Name: Het induceren van dendritische groei in gekweekte sympathische neuronen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-21T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: Leer hoe u dendritische groei induceert in gekweekte sympathische neuronen met BMP-7 of Matrigel. Deze methode maakt gecontroleerde manipulatie van neuritische uitgroei mogelijk voor onderzoek naar neurale ontwikkeling.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door de financiering van de National Institutes of Health (subsidies R21 NS45037 en R01 ES014901).

1. Voorbereiding van Cultuur Medium (C2 medium) <ol><li> Voeg de volgende, in de aangegeven volgorde, in een steriele, disposable 500 ml Erlenmeyer: <table border="1"><tbody><tr><td> Bedragen </td><td> Bestanddeel </td><td> Eindconcentratie </td></tr><tr><td> 190 ml </td><td> DMEM (lage glucose) </td><td> N / A </td></tr><tr><td> 10 ml </td><td> vetzuur vrij BSA (20mg/ml in DMEM) </td><td> 50 ug / ml </td></tr><tr><td> 2,8 ml </td><td> L-Glutamine </td><td> 1,4 mM </td></tr><tr><td> 4 ml </td><td> insuline / transferrine / selenium (100x) </td><td> 10 ug / ml insuline 5,5 ug / ml 38,7 transferrine nM selenium </td></tr><tr><td> 0,4 ml </td><td> NGF (125 ug / ml) </td><td> 100 ng / ml </td></tr><tr><td> 200 ml </td><td> Ham F-12 </td><td> N / A </td></tr></tbody></table></li><li> Roer voorzichtig to mix en hoeveelheid van 10 ml per buis in 17 x 100 steriele klikdop buizen. </li><li> Bewaar bij -80 ° C </li><li> Belangrijke opmerkingen: <ul type="disc"><li> Ontdooi NGF onmiddellijk voorafgaand aan gebruik. </li><li> Voordat aliquoting de NGF voorraadoplossing, voorstrijken de binnenmuren van de weefselkweek plastic serologische pipet met eiwit te minimaliseren kleven van NGF aan de kunststof. Gemakkelijkste aanpak is om Pipetteer de DMEM mengsel dat de BSA een paar keer. Spoel de NGF buis meerdere malen met de DMEM mengsel. </li><li> Voeg F-12 laatste omdat vrije cysteine ​​kan disulfidebindingen destabiliseren in de insuline. </li><li> Niet in de vriezer in hoeveelheden van meer dan 10 ml, omdat CAPO vier kristallen kunnen vormen </li><li> Niet in de vriezer ontdooien C2-medium meer dan 2 keer. </li></ul></li></ol> 2. Voorbereiding van de dekglaasjes <ol><li> We hebben gemerkt dat alleen fijne Duitse dekglaasjes consequent werken in dit protocol (zie tabel 1 voor de aanbevolen bron en catalogusnummer). </li><li> Voeg 75-100 ml 70% salpeterzuur tot 300 ml glazen exemplaar flessen met polytetrafluorethyleen (PTFE of Teflon) deksel liners (Fisher catalogus # 09-911-765). </li><li> Het dragen van handschoenen, drop dekglaasjes een voor een in salpeterzuur. Voeg genoeg dekglaasjes een laag niet meer dan 2-3 dekglaasjes dik op de bodem van de fles te maken. </li><li> Schud de containers met de dekglaasjes gedurende 6-8 uur bij kamertemperatuur op een schudapparaat set niet meer dan 185 rpm. </li><li> Werken in een zuurkast, zorgvuldig decanteer het zuur en afvoeren volgens de lokale voorschriften. Een keer Spoel dekglaasjes met ultra-pure weefselkweek-grade water, voeg dan 75-100 ml water in de container. Dekglaasjes, kan gespoeld meerdere keren als het water troebel wordt. Schud bij kamertemperatuur &#39;s nachts op een rondschudapparaat set voor niet meer dan 185 toeren per minuut. </li><li> Herhaal de bovenstaande volgorde van salpeterzuur / weefselkweek-grade water per dag voor een totaal van 3 dagen. </li><li> Schenk de laatsteweefselkweek-grade water en voeg genoeg aceton om nauwelijks dekking van de dekglaasjes. </li><li> Giet dit aceton en afvoeren naar behoren. </li><li> Overdracht dekglaasjes tot een 150 mm glazen petrischaal. Voeg genoeg aceton om nauwelijks dekking van de dekglaasjes. Zorg ervoor dat de dekglaasjes zijn in een enkele laag in de schaal. </li><li> Laat de aceton om &#39;s nachts verdampen in een zuurkast. </li><li> Bak dekglaasjes in een droogoven bij 180 ° C gedurende 1,5 uur steriliseren. </li></ol> 3. Voorbereiding van Dekglaasjes voor Cultuur <ol><li> De dag voor de ontleding voeg 1 glas dekglaasje (bereid zoals hierboven beschreven) aan elk putje van een 24 goed weefselkweek plaat met steriele techniek. Voeg 200 ul steriel poly-D-lysine (100 mg / ml in 0,5 M Tris-buffer, pH 8) aan elk putje en opslaan van de plaat bij 4 ° C geroerd. </li><li> De dag van de dissectie, en liefst voor aanvang van de dissectie, zuigen de poly-D-lysine oplossing van elk putje en was elke well 5 keermet een steriele weefselkweek kwaliteit water. </li><li> Voeg 200 ul low-glucose DMEM met elke plaat en op te slaan in 37 ° C incubator. Ongeveer 1 uur voor plating cellen, verwijder lage glucose DMEM en voeg 250 ul C2 medium per well. Winkel platen bij 37 ° C onder 5% CO2 tot cellen bereid worden uitgeplaat. </li></ol> 4. Dissection en isolatie van de Hoge cervicale ganglion <ol><li> Gescheiden culturen van sympathische neuronen worden gewoonlijk bereid door dissociatie van superieure cervicale ganglia (SCG) geoogst van prenatale (embryonale dag 19-21) jonge ratten omdat er minder gliacellen. Dit kan echter hetzelfde protocol met succes worden gebruikt met vroege postnatale (1 tot 3 dagen oud) jonge ratten of perinatale muis pups. </li><li> Euthanaseren zwangere ratten via CO 2 inademing. Scheer de buik en was de huid met 70% ethanol. Verwijder de baarmoederhoorns onder steriele omstandigheden en plaats de baarmoederhoorns in een steriele 150 mm petrischaal. Vermijdenschade aan de darmen of andere inwendige organen van de dam tijdens de dissectie. </li><li> Plaats de petrischaal met de pups op een pan met ijs om de embryonale pups verdoven. Ontleden de embryo&#39;s vrij zijn van de baarmoeder hoorn en vruchtwater membranen. Snijd het ruggenmerg van elke pup over de middellijn onder de schouder van de pups slapen. Deze scheidt ook de vena cava, die bloedingen vermindert van de halsslagader tijdens dissectie van de SCG. Zodra vrij gesneden van baarmoedertak, plaats embryo&#39;s in een steriele Leibovitz L-15 medium (of lucht gebufferd medium) aangevuld met penicilline en streptomycine. </li><li> Plaats de embryo&#39;s op hun rug op een 150 mm petrischaal half-gevuld met Sylgard. Met behulp van steriele 20 gauge naalden, speld de borstkas en het hoofd, voorzichtig hyperextending de hals, die dissectie van de SCG vergemakkelijkt. </li><li> Maak een middellijn incisie langs de hals op het niveau van de sleutelbeenderen tot de submandibulaire klieren te onthullen. Verwijder de klieren met fijn pincet (no. 4 of geen. 5 Dumont) om de spierlaag bloot te leggen. </li><li> Gebruik de fijne tang om de m. sternocleidomastoideus in de buurt van het sleutelbeen te snijden. Dan voorzichtig optillen en incisie van de spier omohyoid naast de luchtpijp. Deze spier is zeer dun, dus vermijd het snijden te diep om te vermijden dat het onderliggende halsslagader en SCG. Zodra deze spierlagen worden verwijderd, moet de halsslagader en de nervus vagus duidelijk zichtbaar zijn. </li><li> De SCG ligt net onder de splitsing van de halsslagader. Met behulp van fijne pincet (nr. 4 of nee. 5), bot weg te ontleden weefsel aan beide zijden van de halsslagader naar de ganglion bloot te leggen. Met behulp van 2 mooie tang, pakt u de halsslagader net boven en onder de rostrale en caudale uiteinden van de SCG, respectievelijk, het gedeelte van de halsslagader ligt boven het SCG en de SCG zelf te verwijderen. Het is waarschijnlijk dat de nodose ganglion, gelegen naast de SCG in dit stadium van ontwikkeling ook worden verwijderd deze stap. De nodose ganglia kan identified door zijn ronde vorm en de grote vagale zenuw projecteren van. Deze ligt langs een van de takken van de halsslagader. Daarentegen wordt de SCG amandelvormig en ligt direct onder de splitsing van de halsslagader. Plaats de ontleed weefsel in een steriele 35 mm cultuur schotel met L-15-medium en antibiotica. Verwijder de SCG van alle pups alvorens aan de volgende stappen. </li><li> Met behulp van fijne tang voorzichtig te scheiden van de SCG van de halsslagader en eventueel verwijderd andere weefsels tijdens de dissectie (met name de nervus vagus en nodose ganglion). Gebruik fijne tang om de capsule te verwijderen uit de ganglia. Dit reduceert het aantal niet-neuronale cellen in kweek. Breng de ganglia ander steriel 35 mm schotel met L-15 medium. </li><li> Om de SCG dissociëren verwijderen L-15 medium en vervangen door 2 ml Collagenase (eindconcentratie 1 mg / ml) / Dispase (eindconcentratie 5 mg / ml) calcium en magnesium vrij Balanced Salt Hank&#39;s oplossing. Incubatorte op 37 ° C gedurende 40 minuten. </li><li> Breng het SCG in een steriele 15 ml conische centrifugebuis en breng het volume tot 10 ml met L-15 aangevuld met BSA (uiteindelijke concentratie 1-2 mg / ml). Centrifugeer bij 200 x g bij kamertemperatuur gedurende 5 minuten. Verwijder het supernatant en was eens te meer met L-15 aangevuld met BSA. </li><li> Na de tweede wasbeurt, verwijdert u alle L-15 en resuspendeer de ganglia in ~ 2 ml C2 medium. Vermaal de cellen met behulp van een brand-gepolijst gebogen-tip pipet, zorg ervoor dat de pipet is bekleed met BSA/L15 voordat trituratie te minimaliseren plakken van cellen om het glas. Vermalen 3-4 keer zachtjes. Laat de grote pollen genoegen nemen met ongeveer 1 minuut en breng de celsuspensie om een ​​15 ml conische buis. Voeg meer C2 media om de resterende SCG en vermalen. Na de verhuur van de bosjes te regelen, overdracht van de celsuspensie van de tweede trituratie aan dat de verzamelde na de eerste tritureren. Herhaal dit proces een paar keer totdat de ganglia zijn meestal gescheiden. Discard resterende klonten na de vierde tritureren. </li><li> Voor cellen los uit een nest van jonge ratten (meestal 12 tot 16 pups), komt het totale volume van medium in de celsuspensie tot 8-10 ml door het toevoegen van extra C2 medium. Voorzichtig resuspendeer de cellen met behulp van een pipet en verwijderen van een kleine hoeveelheid aan de cel dichtheid te bepalen. Het volume van de celsuspensie 2x de celdichtheid in de cultuur gewenste bereiken en, waarbij u de cellen handhaven suspensie aliquot 250 ml celsuspensie per well. Voor morfometrische studies van dendritische groei, hebben we meestal plaat cellen bij lage dichtheid (~ 5 x 10 4 cellen per putje) in 24 well platen. </li><li> Ons laboratorium inleggen SCG culturen in glas Exsiccatoren in plaats van direct in een CO 2 incubator. We doen dit omdat sympathische neuronen gekweekt in serum-vrij medium beter te presteren met een iets hogere CO 2-concentratie (ongeveer 6,5%). Daarnaast hebben we geen gebruik van antibiotica in de our media sinds het remt de uitgroei van neurieten en onderhouden van culturen in de Exsiccatoren lijkt te minimaliseren verspreiding van verontreiniging wordt als het zich ontwikkelt in een subset van culturen. Met behulp van dit systeem hebben we regelmatig onderhouden SCG culturen voor maximaal 8 weken. Eenmaal vergulde, SCG culturen worden geplaatst op het porselein exsiccator plaat in glas Exsiccatoren met steriel water in de bodem. Ongeveer 120 ml CO2 wordt geïnjecteerd in de exsiccator voor afdichting te sluiten en door het gehele exsiccator in een incubator set van 35,5 ° C. </li></ol> 5. Voeding en onderhoud van culturen <ol><li> Culturen zijn over het algemeen gevoed 3 keer per week, met de eerste media-uitwisseling optreedt 24 uur na plating. Met behulp van een steriele gebogen-tip pipet, zuig langzaam ongeveer de helft van de media per putje. Met behulp van een schone steriele gebogen-tip pipet, vervangt u het volume van de medium verwijderd met verse C2. </li><li> Om niet-neuronale cellen te elimineren uit de cultuur, de anti-mitotische middel cytosine-D-arabinofuranoside (ARA-C, eindconcentratie 1-2 uM) wordt gewoonlijk toegevoegd aan het kweekmedium tijdens de eerste uitwisseling media (bijvoorbeeld 24 uur na plating) gedurende 48 uur. Deze concentratie van ARA-C is meestal voldoende om alle niet-neuronale cellen te verwijderen. Als er extra ARA-C behandeling nodig is, is het raadzaam om deze elke andere voeding voor toxische effecten op de neuronen een minimum te beperken worden gedaan. </li></ol> 6. Veroorzaken van dendritische groei met Matrigel of BMP-7 <ol><li> Om dendritische groei te induceren, wordt Matrigel of BMP-7 toegevoegd aan culturen na de niet-neuronale cellen zijn verwijderd en ARA-C niveaus in de culturen zijn aanzienlijk verminderd. Typisch, voegen wij Matrigel of BMP-7 het medium op dag 5 in vitro, maar dendritische groei geïnduceerd worden door Matrigel of BMP-7 op elk gewenst tijdstip in vitro. Matrigel of BMP-7 wordt toegevoegd aan het medium en C2 worden toegevoerd culturen zoals hierboven beschreven. </li><li> Matrigel en BMP-geïnduceerde dendritische groei is het tijden concentratie-afhankelijk. Voor het maximale effect wordt Matrigel toegevoegd C2 bij een uiteindelijke concentratie van 50-75 pg / ml; BMP-7 wordt toegevoegd aan het medium C2 tot een eindconcentratie van 50 ng / ml. Matrigel concentraties van meer dan 100 pg / ml of BMP-7 concentraties hoger dan 100 ng / ml zijn waargenomen met zenuwcellen toxiciteit. Dendritische processen (zoals bepaald door morfologische criteria) blijken ongeveer 48 uur na de eerste blootstelling aan Matrigel of BMP-7 bij maximaal effectieve concentraties. Om robuuste dendritische groei te induceren, zijn culturen gevoerd met BMP-7 bevattend medium bij elke voeding. Dergelijke resultaten zijn verkregen met BMP 2, 4, 5 en 6 bij vergelijkbare concentraties 20,21. </li></ol> 7. Immunocytochemische Analyse van BMP-7-geïnduceerde groei Dendritic <ol><li> Wanneer de gewenste mate van dendritische arborization is bereikt, worden vastgesteld culturen met 4% paraformaldehyde in 0,1 M fosfaatbuffer. De beste fixatie is eenchieved door vervanging halve medium in de well met 4% paraformaldehyde en herhalen stap 3-5 maal gedurende 10-15 minuten. </li><li> Spoel culturen door vervanging halve 4% paraformaldehyde met fosfaat gebufferde zoutoplossing (PBS) en herhalen stap driemaal 10 - 15 minuten. </li><li> Verwijder de PBS en voeg 200 ul 0,1% Triton X-100 in PBS in elk putje gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur aan de cellen permeabilize. </li><li> Verwijder Triton oplossing door afzuigen en voeg 200 pl per putje van blokkerende bufferoplossing (PBS aangevuld met 3-5% BSA en 1% geitenmelk serum). Incubeer 20-30 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Verwijder de blokkeerbuffer en voeg het primaire antilichaam, met microtubuli geassocieerde proteïne-2 (MAP2) verdund tot 1:2000 - 1:5000 in het blokkeren van buffer. Incubeer kweken gedurende 1 uur bij kamertemperatuur of overnacht bij 4 ° C. </li><li> Verwijder het primaire antilichaam oplossing was de kweken met PBS driemaal 15 minuten bij kamertemperatuur. </li><li>Incubeer de culturen met het secundaire antilichaam, verdund in PBS aangevuld met 1% BSA voor 1-2 uur bij kamertemperatuur in het donker. </li><li> Verwijder het secundaire antilichaam oplossing was de culturen met PBS driemaal 10-15 minuten bij kamertemperatuur in het donker. </li><li> Mount dekglaasjes op glasplaatjes cel naar beneden in een druppel waterig medium montage op de geschikte pH voor het fluorochroom gekoppeld aan de secundaire antilichaam. Houd de dia s nachts bij kamertemperatuur te laten de montage medium droog. Store dia&#39;s bij 4 ° C tot beeldvorming. </li><li> Laat de dia&#39;s om naar de kamer temp evenwicht voor de beeldvorming. Verwerven van fluorescerende beelden met behulp van een fase-contrast microscoop uitgerust voor epifluorescentie. Meestal kan de gehele dendritische spil van een neuron worden gemaakt met een 20X objectieve en passende filters. </li></ol> 8. Representatieve resultaten Sympathische neuronen los van de SCG van perinatale rats en gekweekt in de afwezigheid van serum en ganglien gliacellen niet MAP2 immunopositieve processen (figuur 1) uitstrekken, maar typisch zich slechts een axonale proces 14,15. Blootstelling aan BMP-7 (fig. 1) of Matrigel induceert de vorming van talrijke processen dat de morfologische, biochemische en functionele criteria van dendrieten 17,18 voldoen. De dendriet-bevorderend activiteit van zowel Matrigel of BMP-7 is de concentratie-en tijdsafhankelijke 17,18,20. Maximale dendritische groei waargenomen met concentraties Matrigel tussen 50 en 75 ug / ml of BMP-7 tussen 30 en 100 ng / ml en half-maximale effect typisch waargenomen BMP-7 concentraties ~ 2 ng / ml. Kunnen echter significante veranderingen in dendritische groei worden gedetecteerd met BMP-7 concentraties van 300 pg / ml. De reactie dendritische ofwel Matrigel of BMP-7 relatief langzaam, &lt;50% van de neuronen vorming van een tweede proces binnen 24 uur na blootstelling aan een dendrieten-p<html> EVORDEREN agent. Echter binnen de 3 dagen na de eerste BMP-7 blootstelling vrijwel alle neuronen reageren maximaal effectief Matrigel of BMP-7 concentraties. Het aantal dendrieten per neuronen blijft stijgen met de continue blootstelling aan BMP-7, met het merendeel van de wijzigingen die tijdens de eerste 10 dagen van de behandeling. Na 4 weken, BMP-7-behandelde neuronen hebben meestal 6-8 primaire dendrieten dat de secundaire, tertiaire en zelfs kwartaire dendritische takken vertonen 17. Deze stijging van de dendritische prieel treedt in de afwezigheid van enige significante verandering in de axonale groei, en vergelijkbare dendritische reacties kunnen worden uitgelokt met vergelijkbare concentraties van BMP&#39;s 2, 4, 5 of 6 20,21. Dendritische groei kan ook worden uitgelokt door co-kweken van sympathische neuronen met endogene ganglien gliacellen 15,22, maar de dendritische respons is aanzienlijk langzamer onder deze omstandigheden. . Jpg &quot;/&gt; Figuur 1. BMP-7 bevordert de dendritische groei van de gekweekte sympathische neuronen. Niet-neuronale cellen werden uit SCG kweken door behandeling met anti-mitotische 48 uur begint op dag 2 in vitro. Beginnend op dag 5 in vitro kweken werden behandeld met controle medium (A) of medium aangevuld met BMP-7 bij 50 ng / ml (B). Op dag 11 in vitro (na 5 dagen van BMP behandeling), culturen werden immunostained met mAb tegen MAP2, een eiwit dat voorkomt in de eerste plaats in de dendrieten en neuronale somata. Zoals in representatieve fluorescentie microfiches neuronen gekweekt onder controle omstandigheden missen dendrieten zoals blijkt uit een gebrek aan MAP-2 immunopositieve processen dendrieten (A), in tegenstelling neuronen blootgesteld aan BMP-7 (B) typisch meerdere trechtervormige MAP-2 immunopositieve hebben dendrieten.

<ol><li>Purpura, D. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPurpura%2C+DP+%22The+Neurosciences%3A+A+Study+Program%22">The Neurosciences: A Study Program</a>. Quarton, Q. C., Melnechuk, T., Schmitt, F. O. , Rockefeller University Press. 372-393 (1967).</li>
<li>Purves, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+and+structural+changes+in+mammalian+sympathetic+neurons+following+interruption+of+their+axons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Functional and structural changes in mammalian sympathetic neurons following interruption of their axons.</a> J. Physiol. 252, 429-463 (1975).</li>
<li>Purves, D. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPurves%2C+D+%22A+Trophic+Theory+of+Neural+Connections%22">A Trophic Theory of Neural Connections</a>. , Harvard University Press. (1988).</li>
<li>Miller, J. P., Jacobs, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationships+between+neuronal+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">Relationships between neuronal structure and function.</a> J. Exp. Biol. 112, 129-145 (1984).</li>
<li>Schuman, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synapse+specificity+and+long-term+information+storage%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Synapse specificity and long-term information storage.</a> Neuron. 18, 339-342 (1997).</li>
<li>Sejnowski, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+year+of+the+dendrite%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The year of the dendrite.</a> Science. 275, 178-179 (1997).</li>
<li>Berger-Sweeney, J., Hohmann, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+consequences+of+abnormal+cortical+development%3A+insights+into+developmental+disabilities%5BTitle%5D)+AND+%22Behav.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Behavioral consequences of abnormal cortical development: insights into developmental disabilities.</a> Behav. Brain Res. 86, 121-142 (1997).</li>
<li>Connors, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fetal+mechanisms+in+neurodevelopmental+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Neurology%22%5BJournal%5D)">Fetal mechanisms in neurodevelopmental disorders.</a> Pediatric Neurology. 38, 163-176 (2008).</li>
<li>Pardo, C. A., Eberhart, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neurobiology+of+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Pathology+%28Zurich%2C+Switzerland%29%22%5BJournal%5D)">The neurobiology of autism.</a> Brain Pathology (Zurich, Switzerland). 17, 434-447 (2007).</li>
<li>Zoghbi, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Postnatal+neurodevelopmental+disorders%3A+meeting+at+the+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Postnatal neurodevelopmental disorders: meeting at the synapse.</a> Science. 302, 826-830 (2003).</li>
<li>de Ruiter, J. P., Uylings, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphometric+and+dendritic+analysis+of+fascia+dentata+granule+cells+in+human+aging+and+senile+dementia%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Morphometric and dendritic analysis of fascia dentata granule cells in human aging and senile dementia.</a> Brain Res. 402, 217-229 (1987).</li>
<li>Flood, D. G., Coleman, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+plasticity+in+normal+aging+and+decreased+plasticity+in+Alzheimer%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Hippocampal plasticity in normal aging and decreased plasticity in Alzheimer's disease.</a> Prog. Brain Res. 83, 435-443 (1990).</li>
<li>Jagadha, V., Becker, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+pathology%3A+an+overview+of+Golgi+studies+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Can.+J.+Neurol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Dendritic pathology: an overview of Golgi studies in man.</a> Can. J. Neurol. Sci. 16, 41-50 (1989).</li>
<li>Bruckenstein, D. A., Higgins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+differentiation+of+embryonic+rat+sympathetic+neurons+in+tissue+culture.+I.+Conditions+under+which+neurons+form+axons+but+not+dendrites%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Morphological differentiation of embryonic rat sympathetic neurons in tissue culture. I. Conditions under which neurons form axons but not dendrites.</a> Dev. Biol. 128, 324-336 (1988).</li>
<li>Tropea, M., Johnson, M. I., Higgins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glial+cells+promote+dendritic+development+in+rat+sympathetic+neurons+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Glia%22%5BJournal%5D)">Glial cells promote dendritic development in rat sympathetic neurons in vitro.</a> Glia. 1, 380-392 (1988).</li>
<li>Lein, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+extracellular+matrix+and+osteogenic+protein-1+on+the+morphological+differentiation+of+rat+sympathetic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Dev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The effects of extracellular matrix and osteogenic protein-1 on the morphological differentiation of rat sympathetic neurons.</a> Int. J. Dev. Neurosci. 14, 203-215 (1996).</li>
<li>Lein, P., Johnson, M., Guo, X., Rueger, D., Higgins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteogenic+protein-1+induces+dendritic+growth+in+rat+sympathetic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Osteogenic protein-1 induces dendritic growth in rat sympathetic neurons.</a> Neuron. 15, 597-605 (1995).</li>
<li>Lein, P. J., Higgins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laminin+and+a+basement+membrane+extract+have+different+effects+on+axonal+and+dendritic+outgrowth+from+embryonic+rat+sympathetic+neurons+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Laminin and a basement membrane extract have different effects on axonal and dendritic outgrowth from embryonic rat sympathetic neurons in vitro.</a> 136, 330-345 (1989).</li>
<li>Higgins, D., Lein, P. J., Osterhout, D. J., Johnson, M. I. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHiggins%2C+D+%22Culturing+Nerve+Cells%22">Culturing Nerve Cells</a>. Banker, G., Goslin, K. , The MIT Press. 177-295 (1991).</li>
<li>Beck, H. N., Drahushuk, K., Jacoby, D. B., Higgins, D., Lein, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+morphogenetic+protein-5+%28BMP-5%29+promotes+dendritic+growth+in+cultured+sympathetic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Bone morphogenetic protein-5 (BMP-5) promotes dendritic growth in cultured sympathetic neurons.</a> BMC Neurosci. 2, 12-12 (2001).</li>
<li>Guo, X., Rueger, D., Higgins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osteogenic+protein-1+and+related+bone+morphogenetic+proteins+regulate+dendritic+growth+and+the+expression+of+microtubule-associated+protein-2+in+rat+sympathetic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Lett%22%5BJournal%5D)">Osteogenic protein-1 and related bone morphogenetic proteins regulate dendritic growth and the expression of microtubule-associated protein-2 in rat sympathetic neurons.</a> Neurosci. Lett. 245, 131-134 (1998).</li>
<li>Lein, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glia+induce+dendritic+growth+in+cultured+sympathetic+neurons+by+modulating+the+balance+between+bone+morphogenetic+proteins+%28BMPs%29+and+BMP+antagonists%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Glia induce dendritic growth in cultured sympathetic neurons by modulating the balance between bone morphogenetic proteins (BMPs) and BMP antagonists.</a> J. Neurosci. 22, 10377-10387 (2002).</li>
<li>Higgins, D., Lein, P., Osterhout, D., Johnson, M. I. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHiggins%2C+D+%22Culturing+Nerve+Cells%22">Culturing Nerve Cells</a>. Banker, G., Goslin, K. , MIT Press. 177-205 (1991).</li>
<li>Bruckenstein, D. A., Higgins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+differentiation+of+embryonic+rat+sympathetic+neurons+in+tissue+culture.+II.+Serum+promotes+dendritic+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Morphological differentiation of embryonic rat sympathetic neurons in tissue culture. II. Serum promotes dendritic growth.</a> Dev. Biol. 128, 337-348 (1988).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De voordelen van dit model omvatten: (a) de culturen uit een homogene populatie van sympathische neuronen zonder andere celtypen 17,23, (b) de groeifactor eisen van sympathische neuronen gevestigde, waardoor het gebruik van beschreven medium, en een verscheidenheid aan bepaalde media, en substraten werken goed voor het kweken en onderhouden van sympathische neuronen 23; (c) neuronen in deze culturen uniform te reageren op de dendriet-bevorderend activiteit van Matrigel, BMP-7 en andere BMP&#39;s va...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het serum </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Reacties </td></tr><tr><td> Dekglaasjes </td><td> Bellco </td><td> 1.943 tot 10012 </td><td> 12 mm Ronde Coverslip # 1 Dikte, Duits glas </td></tr><tr><td> Bent tip pipetten </td><td> Bellco </td><td> 1273 tot 50.003 </td><td></td></tr><tr><td> Poly-D-lysine </td><td> Sigma </td><td> P0899-100mg </td><td> Voorraadoplossing 1 mg / ml </td></tr><tr><td> Gedistilleerd water </td><td> Gibco </td><td> 15230 </td><td></td></tr><tr><td> Fijn tang Dumont niet. 4 en 5 </td><td> Fine Science Tools (FST) </td><td> 11252-30 11241-30 </td><td></td></tr><tr><td> 20-gauge naalden </td><td> Becton Dickinson </td><td> 305176 </td><td></td></tr><tr><td> Leibovitz&#39;s L-15-medium </td><td> Invitrogen </td&gt; <td> 11415 </td><td></td></tr><tr><td> Collagenase </td><td> Worthington </td><td> 4176 </td><td> 1 mg / ml </td></tr><tr><td> Dispase </td><td> Roche </td><td> 04942078001 </td><td> 5 mg / ml </td></tr><tr><td> Balanced Salt Hank&#39;s oplossing (-Ca, Mg-) </td><td> Invitrogen </td><td> 14185-052 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM laag glucose </td><td> Invitrogen </td><td> 11885 </td><td></td></tr><tr><td> L-Glutamine </td><td> Invitrogen </td><td> 25030 </td><td> 20 mM </td></tr><tr><td> Insuline / Transferrine / Selenium </td><td> Invitrogen </td><td> 51500-056 </td><td> 100X </td></tr><tr><td> Vetzuren vrij BSA </td><td> Calbiochem </td><td> 126609 </td><td></td></tr><tr><td> NGF </td><td> Harlan Bioproducts </td><td> 5017 </td><td></td></tr><tr><td> Ham F-12 voedingsbodem (F-12) </td><td> Invitrogen </td><td> 11765 </td><td&gt; </td></tr><tr><td> Cytosinearabinoside </td><td> Sigma </td><td> C1768 </td><td></td></tr><tr><td> Matrigel </td><td> BD Biosciences </td><td> 356234 </td><td> Vermijd herhaaldelijk vries-dooi cycli </td></tr><tr><td> BMP-7 </td><td> R &amp; D Systems Curis, Inc </td><td> 345-BP BMP7-07H </td><td> BMP 4, 5 en 6 werken even goed als BMP-7 en soms beter commercieel te verkrijgen </td></tr><tr><td> Paraformaldehyde </td><td> Sigma </td><td> P6148 </td><td></td></tr><tr><td> Triton X-100 </td><td> Visser </td><td> BP151-500 </td><td></td></tr><tr><td> Muis anti-rat MAP2 antilichaam </td><td> Sternberg monoklonalen Inc </td><td> SMI52 </td><td> 1/5000 </td></tr><tr><td> Alexa Fluor 546 geit-anti-muis </td><td> Invitrogen </td><td> A11003 </td><td> 1/10000 </td></tr><tr><td> Montage media </td><td> Verleng Antifade kit Molecular Probes </td> &lt;td&gt; P7481 </td><td></td></tr></tbody></table>

het induceren van dendritische groei in gekweekte sympathische neuronen

Inducing Dendritic Growth in Cultured Sympathetic Neurons

De vorm van de dendritische spil bepaalt de totale synaptische ingang een neuron kan ontvangen 1-3, beïnvloedt de samenstelling en verdeling van deze ingangen 4-6. Veranderde patronen van dendritische groei en plasticiteit worden geassocieerd met een verminderde neuro-functie in experimentele modellen 7 en worden verondersteld bij te dragen aan de klinische symptomen waargenomen bij zowel neurologische stoornissen 8-10 en neurodegeneratieve ziekten 11-13. Dergelijke waarnemingen onderstrepen het functionele belang van precies regelen dendritische morfologie, en suggereren dat het identificeren van mechanismen die dendritische groei te beheersen niet alleen inzicht in hoe neuronale connectiviteit wordt geregeld tijdens de normale ontwikkeling te bevorderen, maar kan ook inzicht te geven op nieuwe therapeutische strategieën voor diverse neurologische aandoeningen. Mechanistische studies van dendritische groei zou aanzienlijk worden vergemakkelijkt door de beschikbaarheid ofa model systeem waarmee neuronen om proefondervindelijk te worden omgeschakeld van een toestand waarin ze niet dendrieten uit te breiden tot een waarin ze een dendritische prieel vergelijkbaar met die van hun in vivo tegenhangers uit te werken. Primaire culturen van sympathische neuronen los worden gezien van de superieure cervicale ganglia (SCG) van perinatale knaagdieren voorziet in een dergelijk model. Wanneer gekweekt in beschreven medium in de afwezigheid van serum en ganglion gliacellen, sympathiek neuronen uit te breiden een proces dat is axonale, en dit unipolaire toestand aanhoudt weken tot maanden in de cultuur 14,15. De toevoeging van een bot morfogenetische proteïnen 7 (BMP-7) 16,17 of Matrigel 18 het kweekmedium activeert deze neuronen te verlengen meerdere processen dat de morfologische, biochemische en functionele criteria voor dendrieten. Sympathische neuronen los van de SCG van perinatale knaagdieren en geteeld onder bepaalde voorwaarden zijn van een homogene populatie van neuronen 19die op uniforme wijze reageren op de dendriet-bevorderend activiteit van Matrigel, BMP-7 en andere BMP&#39;s van de decapentaplegic (DPP) en 60A subfamilies 17,18,20,21. Belangrijk Matrigel en BMP-geïnduceerde vorming dendrietmorfologie treedt in de afwezigheid van veranderingen in celoverleving of axonale groei 17,18. Hier beschrijven we hoe je los culturen van sympathische neuronen afgeleid van de SCG van perinatale ratten, zodat ze kunnen inspelen op de selectieve dendriet-bevorderend activiteit van Matrigel of BMP.

We beschrijven een protocol voor het gebruik van botmorfogenetische eiwit-7 (BMP-7) of Matrigel om selectief te induceren dendritische groei van de primaire sympathische neuronen los worden gezien van de superieure cervicale ganglia (SCG) van perinatale ratten.

Het induceren van dendritische groei in gekweekte sympathische neuronen

De vorm van de dendritische boom bepaalt de totale synaptische input die een neuron kan ontvangen 1-3, en beïnvloedt de typen en distributie van deze inputs ...

Het doel van deze procedure is het kweken van sympathische neuronen om hun dendritische groei te kunnen manipuleren. Dit wordt bereikt door eerst de ganglia cervicalis superior te isoleren uit perinatale knaagpups onder steriele omstandigheden. De tweede stap bestaat uit het dissocieren van de ganglia om een enkelcellige suspensie te vormen, die vervolgens op de voorbereide substraten wordt gezaaid.In een gedefinieerd medium. Behandel de culturen vervolgens met een anti-mitotisch middel om de niet-neuronaire cellen te elimineren, en behandel de culturen daarna met BMP's of matrigel om dendritische groei te induceren. Ten slotte wordt Map2-immunoreactiviteit gebruikt om de verlengde dendrieten van de gecultiveerde sympathische neuronen aan te tonen.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals de primaire kweek van hippocampale neuronen, is dat het mogelijk is om de morfologische staat van DYS-neuronen zodanig te manipuleren dat minder dan 5% van de neuronen in kweek dendrieten heeft, of meer dan 95% van de neuronen in kweek een robuuste neuritische uitgroei vertoont. Om de bijbehorende culturen van de SCG uit prenatale ratpups van 19 tot 21 embryonale dagen voor te bereiden, scheer dan eerst de buik van een geëuthanaseerde zwangere rat, reinig de huidloze huid met 70% ethanol en verwijder vervolgens de uterine hoorns onder steriele omstandigheden, waarbij schade aan de darmen of andere interne organen wordt vermeden. Plaats de uterine hoorns in een steriele Petri schaal van 150 millimeter. Plaats daarna de Petri schaal op een bak met ijs.Om de embryonale pups te anesthetiseren voor euthanasie, wordt het ruggenmerg langs de middellijn onder de schouder doorgesneden. Dit doorsnijdt ook de vena cava, waardoor bloedingen vanuit de halsslagader worden verminderd. Plaats tijdens de dissectie van de SCG de embryo's in steriel Leibovitz L-15 medium aangevuld met penicilline en streptomycine. Breng de embryo's vervolgens over naar een Petrischaal van 150 millimeter, half gevuld met Silguard, en plaats ze op hun rug.Gebruik de steriele naalden van 20 gauge om de thorax en de kop vast te pinnen, waarbij de nek voorzichtig wordt hyperextend om de dissectie van de SCG onder de microscoop te vergemakkelijken. Maak een midline incisie langs de nek op het niveau van de claviculae om de submandibulaire klieren bloot te leggen. Verwijder de klieren met een fijne pincet om de spierlaag zichtbaar te maken.Snijd vervolgens de musculus sternocleidomastoideus vlakbij het sleutelbeen door, terwijl u de musculus omohyoideus naast de trachea voorzichtig optilt. Deze spier is zeer dun, dus vermijd te diep snijden, omdat dit de onderliggende arteria carotis en de SCG zou kunnen scheuren. Zodra deze spierlagen zijn verwijderd, moeten de arteria carotis en de nervus vagus duidelijk zichtbaar zijn.Het SCG bevindt zich net onder de bifurcatie van de arteria carotis. Dissecteer het weefsel aan beide zijden van de arteria carotis weg met de fijne pincet om het ganglion bloot te leggen. Gebruik vervolgens twee fijne pincetten om de arteria carotis respectvelijk net boven en onder het rostrale en caudale uiteinde van het SCG vast te pakken.Om het deel van de arteria carotis dat boven het SCG ligt, evenals het SCG zelf te verwijderen, is het waarschijnlijk dat het noose-ganglion, dat in dit ontwikkelingsstadium naast het SCG ligt, in deze stap ook zal worden verwijderd. Plaats het gedissecteerde weefsel in een steriele kweekschaal van 35 millimeter met L 15-medium en antibiotica. Verwijder daarna het SCG bij alle pups voordat u overgaat naar de volgende stappen.Scheid vervolgens voorzichtig het SCG van de halsslagader en andere weefsels. Verwijder deze tijdens de dissectie. Verwijder de capsule van de ganglia.Breng de ganglia vervolgens over naar een andere steriele schaal van 35 millimeter die L 15-medium bevat. Verwijder het L 15-medium om de SCG te dissociëren. Vervang dit door collagenase opgelost in calcium- en magnesiumvrije hanks balanced salt solution.Incubeer het vervolgens 40 minuten lang bij 37 °C. Breng daarna de SCG over naar een steriele conische centrifugebuis van 15 ml. Vul het volume aan tot 10 ml met L 15 aangevuld met BSA tot een eindconcentratie van één tot twee mg/ml.Centrifuge bij 200 ×g op kamertemperatuur gedurende vijf minuten. Verwijder na vijf minuten het supernatant en was de ganglia nogmaals met L 15 aangevuld met BSA na de tweede wasbeurt. Verwijder het L 15-medium en resuspendeer de ganglia in twee milliliter cultuurmedium.Tritureer de cellen ongeveer drie tot vier keer met een vuurgepolijste gebogen pipetpunt. Zorg ervoor dat de pipet is gecoat met BSAL 15 vóór het tritureren om het kleven van cellen aan het glas te minimaliseren. Laat de grote klonten ongeveer één minuut bezinken en breng de celsuspensie vervolgens over in een conisch buisje van 15 milliliter.Voeg vervolgens meer kweekmedium toe aan het resterende SCG en tritureer opnieuw. Nadat de klompjes zijn neergezakt, wordt de celsuspensie uit de tweede trituratiesstap overgebracht naar de suspensie die na de eerste trituratiesstap is verzameld. Herhaal dit proces meerdere keren totdat de ganglia grotendeels zijn gedissocieerd.Verwijder eventuele resterende klontjes na de vierde trypsinisatie voor de cellen die zijn gedissocieerd uit één liter ratpups; het totale volume medium in de celsuspensie moet worden aangevuld tot 8 tot 10 milliliter. Voeg extra kweekmedium toe en resuspendeer de cellen voorzichtig met een pipet. Neem vervolgens een kleine aliquot af voor de bepaling van de celdichtheid.Pas het volume van de celsuspensie aan om een celdichtheid te bereiken die twee keer hoger is dan de gewenste dichtheid in de kweek. Verdeel vervolgens 250 µL celsuspensie per putje. Voor morfometrische studies van dendritische groei zaaien we de cellen doorgaans in 24-well platen bij een lage dichtheid, ongeveer 5 × 10⁴ cellen per putje.Plaats vervolgens de SCG-culturen op de porseleinen droogplaat in de glazen exsiccator met steriel water. Spuit ongeveer 120 milliliters koolstofdioxide in de exsiccator voordat deze wordt afgesloten. Plaats daarna de gehele exsiccator in een incubator en stel deze in op 35,5 °C.In deze procedure wordt de cultuur gevoed door de helft van het medium te vervangen 24 uur na het uitplaten; herhaal dit drie keer per week om niet-neuronale cellen uit de cultuur te elimineren. Het anti-mitotische middel, RRC in een concentratie van één tot twee micromolar, wordt doorgaans op dit moment aan het cultuurmedium toegevoegd.Voeg vervolgens het verse cultuurmedium met RSC toe aan elke put en kweek gedurende 48 uur om dendritische groei te induceren nadat de niet-neuronale cellen zijn geëlimineerd en het RSC-niveau aanzienlijk is verlaagd. Voeg op dag vijf matrigel of BMP seven toe aan het cultuurmedium. Voed de in vitro cultuur vervolgens zoals eerder beschreven; hier wordt een neuron getoond dat is gegroeid onder controlecondities, waarbij het gebrek aan dendrieten wordt aangetoond door de afwezigheid van MAP two immuno-positieve uitlopers.Daarentegen heeft dit neuron, dat is blootgesteld aan BMP 7, meerdere taps toelopende MAP2-immunopositieve dendrieten, hier weergegeven. Gekweekte sympathische neuronen zijn vijf tot zeven dagen in cultuur vóór behandeling met BMP 7 en na behandeling met BMP 7 bij 30 tot 50 ng/mL gedurende twee dagen. Let op het begin van de dendritische groei.Culturen zijn zeven tot 14 dagen gekweekt in afwezigheid van BMP7. Deze vertonen uitsluitend axonale groei, terwijl culturen behandeld met BMP7 in een concentratie van 30 tot 50 ng/mL gedurende zeven tot 14 dagen dit niet doen.Vertoon robuuste dendritische groei. Na het bekijken van deze video moet u een goed begrip hebben van hoe SCG te isoleren. Bereid een gedissocieerde cultuur van sympathische neuronen voor voor studies naar neuronale morfogenese en manipuleer experimenteel de dendritische uitgroei.

inducing-dendritic-growth-in-cultured-sympathetic-neurons

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Dit is een protocol beschrijft hoe te isoleren en cultuur primaire sympathische neuronen van een superieure cervicale ganglia (SCG) van pasgeboren ratten pups.

Protocol voor het kweken van sympathische neuronen van Rat Superior Baarmoederhalskanker ganglia (SCG)

Tal van recente studies hebben aangegeven mutaties in synaptische eiwitten in verband met de hersenen pathologieën. Primaire gekweekte corticale neuronen bieden een grote flexibiliteit in het onderzoeken van de effecten van deze ziekte-geassocieerde eiwitten op dendritische rug morfologie en beweeglijkheid.

Analyse van de dendritische Spine Morfologie in gekweekte CNS Neuronen

Genetische Studie van de regeneratie van axonen met gekweekte volwassen dorsale wortel ganglion neuronen

This video demonstrates an in vitro method to generate postganglionic sympathetic neurons from human pluripotent stem cells (hPSCs). hPSCs are differentiated into neural crest cells (NCCs) on a basement membrane matrix support using a differentiation medium. The NCCs are then dissociated and formed into spheroids using another differentiation medium. Finally, the spheroids are transformed into postganglionic sympathetic neurons using a sympathetic neuron medium.

Generating Postganglionic Sympathetic Neurons from Human Pluripotent Stem Cells

The video demonstrates the co-culturing of dorsal root ganglion (DRG) neurons with Schwann cells. DRG neurons are first grown on a pre-stretched membrane for aligned axon growth. Schwann cells are then introduced, which attach to the axons, insulating them and promoting neural cell survival and function.

Co-Culture of Schwann Cells with DRG Neurons on a Pre-Stretched Membrane

This video demonstrates the use of transfected dorsal root ganglion cells to study neurotransmitter release by stimulating them with a neuropeptide receptor agonist.

Stimulation of Dorsal Root Ganglion Sensory Neurons Using a Neuropeptide Receptor Agonist

Het huidige protocol presenteert experimentele procedures ter stimulering van gekweekte macrofagen te worden begiftigd met capaciteit om moleculaire factoren ter bevordering van de uitgroei van de neurite vrij te geven. Behandeling van kamp tot de neuron-macrofaag co culturen induceert de macrofagen produceren geconditioneerde medium dat sterke neurite uitgroei activiteit bezit.

Neuron-Macrophage co culturen te activeren van macrofagen afscheidende moleculaire factoren met Neurite uitgroei activiteit

We beschrijven de isolatie, dispersie en beplating van tandheelkundige pulp (DP) primaire cellen met trigeminale (TG) neuronen gekweekt bovenop bovenliggende transwell filters. Cellulaire reacties van DP-cellen kunnen worden geanalyseerd met immunofluorescentie of RNA/eiwitanalyse. Immunofluorescentie van neuronale markers met confocale microscopie maakt de analyse van neurite outgrowth reacties mogelijk.

Een co-cultuur methode om Neurite Outgrowth studie in reactie op tandheelkundige pulp paracrine signalen

In dit protocol beschrijven we een stabiele, zeer efficiënte differentiatiestrategie voor het genereren van postganglionische sympathische neuronen uit menselijke pluripotente stamcellen. Dit model zal neuronen beschikbaar stellen voor het gebruik van studies van meerdere autonome aandoeningen.

Efficiënte differentiatie van postganglionic Sympathische neuronen met behulp van menselijke pluripotente stamcellen onder Feeder-vrije en chemisch gedefinieerde cultuurvoorwaarden

Dit artikel beschrijft de isolatie en het kweken van embryonale rat sympathische neuronen van de superieure cervicale ganglia. Het biedt ook gedetailleerde protocollen voor immunocytochemische kleuring en voor de voorbereiding van neuronale extracten voor massaspectrometrische analyse.

Culturing Rat Sympathische Neuronen van Embryonale Superior Cervicale Ganglia voor morfologische en proteomische analyse

Leer hoe u dendritische groei induceert in gekweekte sympathische neuronen met BMP-7 of Matrigel. Deze methode maakt gecontroleerde manipulatie van neuritische uitgroei mogelijk voor onderzoek naar neurale ontwikkeling.

Het induceren van dendritische groei in gekweekte sympathische neuronen

Meer video's verkennen