Name: Monitoring Equilibrium veranderingen in RNA structuur door Peroxidative en Oxidatieve hydroxyl radicaal Footprinting (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 41 s
Description: Leer hoe RNA-vouwing wordt gekwantificeerd met hydroxylradicaal footprinting. Deze methode gebruikt Fenton-reagentia en gel-elektroforese om tertiaire structuurvorming te analyseren.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door subsidies van de National Institute of Health RO1-GM085130 en National Science Foundation MCB0929394. Wij danken dr. Marion Schmidt voor haar gastvrijheid en voor het toestaan ​​ons te filmen in haar laboratorium.

1. De voorbereiding van Footprinting reagentia <ol><li> Bereid een 10x reactie buffer met 100 mM natrium cacodylate, 1 mM EDTA, en 1 M KCl. Stel de pH op 7,4. Filter de buffer met behulp van een 0,2 uM acetaat filter apparaat (Nalgene). Opmerking: niet pipet rechtstreeks in de RNA 10x buffer. </li><li> Bereid de titratie reactie mix voor elke reactie, zoals aangegeven in tabel 1. Het volume van de titratie mix (1x buffer en Mg (II) in de gewenste concentratie) moet 90 ul worden, voordat je 10μl van RNA in 1x buffer. </li><li> Bereid een RNAse T1 spijsvertering buffer met 6.63M Ureum, 20mm natriumcitraat, 1 mM EDTA, 0,25 ug / ul tRNA, 0,025% xyleen cyanol, en 0,025% broomfenolblauw. Deze buffer kan worden opgeslagen bij 4 ° C gedurende maximaal 6 maanden. </li><li> De Fenton reactie vereist vers bereide waterige oplossingen van 250 mM Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2, 250 mM EDTA en 500 mM natrium-L-ascorbaat. De concentraties vermeld in hoofdstuk 10,5 zijn optimaal voor evenwicht experimenten in buffer zoals natrium cacodylate die niet scharrelen radicalen en diverse tweewaardige ion concentraties. </li><li> Reagentia voor de peroxidative (1.5.1) en oxidatieve (1.5.2) voetafdruk reactie. <ol><li> De peroxidative Fenton reactie vereist een vers bereide waterige oplossingen van 100 mM Fe-EDTA-oplossing, en 50 mM natrium-L-ascorbaat en 1,5% H 2 O 2. De Fe-EDTA-oplossing wordt bereid door het mengen van Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 met EDTA tot 1,1 keer meer dan EDTA dan ijzer hebben. </li><li> Net voor de inleiding van de oxidatieve splitsingsreactie (3.4.2), maakt de Fenton reactie mix door het combineren van 2 pi van Fe (NH 4) 2 (SO 4) 2 (250 mm), 2,2 ul van EDTA (250 mm), 62,5 pl natrium-L-ascorbaat (500 mm), 22,5 ul 10x reactiebuffer en 135,5 ul van H 2 O tot de uiteindelijke concentraties te bereiken in het footprinting reactiemengsel (3.4.2) van 0.10 mM, 0,11 mM en 6,61 mM, respectievelijk. </li></ol></li></ol> 2. RNA Voorbereiding voor Footprinting Experiment <ol><li> RNA kan worden geproduceerd door standaard in vitro transcriptie van DNA-templates 6 of, indien korter dan 50 nucleotiden, worden gekocht (bijv. bij Integrated DNA Technologies, www.idtdna.com). Volg de aanbevolen laboratorium netheid procedures om te proeven integriteit van RNA te houden tijdens footprinting experimenten. 7 </li><li> Defosforylering 8 van in-vitro getranscribeerde RNA nodig is voor het 32 P de etikettering van het 5 'uiteinde van RNA. 10 pmol van RNA zijn eind-gelabeld door kinasing. 9 De oplossing moet troebel worden na een succesvolle inactivatie van fosfatase. </li><li> Zuiver radioactief gelabelde RNA met behulp van denaturerende gelelektroforese. Het RNA wordt teruggewonnen door twee latere gel extractie met behulp van 0,3 M natriumacetaat (pH 5,5). RNA wordt neergeslagen door het mengen van 0,5 ml waterige oplossing met 1 ml ethanol en de daaropvolgendeincubatie gedurende 1 minuut op droog ijs. Spin monster bij 4 ° C, 12500 rpm voor 0,5 uur. Verwijder het supernatant en was RNA pellet met 70% ethanol. Verwijder de bovenstaande vloeistof extra centrifugeren en droge pellet in vacuüm. </li><li> Los van de 32 P-gelabelde RNA monsters in 330 ul van 1x Buffer.Pipet 30 ul van de RNA-oplossing in een reageerbuis, neerslag met ethanol en droog RNA in vacuüm, houden deze buis voor het genereren van de referentie-ladder (stap 3.5). Denatureren de gebufferde RNA-oplossing door verhitting bij 95 ° C gedurende 2 minuten. Koel de monsters op kamertemperatuur gedurende 15 minuten en geven een snelle draai naar beneden te brengen van de condenseert op de deksels van de buizen terug in oplossing. </li></ol> 3. De Footprinting Experiment <ol><li> De electroforese kam bepaalt het maximum aantal datapunten per analytische gel. We maken gebruik van een 30 goed kam. De verwijzing ladder bezet twee putten en het niet-geknipte controle een. Bereid 27 reactie buizen. De laatste Mg (II) concentrations moet gelijkmatig worden gespreid op een logaritmische schaal verspreid over ordes van grootte rond de titratie midden. </li><li> Afzonderlijk, incubeer het RNA en de Mg (II)-oplossingen bij 50 ° C gedurende 5 minuten. Mix 10 ul van RNA-oplossing met 90 ul van het overeenkomstige bedrag van de Mg (II) in 1x buffer tot een eindvolume van 100 ui te komen. Incubeer de oplossingen gedurende 30 minuten bij 50 ° C. </li><li> Laat de oplossingen equilibreren bij 25 ° C gedurende 1 uur tijdens het vouwen optreedt. </li><li> Peroxidative (3.4.1) of oxidatieve (3.4.2) hydroxylradicaal voetafdruk reactie. <ol><li> Start de peroxidative reactie door het plaatsen van druppeltjes van 2 pi Fe-EDTA (100 mm), 2 pi natrium-L-ascorbaat (50 mm) en 2 pi H 2 O 2 (1,5%) van elkaar gescheiden aan de bovenkant binnenkant van de reactie buis die de RNA-oplossing en start de footprinting reactie door krachtig mengen. Stop de reactie na 15 seconden door de toevoeging van 300 ul koud absolute ethanol. Zet de buizen 3-5 keer. Neerslag, wassen endroog de pellet als in stap 2.4. </li><li> Start de oxidatieve hydroxylradicaal footprintingreaction door toevoeging van 5 ul van de vers bereide Fenton reactie mix (1.6). Incubeer gedurende 30 minuten bij 25 ° C. Voeg 300 ul van koude absolute ethanol aan de reactie en meng door het draaien van de buizen 3-5 keer doven. Neerslag, was en droog de pellet, zoals aangegeven in stap 2.4. </li></ol></li><li> Genereer een RNase T1 te verteren referentiemonsters volgens standaard procedures 10 met behulp van de bereide oplossing in stap 1.3. </li><li> Los RNA pellets in 8 ul gel geladen kleurstof II (Ambion) en bevestig RNA wordt geresuspendeerd met behulp van de geigerteller. </li><li> Bereid een denaturerende, 8% polyacrylamide sequencing gel volgens standaard protocollen. Load 11 monsters met inbegrip van twee referenties en een controle. Aparte RNA-fragmenten bij 60 W - 75 W voor 2,5 uur. Expose gedroogde gel naar een opslagplaats fosforscherm 's nachts. Scan fosfor scherm met een imaging systeem voor filmloze autoradiografie, bijvoorbeeld. Storm 865 (GE Healthcare) of Typhoon (GE Healthcare). Transfer gel image bestand op uw computer. </li></ol> 4. Data Analysis <ol><li> Het hydroxyl radicaal reactiviteit van elk nucleotide wordt bepaald door het kwantificeren van de intensiteit van elke band op de analytische gel. Downloaden, installeren en open SAFA, een makkelijk te open source software te gebruiken voor enkele band montage en kwantificering. 12, 13 Volg de handleiding instructies. Kortom, laadt u de RNA-sequentie als. Txt bestand, gevolgd door de gel beeld. Gel-bestand. Pas band intensiteiten, definieer de rijstroken, kiest u een anker rijstrook, en het uitvoeren van een gel uitlijning. Toewijzing van bands nucleotiden gebeurt met betrekking tot RNase T1 spijsvertering ladder. Kwantificeren van de band integralen en gebruik de normalisering / colorplot functie te normaliseren en wijs mogelijk invariant residuen. Sla de uitgang als een. Txt-bestand. </li><li> SAFA-uitgangen een spreadsheet met kolommen die rijstroken op de gel en rijen die de ingreerde band dichtheid van de individuele bands die overeenkomt met de RNA-fragment. De eerste, identificeren van de bescherming van sites die een merkbare verandering in solvent toegankelijkheid weer te geven door het vergelijken van de bescherming profiel afgeleid van de no Mg (II) monster met het profiel van het eindpunt Mg (II) concentratie (50 mM in ons voorbeeld). Hoe lager de waarde, hoe meer bescherming het nucleotide is tegen de aanval van hydroxyl radicalen en vice versa. </li><li> Maak vouwen isothermen van de genormaliseerde band integralen van individuele of groepen van nucleotiden versus Mg (II) concentratie. De isothermen zijn individueel geschaald naar fractionele verzadiging door fi = L + (U - L) • <img src="files/ftp_upload/3244/3244y.jpg" alt="Y"> waarbij f de geïntegreerde dichtheid van de band (s) geeft wordt geanalyseerd, L en U vertegenwoordigt de onder-en bovengrens voor de overgang en <img src="/files/ftp_upload/3244/3244y.jpg" alt="Y" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Y"> is fractionele verzadiging. 14 De gegevens zijn geschikt een niet-lineair l met behulp vanoosten vierkante analyse programma (We gebruiken ofwel Origin (OriginLab) of GraphPad (GraphPad Software, Inc.)) naar de Hill vergelijking (1), <img alt="Vergelijking 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244eq1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Vergelijking 1"> waar K d is het evenwicht dissociatieconstante, [M] komt overeen met de concentratie van de variabele die het vouwen reactie bemiddelt, Mg (II) in dit voorbeeld, en n H is de Hill coëfficiënt. Deze procedure schalen de overgang naar fractionele verzadiging, bepaalt haar middelpunt en geeft een fenomenologische test van de vraag of een overgang is sigmoïdale. Isothermen afgeleid van sequentie-gels (Figuur 3A), die werden geanalyseerd door de SAFA (Figuur 3B) en monteer zoals hierboven beschreven zijn weergegeven in figuur 3C. De fractionele verzadiging isothermen weergegeven in figuur 3 werden gegenereerd door de schaal in een spreadsheet de waarden die door SAFA tegen de beste pasvorm onder-en bovengrenzen (U en L) met behulp van de vergelijking fractie = waarde / (U - L) - L / (U - L). </li></ol> 5. Representatieve resultaten: Figuur 3 toont representatieve resultaten van P4-P6 RNA • OH voetafdruk experimenten. De gel afbeelding (links) geeft aan dat a) achtergrond decollete minimaal is (rechter rijbaan), b) single nucleotide opdracht is mogelijk door goed gedefinieerd bands in de T1-laan (RNase T1 splitst op elke G), en c) het hydroxyl radicaal geïnduceerde fragmentatie van RNA is ruim boven de achtergrond. De overgang van laag naar hoog Mg (II) is aangesloten bij afnemende geïntegreerde band dichtheid van individuele en groepen van banden met vermelding van de vorming van RNA tertiaire structuur. Enkele of groepen aaneengrenzende nucleotide waarvan decollete veranderingen gelijktijdig worden aangeduid als een 'bescherming'. De • OH beveiligingen kenmerk van de Mg (II) gemedieerde vouwing van de P4-P6 RNA sluiten nauw aan bij het ​​oplosmiddel ontoegankelijke gebieden van het molecuul waargenomen in de kristalstructuur. 15 Gevouwen RNA-moleculen c een zeer verschillende mate (dat wil zeggen, hoe dicht bij de achtergrond van de band dichtheden daling) van de tertiaire contact opnemen met de bescherming die nog niet zijn gecorreleerd met duidelijke structurele of dynamisch fenomeen. Zo zullen sommige RNA-moleculen tonen goed gedefinieerde structurele overgangen, zoals weergegeven in figuur 3, en sommige niet. Band intensiteiten zijn gekwantificeerd en genormaliseerd door de SAFA-12 analyse (Figuur 3B). De output is een 'thermische' plot het visualiseren van de relatieve mate van bescherming tegen • OH. De kleur overgang beschrijft de toegankelijkheid te wijzigen bij de Mg (II) toevoeging. Wit naar rood of blauw toont meer toegankelijk of meer beschermde nucleotiden, respectievelijk. Elke graad van de schaduw is verbonden met een numerieke waarde die kan worden uitgezet als een bescherming curve (Figuur 3C) en geanalyseerd door een model voor, zoals de Hill vergelijking (1). Het evenwicht dissociatieconstante aangesloten bij Protection 153-155 is ruwweg twee keer die van de overeenkomstige waarde van de bescherming 163-164. NHOUD "&gt; <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 1"> Figuur 1. Hydroxyl radicaal productie-en P4-P6 RNA vouwen. A) Fe (II) katalyseert de vorming van hydroxyl-radicalen uit waterstofperoxide. Ascorbaat vermindert Fe (III) terug naar ferro-ijzer. B) Bij gebrek aan Mg (II), is geen P4-P6 tertiaire structuur gevormd, waardoor hydroxyl-radicalen door te dringen en hang allemaal toegankelijk ruggengraat posities. Toevoeging van de Mg (II) initieert vouwen van de P4-P6, zodat alleen het oplosmiddel toegankelijk ruggengraat te worden gesplitst door de hydroxyl radicalen. <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig2.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 2"> Figuur 2. Schets van een hydroxyl radicaal voetafdruk experiment. A) Dephophorylation en 32 P 5'-uiteinde etikettering van RNA. B) Zuivering van 32 P-gelabelde RNA op een denaturerende polyacrylamide gel. C) Excisie van RNA band, de daaropvolgende RNA-extractie en ethanol precipitatie. D) Prefolding envouwen van RNA. E) Toevoeging van vers bereide Fenton reactiemengsel om de hydroxyl radicalen genereren. F) RNA fragment scheiding door denaturerende polyacrylamidegelelektroforese. G) Kwantificering van de RNA-fragmenten door de SAFA-software. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/3244/3244fig3.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figuur 3"> Figuur 3. Analyse van de RNA-fragmenten na peroxidative Fenton voetafdruk reactie. (A) Het RNA werd blootgesteld aan hydroxyl radicalen en de splitsing producten werden opgelost met behulp van denaturerende polyacrylamide gelelektroforese (PAGE). De foto toont peroxidative splitsingsproducten met een toenemende concentratie van Mg (II). Referentie-en rijstroken zijn gelabeld. Deze afbeelding is de input voor het SAFA-programma waarmee het volume van elke band quantitates. (B) De 'thermische' plot gegenereerd door SAFA. (C) Een spreadsheet van waarden in verband geïntegreerde band dichtheid aan nucleotide aantal output van SAFA is geanalyseerd door een model voor, zoals de Hill equatiop (1). Regio's van de bescherming werden gekozen op basis van de toename van de band integrale dichtheid als een functie van Mg (II) concentratie. De K d is de Mg (II) concentratie waarbij de helft van het RNA is gevouwen op de site wordt gecontroleerd. The Hill coëfficiënt, n H, is een maat voor de helling van de curve, die informatie geeft over de binding coöperativiteit en zorgt voor een lagere schatting voor het aantal van magnesium-ionen die betrokken zijn bij het ​​vouwen van deze bijzondere site. <img alt="Tabel 1" src="/files/ftp_upload/3244/3244table1.jpg" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tabel 1"> Tabel 1. Vertegenwoordiger volumes voor het genereren van RNA-monsters met verschillende Mg (II) concentraties.

<ol><li>Tullius, T. D., Dombroski, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl+radical+%22footprinting%22%3A+high-resolution+information+about+DNA-protein+contacts+and+application+to+lambda+repressor+and+Cro+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl radical "footprinting": high-resolution information about DNA-protein contacts and application to lambda repressor and Cro protein.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 83, 5469-5473 (1986).</li>
<li>Celander, D. W., Cech, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Iron%28II%29-ethylenediaminetetraacetic+acid+catalyzed+cleavage+of+RNA+and+DNA+oligonucleotides%3A+similar+reactivity+toward+single-+and+double-stranded+forms%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Iron(II)-ethylenediaminetetraacetic acid catalyzed cleavage of RNA and DNA oligonucleotides: similar reactivity toward single- and double-stranded forms.</a> Biochemistry. 29, 1355-1361 (1990).</li>
<li>Celander, D. W., Cech, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+the+higher+order+folding+of+a+catalytic+RNA+molecule%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Visualizing the higher order folding of a catalytic RNA molecule.</a> Science. 251, 401-407 (1991).</li>
<li>Sclavi, B., Sullivan, M., Chance, M. R., Brenowitz, M., Woodson, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+folding+at+millisecond+intervals+by+synchrotron+hydroxyl+radical+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">RNA folding at millisecond intervals by synchrotron hydroxyl radical footprinting.</a> Science. 279, 1940-1943 (1998).</li>
<li>Tullius, T. D., Dombroski, B. A., Churchill, M., Kam, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl+radical+footprinting%3A+a+high-resolution+method+for+mapping+protein-DNA+contacts%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl radical footprinting: a high-resolution method for mapping protein-DNA contacts.</a> Methods. Enzym. 155, 537-558 (1987).</li>
<li>Milligan, J. F., Groebe, D. R., Witherell, G. W., Uhlenbeck, O. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oligoribonucleotide+synthesis+using+T7+RNA+polymerase+and+synthetic+DNA+templates%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic.+Acids.+Res%22%5BJournal%5D)">Oligoribonucleotide synthesis using T7 RNA polymerase and synthetic DNA templates.</a> Nucleic. Acids. Res. 15, 8783-8798 (1987).</li>
<li>Schlatterer, J. C., Brenowitz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complementing+global+measures+of+RNA+folding+with+local+reports+of+backbone+solvent+accessibility+by+time+resolved+hydroxyl+radical+footprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Complementing global measures of RNA folding with local reports of backbone solvent accessibility by time resolved hydroxyl radical footprinting.</a> Methods. 49, 142-147 (2009).</li>
<li>Sambrook, J., Russell, D. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSambrook%2C+J+%22Molecular+Cloning%3A+A+Laboratory+Manual%22">Molecular Cloning: A Laboratory Manual</a>. , 3 ed, Cold Spring Harbor Laboratory Press: Cold Spring Harbor. New York. (2001).</li>
<li>Zaug, A. J., Grosshans, C. A., Cech, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence-specific+endoribonuclease+activity+of+the+Tetrahymena+ribozyme%3A+enhanced+cleavage+of+certain+oligonucleotide+substrates+that+form+mismatched+ribozyme-substrate+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Sequence-specific endoribonuclease activity of the Tetrahymena ribozyme: enhanced cleavage of certain oligonucleotide substrates that form mismatched ribozyme-substrate complexes.</a> Biochemistry. 27, 8924-8931 (1988).</li>
<li>Knapp, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+approaches+to+probing+of+RNA+secondary+and+tertiary+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Enzymatic approaches to probing of RNA secondary and tertiary structure.</a> Methods. Enzym. 180, 192-212 (1989).</li>
<li>Slatko, B. E., Albright, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Denaturing+gel+electrophoresis+for+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Denaturing gel electrophoresis for sequencing.</a> Curr. Protoc. Mol. Biol. Chapter 7, Unit 7.6-Unit 7.6 (2001).</li>
<li>Das, R., Laederach, A., Pearlman, S. M., Herschlag, D., Altman, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SAFA%3A+semi-automated+footprinting+analysis+software+for+high-throughput+quantification+of+nucleic+acid+footprinting+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">SAFA: semi-automated footprinting analysis software for high-throughput quantification of nucleic acid footprinting experiments.</a> RNA. 11, 344-354 (2005).</li>
<li>Simmons, K., Martin, J. S., Shcherbakova, I., Laederach, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+quantification+and+analysis+of+kinetic+%2AOH+radical+footprinting+data+using+SAFA%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Rapid quantification and analysis of kinetic *OH radical footprinting data using SAFA.</a> Methods. Enzym. 468, 47-66 (2009).</li>
<li>Uchida, T., He, Q., Ralston, C. Y., Brenowitz, M., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linkage+of+monovalent+and+divalent+ion+binding+in+the+folding+of+the+P4-P6+domain+of+the+Tetrahymena+ribozyme%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Linkage of monovalent and divalent ion binding in the folding of the P4-P6 domain of the Tetrahymena ribozyme.</a> Biochemistry. 41, 5799-5806 (2002).</li>
<li>Cate, J. H., Gooding, A. R., Podell, E., Zhou, K., Golden, B. L., Kundrot, C. E., Cech, T. R., Doudna, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal+structure+of+a+group+I+ribozyme+domain%3A+principles+of+RNA+packing%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Crystal structure of a group I ribozyme domain: principles of RNA packing.</a> Science. 273, 1678-1685 (1996).</li>
<li>Petri, V., Brenowitz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+nucleic+acids+footprinting%3A+thermodynamic+and+kinetic+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Quantitative nucleic acids footprinting: thermodynamic and kinetic approaches.</a> Curr. Opin. Biotechnol. 8, 36-44 (1997).</li>
<li>Takamoto, K., Das, R., He, Q., Doniach, S., Brenowitz, M., Herschlag, D., Chance, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+RNA+compaction%3A+insights+from+the+equilibrium+folding+pathway+of+the+P4-P6+RNA+domain+in+monovalent+cations%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Principles of RNA compaction: insights from the equilibrium folding pathway of the P4-P6 RNA domain in monovalent cations.</a> J. Mol. Biol. 343, 1195-1206 (2004).</li>
<li>Brenowitz, M., Senear, D. F., Shea, M. A., Ackers, G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+DNase+footprint+titration%3A+a+method+for+studying+protein-DNA+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Quantitative DNase footprint titration: a method for studying protein-DNA interactions.</a> Methods. Enzym. 130, 132-181 (1986).</li>
<li>Shcherbakova, I., Mitra, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydroxyl-radical+footprinting+to+probe+equilibrium+changes+in+RNA+tertiary+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">Hydroxyl-radical footprinting to probe equilibrium changes in RNA tertiary structure.</a> Methods. Enzym. 468, 31-46 (2009).</li>
<li>Howlett, G. J., Minton, A. P., Rivas, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analytical+ultracentrifugation+for+the+study+of+protein+association+and+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opinion.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analytical ultracentrifugation for the study of protein association and assembly.</a> Curr. Opinion. Chem. Biol. 10, 430-436 (2006).</li>
<li>McGinnis, J. L., Duncan, C. D., Weeks, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+SHAPE+and+hydroxyl+radical+analysis+of+RNA+structure+and+ribonucleoprotein+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzym%22%5BJournal%5D)">High-throughput SHAPE and hydroxyl radical analysis of RNA structure and ribonucleoprotein assembly.</a> Methods. Enzym. 468, 67-89 (2009).</li>
<li>Jonikas, M. A., Radmer, R. J., Laederach, A., Das, R., Pearlman, S., Herschlag, D., Altman, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coarse-grained+modeling+of+large+RNA+molecules+with+knowledge-based+potentials+and+structural+filters%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">Coarse-grained modeling of large RNA molecules with knowledge-based potentials and structural filters.</a> RNA. 15, 189-199 (2009).</li>
</ol>

Geen belangenconflicten verklaard.

Hydroxyl radicaal voetafdruk is een waardevol instrument om het oplosmiddel toegankelijke oppervlakte van nucleïnezuren te beoordelen. Kwalitatieve en kwantitatieve vorming van tertiaire structuur 14 kan worden gevolgd als een functie van parameters zoals ion type en de concentratie, pH, temperatuur, bindende eiwitten of vouwen co-factoren. De uitstekende combinatie van een straight forward en goedkoop protocol en de daaruit voortvloeiende oplosmiddel toegankelijkheid en vouwen informatie op een single-nucleo...

<table><tbody><tr><td>Naam</td><td>Bedrijf</td><td>Cat#</td><td></td></tr><tr><td>Natriumcacodylaat (Let op! Giftig) </td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C4945-25g</td><td></td></tr><tr><td>EDTA (0,5 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9260G</td><td></td></tr><tr><td>DEPC-behandeld water</td><td>Ambion</td><td>AM9915G</td><td></td></tr><tr><td>Natriumacetaat (3 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9740</td><td></td></tr><tr><td>MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; (1 M)</td><td>Ambion</td><td>AM9530G</td><td></td></tr><tr><td>Ureum</td><td>Ambion</td><td>AM9902</td><td></td></tr><tr><td>Natriumcitraat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>tRNA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R-7876</td><td></td></tr><tr><td>Natrium-L-ascorbaat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7631-25g</td><td></td></tr><tr><td>Fe(NH&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;(SO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;)&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; . 6 H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1543-500g</td><td></td></tr><tr><td>RNase T1</td><td>Fermentas</td><td>EN0541</td><td></td></tr><tr><td>Waterstofperoxide (30%)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>349887</td><td></td></tr></tbody></table>

monitoring equilibrium veranderingen in rna structuur door &#39;peroxidative&#39; en &#39;oxidatieve&#39; hydroxyl radicaal footprinting

Monitoring Equilibrium Changes in RNA Structure by 'Peroxidative' and 'Oxidative' Hydroxyl Radical Footprinting

RNA-moleculen spelen een essentiële rol in de biologie. Naast het overbrengen van genetische informatie, kan RNA vouwen in unieke tertiaire structuren vervullen van een specifieke biologische rol als regelgever, bindmiddel of katalysator. Informatie over de tertiaire formatie contact is essentieel voor de functie van RNA-moleculen te begrijpen. Hydroxyl-radicalen (• OH) zijn uniek probes van de structuur van nucleïnezuren vanwege hun hoge reactiviteit en de geringe afmetingen. 1 Bij gebruik als een footprinting probe, hydroxyl-radicalen kaart het oplosmiddel bereikbare buitenzijde van het fosfodiester ruggengraat van DNA en RNA een 2 met zo fijn als single nucleotide resolutie. Hydroxyl radicaal footprinting kan worden gebruikt om de nucleotiden in een intermoleculaire contact oppervlak, bijvoorbeeld in DNA-eiwit 1 en RNA-eiwit complexen te identificeren. Evenwicht 3 en kinetische vier overgangen kan worden bepaald door het uitvoeren van hydroxyl radicaal footprinting als een functie van een solutiop variabele of tijd, respectievelijk. Een belangrijk kenmerk van de voetafdruk is dat beperkte blootstelling aan de sonde (bijvoorbeeld &#39;single-hit kinetiek&#39;) resulteert in de uniforme bemonstering van elke nucleotide van het polymeer. 5 In deze video artikel, gebruiken we de P4-P6 domein van de Tetrahymena ribozym om RNA-monstervoorbereiding en het bepalen van een Mg (II)-gemedieerde vouwen isothermen illustreren. We beschrijven het gebruik van de bekende hydroxylradicaal footprinting protocol dat H 2 O 2 (we noemen dit de &#39;peroxidative &quot;protocol) en een waardevol, maar niet algemeen bekend, alternatief, dat van nature opgeloste O 2 gebruikt (we noemen dit vereist het&#39; oxidatieve &#39;protocol). Een overzicht van de datareductie, transformatie-en analyseprocedures wordt gepresenteerd.

Dit protocol beschrijft hoe het kwantificeren van de Mg (II)-afhankelijke vorming van RNA tertiaire structuur door twee methoden van hydroxyl-radicaal voetafdruk.

Monitoring Equilibrium veranderingen in RNA structuur door &#39;Peroxidative&#39; en &#39;Oxidatieve&#39; hydroxyl radicaal Footprinting

RNA-moleculen spelen een essentiële rol in de biologie. Naast het overdragen van genetische informatie kan RNA vouwen in unieke tertiaire structuren die ... vervullen

Het algemene doel van het volgende experiment is om vast te stellen hoe RNA-moleculen vouwen met behulp van hydroxylradicaal-footprinting. Dit wordt bereikt door eindlabeling, gelzuivering en voorafvouwen van het RNA, wat de conformationele integriteit van het RNA waarborgt voorafgaand aan de magnesium-gemedieerde vouwing; in een volgende stap worden de Fenton-reagentia gemengd om hydroxylradicalen te genereren, die vervolgens de RNA-backbone kunnen splitsen op basis van de toegankelijkheid voor het oplosmiddel. Vervolgens worden de RNA-splitsingsproducten gescheiden door denaturerende polyacrylamidegelelektroforese en gevisualiseerd via autoradiografie.De bandintegralen worden gekwantificeerd met semi-geautomatiseerde software voor footprinting-analyse. Het uiteindelijke doel is om vouwingsisothermen te genereren die de vorming van de tertiaire structuur van RNA weerspiegelen. Dit wordt bereikt door de genormaliseerde bandintegralen om te rekenen naar fractionele verzadiging.De isothermen kunnen vervolgens worden gefit aan de Hill-vergelijking. Het belangrijkste voordeel van hydroxy-footprinting is dat men informatie over de tertiaire structuur van RNA verkrijgt met behulp van goedkope chemicaliën; vanwege de hogere activiteit bij een kleine omvang zijn hydroxyradicalen uitstekende probes om onderscheid te maken tussen solvent-toegankelijke en begraven nucleotiden. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen in het vakgebied van de RNA-structurele biologie.Hoe gebruiken ribosomen bijvoorbeeld metaalionen om hun actieve conformatie te bereiken? Hydroxyradicaal-footprinting kan worden gebruikt om de fundamenten van RNA-specificiteit en -herkenning te begrijpen. Naast het onthullen van informatie over de tertiaire structuur van RNA, kan deze methode worden gebruikt om de precieze eiwitbindingsplaatsen in RNA- of DNA-moleculen te bepalen.De belangrijkste uitdagingen van deze methode zijn het voorkomen van monsterdegradatie door ribonuclease en het optimaliseren van de ijzerconcentratie om de juiste hoeveelheid RNA-splitsing te verkrijgen. Daarnaast kan de gedetailleerde analyse van de bandintervallen vrij complex zijn. Het hoofddoel van deze video is om de kijker te helpen bij het begrijpen van de planningsfasen en de succesvolle uitvoering van het hydroxylradicaal-footprintingexperiment. Bereid vóór de start van dit protocol alle footprinting-reagentia voor zoals beschreven in het schriftelijke protocol.Samen met deze video kan RNA worden geproduceerd met DFO's, vier verwante en uiteinde-gelabelde sequenties, zoals daar beschreven. Zuiver het radioactief gelabelde RNA met behulp van denaturerende gelelektroforese. Win het gezuiverde RNA terug via twee opeenvolgende gelextracties met 0,3 molair natriumacetaat.Precipiteer vervolgens het RNA door 0,5 milliliters van de waterige oplossing te mengen met één milliliter ethanol. Incubeer het mengsel gedurende één minuut op droogijs. Gooi na het centrifugeren van de sample de supernatant weg. Was de RNA-pellet met 70% ethanol.Verwijder het supernatant na aanvullende centrifugatie en droog het pellet in een vacuüm. Los vervolgens de gezuiverde P 32 gelabelde RNA-monsters op. Pipetteer 30 µL van de RNA-oplossing in een nieuwe reactiebuis met 330 µL van een één maal reactiebuffer.Precipiteer het RNA met ethanol en droog vervolgens de pellet in een vacuüm. Zodra deze gedroogd is, kan de pellet worden gebruikt voor het genereren van de referentieladder zoals beschreven in de schriftelijke procedure. Denatureer de resterende gebufferde RNA-oplossing door deze twee minuten te verhitten bij 95 °C. Laat de monsters 15 minuten afkoelen tot kamertemperatuur en volg dit met een korte centrifugatie (quick spin) om het condensaat weer in oplossing te brengen. Om te beginnen met het footprint-experiment, bereid 27 reactiebuisjes voor, voldoende monsters om een elektroforesegel van 30 putjes te vullen.Nadat de ladders en de gesplitste controle zijn toegevoegd, bepaalt u de uiteindelijke magnesiumionconcentraties, zodat deze gelijkmatig verdeeld zijn op een logaritmische schaal over verschillende grootteordes rond het middelpunt van de titratie; de bereiding van de magnesiumionen in één keer reactiebuffer wordt apart in de tekst beschreven. Incubeer het RNA en de magnesiumionoplossingen vijf minuten bij 50 °C. Meng vervolgens 10 µL van de RNA-oplossing met 90 µL van de overeenkomstige hoeveelheid magnesiumionoplossing.Om een eindvolume van 100 µL te bereiken, wordt elk mengsel 30 minuten geïncubeerd bij 50 °C. Laat de oplossingen vervolgens gedurende één uur equilibreren bij 25 °C, terwijl de RNA-vouwing plaatsvindt. Bereid ondertussen, direct vóór het starten van de hydroxylradicaal-footprintingreactie, het fantoomreactiemengsel voor zoals beschreven in het schriftelijke protocol.Bereid de peroxidatiereactie voor door druppels van telkens 2 µL ijzer-EDTA, natriumascorbaat en waterstofperoxide bovenin de reactiebuis met de RNA-oplossing te pipetteren, zodanig dat de druppels elkaar niet raken. Start de footprintingreactie door krachtig te mengen. Stop de reactie na 15 seconden door 300 µL pure koude ethanol toe te voegen.Draai de buisjes drie tot vijf keer. Precipiteer, was en droog tenslotte het pellet zoals eerder uitgevoerd. Als alternatief voor de peroxidatieve reactie kan de oxidatieve hydroxylreactie worden uitgevoerd door vijf µL van de vers bereide Fenton-reactiemix aan de monsters toe te voegen. Incubeer de oxidatieve reactie 30 minuten bij 25 °C.Voeg vervolgens 300 µL pure koude ethanol toe om de reactie te stoppen en meng door de buisjes te draaien. Precipiteer opnieuw. Was en droog het pellet na voltooiing van zowel de peroxidatieve als de oxidatieve reactie.Los de gedroogde RNA-pellets op in acht µL van gel-laadkleurstof twee. Bevestig met een geigerteller dat het P 32-gelabelde RNA is geresuspendeerd. Bereid een denaturerende 8% polyacrylamide sequencinggel voor volgens standaardprotocollen. Laad de monsters, inclusief twee referenties en een gesplitste controle, met behulp van een kam met 30 putjes.Scheid de RNA-fragmenten gedurende twee en een half uur bij 60 tot 75 watt. Stel de gedroogde gel gedurende de nacht bloot aan een fosfor scherm voor opslag. Scan het fosfor scherm met een imaging-systeem voor filmloze autoradiografie.Zet vervolgens het gelafbeeldingsbestand over naar de computer voor analyse. Om de gegevensanalyse te starten, opent u Safa en open-source software voor single band fitting en kwantificatie. Laad de RNA-sequentie als een .TXT-bestand, gevolgd door de gelafbeelding als een .gel-bestand.Definieer de banen en pas de bandintensiteiten aan. Kies vervolgens een ankerbaan en voer een geluitlijning uit waarbij banden worden toegewezen aan nucleotiden in relatie tot de RNA's T one digestieladder. Kwantificeer de bandintensiteiten en gebruik de normalisatie/kleurplot-functie om te normaliseren en potentieel invariante residuen toe te wijzen.Sla de output op als een txt-bestand. SFA genereert een spreadsheet met kolommen die de banen op de gel vertegenwoordigen en rijen die de individuele bandintegralen van het RNA-fragment vertegenwoordigen. Ten eerste moeten de beschermingsplaatsen die een merkbare verandering in oplosmiddeltoegankelijkheid vertonen worden geïdentificeerd door het beschermingsprofiel van de monster zonder magnesiumionen te vergelijken met het profiel van de eindconcentratie magnesiumionen.Hoe lager de waarde, hoe beter het nucleotide is beschermd tegen aanval door hydroxylradicalen en vice versa. Maak vervolgens transitiecurven van bandintensiteiten van individuele nucleotiden of groepen nucleotiden tegenover de magnesium-ijzerconcentratie met behulp van een spreadsheetformaat; schaal deze transities individueel naar de fractionele verzadigingsfunctie zoals beschreven in het tekstgedeelte van dit protocol. Pas als laatste stap de gegevens aan op de Hill-vergelijking.Deze analyse schaalt de overgang naar fractionele verzadiging, bepaalt het middenpunt van de overgang en biedt een fenomenologische test om vast te stellen of een getoonde overgang sigmoïdaal is. Hier zijn representatieve resultaten van hydroxylradicaal-footprintingexperimenten met P four P six RRNA. Isothermen zijn afgeleid van sequencinggels die door Safa zijn geanalyseerd en vervolgens zijn gefit zoals beschreven in het analysegedeelte.De gelafbeelding geeft aan dat de achtergrondsplitsing minimaal is en dat toewijzing van enkelvoudige nucleotiden mogelijk is dankzij goed gedefinieerde banden in de T-baan. De door hydroxylradicalen geïnduceerde fragmentatie van RNA ligt ruim boven de achtergrond. De overgang van lage naar hoge magnesiumionconcentraties is selectief geassocieerd met een afnemende intensiteit van individuele banden en groepen banden, wat duidt op de vorming van RNA.Bescherming van de tertiaire structuur verwijst naar enkele of groepen aaneengesloten nucleotiden waarvan de splitsing gelijktijdig veranderingen in bandintensiteiten teweegbrengt; deze worden gekwantificeerd en genormaliseerd via saffer-analyse. De output is een thermisch diagram dat de mate van bescherming tegen hydroxylradicalen visualiseert. De kleurovergang beschrijft de verandering in toegankelijkheid na toevoeging van magnesium-ijzer: wit naar rood duidt op meer toegankelijke nucleotiden, terwijl wit naar blauw duidt op meer beschermde nucleotiden.Elke graad van schaduwvorming is gekoppeld aan een numerieke waarde, die kan worden uitgezet als een beschermingscurve en geanalyseerd kan worden met een bindingsmodel zoals de Hill-vergelijking. In dit voorbeeld is de evenwichtsdissociatieconstante die geassocieerd is met protectie 1 5 3 tot 1 5 5 ongeveer twee keer zo groot als de overeenkomstige waarde van protectie 1 6 3 tot 1 6 4. Dit experiment voor hydroxylradicaal-footprinting kan in anderhalve dag worden voltooid indien dit correct wordt uitgevoerd.Tijdens het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om handschoenen en een laboratoriumjas te dragen om RNA-contaminatie te voorkomen. Daarnaast hangt de uiteindelijke ijzerconcentratie af van het experimentele systeem. Daarom raden we aan om een dosis-responsexperiment uit te voeren voordat u overgaat tot footprinting volgens deze procedure.Andere methoden, zoals tijdsongeloopte hydroxyradicaal-footprinting, kunnen worden uitgevoerd om aanvullende vragen te beantwoorden. Bijvoorbeeld: op welk kritiek tijdstip bereiken RNA-moleculen na hun ontwikkeling een misgevouwen of actieve conformatie? Deze techniek heeft de weg vrijgemaakt voor onderzoekers in het veld van de structurele biologie om zowel inter- als interim-tertiaire moleculaire interacties van nucleïnezuren te onderzoeken.Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u de vorming van de tertiaire structuur van RNA-moleculen kunt bepalen. Houd er rekening mee dat er bij bepaalde stappen gevaarlijke stoffen worden gebruikt; voorzorgsmaatregelen, zoals het dragen van handschoenen en een veiligheidsbril, alsook het gebruik van een plexiglas scherm, worden aanbevolen tijdens het uitvoeren van deze procedure.

monitoring-equilibrium-changes-rna-structure-peroxidative-oxidative

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

High-throughput selectieve 2-hydroxyl acylering geanalyseerd door primerverlenging (SHAPE) gebruikt een nieuwe chemische indringende techniek, reverse transcriptie, capillaire elektroforese en secundaire structuur predictie software om de structuren van RNA bepalen van enkele honderden tot enkele duizenden nucleotiden aan nucleotide resolutie.

RNA secundaire structuur Voorspelling behulp van High-throughput SHAPE

Radicaal gebaseerde biomimetische chemie werd toegepast op opbouw libraries nodig biomarkerontwikkeling.

Free Radicals in Chemical Biology: van chemische gedrag tot Biomarker Development

Hier presenteren we een protocol voor DNAzyme-afhankelijke splijting van RNA. Dit maakt een snelle en site-afhankelijke analyse van RNA 2 '-O-Methylation mogelijk. Deze aanpak kan worden gebruikt voor de voorlopige of belangrijke beoordeling van de activiteit van snoRNA.

DNAzyme-afhankelijke analyse van rRNA 2 '-O-methylatie

We beschrijven hier methoden voor gevoelige en accurate kwantificering van de laesies 8-Oxo-7, 8-dihydro-2'-deoxyguanosine (8-oxodGuo), 1, n6-etheno-2'-deoxyadenosine (1, n6-dAdo) en 1,n2- etheno-2'-deoxyguanosine (1,N2-dGuo) in DNA. De methoden werden toegepast op de beoordeling van de effecten van de omgevings fijn stof (PM2,5) in weefsels (Long, lever en nier) van blootgestelde A/J muizen.

Kwantificering van drie DNA-laesies door massaspectrometrie en beoordeling van de niveaus in weefsels van muizen die worden blootgesteld aan omgevings fijne deeltjes

In vivo snelle fotochemische oxidatie van eiwitten (IV-FPOP) is een hydroxyl radicale eiwit footprinting techniek die het mogelijk maakt voor het in kaart brengen van eiwitstructuur in hun eigen omgeving. Dit protocol beschrijft de assemblage en opzet van het IV-FPOP microfluidic flow systeem.

In Vivo Hydroxyl Radical Protein Footprinting voor de studie van eiwitinteracties in Caenorhabditis elegans

Hier karakteriseren we eiwitstructuur en interactiesites in levende cellen met behulp van een eiwitvoetafdruktechniek genaamd in-cell fast fotochemische oxidatie van eiwitten (IC-FPOP).

Kenmerkend voor cellulaire eiwitten met in-cell snelle fotochemische oxidatie van eiwitten

Kinetische cross-linking en analyse van cDNA is een methode die onderzoek mogelijk maakt naar de dynamiek van eiwit-RNA interacties in levende cellen met een hoge temporele resolutie. Hier wordt het protocol in detail beschreven, inclusief de groei van gistcellen, UV-crosslinking, oogsten, eiwitzuivering en voorbereidingsstappen voor de volgende generatie sequencingbibliotheek.

Monitoring van eiwit-RNA interactiedynamica in vivo bij hoge temporele resolutie met behulp van χCRAC

Snelle fotochemische oxidatie van eiwitten is een opkomende techniek voor de structurele karakterisering van eiwitten. Verschillende oplosmiddel additieven en liganden hebben verschillende hydroxyl radicale opruimeigenschappen. Om de eiwitstructuur in verschillende omstandigheden te vergelijken, is real-time compensatie van hydroxylradicalen die in de reactie worden gegenereerd nodig om reactieomstandigheden te normaliseren.

Real-Time Compensatie mogelijk maken in snelle fotochemische oxidaties van eiwitten voor de bepaling van veranderingen in eiwittopografie

Dit protocol presenteert een methode om inline radicale dosimetrie en een plasma lichtbron te gebruiken om flash oxidatie eiwit footprinting uit te voeren. Deze methode vervangt de gevaarlijke UV-laser om de reproduceerbaarheid van snelle fotochemische oxidatie van eiwitstudies te vereenvoudigen en te verbeteren.

Laservrije hydroxyl radicale eiwitvoetafdruk om structurele analyse van eiwitten in hogere orde uit te voeren

MALDI-TOF werd gebruikt om fragmenten te karakteriseren die werden verkregen uit de reactiviteit tussen geoxideerd RNA en het exoribonuclease Xrn-1. Dit protocol beschrijft een methodiek die toepasbaar is op andere processen waarbij RNA en/of DNA betrokken is.

Identificatie van RNA-fragmenten als gevolg van enzymatische degradatie met behulp van MALDI-TOF-massaspectrometrie

Het protocol geeft instructies voor het modificeren van RNA met dimethylsulfaat voor mutatieprofileringsexperimenten. Het omvat in vitro en in vivo tasten met twee alternatieve bibliotheekvoorbereidingsmethoden.

Onderzoekende RNA-structuur met dimethylsulfaatmutatieprofilering met sequencing in vitro en in cellen

Leer hoe RNA-vouwing wordt gekwantificeerd met hydroxylradicaal footprinting. Deze methode gebruikt Fenton-reagentia en gel-elektroforese om tertiaire structuurvorming te analyseren.

Monitoring Equilibrium veranderingen in RNA structuur door 'Peroxidative' en 'Oxidatieve' hydroxyl radicaal Footprinting

Meer video's verkennen