze vervolgens onder te dompelen in de desbetreffende probe-DNA-oplossing in een Eppendorf buis voor een uur. Op dit punt, zal de sonde DNA hechten aan de gouden elektrode-oppervlak via de vorming van een thiol-on-goud zelf geassembleerde monolaag. </li><li> Spoel de elektroden met DI-water, dompel hen in 2 mM mercaptohexanol in een Eppendorf buis en bewaar deze op een donkere plaats voor 3 uur 's nachts bij kamertemperatuur te voltooien de vorming van het zelf geassembleerde monolaag te verzekeren. Deze stap omvat het mercaptohexanol als onderdeel van een gemengde monolaag te zorgen voor de vorming van een stabiele monolaag. Om te voorkomen dat verdamping wilt u misschien de elektrode afdichting in de eppendorfbuisje met parafilm. Sensoren kunnen worden opgeslagen in deze oplossing voor enkele dagen als dat nodig is. </li><li> Wanneer u klaar bent om de sensor te gebruiken, spoel het met DI-water en dan laten weken in een buffer voor ten minste tien minuten. Sensoren die gericht zijn op opsporing van antilichamen moet ook worden ondergedompeld in een 100 nM oplossing van de relevante erkenning streng voorafgaand aan het gebruik, gevolgd door een uiterst snelle spoelen met buffer. </li></ol> 3. Sensor testen, DNA-detectie <ol><li> In dit protocol, is een 17 nucleotide sonde draad aangebracht op een gouden elektrode. Het heeft een methyleenblauw redox reporter op zijn 3'-uiteinde (figuur 1). Wanneer de probe molecuul hybridiseert met een capture streng, de stroom door de sensor circuit af. </li><li> Spoel een frisse sensor met DI-water en dompel het in een legemonster ontbreekt het doel om op de achtergrond signaal dat produceert op te nemen. Bevestig de sensor op de werkende elektrode leiding van een potentiostaat. Plaats een platina elektrode en een zilver / zilverchloride referentie-elektrode in de oplossing. </li><li> Voer een blokgolf meting 0 tot -0,6 V met een amplitude van 25 mV en een stapgrootte van 1mV. De optimale blokgolf frequentie zal afhangen van de details van de sonde architectuur 2,3, want de sonde architecturen hebben we in dienst van de optimale waarden zijn meestal in tussen 60 en 600 Hz. Ziet u een ronde piek op ongeveer -0,35 V, de redoxpotentiaal van methyleenblauw (de piek potentieel kan enigszins verschuiven afhankelijk van de precieze pH-waarde van uw test-oplossing). De hoogte van de baseline huidige naar deze piek is evenredig met de efficiëntie elektron overdracht tussen de methyleenblauw en de goud-elektrode (Figuur 2). Bewaar deze achtergrond meting. </li><li> Verplaats de elektroden naar een oplossing die het doelwit DNA-molecuul van belang bevat, evenwicht (5 tot 120 min, afhankelijk van de omvang, structuur en concentratie van de target4, 5) en het verzamelen van een seconde blokgolf voltammagram. De hoogte van de piek bij -0,35 V zal veranderen van de eerste, achtergrond meting. De omvang van deze verandering is gerelateerd aan de concentratie van de analyt. Het is de belangrijkste output gegevens van deze sensor (figuur 3). </li><li> Het meten van relatieve signaal te veranderen, de procentuele daling of stijging van het signaal ten opzichte van de achtergrond piek, is vaak beter reproduceerbaar dan het meten van de absolute verandering in de huidige, omdat deze corrigeert voor verschillen in de oppervlakte van de elektrode. Om dit te doen, zijn het verschil tussen de piekstroom en de achtergrond piekstroom gedeeld door de achtergrond piekstroom. </li></ol> 4. Sensor Regeneratie <ol><li> Zodra uw metingen zijn voltooid, verplaatst u de sensor in een bak met DI-water gedurende 30 s, of spuit met een gestage stroom van DI-water gedurende 30 s. Herhaal dit nog twee keer met vers gedeïoniseerd water. Let op: sommige analyten zijn resistent tegen deze aanpak, want ze uit te proberen agressieve spoelen in 6 M guanidine hydrochloride of 70% ethanol. </li><li> Plaats de sensor in een oplossing waarbij de metingen zullen worden gedaan. Binnen een minuut moet de piekhoogte zijn teruggekeerd naar de oorspronkelijke waarde. Het is vermeldenswaard dat deze sensoren vaak een iets groter signaal veranderen tijdens hun eerste test en regeneratie-cyclus, en zeer consistente resultaten tijdens de volgende cycli 6 vertonen. </li></ol> 5. Sensor testen, opsporing van antilichamen <ol><li> In dit protocol, de methyleen-blauw en thiol-gemodificeerde DNA probe gebruikt in deze sensoren dient als een 'anker' streng 7. Het is direct verbonden met de gouden elektrode. Dit wordt vervolgens gehybridiseerd met een tweede, "erkenning" DNA streng die is covalent geconjugeerd aan het relevante antigeen (figuur 4). We hebben veel geluk met commerciële synthese huizen, zoals Biosearch Technologies en Panagene, voor de synthese van de benodigde DNA-antigen hersenschimmen. De hybridisatie stap wordt uitgevoerd door de overdracht van een prefab-sensor in een Eppendorf buisje met 100 nM van de relevante erkenning DNA-streng in PBS gedurende 1 uur. </li><li> Plaats de sensor in de desbetreffende blanco-oplossing. Bevestig het aan de werkende elektrode leiding van een potentiostaat en plaats een platina elektrode en zilver / zilverchloride referentie-elektrode in de oplossing. </li><li> Voer blokgolf voltammetrie zoals hierboven beschreven. Voor de specifieke probe architectuur hebben we hier in dienst van de optimale blokgolf frequentie is 60 Hz. Ziet u een afgeronde piek rond -0,35 V. Bewaar deze achtergrond meting. </li><li> Breng de elektroden aan een oplossing die de doelanalyt, incubeer gedurende 5 tot 60 minuten, en het verzamelen van een seconde blokgolf voltammagram. Als het doel antilichaam aanwezig is de piek bij -0,35 V zal afnemen. De omvang van deze verandering is gerelateerd aan het antilichaam concentratie. </li></ol> 6. Sensor Testen, Small Molecule Detectie <ol><li> In dit geval, de sonde molecuul op de sensor oppervlak is een aptameer, een DNA-of RNA-molecuul dat is geselecteerd in vitro aan een specifieke moleculaire analyt, dat de structuur verandert (vouwen) binden na binding aan de doelanalyt 8,9 ( figuur 5). Hier hebben we gebruik van een cocaïne-bindend, DNA aptameer ontwikkeld door de Stojanovic 10,11 lab. </li><li> Spoel een frisse sensor met DI-water en dompel het in een blanco monster ontbreekt het doel om op de achtergrond signaal dat produceert op te nemen. Bevestig de sensor op de werkende elektrode leiding van een potentiostaat. Plaats een platina teller en een zilver / zilverchloride referentie in de oplossing. </li><li> Voer blokgolf voltammetrie zoals hierboven beschreven. Voor de specifieke probe architectuur die we hier hebben in dienst van de optimale blokgolf frequentie is 200 Hz (Maar 60 Hz werkt ook). Ziet u een afgeronde piek rond -0,35 V. Bewaar deze achtergrond meting. </li><li> Breng de elektroden aan een oplossing die de doelanalyt, incuberen tot ~ 5 min, en het verzamelen van een seconde blokgolf voltammagram. De hoogte van de piek bij -0,35 V zal veranderen. De omvang van deze verandering is gerelateerd aan de concentratie van de doelanalyt. Als je niet kunt verkrijgen van een cocaïne-monster, procaine, waarvan het gebruik is niet-gereguleerde, kan gebruikt worden als een vervanger. </li></ol> 7. Representatieve resultaten: Wanneer gebruikt om DNA te detecteren met behulp van de eerste architectuur, moet het signaal daling met minstens 60% bij het evenwicht bij 200 nM doel. Na drie korte spoelt in gedeïoniseerd water, moet het signaal terug te keren heel dicht (binnen 0,1 tot 5%) tot de oorspronkelijke waarde. Opsporing van antilichamen sensoren moeten volgens een signaal daling van 40 tot 80%. Aptameer-gebaseerde sensoren voor de detectie van cocaïne vertonen een signaal kan oplopen tot 200% afhankelijk van de frequentie en de bedekking van het oppervlak waarop zij opereren. Voor de cocaïne-sensor, een lage bedekking van het oppervlak is het beste 3. <img src="/files/ftp_upload/2922/2922fig1.jpg" alt="Figuur 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Detectie van DNA met een elektrochemische DNA biosensor. <img src="/files/ftp_upload/2922/2922fig2.jpg" alt="Figuur 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Screen shot toont het signaal geproduceerd door een E-DNA biosensor tijdens blokgolf voltammetrie. <img src="/files/ftp_upload/2922/2922fig3.jpg" alt="Figuur 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Schermafbeelding zien de signalen die door een E-DNA biosensor tijdens vierkante golf voltammetrie, voor en na hybridisatie met een analyt. <img src="/files/ftp_upload/2922/2922fig4.jpg" alt="Figuur 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 4"> Figuur 4. Detectie van antilichamen met een steiger biosensor. <img src="/files/ftp_upload/2922/2922fig5.jpg" alt="Figuur 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 5"> Figuur 5. Detectie van cocaïne of procaïne met een elektrochemische aptameer biosensor. <table border="1"><tbody><tr><td> Op maat Oligo </td><td> Volgorde </td><td> Reacties </td></tr><tr><td> Lineaire Probe DNA (LP17) </td><td> 5'-HS-(CH2) 6-TGGATCGGCGTTTTATT-(CH2) 7-NH-MB-3 ' </td><td> HPLC Gezuiverd, kan worden besteld met de SS </td></tr><tr><td> Doelanalyt DNA </td><td> AATAAAACGCCGATCCA </td><td> Ongewijzigd </td></tr><tr><td> Erkenning Strand </td><td> 5'-Antigen-TEG-CAGTGGCGTTTTATTCTTGTTACTG-3 ' </td><td></td></tr><tr><td> Steiger Anker </td><td> 5'-HS-(CH 2) 6-GCAGTAACAAGAATAAAACGC CACTGC-(CH 2) 7-MB </td><td> HPLC Gezuiverd, kan worden besteld met de SS </td></tr><tr><td> A4 Cocaïne aptameer </td><td> 5'-HS-AGACAAGGAAAATCCTTCAATGAAGTGGGTCG-MethyleneBlue-3 ' </td><td> HPLC Gezuiverd, kan worden besteld met de SS </td></tr></tbody></table> Tabel 1. Sonde en Target DNA-sequenties.

<ol><li>Xiao, Y., Lai, R. Y., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+electrode-immobilized%2C+redox-modified+oligonucleotides+for+electrochemical+DNA+and+aptamer-based+sensing%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protocols%22%5BJournal%5D)">Preparation of electrode-immobilized, redox-modified oligonucleotides for electrochemical DNA and aptamer-based sensing.</a> Nat. Protocols. 2, 2875-2880 (2007).</li>
<li>Ricci, F., Lai, R. Y., Heeger, A. J., Plaxco, K. W., Sumner, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Molecular+Crowding+on+the+Response+of+an+Electrochemical+DNA+Sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Effect of Molecular Crowding on the Response of an Electrochemical DNA Sensor.</a> Langmuir. 23, 6827-6834 (2007).</li>
<li>White, R. J., Phares, N., Lubin, A. A., Xiao, Y., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+Electrochemical+Aptamer-Based+Sensors+via+Optimization+of+Probe+Packing+Density+and+Surface+Chemistry%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Optimization of Electrochemical Aptamer-Based Sensors via Optimization of Probe Packing Density and Surface Chemistry.</a> Langmuir. 24, 10513-10518 (2008).</li>
<li>Lubin, A. A., Vander Stoep Hunt, B., White, R. J., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Probe+Length%2C+Probe+Geometry%2C+and+Redox-Tag+Placement+on+the+Performance+of+the+Electrochemical+E-DNA+Sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Effects of Probe Length, Probe Geometry, and Redox-Tag Placement on the Performance of the Electrochemical E-DNA Sensor.</a> Analytical Chemistry. 81, 2150-2158 (2009).</li>
<li>Lubin, A. A., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Folding-Based+Electrochemical+Biosensors%3A+The+Case+for+Responsive+Nucleic+Acid+Architectures%5BTitle%5D)+AND+%22Accounts+of+Chemical+Research%22%5BJournal%5D)">Folding-Based Electrochemical Biosensors: The Case for Responsive Nucleic Acid Architectures.</a> Accounts of Chemical Research. 43, 496-505 (2010).</li>
<li>Lubin, A. A., Lai, R. Y., Baker, B. R., Heeger, A. J., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence-Specific%2C+Electronic+Detection+of+Oligonucleotides+in+Blood%2C+Soil%2C+and+Foodstuffs+with+the+Reagentless%2C+Reusable+E-DNA+Sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Sequence-Specific, Electronic Detection of Oligonucleotides in Blood, Soil, and Foodstuffs with the Reagentless, Reusable E-DNA Sensor.</a> Analytical Chemistry. 78, 5671-5677 (2006).</li>
<li>Cash, K. J., Ricci, F., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Electrochemical+Sensor+for+the+Detection+of+Protein%3FSmall+Molecule+Interactions+Directly+in+Serum+and+Other+Complex+Matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">An Electrochemical Sensor for the Detection of Protein?Small Molecule Interactions Directly in Serum and Other Complex Matrices.</a> Journal of the American Chemical Society. 131, 6955-6957 (2009).</li>
<li>Baker, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Electronic%2C+Aptamer-Based+Small-Molecule+Sensor+for+the+Rapid%2C+Label-Free+Detection+of+Cocaine+in+Adulterated+Samples+and+Biological+Fluids%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">An Electronic, Aptamer-Based Small-Molecule Sensor for the Rapid, Label-Free Detection of Cocaine in Adulterated Samples and Biological Fluids.</a> Journal of the American Chemical Society. 128, 3138-3139 (2006).</li>
<li>Ferapontova, E. E., Olsen, E. M., Gothelf, K. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+RNA+Aptamer-Based+Electrochemical+Biosensor+for+Detection+of+Theophylline+in+Serum%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">An RNA Aptamer-Based Electrochemical Biosensor for Detection of Theophylline in Serum.</a> Journal of the American Chemical Society. 130, 4256-4258 (2008).</li>
<li>Stojanovic, M. N., Landry, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aptamer-Based+Colorimetric+Probe+for+Cocaine%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Aptamer-Based Colorimetric Probe for Cocaine.</a> Journal of the American Chemical Society. 124, 9678-9679 (2002).</li>
<li>Stojanovic, M. N., Prada, P. de, Landry, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aptamer-Based+Folding+Fluorescent+Sensor+for+Cocaine%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Aptamer-Based Folding Fluorescent Sensor for Cocaine.</a> Journal of the American Chemical Society. 123, 4928-4931 (2001).</li>
<li>Cash, K. J., Heeger, A. J., Plaxco, K. W., Xiao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+a+Reusable%2C+DNA+Pseudoknot-Based+Electrochemical+Sensor+for+Sequence-Specific+DNA+Detection+in+Blood+Serum%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Optimization of a Reusable, DNA Pseudoknot-Based Electrochemical Sensor for Sequence-Specific DNA Detection in Blood Serum.</a> Analytical Chemistry. 81, 656-661 (2009).</li>
<li>Xiao, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Electrochemical+Sensor+for+Single+Nucleotide+Polymorphism+Detection+in+Serum+Based+on+a+Triple-Stem+DNA+Probe%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">An Electrochemical Sensor for Single Nucleotide Polymorphism Detection in Serum Based on a Triple-Stem DNA Probe.</a> Journal of the American Chemical Society. 131, 15311-15316 (2009).</li>
<li>Zuo, X., Xiao, Y., Plaxco, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+Specificity%2C+Electrochemical+Sandwich+Assays+Based+on+Single+Aptamer+Sequences+and+Suitable+for+the+Direct+Detection+of+Small-Molecule+Targets+in+Blood+and+Other+Complex+Matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">High Specificity, Electrochemical Sandwich Assays Based on Single Aptamer Sequences and Suitable for the Direct Detection of Small-Molecule Targets in Blood and Other Complex Matrices.</a> Journal of the American Chemical Society. 131, 6944-6945 (2009).</li>
<li>Xia, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Electrochemical+Supersandwich+Assay+for+Sensitive+and+Selective+DNA+Detection+in+Complex+Matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">An Electrochemical Supersandwich Assay for Sensitive and Selective DNA Detection in Complex Matrices.</a> Journal of the American Chemical Society. 132, 14346-14348 (2010).</li>
<li>Patterson, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+Triplex-Forming+Oligonucleotide+Probes+for+the+Reagentless%2C+Electrochemical+Detection+of+Double-Stranded+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Using Triplex-Forming Oligonucleotide Probes for the Reagentless, Electrochemical Detection of Double-Stranded DNA.</a> Analytical Chemistry. 82, 9109-9115 (2010).</li>
<li>Ferguson, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrated+Microfluidic+Electrochemical+DNA+Sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Integrated Microfluidic Electrochemical DNA Sensor.</a> Analytical Chemistry. 81, 6503-6508 (2009).</li>
<li>Swensen, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous%2C+Real-Time+Monitoring+of+Cocaine+in+Undiluted+Blood+Serum+via+a+Microfluidic%2C+Electrochemical+Aptamer-Based+Sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Continuous, Real-Time Monitoring of Cocaine in Undiluted Blood Serum via a Microfluidic, Electrochemical Aptamer-Based Sensor.</a> Journal of the American Chemical Society. 131, 4262-4266 (2009).</li>
</ol>

Een belangrijke opmerking is dat geen van de hierboven beschreven experimenten naar behoren zullen werken als de elektroden goed zijn schoongemaakt. Hier is een gids voor onze elektrochemische reiniging. Bij het werken met CH Instruments potentiostaten, lopen we deze schoon stappen met behulp van een set van drie macro&#39;s. Fase Nul (E-clean O) Dompel de elektroden in 0.5MH 2 SO 4 en sluit ze aan de werking elektroden van een potentiostaat. Ook hechten en dompel een Ag / AgCl referentie-en platina-elektrode. Begin met een oxidatie stap (2 V voor 5 s) en vervolgens een vermindering stap (0,35 V voor 10 s). Phase One (E-clean 1) Initiëren oxidatie en reductie scans onder dezelfde zure omstandigheden (0.5MH 2 SO 4) 0,35 tot 1,5 V (20 scans met een scansnelheid van 4 V / s en een sample-interval van 0,01 V, gevolgd door vier scans met een scansnelheid van 0,1 V / s en een sample-interval van 0,01 V). Fase twee (E-clean 2) Gedrag een andere reeks van elektrochemische oxidatie en reductie scans onder zure omstandigheden (0,01 M KCl/0.1 MH 2 SO 4) met betrekking tot vier verschillende potentiële bereik (alle uitgevoerd voor 10 segmenten op een scansnelheid van 0,1 V en een en een sample-interval van 0,01 V ): (i) de potentiële bereik 0,2 tot 0,75 V, (ii) potentieel van 0,2 tot 1,0 V, (iii) potentiële bereik 0,2 tot 1,25 V, (iv) potentieel van 0,2 tot 1,5 V. Veel soorten gouden elektroden kan worden gebruikt om deze experimenten uit te voeren. Naast de gouden schijf elektroden zoals die hier gebruikt, hebben we succes gehad met microfabricated goud oppervlakken, gouddraad, en goud op printplaten. Samen met de sensoren beschreven in dit document, hebben veel andere elektrochemische DNA biosensor architecturen gemeld. Dit omvat sensoren met een pseudoknot 12, triple 13 streng, sandwich 14, super sandwich 15, of triplex 16 architectuur. In de toekomst verwachten we dat deze sensoren worden gebruikt in de punt van zorg medische diagnostiek. Ze zijn met succes geïntegreerd in een aantal microfluïdische apparaten 17,18, en bieden vele voordelen ten opzichte van optische analyt detectiesystemen. In het bijzonder, kunnen deze sensoren functioneren in troebele, optisch dichte en zeer auto-TL-monsters.

<table border="1"><tbody><tr><th> Naam van het serum </th><th> Vennootschap </th><th> Catalogus nummer </th><th> Commentaar (optioneel) </th></tr><tr><td> Goud Disk Elektroden </td><td> CH Instrumenten </td><td> CHI101 </td><td> Kan worden hergebruikt </td></tr><tr><td> Synthetisch DNA Probe </td><td> Biosearch Technologies </td><td> Gewoonte </td><td></td></tr><tr><td> Synthetisch DNA Target </td><td> Sigma Genosys </td><td> Gewoonte </td><td></td></tr><tr><td> Mercaptohexanol </td><td> Sigma Aldrich </td><td> 725226-1G </td><td> Opslaan op een koele donkere plaats </td></tr><tr><td> Platina elektrode </td><td> BASI </td><td> MW-1032 </td><td> Kan worden hergebruikt </td></tr><tr><td> Ag / AgCl referentie </td><td> BASI </td><td> MF-2052 </td><td> Kan worden hergebruikt </td></tr><tr><td> Polishing Cloth </td><td> Buehler </td><td> 40-7212 </td><td></td></tr><tr><td> Alumina Pools </td><td> Buehler </td><td> 40-6325-016 </td><td></td></tr><tr><td> Fosfaat-gebufferde zoutoplossing Buffer, pH 7,4 </td><td> Sigma Aldrich </td><td> P7059-1L </td><td></td></tr><tr><td> CH Instrumenten 605A </td><td> CH Instrumenten </td><td> 605A </td><td> Gebruik een potentiostaat </td></tr><tr><td> Pasgeboren kalf Serum </td><td> Sigma Aldrich </td><td> N4637-500ML </td><td> In bevroren toestand bewaard </td></tr><tr><td> NanoDrop </td><td> Fisher Scientific </td><td> ND-2000 </td><td> Gebruik een UV-Vis </td></tr><tr><td> PCR-mix </td><td> Bio-Rad </td><td> 170-8862 </td><td> In bevroren toestand bewaard </td></tr><tr><td> Cocaïne </td><td> Sigma Aldrich </td><td> C5776 </td><td> DEA licentie vereist </td></tr><tr><td> Procaïne </td><td> Sigma Aldrich </td><td> P9879 </td><td> Substituut voor cocaïne </td></tr><tr><td> Anti-Flag antilichaam </td><td> Sigma Aldrich </td><td> F1804-1mg </td><td></td></tr></tbody></table>

fabricatie van elektrochemische-dna biosensoren voor de reagentless detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen

Fabrication of Electrochemical-DNA Biosensors for the Reagentless Detection of Nucleic Acids, Proteins and Small Molecules

Als medicijn is op dit moment beoefend, artsen sturen monsters naar een centraal laboratorium voor het testen en dus moet wachten uren of dagen om de resultaten te ontvangen. Veel patiënten beter gediend zou zijn door een snelle, bed tests. Daartoe ons laboratorium en anderen hebben een veelzijdig, reagentless biosensor-platform dat de kwantitatieve, reagentless, elektrochemische detectie van nucleïnezuren (DNA, RNA), eiwitten (waaronder antistoffen) en kleine moleculen analyten direct in onbewerkte klinische en milieumonsters ondersteunt. In deze video, tonen we aan de bereiding en het gebruik van verschillende biosensoren in deze &quot;E-DNA&quot; klasse. In het bijzonder, we fabriceren en demonstreren sensoren voor de detectie van een target DNA-sequentie in een polymerase kettingreactie mengsel, een HIV-specifieke antilichaam en de drug cocaïne. De voorbereiding procedure vereist slechts drie uur hands-on inspanning, gevolgd door een incubatie gedurende de nacht, en het gebruik ervan vergt slechts enkele minuten.

&quot;E-DNA&quot; sensoren, reagentless hebben elektrochemische biosensoren die goed presteren, zelfs wanneer direct uitgedaagd in het bloed en andere complexe matrices, aangepast aan de detectie van een breed scala van nucleïnezuur, eiwitten en kleine moleculen analyten. Hier presenteren we een algemene procedure voor de fabricage en het gebruik van dergelijke sensoren.

Fabricatie van elektrochemische-DNA Biosensoren voor de Reagentless detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen

Zoals de geneeskunde momenteel wordt beoefend, sturen artsen monsters naar een centraal laboratorium voor analyse en moeten zij daardoor uren of dagen wachten op de resultaten. ...

Het algemene doel van deze procedure is het prepareren en toepassen van elektrochemische DNA-sensoren. Dit wordt bereikt door eerst het probe-DNA te reduceren en vervolgens de gouden elektroden te reinigen waarop de sensoren worden opgebouwd. De volgende stap in de procedure is het aanbrengen van een thiol-op-goud zelfgeassembleerde monolaag die het probe-DNA bevat, op de gouden elektroden.Vervolgens wordt het oppervlak van de goudelektrode opgevuld met mercaptoethanol. Om te waarborgen dat er een volledige, goed gevormde monolaag wordt gecreëerd, bestaat de laatste stap van de procedure uit het toepassen van de sensoren op monsters zoals buffer, urine, serum of bloed. Uiteindelijk kunnen resultaten worden verkregen die de analytconcentraties weergeven via veranderingen in de piekspanning bij square wave- of wisselstroomvoltmeter.Deze techniek heeft verstrekkende implicaties voor de moleculaire diagnostiek, omdat deze sensoren vele verschillende biomarkers en geneesmiddelmoleculen direct in urine of serum kunnen detecteren. De heer Aaron Rowe, een promovendus in mijn onderzoeksgroep, zal de procedure demonstreren. Hij wordt bijgestaan door twee postdoc-onderzoekers die bij ons werken, dr. Ryan White en dr. Andrew Bonham.Om te beginnen koopt u de relevante probe-DNA bij een bedrijf voor aangepaste oligonucleotidesynthese; de probe wordt tijdens de synthese gemodificeerd door de toevoeging van een zes-koolstof thiol aan het 5'-uiteinde en een redox-actief methyleenblauw aan het 3'-uiteinde. Los het probe-DNA op om een oplossing te verkrijgen met een zichtbare blauwe tint, veroorzaakt door de methyleenblauw-groep. Verifieer de concentratie door de absorptie bij 260 nanometer te meten met een spectrophotometer om eventuele disulfidebindingen die in de probe-DNA-oplossing aanwezig kunnen zijn te reduceren. Meng één µL van de probe-DNA-stamboostoplossing met twee µL vers bereide TEP-oplossing.Meng de resulterende oplossing voorzichtig met een pipet. Incubeer het mengsel gedurende één uur in een donkere, gekoelde container. Tijdens de incubatie moet de blauwe oplossing helder worden, aangezien TEP het methyleenblauw reversibel reduceert.Verdun vervolgens de gereduceerde DNA-sondeo-oplossing met PBS-buffer tot de gewenste concentratie, die gewoonlijk tussen 25 en 1000 ligt. De preparatie van de molaire sensor begint met het mengen van 0,05 micron Illumina-poeder met water op een fijn polijstdoek. Gebruik dit doek om een set gouden schijfelektroden te polijsten door het gouden oppervlak stevig in het natte doek te drukken en deze gedurende ongeveer drie minuten per elektrode in een acht-patroon te bewegen.Spoel de gepolijste elektroden na het spoelen met gedeïoniseerd water. Dompel ze onder in EOR-buisjes gevuld met gedeïoniseerd water. Behandel de elektroden vervolgens vijf minuten lang met ultrasoon geluid om eventueel achtergebleven Illumina-poeder te verwijderen.Plaats de elektroden na sonicatie in een 0,5 molaire zwavelzuuroplossing. Plaats vervolgens een platina tegenelektrode en een zilver/zilverchloride-referentie-elektrode in de oplossing en sluit deze aan op een potentiostaat. Voer daarna een reeks voltammetrieën uit om de oppervlakken van de elektroden elektrochemisch te reinigen.De details van deze procedures zijn opgenomen in de schriftelijke aanvulling bij deze video en in een Nature Protocols-artikel dat eerder door deze groep is gepubliceerd. Voer vervolgens een tweede elektrochemische reiniging uit in een oplossing van KCl in zwavelzuur volgens de eerder beschreven procedure. Plaats daarna een reeks buisjes van twee milliliter in een rek en vul elk buisje met 200 µL van de probe-DNA-oplossing.De concentratie van de probe-DNA in deze oplossing bepaalt de dichtheid waarmee het probe-DNA op het sensoroppervlak wordt gepakt en moet voor elk nieuw type sensor worden geoptimaliseerd. Spoel de gouden schijfelektroden met gedeïoniseerd water. Dompel ze vervolgens gedurende één uur onder in de relevante probe-DNA-oplossing in een eppendorfbuisje.Op dit punt zal het sonde-DNA zich hechten aan het oppervlak van de gouden elektrode via de vorming van een thiol-op-goud zelfgeassembleerde monolaag. Spoel de elektroden opnieuw met gedeïoniseerd water en dompel ze vervolgens in 2 mM mercaptoethanol in een eppendorfbuisje. Hiermee wordt het oppervlak opgevuld, wat een volledige en stabiele zelfgeassembleerde monolaag waarborgt.Verzegel de elektroden in de einor-buis met parafilm om verdamping te voorkomen. Bewaar de ondergedompelde elektroden gedurende drie uur tot een nacht op kamertemperatuur op een donkere plaats om een volledige vorming van de zelfgeassembleerde monolaag te garanderen. Om de sensor na incubatie klaar te maken voor gebruik, spoelt u de sensor af met gedeïoniseerd water en laat u deze vervolgens ten minste 10 minuten weken in buffer.DNA-detectie met sensoren wordt gedemonstreerd met behulp van een sonde-streng van 17 nucleotiden die via een thiol aan het vijf-prime uiteinde is bevestigd aan een gouden elektrode; de sonde bevat een methyleenblauw redox-reporter aan het drie-prime uiteinde. Wanneer het sondemolecuul hybridiseert met een vangstreng, neemt de door de sensor geproduceerde elektrochemische stroom af. Spoel ter beginne een nieuwe sensor met gedeïoniseerd water en dompel deze onder in een blanco monster.Om het achtergrondsignaal vast te leggen, wordt een square wave-meting uitgevoerd van nul naar negatief 0,6 volt met een amplitude van 25 millivolt en een stapvoltage van één millivolt. De optimale square wave-frequentie is afhankelijk van de details van de probe-architectuur. Er zou een afgeronde piek moeten verschijnen bij ongeveer negatief 0,25 volt, het redoxpotentieel van methyleenblauw.De hoogte van de basislijnstroom tot aan deze piek is proportioneel aan de efficiëntie van de elektronenoverdracht tussen het methyleenblauw en de gouden elektrode. Sla deze achtergrondmeting op. Verplaats de elektroden vervolgens naar een oplossing die het doel-DNA-molecuul bevat en laat ze equilibreren.Als alternatief kan het doel-DNA worden toegevoegd aan de oplossing waarin de sensoren zijn ondergedompeld. Registreer een tweede square wave voltammogram. De hoogte van de piek bij negatieve 0,25 volt zal veranderen ten opzichte van de initiële achtergrondmeting.De omvang van deze verandering is gerelateerd aan de concentratie van de analyt. Dit vormt de belangrijkste outputdata van de sensor. Bereken na de meting de relatieve signaalverandering.Dit percentage is vaak reproduceerbaarder dan het meten van de absolute verandering in stroom, omdat het corrigeert voor variaties in het oppervlak tussen verschillende elektroden. Nadat de procedure is voltooid, kan de sensor worden geregenereerd zoals beschreven in de bijbehorende schriftelijke procedure voor antilichaamdetectie. Bij het gebruik van de sensoren dient methyleenblauw en thiol-gemodificeerd DNA als ankerstreng en wordt dit direct aan de gouden elektrode bevestigd.Dit wordt vervolgens gehybridiseerd met een tweede herkennings-DNA-streng die covalent is geconjugeerd aan het relevante antigeen. Hierna volgt een incubatie met een specifiek antilichaamtarget. Voer de hybridisatiestap uit door een geprefabriceerde sensor over te brengen naar een einor-buisje met 100 nM van de relevante herkenning.Incubeer de sensor gedurende één uur in PBS met DNA-streng. Volg dit met onderdompeling in PBS-buffer om alle niet-gehybridiseerde probes te verwijderen voordat de sensor in de blanco oplossing wordt geplaatst. Plaats de sensor vervolgens in de relevante blanco oplossing en breng een platina tegenelektrode en een zilver/zilverchloride referentie-elektrode aan in de oplossing.Bevestig de elektroden aan de potentiostaat. Voer square wave voltammetrie uit zoals eerder beschreven; de optimale square wave-frequentie voor de specifieke sonde-architectuur die in dit voorbeeld wordt gebruikt, is 60 hertz. Er zou een afgeronde piek moeten verschijnen rond negatief 0,25 volts.Sla deze achtergrondmeting op. Verplaats de elektroden na een incubatie van vijf tot 60 minuten naar een oplossing die de doelanalyt bevat en verzamel een tweede square wave voltammetrie. Als het doelantilichaam aanwezig is, zal de piek bij negatief 0,25 volt afnemen.De omvang van deze verandering is gerelateerd aan de antilichaamconcentratie. Om de detectie van kleine moleculen aan te tonen, is het probe-DNA op het sensoroppervlak een aptameer. Een aptameer is een DNA- of RNA-molecuul dat in vitro is geselecteerd om te binden aan een specifiek moleculair analyt.Aptameren kunnen vaak opnieuw worden ontworpen om hun structuur te veranderen. Bij een dergelijke binding verandert het hier gebruikte aptimeer van conformatie wanneer het bindt aan de drug cocaïne.Spoel eerst een nieuwe sensor af met gedeïoniseerd water en dompel deze onder in een blanco monster, waarin het doelwit ontbreekt, om het geproduceerde achtergrondsignaal te registreren. Plaats vervolgens een platina tegenelektrode en een zilver/zilverchloride-referentie-elektrode in de oplossing. Sluit de elektroden aan op de aansluitingen van een potentiostaat en voer square wave- of wisselstroomvoltammetrie uit.Zoals eerder beschreven, is de optimale vierkantsgolfrequentie voor de specifieke sondearchitectuur die hier wordt gebruikt 60 hertz. Opnieuw zou er een afgeronde piek moeten verschijnen rond negatieve 0,25 volts, welke moet worden opgeslagen als de achtergrondmeting. Breng de elektroden vervolgens over naar een oplossing die de doelanalyte bevat.Na een tweede incubatie wordt een tweede vierkante golf- of wisselstroomvoltammogram verzameld. De hoogte van de piek bij -0,25 volt zal veranderen. De omvang van deze verandering is gerelateerd aan de concentratie van de doelanalyt.Wanneer elektrochemische DNA-biosensoren worden gebruikt om DNA te detecteren met de hier beschreven probe-architectuur, moet het signaal met ten minste 60% afnemen. Na drie korte spoelingen met gedeïoniseerd water en equilibrium met een 200 nanomolair target, moet het signaal terugkeren naar 0,1 tot 5% van de oorspronkelijke waarde. Wanneer de hier beschreven sensoren worden gebruikt voor de detectie van antilichamen, moet het signaal bij binding van het antilichaam met 40 tot 80% afnemen. Omgekeerd vertonen aptameer-gebaseerde sensoren voor de detectie van cocaïne een signaaltoename tot 200% bij binding van kleine moleculen.De omvang van deze verandering is afhankelijk van de elektrochemische meetfrequentie en de oppervlaktebezetting op de sensoren. Voor de cocaïnesensor is een relatief lage oppervlaktebezetting optimaal. Zodra de methode onder de knie is, kunnen de fabricage en het gebruik van deze sensoren op één dag worden uitgevoerd.Het is belangrijk om bij het uitvoeren van deze procedure te onthouden dat parameters zoals de square-wave frequentie of de probedichtheid op het elektrode-oppervlak de sensorprestaties sterk beïnvloeden. Na het bekijken van deze video weet u hoe u elektrochemische DNA-biosensoren, aptameer-biosensoren en scaffold-biosensoren moet prepareren, en hoe u deze kunt gebruiken voor een breed scala aan basismetingen. De enige significante gevaren in dit protocol zijn het gebruik van zwavelzuur, dat uiteraard corrosief is; oogbescherming en handschoenen zijn verplicht.

fabrication-electrochemical-dna-biosensors-for-reagentless-detection

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

We beschrijven een elektrochemische sensor bepalingsmethode voor snelle bacteriële detectie en identificatie. De bepaling omvat een sensor-array gefunctionaliseerd met DNA oligonucleotide capture probes voor ribosomaal RNA (rRNA) species-specifieke sequenties. Sandwich hybridisatie van doelwit rRNA met de invangingsprobe en een mierikswortel peroxidase-linked DNA-oligonucleotide probe detector produceert een meetbare amperometrisch stroom.

Bacteriële Detection &amp; Identification gebruiken elektrochemische sensoren

We beschrijven het apparaat fabricage en meetprotocol voor koolstof nanobuis gebaseerde hoge frequentie biosensoren. De hoge frequentie sensing techniek vermindert de fundamentele ionische (Debye) screening effect en laat nanobuis biosensor in hoge ionische sterkte oplossingen waar conventionele elektronische biosensoren niet worden bediend. Onze technologie biedt een uniek platform voor point-of-care (POC) elektronische biosensoren die in fysiologisch relevante omstandigheden.

Fabricage van koolstof nanobuis High-Frequency Nano-elektronische biosensoren voor Sensing in High Ionic Strength Solutions

We presenteren een microfluidic gebaseerde elektrochemische biochip voor DNA hybridisatie detectie. Na ssDNA probe functionalisering, de specificiteit, gevoeligheid en detectielimiet bestudeerd met complementaire en niet complementaire ssDNA targets. De resultaten tonen de invloed van de DNA hybridisatie aan het elektrochemische systeem, met een detectielimiet van 3,8 nM.

A-Microfluidic gebaseerd Elektrochemische Biochip voor-Label vrij DNA hybridisatie-analyse

De synthese van asymmetrische soorten ferroceen is uitdagend met behulp van oplossingstechnieken. Dit rapport richt zich op de methoden die zijn uitgevoerd om een ferroceen-biotine bioconjugaat te produceren met behulp van eenvoudige en schone reacties die zijn uitgevoerd via vaste-fase synthese. Het is aangetoond dat de incorporatie van een thiolatgroep het vermogen geeft om te immobiliseren op goudoppervlakken.

Synthetische Methodologie voor Asymmetric Ferroceen Afgeleid Bio-conjugaat Systems via Solid Phase Resin-gebaseerde Methodologie

We beschrijven de belangrijkste stappen voor biosensing door gebruik te maken van polysilicon nanowire field-effect transistors, inclusief de voorbereiding van het apparaat en de immobilisatie en bevestiging van een DNA moleculaire sonde op het nanowire oppervlak, evenals de voorwaarden voor DNA sensing.

Bereiding van silicium Nanowire veldeffecttransistor voor chemische en biosensoren toepassingen

Nucleinzuren zijn gebruikelijke analyten voor het beoordelen van biologische systemen; echter kan vooringenomenheid door enzymatische manipulatie zorgwekkend zijn. Hier wordt een methode beschreven voor label-vrije detectie van nucleic zuren met behulp van polyaniline. Deze gevoelige, kosteneffectieve sensortechnologie kan enkelvoudige nucleotidenverschillen tussen moleculen onderscheiden.

Een polyaniline gebaseerde sensor van nucleïnezuren

Een microfluidic biosensor platform is ontworpen en vervaardigd met behulp van goedkope droge film fotoresist technologie voor snelle en gevoelige kwantificering van verschillende analyten. Deze eenmalig gebruik-systeem zorgt voor de elektrochemische uitlezing van enzyme-linked tests aan-chip-geïmmobiliseerd door middel van de techniek van de stop-flow.

Droge Film elektrochemische Microfluidic Biosensor fotoresist gebaseerde Platform: Apparaat Fabrication, On-chip Assay voorbereiding en werking van het systeem

Een protocol voor de ontwikkeling van een elektrochemische DNA biosensor bestaat uit een polylactic acid-gestabiliseerde, gouden nanodeeltjes gemodificeerde, gezeefdrukt koolstof elektrode voor het detecteren van Vibrio parahaemolyticus wordt gepresenteerd.

Ontwikkeling van een elektrochemische DNA Biosensor te detecteren een Foodborne Pathogen

De fabricage methode voor fijne interdigitated elektroden (gap en breedte: 20 µm) op het puntje van een hypodermische naald (diameter: 720 µm) wordt aangetoond door middel van een spray coating en soepel vlies photomask in het fotolithografie proces.

Fabricage van fijne elektroden op het puntje van een hypodermische naald met behulp van fotoresist Spray Coating en flexibele Photomask voor biomedische toepassingen

Een protocol voor de in vitro selectie en karakterisering van groepsspecifieke ftaalzuur ester-binding DNA aptamers wordt gepresenteerd. De toepassing van de geselecteerde aptamer in een elektrochemische aptasensor is ook inbegrepen.

Ftaalzuur Ester-Binding DNA Aptamer selectie, karakterisering en toepassing aan een elektrochemische Aptasensor

De op DNAzyme gebaseerde nanomachines kunnen worden gebruikt voor zeer selectieve en gevoelige detectie van nucleïnezuren. Dit artikel beschrijft een gedetailleerd protocol voor het ontwerp van op DNA gebaseerde nanomachines met een 10-23-kern met behulp van gratis software en hun toepassing bij de detectie van een Epstein-Barr-virusfragment als voorbeeld.

DNAzyme 10-23 - Op basis van nanomachines voor nucleïnezuurherkenning

Leer de fabricage van elektrochemische DNA-biosensoren voor reagentloze detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen in complexe biologische matrices zoals bloed en serum.

Fabricatie van elektrochemische-DNA Biosensoren voor de Reagentless detectie van nucleïnezuren, eiwitten en kleine moleculen

Meer video's verkennen