Name: Een vereenvoudigde methode voor In situ Excisie van het hoornvlies en het verwijderen van de ingewanden van retinaal weefsel van Human Ocular Globe (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 58 s
Description: Leer een vereenvoudigde techniek voor excisie van hoornvlies en retina uit het menselijk oogbol met minimale beschadiging van omliggende structuren. Deze methode behoudt weefselkwaliteit voor transplantatie en onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd mede ondersteund door subsidies van de Regione Veneto (Ricerca Sanitaria Finalizzata n.292/2008 en Ricerca Sanitaria Finalizzata 2009). De auteurs danken dr. C. Griffoni voor de 2009/2010 beknopte gegevens over het gebruik van menselijke oculaire bollen.

1. In situ Excisie van het hoornvlies van Ocular Globes <ol><li> Schakel de laminaire flow-kast 15 minuten vóór gebruik. Maak de laminaire stroming kap met behulp van 70% isopropylalcohol. Zet op persoonlijke beschermende kleding, zoals chirurgische pet en masker. Scrub handen en onderarmen en afdrogen met een steriele doek. Draag steriele handschoenen en een schort of bussen met een aseptische techniek. </li><li> Stel de steriele veld door het plaatsen van een steriel instrument lade aseptisch. Controleer of de instrumenten steriel zijn. Open de steriele instrumenten verpakking en klap op het steriele veld het vermijden van elke vorm van verontreiniging. </li><li> Plaats alle steriele materialen en instrumenten (tabel 2) met flessen (oog potten) met het oog bollen zodat ze naast de rand van de steriele veld gebruiksgemak. </li><li> Label de flessen met vooraf bereide behoud / opslagmedium, zoals aangegeven in tabel 3 en plaats dem op het oppervlak van de laminaire stroming kap met I-PVP (jodium-polyvinylpyrrolidon), natriumthiosulfaat en een steriele zoutoplossing PBS (fosfaatgebufferde zoutoplossing). </li><li> Laat de oculaire weefsels en oplossingen voor normale kamertemperatuur te bereiken als ze worden bewaard in een koelkast bij 4 ° C. Vermijd herhaaldelijk verwarming / koeling cycli. Houd de deksels van de oplossing en het oog potten met binnenzijde naar boven naast hun potten. </li><li> Verwijder de gaasjes en sponzen uit het oog pot met behulp van een steriel pincet. Dompel de hele wereld in steriele I-PVP 0,5% voor 2 minuten naar het oculair bollen te ontsmetten. Plaats de twee tang op het deksel van de steriele bak, buiten het steriele veld. Breng de hele wereld in natriumthiosulfaat 0,1% voor 1 minuut met een andere paar steriel pincet. Met dezelfde tang, overdracht van de wereld naar de fles met steriele zoutoplossing (PBS) en laat deze tot aan het in gebruik. Herhaal dezelfde procedure voor de andere oculaire wereld van thij dezelfde donor. </li><li> Werken onder de laminaire luchtstroom kap, wikkel de hele wereld met behulp van een steriel gaasje (verbanden) het verlaten van het hoornvlies en ongeveer 5 mm sclera van onbedekt het hoornvlies. Het oog lamp kan eenvoudig worden gehouden in de hand het handhaven van de voldoende druk. Het weefsel moet vochtig gedurende de gehele operatie. </li><li> Pincetten worden gebruikt samen met een schaar om alle eventuele resten van het bindvlies te verwijderen. Houd de instrumenten die worden gebruikt voor de bovenstaande bewerking gescheiden van andere instrumenten. Gebruik een scalpel een incisie sclerale van 3-4 mm van de limbus regio uit te voeren, dan is uitbreiding van de incisie van 360 °, het vermijden van de onderliggende druifvlies weefsel doorboren en veroorzaak geen vervorming van het hoornvlies van de normale kromming. Snijd vier grote incisies het verlaten van vier kleine gaten het vermijden van de afscheiding van het glasachtig lichaam. Alle vier de gaten worden gesneden zodat er geen ontslagrecht van een andere weefsel. </li><li> Aanwezigheid van kleine sclerale plaques kan het snijden de weg staan, dus zorg dat compLete de sclerale excisie met microchirurgie schaar. Deze operatie moet worden uitgevoerd zonder beschadiging van het vaatvlies, netvlies en glasachtig lichaam. </li><li> Inspecteer de incisie om te zorgen dat compleet is. Als de incisie is uitgevoerd juist de corneo-sclerale rand houdt zich aan de ciliaire lichaam alleen op het punt in correspondentie met het hoornvlies. </li><li> Zet de verpakte oculaire hele wereld naar beneden nabij het centrum van het steriele veld. Vul het hoornvlies verwijderen met behulp van een tang om de sclerale rand stationaire en de hand wordt gebruikt voor excisie om het corpus ciliare-choroidea te trekken naar beneden en weg van de corneo-sclerale knop vast te houden. </li><li> Voorzichtig scheiden resterende vergroeiingen van de corneo-sclerale knop. Noch trek de corneo-sclerale rand op een manier die cross-hoornvlies spanning zou kunnen veroorzaken, noch laat het naar beneden vallen terug op de voorste kamer. </li><li> De endotheelcel dichtheid van het hoornvlies wordt gecontroleerd met behulp van een hypotone oplossing en de cel sterfte wordt gecontroleerd met behulp van een Trypeen blauw kleuring ongeveer 1 min en de cellen worden geteld onder een optische microscoop en gemeten cellen / mm2. De voorkamer moet naar het deksel, terwijl de achterste moet de onderzijde van de Petri plaat te gaan. De endotheelcel dichtheid kan handmatig worden geteld met behulp van een raster in de doelstelling van 100X vergroting. De minimale geaccepteerd cellen voor transplantatie in Italië is 2200 endotheliale cellen / mm 2. </li><li> Breng de corneo-scleral rand met een corneale klauw eerder bereide cornea opslagmedium bewaard bij kamertemperatuur (kamertemperatuur) zoals weergegeven in tabel 3. </li><li> Onderzoek de achterste kamer voor een natuurlijke ooglens. Als de sclera bereid is, verwijdert u alle resten van uvea en glasvocht uit de hele wereld. Voorzichtig uitpakken en terug te keren de overige achterste segment om het betreffende oog pot, met gebruikmaking van aseptische techniek. Herhaal de procedure voor de andere wereld met behulp van nieuwe instrumenten. Bevestig het hoornvlies with hoornvlies klauw en het behoud van onder de opslagmedia (orgel cultuur) bij 31 ° C. De uitgesneden cornea, zie figuur 1a, kunnen vervolgens worden gebruikt voor keratoplastie of onderzoek. </li><li> Gooi de onnodige materialen en bio-gevaarlijk afval in de juiste afvalbakken. Maak de werkplek na het werk is voltooid met 70% isopropylalcohol spray. </li><li> Indien na 28 dagen het hoornvlies behoudt alle de evaluatie parameters [zoals morfologie, het aantal cellen, transparantie, dikte en microbiologische testen - met behulp van bacteriën en schimmels Bactec 9240 instrument (Becton Dickinson, Milaan, Italië)], kan het vervolgens worden vervoerd naar ziekenhuizen met het transportmedium in tabel 4. Het hoornvlies moet worden verwijderd en geplaatst van de opslag tot middelgrote transport onder laminaire flow-kast. </li><li> Als, tijdens de opslag, het hoornvlies dikker is dan de gebruikelijke maat die nodig is voor transplantatie, oog banken gebruik maken van de-zwelling agenten om de dikte te verminderen. Wijgebruik maken van 6% dextran T500 aan het hoornvlies terug te keren naar de normale grootte in transportmedium. Hoewel 4-8% dextran T500 kunnen worden gebruikt, heeft 6% best gediend voor ons. Dit maakt het makkelijker voor de chirurgen aan het hoornvlies transplantatie zodra ze ontvangen. </li></ol> 2. Verwijderen van de ingewanden van Retina van de oculaire bol na wegsnijden van de Cornea <ol><li> Na excisie wordt het hoornvlies geselecteerd voor transplantatie of onderzoek op de morfologie en endotheelcellen dichtheid en is geplaatst in de opslag of bewaring medium bij 31 ° C. De rest van de oculaire hele wereld wordt vervolgens verwerkt voor verder gebruik, zoals sclera isolatie voor chirurgische doeleinden, retina voor onderzoek, enz. </li><li> Voorafgaand aan het netvlies excisie, zorg ervoor dat het oculair wereld is geraakt en dat alleen het hoornvlies met een deel van de sclera wordt verwijderd. Als de gelatineuze glasachtig lichaam is afscheidende uit wordt het moeilijk om verwijderen van een retinale weefsel. </li><li> Als de donor is dan 65 jaar, de sclera isbewaard onder steriele PBS voor chirurgische doeleinden na serologisch onderzoek. In dit geval wordt de sclera gesneden, alleen het glasachtig lichaam wordt verwijderd en de gehele sclera behouden. </li><li> Voor het netvlies excisie, beginnen met een klein gesneden of incisie van het hoornvlies kant van de sclera de richting van de oogzenuw met steriele pincet en een schaar. Houd het gedeelte van de sclera behulp van een tang en knip met de schaar recht naar de oogzenuw snijden deel voor deel het vermijden van schade aan het glasachtig lichaam. </li><li> Choroïdale plaques moet worden gescheiden van de sclera als ze aan elkaar plakken. Snijd de hele sclera om de vaatvlies weefsel bloot te leggen. Als de sclera is volledig afgesloten, scheid de sclera met de rest van het glasachtig lichaam door te knippen in de buurt van de oogzenuw. Een volledige bol glasachtig lichaam bedekt met choroid wordt weergegeven als in figuur 2a. </li><li> Met behulp van twee steriele pincet verwijder voorzichtig het vaatvlies laag voor picking it up met eentang en verwijderen van de andere. Alternatief kan de choroïde laag worden verwijderd met schaar maar zoveel mogelijk te vermijden aangezien kan beschadiging van de retina. Gedeeltelijk Verwijder het vaatvlies laag en snijd het om het verwijderen te vergemakkelijken. </li><li> Nadat de choroid laag wordt verwijderd, een doorzichtige laag retina duidelijk zien zoals in figuur 2b. De choroid laag heeft een inwendige Bruch membraan die ook kan worden verwijderd, maar het is moeilijk te identificeren met het blote oog. </li><li> Ook gebruik twee tang het netvlies laag te verwijderen, zoals in figuur 2c. Het is gemakkelijk te isoleren grote hoeveelheid van het netvlies, indien weggesneden in de buurt van de oogzenuw. Alle lagen van het oog kan nu als in figuur 2d. </li><li> Zodra de retinale weefsel is verwijderd, kan het worden gebruikt voor verschillende doeleinden en derhalve de volgende stappen en voorwaarden voor conservering kan dienovereenkomstig verschillen. Zode retinale weefsel kan worden geplaatst in tubes met RNA stabilisatie reagentia (zoals RNAlater) of lysis buffer (voor RNA of DNA extractie) Dispase / trypsine (voor isolatie van cellen), vastzetten (voor weefsels paraffine of oktober insluiten immunohistochemie). </li><li> Verwijder alle werkgebied en reinig het gebied met 70% isopropylalcohol spray. </li></ol> 3. Representatieve resultaten De corneo-sclerale rand zoals te zien in figuur 1a is een goed weggesneden hoornvlies met de vereiste hoeveelheid sclerale velg en endotheel morfologie, deze vorm van het hoornvlies wordt meestal gebruikt voor het binnendringen van keratoplastie. Indien de voorste stroma van de uitgesneden hoornvlies wordt beschadigd door de aanwezigheid van opaciteit kan het hoornvlies worden gebruikt voor endothelial keratoplasty / posterieure lamellaire keratoplastiek (endothelium met een deel van stroma). Overwegende dat, indien de endotheliale laag beschadigd is of als de endotheelcellen dichtheid &lt;2200 cellen / mm 2 (HetAljan standaard), kan het hoornvlies worden gebruikt voor anterieure lamellaire hoornvliestransplantatie (epitheel met een deel van de anterior stroma). Indien de endotheliale cellen kleiner is dan de gewenste, kan het hoornvlies worden gebruikt voor anterieure lamellaire keratoplastiek of onderzoek dat, indien het hoornvlies volledig beschadigd, kan het worden gebruikt voor onderzoek zoals in figuur 1b, 3b en 3c of weggegooid. De schade kan een oorzaak zijn van verkeerd gebruik van het weefsel, voorafgaand cataract operaties die leiden tot stroma of Descemet endotheliale littekens, de ontwikkeling van lichamelijk letsel tijdens het leven van de patiënt enz. Daarom wordt het noodzakelijk om alle weefsels contact op met spleetlamp en dan onder een optische microscoop voor fijne littekens / plooien / detachementen. Het hoornvlies is meestal bewaard onder twee verschillende omstandigheden, zoals orgelcultuur (ongeveer 31 ° C) gewoonlijk in Europa of hypothermie (ongeveer 4 ° C) gewoonlijk in de USA. We maken gebruik van orgelcultuur als het helpt om te regenereren de damleeftijd epitheliale cellen, opnieuw te vitaliseren van endotheelcellen controle met een hoge post mortem tijd, een opslag periode van 4 weken die voldoende venster geeft voor het plannen van een operatie, geeft voldoende tijd voor microbiologische (bacteriën en schimmels) en serologisch onderzoek, etc. Het hoornvlies kan goed worden bewaard in het transportmedium voor 7 dagen. De sclera kunnen worden verlaagd deel voor deel zorgen voor zachte verwijdering van alle choroïdale plaques. Het glasvocht vloeistof kan uitscheiden als de oogzenuw, choroidea of netvlies wordt scherp gesneden zoals weergegeven in figuur 4. Netvlies als uitgesneden voor RNA-analyse moet worden bewaard in RNAlater zodra de weefsels worden weggesneden. Gewoonlijk 1x1 cm van de choroïde en retinale laag uitgesneden en na hem in RNAlater gedurende 24 uur bij 4 ° C bewaard onder -80 ° C in vers Eppendorf buizen (veilige vergrendeling buizen, 2 ml) tot het gebruik of geleverd met droge ijs. De retinale weefsel moet worden weggesneden met behulp van twee tangen in de buurt van de oogzenuw uit de buurt van irisof ciliaire marge om besmetting met andere gepigmenteerde structuren te vermijden en moet worden overgedragen aan het behoud van container onmiddellijk als RNA wordt onstabiel bij het ophalen van het netvlies. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig1.jpg" alt="Figuur 1" /> Figuur 1 Vergelijking tussen een goede en een slechte kwaliteit hoornvlies:. A) Een goed weggesneden hoornvlies. Zo&#39;n hoornvlies wordt meestal bewaard onder orgelcultuur gedurende 4 weken. Microbiologische (met behulp van Bactec 9240 instrument) en morfologische (kleuren van de cellen met trypanblauw voor cel-sterfte bepaling en het observeren van cellen onder een optische microscoop met 100X vergroting) onderzoek wordt uitgevoerd voorafgaand aan het transport naar het ziekenhuis (figuur 3a), b) een gebogen hoornvlies Dit leidt uiteindelijk tot afstoting van het transplantaat als gevolg van hoge Descemet plooien en de hoge endotheliale beschadiging van cellen onderzocht met een spleetlamp microscoop. Zo&#39;n hoornvlies wordt meestal gebruikt voor research of wordt weggegooid. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig2.jpg" alt="Figuur 2" /> Figuur 2. Methode gebruikt voor een accurate excisie van de retinale weefsel te garanderen. A) Ontrafeling van de sclera van het oculair hele wereld met behulp van 24 mm zaagblad met 95 mm gebogen of stompe einde steriele schaar en 100 mm 11x2 geregeerd door 0,70 mm tanden steriel pincet. De sclera moet worden gesneden door houden de ene kant met de tang te knippen rechtdoor naar de optische zenuw met behulp van de schaar. De choroidea laag zal nu gemakkelijk te zien, b) gebruik van twee 100 mm 11x2 geregeerd door 0,70 mm tanden steriel pincet, choroidea wordt verwijderd door het uit elkaar scheuren, die onthult de onderliggende transparante retinale laag; c) Transparante retinale laag is zeer zorgvuldig in de buurt van gezuiverde de oogzenuw, zonder de uitscheiding van glasvocht vloeistof met dezelfde tang. Zowel de tang moet in het bezit elke kant van het netvlies en het weefsel moet voorzichtig worden verwijderd Starting de buurt van de oogzenuw richting van het hoornvlies, om een ​​goede hoeveelheid van retinale weefsel te verkrijgen. Het weefsel kan worden gesneden in verschillende maten en worden gebruikt voor analyse experimenten; d) Er zijn verschillende lagen van het oog door het hoornvlies verwijderd kunnen worden bekeken in deze figuur. De choroid lichaam verwijderen en vervolgens retina zonder de andere delen van het oog. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig3.jpg" alt="Figuur 3" /> Figuur 3. Vergelijking van de verschillende celdichtheid morfologie bekeken onder vergroting 100X een optische microscoop. A) goede endotheelcel dichtheid (&gt; 2200 cellen / mm 2) en morfologie (minder polymorfisme lage degeneratie geen spierdystrofie en 0% sterfte) in een hoornvlies die geschikt is voor transplantatie, b) Matig endotheelcel dichtheid (ongeveer 1200-1400 cellen / mm 2) en morfologie (hoge polymorfisme en Degenwerking van de cellen), samen met ongeveer 30-40% totale sterfte in acht worden genomen na trypanblauw kleuring, c) Een deel van endotheelcellen beschadigd zijn als gevolg van detachering van een endotheel-sheet bij het ​​ophalen van het hoornvlies van oculaire wereld. Dit wordt bevestigd door de mortaliteit van de cellen in het gebied van trypan blauw gekleurde, d) van Descemet plooien worden gevormd door verkeerd hoornvlies door buigen, waardoor kruis cornea spanning met de instrumenten intens etc bij de uitsnijding. De figuur toont de dikke ontwikkelde iatrogene plooien gevonden tussen de periferie en optische zone van het hoornvlies. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig4.jpg" alt="Figuur 4" /> Figuur 4. Schade aan het vaatvlies en het netvlies weefsels, terwijl wegsnijden van het hoornvlies uiteindelijk leidt tot de uitscheiding van glasvocht vloeistof. Het netvlies wordt betrokken bij het glasachtig lichaam waardoor het moeilijk is accijns een goede kwaliteit tissue without verontreiniging. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765table1.jpg" alt="Tabel 1" /> Tabel 1. Samenvatting van de verschillende activiteiten uitgevoerd met behulp van menselijke oculaire globes in 2009 en 2010 op Fondazione Banca Degli Occhi (Venezia, Italië). Ongeveer 60% van de weefsels werden gebruikt voor transplantatie, waardoor een groot aantal oculaire bollen (ongeveer 40%) voor wetenschappelijk en medisch onderzoek. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig1sup.jpg" alt="Aanvullende Figuur 1" /> Aanvullende Figuur 1. Anatomie van het menselijk oog 5. Verschillende delen van het menselijk oog is in deze figuur aangegeven, gebruikt om de exacte positie van het weefsel te volgen.

<ol><li>Fay, A. Diseases of the visual system. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFay%2C+A+%22Cecil+Medicine%22">Cecil Medicine</a>. Goldman, L., Ausiello, D. , 23rd ed, Saunders Elsevier. Philadelphia, Pa. (2007).</li>
<li>Parekh, M., Megaw, R., Ray-Chaudhuri, A., Ahmad, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patents+in+Limbal+Stem+Cell+Biology%5BTitle%5D)+AND+%22Recent+patents+on+Regenerative+Medicine%22%5BJournal%5D)">Patents in Limbal Stem Cell Biology.</a> Recent patents on Regenerative Medicine. 1, 207-212 (2011).</li>
<li>Pharm, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Eye%3A+The+physiology+of+human+perception%5BTitle%5D)+AND+%22Britannica+educational+publishing%22%5BJournal%5D)">The Eye: The physiology of human perception.</a> Britannica educational publishing. 36, 19-27 (2011).</li>
<li>Lang, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLang%2C+G+%22Ophthalmology%3A+A+pocket+textbook+atlas%22">Ophthalmology: A pocket textbook atlas</a>. , 2nd Edition, 115-117 Forthcoming.</li>
<li>Liesbeth, P. els <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+Culture%3A+The+method+of+choice+for+preservation+of+human+donor+corneas%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Organ Culture: The method of choice for preservation of human donor corneas.</a> Br. J. Ophthalmol. 81, 523-525 (1997).</li>
<li>Meyer, J. S., Howden, S. E., Wallace, K. A., Verhoeven, A. D., Wright, L. S., Capowski, E. E., Pinilla, I., Martin, J. M., Tian, S., Stewart, R., Pattnaik, B., Thomson, J., Gamm, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optic+vesicle-like+structures+derived+from+human+pluripotent+stem+cells+facilitate+a+customized+approach+to+retinal+disease+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Optic vesicle-like structures derived from human pluripotent stem cells facilitate a customized approach to retinal disease treatment.</a> Stem Cells. , (2011).</li>
<li>Trifunovic, D., Karali, M., Camposampiero, D., Ponzin, D., Banfi, S., Marigo, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-resolution+RNA+expression+atlas+of+retinitis+pigmentosa+genes+in+human+and+mouse+retinas%5BTitle%5D)+AND+%22Invest.+Ophthalmol.+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">A high-resolution RNA expression atlas of retinitis pigmentosa genes in human and mouse retinas.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 2330-2336 (2008).</li>
<li>Mora, P., Montanini, L., Ferrari, S. Retina. 30, 1555(2010).</li>
<li>Claybon, A., Bishop, A. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+a+Mouse+Eye+for+a+Whole+Mount+of+the+Retinal+Pigment+Epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissection of a Mouse Eye for a Whole Mount of the Retinal Pigment Epithelium.</a> J. Vis. Exp. (48), e2563(2011).</li>
<li>Skeie, J. M., Tsang, S. H., Mahajan, V. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evisceration+of+Mouse+Vitreous+and+Retina+for+Proteomic+Analyses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Evisceration of Mouse Vitreous and Retina for Proteomic Analyses.</a> J. Vis. Exp. (50), e2795(2011).</li>
</ol>

De auteurs hebben geen belangenconflict.

Zowel de juiste excisie en een goede bewaring van het hoornvlies en het netvlies weefsels zijn van cruciaal belang als kleine gebreken, zoals endotheliale schade of hoog aantal van Descemet plooien kan leiden tot transplantaatfalen van het hoornvlies terwijl de temperatuur wijzigingen of verkeerd gebruik kan de integriteit van het netvlies weefsels in gevaar brengen. Het doel van dit artikel is te laten zien hoe het hoornvlies en het netvlies weefsels optimaal worden geïsoleerd, zonder het induceren van schade of wijzig...

Materialen voor excisie van hoornvlies en netvlies. <table border="1"><tbody><tr><td> Product omschrijving </td><td> Afmeting </td><td> Bedrijf / Instituut </td></tr><tr><td> Bewaakte wegwerp scalpel </td><td> Blade grootte 15 </td><td> Swann-Morton </td></tr><tr><td> Steriel verband </td><td> 5 cm x 5 cm, 8 gelaagd, 5 stuks </td><td> Artsana </td></tr><tr><td> Steriele disposable medische handdoek </td><td> 35 X 50 cm </td><td> U.Jet </td></tr><tr><td> Steriele scharen </td><td> Bladen 24 mm / totale lengte. 95 mm gebogen, stompe </td><td> e.janach </td></tr><tr><td> Steriel pincet </td><td> Roestvrij staal -100 mm 11 X 2 geregeerd door 0,70 mm tanden </td><td> e.janach </td></tr><tr><td> Cornea klauw - Wegwerp medisch hulpmiddel </td><td></td><td> NIIOS (Hippocratech) </td></tr&gt; <tr><td></td><td> Voorbereidingen </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td> 100 ml PBS [10x] in 900 ml d / w (gedestilleerd water) </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr><tr><td> Na-thiosulfaat </td><td> 1 g Na-thiosulfaat in 1 liter PBS [1x] </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr><tr><td> I-PVP </td><td> 5 g I-PVP in 1 liter d / w </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr></tbody></table> Tabel 2. De tabel beschrijft de gebruikte materialen voor excisie van het hoornvlies en het netvlies en het bedrijf waar ze worden ontvangen uit. Materialen voor opslagmedium (2000 ml). <table border="1"><tbody><tr><td> Componenten </td><td> Leverancier </td><td> Catalogusnummer </td><td> Concentratie </td><td> Hoeveelheid </td></tr><tr><td> MEM(1X) vloeibare </td><td> Invitrogen </td><td> 32360-034 </td><td></td><td> 1900 ml </td></tr><tr><td> Natriumpyruvaat </td><td> Invitrogen </td><td> 11360-039 </td><td> 1 mM (10 ml / l) </td><td> 20 ml </td></tr><tr><td> L-glutamine </td><td> Invitrogen </td><td> 25030-032 </td><td> 2 mM (10 ml / l) </td><td> 20 ml </td></tr><tr><td> Antibiotica / antimycotica </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A5955-20ML </td><td> 10 ml / l </td><td> 20 ml </td></tr><tr><td> Pasgeboren kalf serum </td><td> Invitrogen </td><td> 26010-74 </td><td> 2% (20 ml / l) </td><td> 40 ml </td></tr></tbody></table> Tabel 3. Materialen voor opslagmedium. Bereiding van opslagmedium Voeg alle ingrediënten met behulp van de specifieke concentraties zoals hierboven gegeven in een pot en meng goed. Filterenmet poriegrootte van 0,2 micron filter (Millipore Milaan, Italië) met behulp van een peristaltische pomp. Behouden het medium in de flessen bij KT. Materialen voor transportmedium (2000 ml). <table border="1"><tbody><tr><td> Componenten </td><td> Leverancier </td><td> Catalogusnummer </td><td> Concentratie </td><td> Hoeveelheid </td></tr><tr><td> MEM (1X) vloeibare </td><td> Invitrogen </td><td> 32360-034 </td><td></td><td> 1800 ml </td></tr><tr><td> Natriumpyruvaat </td><td> Invitrogen </td><td> 11360-039 </td><td> 1 mM (10 ml / l) </td><td> 20ml </td></tr><tr><td> L-glutamine </td><td> Invitrogen </td><td> 25030-032 </td><td> 2 mM (10 ml / l) </td><td> 20ml </td></tr><tr><td> Pasgeboren kalf serum </td><td> Invitrogen </td><td> 26010-74 </td><td> 2% (20 ml / l) </td&gt; <td> 40 ml </td></tr><tr><td> Dextran T500 </td><td> Pharmacosmos </td><td> 551005004007 </td><td> 6% (60 g / liter) </td><td> 120 g / l </td></tr></tbody></table> Tabel 4. Materiaal voor transportmedium. Voorbereiding van transportmedium Voeg Dextraan 6% in ~ 1.5 liter van MEM en &#39;s nachts te laten. Voeg de rest van de ingrediënten in de media en filteren met behulp van 0,2 micron filter (Millipore, Milaan, Italië) met behulp van een vacuümpomp. Behouden het medium in de flessen bij KT.

een vereenvoudigde methode voor<em&gt; in situ</em&gt; excisie van het hoornvlies en het verwijderen van de ingewanden van retinaal weefsel van human ocular globe

A Simplified Technique for In situ Excision of Cornea and Evisceration of Retinal Tissue from Human Ocular Globe

Enucleatie is het proces van het ophalen van de oculaire hele wereld van een overleden donor en de rest van de wereld ongestoord. Excisie verwijst naar het ophalen van oculaire weefsels, in het bijzonder hoornvlies, door een vermindering van het los van het oculair wereld. Ingewanden is het verwijderen van de ingewanden hier aangeduid als retina. De oculaire wereld bestaat uit het hoornvlies, de sclera, het glasachtig lichaam, de lens, de iris, het netvlies, het vaatvlies, spieren enz. (Suppl. figuur 1). Wanneer een patiënt lijdt aan beschadiging van het hoornvlies, de cornea verwijderd moet worden en een gezonde men moet worden getransplanteerd door keratoplastische operaties. Genetische aandoeningen of gebreken in functie van de retina in gevaar kunnen brengen visie. Menselijke oculaire bollen kan worden gebruikt voor verschillende chirurgische procedures, zoals de ogen bankieren, transplantatie van menselijke cornea of ​​sclera en onderzoek op het oculaire weefsels. Er is echter weinig informatie beschikbaar over het menselijk hoornvlies en het netvlies excisie, waarschijnlijk te wijten aan de limited toegankelijkheid van menselijke weefsels. De meeste studies beschrijven van soortgelijke procedures worden uitgevoerd op diermodellen. Onderzoek wetenschappers rekenen op de beschikbaarheid van goed ontleed en goed geconserveerde oculaire weefsels in om de kennis uit te breiden op de menselijke ogen ontwikkeling, homeostase en functie. Zoals we ontvangen hoog bedrag van oculaire bollen, waarvan ongeveer 40% (tabel 1) van hen worden gebruikt voor onderzoeksdoeleinden zijn wij in staat om grote hoeveelheid experimenten uit te voeren op deze weefsels, het definiëren van technieken om de accijnzen en regelmatig te bewaren hen. Het hoornvlies is een avasculaire weefsel dat de transmissie van licht in staat stelt op het netvlies en voor dit doel moet altijd handhaven van een goede mate van transparantie. Binnen het hoornvlies, de limbus regio, die is een reservoir van de stamcellen, helpt de reconstructie van epitheliale cellen en beperkt de begroeiing van het bindvlies behoud van het hoornvlies transparantie en duidelijkheid. De grootte en e<html> ickness van het hoornvlies zijn van cruciaal belang voor de duidelijke visie, zoals veranderingen in een van beide zou kunnen leiden tot afgeleid, onduidelijke visie. Het hoornvlies bestaat uit 5 lagen; a) epitheel, b) Bowman&#39;s laag, c) stroma, d), Descemet membraan en e), endotheel. Alle lagen moeten goed functioneren om te zorgen voor duidelijke visie 4,5,6. Het vaatvlies is de intermediair tuniek tussen de sclera en de retina, begrensd aan de binnenkant van de membraan van Bruch en is verantwoordelijk voor de bloedstroom in het oog. De choroid helpt om de temperatuur en levert voeding regelen op de buitenste lagen van het netvlies 5,6. Het netvlies is een laag van zenuwweefsel dat de achterkant van het oculair wereld (Suppl. figuur 1) omvat en bestaat uit twee delen: een photoreceptive deel en een niet-ontvankelijke deel. Het netvlies zorgt voor het ontvangen van het licht van het hoornvlies en de lens en zet het om in de chemische energie uiteindelijk doorgegeven aan de hersenen met behulp van de optische zenuw 5,6. ove_content &quot;&gt; Het doel van dit artikel is om een ​​protocol voor het ontleden van het hoornvlies en het netvlies weefsels van menselijke oculaire bollen. Het vermijden van kruisbesmetting met aangrenzende weefsels en het behoud van RNA integriteit is van fundamenteel belang als dergelijke weefsels onmisbaar zijn voor gericht onderzoeksdoeleinden op (i) het karakteriseren van het transcriptoom van de oculaire weefsels, (ii) het isoleren van stamcellen voor regeneratieve geneeskunde projecten, en (iii) de evaluatie van histologische verschillen tussen de weefsels van de normale / getroffen personen. In dit artikel beschrijven we de techniek die we nu gebruiken voor het verwijderen het hoornvlies, het vaatvlies en het netvlies weefsels van een oculaire hele wereld. Hier bieden wij u een gedetailleerd protocol voor de ontleding van het menselijk oculaire hele wereld en de excisie van het hoornvlies en het netvlies weefsels. De bijbehorende video zal onderzoekers helpen om een ​​geschikte techniek voor het ophalen te leren kostbare weefsels die moeilijk regelmatig vinden.

De paper beschrijft een vereenvoudigde techniek om accijnzen hoornvlies en het netvlies weefsels uithalen van de oculaire bol van de menselijke postmortale donoren. De techniek die hier beschreven zal helpen om accijnzen goede kwaliteit weefsels worden gebruikt voor transplantatie, chirurgisch of wetenschappelijke doeleinden zonder deze te beschadigen andere weefsels van het oculair wereld.

Een vereenvoudigde methode voor<em&gt; In situ</em&gt; Excisie van het hoornvlies en het verwijderen van de ingewanden van retinaal weefsel van Human Ocular Globe

Enucleatie is het proces waarbij de oogbol uit een kadaverdonor wordt verwijderd, waarbij de rest van de oogbol ongemoeid blijft. Excisie verwijst naar de ...

Vandaag demonstreren we een vereenvoudigde techniek om hoornvlies- en retinawefsel te isoleren uit een menselijke oogbol van cadaverdonoren. De beschreven techniek zal helpen om weefsel van goede kwaliteit te verkrijgen voor transplantatie, chirurgische en orale onderzoeksdoeleinden, zonder ander weefsel van de oogbol te beschadigen. Met 18 jaar expertise en een aantal jaarlijkse hoornvliestransplantaties hebben we een hoge standaard in ons werk gehandhaafd door voortdurend nieuwe technieken te ontwikkelen en onze vaardigheden dagelijks te verbeteren.Om dit te bereiken, voeren we eerst een excisie van het hoornvlies uit, gevolgd door een evisceratie van het netvlies. Het hoornvlies is een avasculair weefsel dat de transmissie van licht naar het netvlies mogelijk maakt en voor dit doel altijd een hoge mate van transparantie moet behouden. Het hoornvlies bestaat uit vijf lagen: het epitheel, de laag van Bowman, het stroma, het Descemet-membraan en het endotheel.Als het hoornvlies beschadigd is, kan dit worden vervangen met behulp van een geschikt donorhoornvlies. Het choroidea is het tussenliggende vlies tussen de sclera en het netvlies, begrensd aan de binnenzijde door het membraan van Bruch, en is verantwoordelijk voor de bloedtoevoer in het oog. Een adequate evisceratie van het choroidea is net zo belangrijk als de verwijdering van het netvlies.Het netvlies helpt bij het ontvangen van het licht van het hoornvlies en de lens en zet dit om in chemische energie die uiteindelijk naar de hersenen wordt overgebracht. Omdat de oogzenuw transparant en fragiel is, moet deze systematisch worden geëviscereerd om een goede weefselkwaliteit te verkrijgen. Schakel de laminaire airflow-kast in.Reinig de laminaire flowkast met 70% isopropylalcohol. Trek persoonlijke beschermende kleding aan, zoals een chirurgisch mutsje, steriele handschoenen en mouwbeschermers. Richt met behulp van aseptische technieken het steriele veld in door een steriel doek en een vooraf gesteriliseerde instrumentenbak te plaatsen.Open de steriele instrumentenpakketten aseptisch en flip deze op het steriele veld, waarbij elke contaminatie wordt vermeden. Positioneer alle steriele materialen en instrumenten in het steriele veld en plaats de oogpotjes met de oogbollen zodanig dat ze zich aan de rand van het steriele veld bevinden. Voor gebruiksgemak worden de flessen met vooraf bereid bewaarmedium gelabeld en worden iodine polyol pyro lid op sodium th sulfate en een steriele fosfaatgebufferde zoutoplossing geplaatst.Laat de oogweefsels en oplossingen, die bewaard worden in koelkasten bij vier graden Celsius, buiten de steriele voeding op kamertemperatuur komen. Vermijd herhaalde opwarm- en afkoelcycli. Verwijder gaasjes en sponsjes uit de oogpot met steriele pincetten.Plaats de oogbol op het deksel en verwijder de extra verbanden. Pak de oogbol voorzichtig op samen met de oogzenuw en dompel de bol onder in steriele IPVP. Decontamineer de oogbollen in steriele IPVP gedurende twee minuten.Overbreng de oogbol naar steriel natriumthiosulfaat voor één minuut. Overbreng de oogbollen naar een steriele fosfaatbuffer-cellijnoplossing en laat deze staan tot het moment van gebruik. Was en verwijder de oogbol vanuit de PBS onder een laminaire airflow-kap en plaats deze in het steriele veld.Wikkel het oogbol met een steriel doek, waarbij het hoornvlies en ongeveer vijf millimeter sclera rondom het hoornvlies onbedekt blijven; de oogbol kan eenvoudig in de hand worden vastgehouden. Houd voldoende druk vast met een steriele schaar. Verwijder alle eventuele resten van het bindvlies zonder het hoornvlies te beschadigen.Gebruik een wegwerpscalpelblad om een scleral incisie van drie tot vier millimeter vanaf de limbusregio te maken. Breid de incisie vervolgens over 360 graden uit, waarbij u voorkomt dat het onderliggende uveale weefsel wordt geperforeerd of dat de normale kromming van het hoornvlies wordt gedeformeerd. Maak vier grote incisies met vier kleine tussenpozen, waarbij u voorkomt dat het glasachtig lichaam vrijkomt.Alle vier de openingen worden ingesneden, waarbij ervoor wordt gezorgd dat er geen ander weefsel wordt verwijderd. De aanwezigheid van kleine sclera-plaques kan het snijden bemoeilijken, dus zorg dat de sclera-excisie met microsurgery-scharen volledig wordt voltooid. Deze handeling moet worden uitgevoerd zonder het choroidea-retina en het glaslichaam te beschadigen.Inspecteer de incisie om te bevestigen dat deze volledig is. Indien de incisie correct is uitgevoerd, hecht de cornea-sclerale rand aan het ciliairlichaam enkel op het punt dat correspondeert met het hoornvlies; leg de oogbol vervolgens neer nabij het centrum van het steriele veld. Voltooi de verwijdering van het hoornvlies met behulp van een steriele pincet.Houd de scleral rand stationair en exciseer de corno-scleral rand weg van de oogbol. Scheid voorzichtig alle overgebleven aanliggende weefsels van de corno-scleral knop. Trek de corno-scleral rand nooit op een manier die kruislingse corneale spanning kan veroorzaken, en laat deze niet terugvallen op de voorste oogkamer.De endotheelceldichtheid van het hoornvlies wordt gecontroleerd met behulp van een hypotone oplossing en de celsterfte via tripanoonblauw-kleuring gedurende ongeveer één minuut. Verwijder de tripanoonblauw-kleurstof met een steriel gaasje en was het hoornvlies in steriele PBS. Breng het vervolgens over naar een steriele Petrischaal gevuld met sucrose-oplossing.Deze oplossing helpt bij het creëren van een hypotone omgeving en maakt het mogelijk om de cellen visueel te identificeren. De cellen worden vervolgens geteld onder een optische microscoop bij een vergroting van 100x en gemeten als cellen per vierkante millimeter. Er wordt doorgaans gekeken naar de morfologie van de celdichtheid, zoals intercellulaire grenzen, polymorfisme, degeneratie, dystrofie en celsterfte.De hoornvliesdikte is, samen met een goede transparantiegraad van het weggenomen hoornvlies, eveneens een belangrijk kenmerk voor transplantatie. Steriele corneaal CLO wordt gebruikt om het hoornvlies bij de scleral rand te fixeren; buig de corneaal CLO om te zorgen dat de opening van het gat voldoende groot is om de scleral rand te vergrendelen, en breng de scleral rand van het hoornvlies met een corneaal clove over naar een eerder voorbereid hoornvliesopslagmedium, dat op kamertemperatuur is bereid. Het hoornvlies moet vervolgens gedurende de vier weken durende bewaring van het hoornvlies worden geconserveerd bij 31 degree SIUs.Het bewaarmedium wordt onderworpen aan verschillende microbiologische tests met behulp van een B 9 2 4 0 instrument. Aangezien het hoornvlies tijdens de bewaring dikker wordt dan de gebruikelijke maat die vereist is voor transplantatie, maken oogbanken gebruik van zwelremmende middelen om de dikte te verminderen. 6% Dextran T 500 wordt gebruikt om het hoornvlies terug te brengen naar de normale grootte en het transportmedium.Reinig de steriele instrumenten met RNA-spray om een RNA-vrije omgeving te creëren voorafgaand aan de retinale excisie. Bereid het steriele veld voor en zorg ervoor dat de oogbol intact is en dat alleen het hoornvlies en de sclera-rand zijn verwijderd. Als het glasachtig lichaam naar buiten lekt, wordt het verwijderen van het retinale weefsel bemoeilijkt.Indien de donor jonger is dan 65 jaar, wordt de sclera na serologisch onderzoek bewaard in 70% alcohol voor chirurgische doeleinden. In dergelijke gevallen wordt de sclera niet doorgesneden, maar wordt alleen het glasachtig lichaam verwijderd en de gehele sclera bewaard voor retina-excisie. Begin met een kleine snede of incisie nabij de hoornvlieszijde van de sclera en werk met steriele pincetten en scharen in de richting van de oogzenuw.Houd het deel van de sclera vast met steriele pincetten en knip met de schaar stap voor stap in een rechte lijn richting de oogzenuw, waarbij beschadiging van het glasachtig lichaam wordt voorkomen. De choroïdale pluggen moeten van de sclera worden gescheiden, aangezien deze aan elkaar kleven. Knip de gehele sclera door om het choroïdweefsel bloot te leggen. Wat?Zodra de sclera volledig is doorgesneden, scheidt u de sclera van de overige weefsels door deze nabij de oogzenuw door te snijden, waardoor een volledige laag choroidea die het glasachtig lichaam bedekt zichtbaar wordt. Vul deze steriele RNAse-vrije centrifugebuisjes met 2 ml RL-buffer met behulp van twee steriele pincetten. Verwijder de choroïdale laag voorzichtig door de oogzenuw met één pincet vast te pakken en de choroidea met het andere pincet te verwijderen.Scheid het choroidea gedeeltelijk en knip het door om de verwijdering te vergemakkelijken. De choroidea-laag kan met een schaar worden doorgeknipt, waarbij beschadiging van het netvlies wordt vermeden. Plaats de uitgesneden choroidea-laag in de RNA later-oplossing en bewaar deze gedurende 24 uur bij vier graden Celsius.Verwijder al het resterende choroidea om het retinale weefsel bloot te leggen. Zodra de volledige choroidea-laag is verwijderd, is een transparante laag retina zichtbaar. De choroidea-laag heeft duidelijk een intern Bruchs-membraan, dat ook verwijderd kan worden, maar het is moeilijk om dit met het blote oog te identificeren.Gebruik op dezelfde manier twee pincetten om de retinale laag te verwijderen. Het is eenvoudig om een grote hoeveelheid retina te isoleren als de excisie nabij de oogzenuw plaatsvindt. Alle lagen van het oog zijn nu zichtbaar.Plaats het uitgesneden retina in de RNA later-oplossing en bewaar deze gedurende 24 uur bij vier graden Celsius. Reinig het werkgebied met 70% isopropanol. De endotheelcellen, gekleurd met trypaanblauw, kunnen worden bekeken onder een 100-voudige vergroting van een omgekeerde microscoop.Een geschikte cornea met meer dan 200 cellen per vierkante millimeter wordt gewoonlijk bewaard voor verder gebruik. Door deze te beoordelen op een schaal van redelijke tot uitstekende kwaliteit, kunnen vergelijkende studies worden verricht. Zodra de cornea gereed is voor transplantatie, worden gewoonlijk de dikte en de transparantie genoteerd, waarna een geschikte cornea wordt gebruikt voor een penetrerende keratoplastiek, waarbij de volledige cornea wordt getransplanteerd.Celsterfte wordt gecontroleerd door het observeren van blauw gekleurde cellen en wordt uitgedrukt als het percentage dode cellen. Een totale celsterfte van meer dan 2% wordt als ongeschikt beschouwd tijdens de bewaring. Als de celdichtheid lager is dan 2200 cellen per vierkante millimeter of als er sprake is van schade door sterfte, kan het hoornvlies worden gebruikt voor een anterieure lamellaire keratoplastiek.Als het anterieure trauma is beschadigd en het hoornvlies een goede endotheelceldichtheid heeft, kan het hoornvlies worden gebruikt voor posterieure lamellaire keratoplastiek. De dikte van het hoornvlies neemt gewoonlijk toe tijdens organkweek. Transportmedium helpt om de normale vorm en structuur te herstellen.Daarnaast bevordert organcultuur de re-epithelialisatie van het hoornvlies en maakt de lange bewaartermijn een zorgvuldige donorselectie mogelijk. Microbiologisch en serologisch onderzoek. Het biedt voldoende tijd om een operatie te plannen en helpt bij het controleren van de endotheliale celdichtheid en morfologie wanneer dit niet mogelijk is vanwege een lange postmortale tijd.Wanneer de beschreven procedure wordt gevolgd, kunnen de hoornvliezen worden uitgesneden zonder andere weefsels te beschadigen. Indien het hoornvlies niet geschikt is voor transplantatie, kan het worden gebruikt voor onderzoeksdoeleinden, zoals het ontwikkelen van nieuwe media en bewaarcondities voor het bestuderen van ziekten van het oogoppervlak, het isoleren van limbale stamcellen en het bestuderen van het effect van geneesmiddelen op het hoornvlies. Voor het netvlies kunnen we kruiscontaminatie van RNA-monsters met centrale weefsels vermijden en de RNA-integriteit behouden, wat van fundamenteel belang is.Deze weefsels, die onmisbaar zijn voor onderzoeksdoeleinden, zijn bedoeld voor het karakteriseren van het transcriptoom van de oogweefsels, het isoleren van stamcellen voor projecten op het gebied van regeneratieve geneeskunde en het evalueren van histologische verschillen tussen weefsels van normale of aangedane subjecten. Zodra het retinaweefsel is verwijderd, kan het voor verschillende doeleinden worden gebruikt, waardoor de daaropvolgende stappen en condities voor bewaring dienovereenkomstig kunnen verschillen. Zo kan het retinaweefsel worden geplaatst in buisjes met RNA-stabilisatierereagentia zoals r nator of thisis-buffer voor RNA- of DNA-extractie, of in displaced of trypsine voor de isolatie van cellen.Fixeeroplossingen voorafgaand aan het inbedden van weefsels in paraffine of OCT voor immunohistochemie. Bedankt voor het kijken naar deze video en veel succes met uw onderzoek.

a-simplified-technique-for-situ-excision-cornea-evisceration-retinal

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

De dissectie techniek illustreert enucleatie van de muis oog voor weefsel fixatie te fenotypering presteren in high-throughput-schermen.

Mouse Eye Enucleatie voor Remote High-throughput Fenotypering

This video demonstrates a method to induce ocular surface inflammation and meibomian gland dysfunction in a murine model. Stimulation of the mouse's immune system using an immunogen and later restimulation with the same immunogen promotes ocular surface inflammation, which causes plugging of meibomian gland secretion through neutrophil-produced aggNETs and leads to dry eye disease.

A Method to Induce Ocular Surface Inflammation in a Murine Model

Het verwijderen van de ogen, ook wel enucleatie, een bruikbare strategie om aspecten van de visuele, cross-modale en ontwikkelingsplasticiteit bestuderen langs de zoogdieren visuele systeem is omdat het leidt tot onomkeerbare gedeeltelijke (monoculair) of volledige (binoculair) verlies van gezichtsvermogen. Hier beschrijven we een zeer reproduceerbare en duidelijke aanpak om te presteren in vivo enucleatie.

Een zeer reproduceerbare en eenvoudige methode om te presteren In Vivo Oculaire Enucleatie in de muis na opening van de ogen

Het doel van dit protocol is om een effectieve techniek te laten zien om een volledige, intacte vitreuze kern en cortex van post mortem geënucleeerde varkensogen te isoleren.

Hele glasvocht Dissection voor Vitreodynamic Analyse

Deze studie heeft tot doel een nieuw humaan organotypisch retinale cultuurmodel (HORC) te ontwikkelen dat voorkomt dat de retinale integriteit tijdens explantbehandeling in gevaar komt. Dit wordt bereikt door het netvlies te kweken met het bovenliggende glasvocht en het onderliggende retinale pigmentepitheel-vaatvlies (RPE-vaatvlies) en sclera.

Karakterisering van een nieuwe menselijke organotypische retinale cultuurtechniek

Modificatie van bestaande multi-elektrode array of patch clamp apparatuur maakt het ex vivo elektroretinogram breder toegankelijk. Verbeterde methoden om ex vivo lichtresponsen te registreren en te onderhouden vergemakkelijken de studie van fotoreceptor en ON-bipolaire celfunctie in het gezonde netvlies, diermodellen van oogziekten en menselijke donorvliezen.

Optimalisatie van de instellingen en voorwaarden voor ex vivo elektroretinogram om de retinafunctie in kleine en grote ogen te bestuderen

Dit protocol presenteert en beschrijft stappen voor de isolatie, dissectie, kweek en kleuring van retinale explantaten verkregen van een volwassen muis. Deze methode is gunstig als een ex vivo model voor het bestuderen van verschillende retinale neurovasculaire ziekten zoals diabetische retinopathie.

Retinale explant van het netvlies van de volwassen muis als een ex vivo model voor het bestuderen van retinale neurovasculaire ziekten

Dit artikel presenteert een protocol voor oculaire microdissectie bij knaagdieren. Het proces omvat de enucleatie van de oogbol samen met het nictitating membraan (d.w.z. het derde ooglid). Dit wordt dan gevolgd door de scheiding van de achterste en voorste oogschelpen.

Microdissectie van het knaagdieroog

We beschrijven een methode om retinaal pigmentepitheel (RPE) efficiënt te scheiden van het netvlies in menselijke ogen en hele RPE / choroïde flatmounts te genereren voor histologische en morfometrische analyses van de RPE.

Efficiënte en consistente generatie van retinale pigmentepitheel / choroïde flatmounts uit menselijke ogen voor histologische analyse

Hier bieden we een gedetailleerde methodologie voor het isoleren van het netvlies van het oog van de muis voor uitgebreide ex vivo experimenten. Dit protocol benadrukt het toegankelijk maken van deze technisch veeleisende benadering voor onderzoekers die willen profiteren van de onderzoeksmogelijkheden die worden geboden door retinale glia in situ te houden in levend weefsel.

Een ex vivo explantatiemodel voor het bestuderen van gliale interacties in het netvlies van de muis

Leer een vereenvoudigde techniek voor excisie van hoornvlies en retina uit het menselijk oogbol met minimale beschadiging van omliggende structuren. Deze methode behoudt weefselkwaliteit voor transplantatie en onderzoek.

Een vereenvoudigde methode voor In situ Excisie van het hoornvlies en het verwijderen van de ingewanden van retinaal weefsel van Human Ocular Globe (Video) | JoVE Journal

Een vereenvoudigde methode voor

Meer video's verkennen