31 oktober 2011
Dit artikel geeft de protocollen van de intrinsieke optische signalen en flavoproteins autofluorescentie signalen beeldvorming in kaart geur-opgeroepen activiteiten op het oppervlak van het reukorgaan in muizen.
Het algemene doel van dit experiment is om geur-geëvoegde activiteiten op het oppervlak van de reukbol van muizen in kaart te brengen met behulp van intrinsieke optische signalen en autofluorescente flavoproteïnesignalen of FAS-beeldvorming nadat de muis is verdoofd en de schedel is blootgesteld. Het bot boven de reukbol wordt verdund. Een botflap wordt getekend met de punt van een scalpelmes en vervolgens verwijderd. Er wordt een kamer gemaakt van tandcement en omringt het blootgestelde oppervlak van de reukbol.
Het is gevuld met aros en een dekglas wordt op deze voorbereiding geplaatst. Reukkaarten worden sequentieel verkregen in dezelfde muis met behulp van intrinsieke optische signalen en FAS-beeldvorming. Het beeldvormen van andere geëvoegde activiteiten in de reukbol van de muis met behulp van optische reflectie en autofluorescente signalen kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen over de speciale coating van bestellingen in de reukbol. Het grote voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden zoals twee doxy glucose beeldvorming of FMRI is dat het mogelijk maakt om order geëvoegde activiteiten op te nemen met een speciale resolutie van een enkele glamourlijst.
Over het algemeen zullen individuen die nieuw zijn met deze methoden aan het begin van hun werk moeilijkheden ondervinden omdat zowel chirurgische als instrumentele vaardigheden langzaam te verwerven zijn. Visuele demonstratie van deze methode is cruciaal om de aandacht te vestigen op de cruciale stappen van de chirurgische en beeldvormingsprocedures. Knijp in de achterste poot van de muis om de verdoving te bevestigen en verwijder het haar van de hoofdhuid met behulp van een haartrimmer.
Veeg eventueel overgebleven haar van de huid met steriel gaas gedrenkt in gedestilleerd water. Plaats de muis in het stereotaxische frame zodat de snuit zich in hetzelfde vlak bevindt als de achterkant van het hoofd. Om de reukbol horizontaal te positioneren, moet u de oor- en neusstaven stevig bevestigen om beweging te voorkomen.
Breng ooglijmiddel aan op de ogen om uitdroging tijdens de beeldvorming te voorkomen en desinfecteer vervolgens het hoofdhuidgebied met Betadine met behulp van steriele schaar. Maak een insnijding aan de achterkant van het hoofd tussen de oren, snijd vervolgens aan beide kanten naar de basis van het oor en in de voor-achterrichting naar het voorhoofd langs de oogleden. Voltooi het verwijderen van de hoofdhuid door de huid op de snuit door te snijden.
Gebruik de neusstaaf als gids. Plaats het dier onder een stereomicroscoop en gebruik een wattenstaafje gedrenkt in fysiologisch zout om het periosteum op de bovenkant van de schedel voorzichtig los te maken. Gebruik een paar pincetten om het resterende weefsel te verwijderen en schraap het oppervlak van de schedel met een scalpel om een schone voorbereiding te garanderen om het gebied van de reukbol gedurende het hele experiment vochtig te houden.
Plaats een stuk absorberbaar gelatine, spons gedrenkt in gedestilleerd water op het bot boven de reukbol tussen de ogen. Verwijder de gelatinespons en begin met voorzichtig schrabben van het bot met een scalpelmes nummer 10. Houd een constante hoek van 45 graden tussen het mes en het bot en beweeg het mes van de oogleden naar de sagittale kant van het bulbgebied.
Wees voorzichtig om geen verticale druk op het bot uit te oefenen of het bot boven de veneuze sinus te krabben tijdens het verdunningsproces. Stop elke vijf minuten en plaats een gehydrateerde gelatinespons op het bot om de voorbereiding af te koelen. Veeg de schedel met het sponsje om bot, stof te verwijderen en veeg periodiek het uiteinde van het scalpel om het schoon en scherp te houden.
Ga door totdat de sponsachtige botlaag of trabecula zichtbaar is. Wanneer de fijne vaat van de reukbol zichtbaar is, stop met het krabben van het bot en gebruik de punt van een nummer 11 scalpel om een rechthoekig gebied te tekenen en de reukbol te sluiten. Houd het raam binnen de grenzen van de veneuze sinussen en ga door met het krabben van het bot binnen het rechthoekige gebied.
Wees extra voorzichtig met de diepte van de punt van het scalpel om de dura-oppervlakte niet aan te raken. Om een idee te krijgen van de dikte van het resterende bot, duwt u het voorzichtig met de punt van een para-pincet. Als het bot onder druk buigt, gaat u naar de volgende stap.
Voeg een druppel fysiologisch zout toe en gebruik de punt van het scalpel horizontaal georiënteerd om het botflapje op te tillen. Verwijder voorzichtig de flap met pincetten om te voorkomen dat het resterende bot afscheurt. Zodra het oppervlak van de reukbol is blootgelegd, controleert u op afwezigheid van bloedingen of bloedvaten. Anastomose.
Veeg het gebied schoon met een gelatinespons gedrenkt in fysiologisch zout. Om de reukbol vochtig te houden, brengt u poly acrylaat tandcement aan met behulp van een 29 gauge spuit om een putje op het bot rond het schedelvenster te vormen. Plaats een druppel laagsmeltend aros over de dura en plaats een steriele dekglas over het schedelvenster voor beeldvorming.
Plaats het stereotaxische frame onder de stereomicroscoop met het schedelvenster gecentreerd in het gezichtsveld om de haarvaten in beeld te brengen. Schakel naar groen licht van 580 nanometer en maak een anatomisch controlebeeld om de staat van de voorbereiding tijdens de beeldvorming te controleren. Ga vervolgens door met het vastleggen van de stimulatieproeven met behulp van ofwel intrinsieke optische signaalbeeldvorming onder 630 nanometer verlichting of flavoproteïne autofluorescente signaalbeeldvorming Onder 480 nanometer verlichting. Een standaard beeldvormingssessie omvat een basislijn van vijf tot tien seconden waarbij alleen lucht wordt aangeleverd, gevolgd door de geurstimulatie gedurende drie tot tien seconden, afhankelijk van de gekozen geurconcentratie.
En tenslotte wordt 70 tot 82 seconden luchttoevoer geregistreerd voor basislijnherstel. Hierbij wordt de vaat van de reukbol beeldvormd via het schedel
Dit artikel presenteert protocollen voor het in beeld brengen van intrinsieke optische signalen en autofluorescentiesignalen van flavoproteïnen om geur-evoqueerde activiteiten op het oppervlak van de bulbus olfactorius bij muizen in kaart te brengen. De beschreven methoden maken resolutie-rijke beeldvorming van de activiteit in de bulbus olfactorius mogelijk, wat inzicht biedt in de neurale mechanismen van reuk.
Het in kaart brengen van geur-opgewekte neurale activiteit in de bulbus olfactorius ondersteunt de validatie van targets bij de ontdekking van neurowetenschappelijke geneesmiddelen door de visualisatie mogelijk te maken van functionele neurale circuits die betrokken zijn bij sensorische verwerking. Deze benadering biedt mechanische risicovermindering voor verbindingen die gericht zijn op olfactorische paden of aanverwante neurologische aandoeningen door moleculaire interventies te koppelen aan meetbare veranderingen in neurale activatiepatronen. De techniek verhoogt het voorspellende vertrouwen in de vroege ontdekkingsfase door een ziekterelateerd systeem te bieden om target-engagement en effecten op circuitniveau te beoordelen voorafgaand aan fenotypische screening.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm, van hypothesetesten in de vroege ontdekkingsfase tot lead-identificatie en preklinische validatie, door read-outs van neurale activiteit te leveren die bijdragen aan de zekerheid over het target en het mechanistische begrip.