Name: Voorbereiden van T-cel groeifactor van Rat Splenocyten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-10-31T22:24:33.000+00:00
Duration: 18 min 27 s
Description: Leer de bereiding van T-cel groeifactor uit rattensplenocyten voor immunologisch onderzoek. Deze methode stimuleert mononucleaire cellen met concanavaline A om cytokineproductie te induceren voor T-celcultuur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li> Neem Lewis rat milt (ratten tussen de 160-200g zijn het beste). Dilacerate op ijs in een petrischaaltje met PBS + antibiotica (PBS-PS) met behulp van een cel zeef. In een 50 ml buis. Vullen met PBS-PS. </li><li> Spin gedurende 10 min bij 4 ° C om pellet de cellen. </li><li> Was de cellen twee keer. </li><li> Resuspendeer de pellet in NH 4 Cl 0,15 M (5 ml per milt). Meng voorzichtig en continu met een pipet gedurende 3 minuten op ijs om de erytrocyten lyseren. Vul de buis met medium. </li><li> Spin gedurende 10 min bij 4 ° C om pellet de cellen. </li><li> Was de cellen twee keer. </li><li> Tel de cellen. Een rat milt geeft 200 tot 250 miljoen cellen. </li><li> Zaad van de cellen op 2 miljoen per ml in compleet medium: 50 ml per 75 cm 2 kolf. </li><li> Laten groeien gedurende 48 uur in de incubator. </li><li> Spin 15 min bij 4 ° C om pellet de cellen. </li><li> Verzamel de supernatant, gooi de cellen. </li><li> Voeg toe 15 mg / ml een methyl mannoside aan het supernatant. Meng goed. </li><li> Filter (0,2 mm) </li><li> Aliquot en bewaar bij -20 ° C. Kunnen worden bewaard bij 4 ° C gedurende 10 dagen indien nodig. </li></ol>

<ol><li>Beeton, C., Barbaria, J., Devaux, J., Benoliel, A. -M., Gola, M., Sabatier, J. -M., Bernard, D., Crest, M., Beraud, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+blocking+of+voltage-gated+K%2B+channels+treats+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+and+inhibits+T-cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation.</a> J. Immunol. 166, 936-944 (2001).</li>
<li>Beeton, C., Wulff, H., Barbaria, J., Clot-Faybesse, O., Pennington, M., Bernard, D., Cahalan, M. D., Chandy, K. G., Beraud, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+blockade+of+T+lymphocyte+K%2B+channels+ameliorates+experimental+autoimmune+encephalomyelitis%2C+a+model+for+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad%22%5BJournal%5D)">Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis.</a> Proc. Natl. Acad. 98, 13942-13947 (2001).</li>
<li>Mor, F., Cohen, I. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Propagation+of+Lewis+rat+encephalitogenic+T+cell+lines%3A+T-cell-growth-factor+is+superior+to+recombinant+IL-2%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neuroimmunol%22%5BJournal%5D)">Propagation of Lewis rat encephalitogenic T cell lines: T-cell-growth-factor is superior to recombinant IL-2.</a> J. Neuroimmunol. 123, 76-82 (2002).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te melden.

We bereiden TCGF van Lewis rat splenocyten, omdat we regelmatig naïeve ratten euthanaseren van deze stam tot de oogst serum en thymi om Lewis rat T-cel-lijnen te stimuleren in vitro. Dit TCGF kan gebruikt worden om de groei en overleving van T-cel-lijnen van de andere ratten stammen te bevorderen. TCGF kunnen ook worden bereid uit andere stammen van ratten.

Ter voorbereiding compleet kweekmedium het volgende toe te voegen aan een 500 ml fles van RPMI 1640 en steriel-filter: 10% FCS, 1 fles van PSG, 5 ml RPMI vitaminen; 5 ml natriumpyruvaat; 5 ml niet-essentiële aminozuren; 50 uM beta-mercapto-ethanol, 2 ug / ml Concanavaline A.

voorbereiden van t-cel groeifactor van rat splenocyten

Preparing T Cell Growth Factor from Rat Splenocytes

Onderhoud van antigeen-specifieke T-cellijnen of klonen in cultuur vereist rondes van antigeen-geïnduceerde activatie van elkaar gescheiden door fasen van celexpansie 1,2. Toevoeging van interleukine 2 tot en met de cultuur media tijdens de expansiefase nodig is om celdood te voorkomen en voldoende is om op korte termijn T-cel-lijnen te handhaven, maar is aangetoond dat Th1-polarisatie 3 te verhogen. Vervanging van interleukine-2 door T-cel groeifactor (TCGF), die een mix van cytokines bevat, is effectiever dan interleukine 2 het behoud op lange termijn T-cellijnen in vitro 3. Bovendien kan TCGF gemakkelijk worden bereid in grote hoeveelheden in het laboratorium en is veel goedkoper dan recombinant interleukine 2. Hier laten we zien hoe TCGF te bereiden van de rat splenocyten kweeksupernatanten. Voor deze procedure, oogsten we de milt van naïeve Lewis-ratten gedood voor de thymus en bloedafname. Wij bereiden single-cell schorsingen van de milt, Lyze de rode bloedcellen door osmotische schok, en zaad van de splenocyten in kweekmedium. De cellen worden gestimuleerd met Concanavaline A, een mitogeen dat niet-selectief activeert alle rat T-lymfocyten, het induceren van de productie van cytokines. De cultuur supernantant is 48 uur later verzameld andexcess Concanavaline A is gebonden aan alfa-methyl-mannoside om te voorkomen dat het activeren van T-cellijnen die TCGF zal worden toegevoegd. De TCGF wordt dan steriel gefiltreerd, gealiquoteerd, en opgeslagen bij -20 ° C.

We beschrijven de voorbereiding van de T-cel groeifactor gebruikt voor de in vitro expansie van antigeen-specifieke T-lymfocyt rat lijnen.

Voorbereiden van T-cel groeifactor van Rat Splenocyten

Het onderhouden van antigeenspecifieke T-cellijnen of -clonen in kweek vereist ronden van antigeen-geïnduceerde activatie, gescheiden door fasen van celexpansie 1,2. ...

Hallo, ik ben Christine Beaton. Ik ben assistent-onderzoeker in het laboratorium van George Chen bij de afdeling Fysiologie en Biofysica van de University of California in Irvine. In de komende twee dagen ga ik u laten zien hoe u TCGF bereidt, wat staat voor T-celgroeifactor.Voor onze dagelijkse celkweek, wanneer we geen precieze kennis nodig hebben van de samenstelling van de cytokinen in het kweekmedium, gebruiken we T-celgroeifactor (TCGF). Dit is het supernatant van een miltcelkweek die de benodigde cytokinen bevat om de T-cellen te helpen expanderen. De manier waarop we TCGF bereiden, is door de milten te nemen van gezonde Lewis-ratten nadat deze zijn gedood, een suspensie van enkelvoudige cellen voor te bereiden, de rode bloedcellen te verwijderen door middel van lyse, en vervolgens de mononucleaire cellen te stimuleren met concanavaline A, wat de T-cellen induceert om alle benodigde cytokinen voor hun groei te produceren. Om de TCGF te genereren, moeten we de cellen activeren.De methode die we gebruiken is dat we lectine ConA (afgekort als ConA) toevoegen aan onze celcultuur. Wanneer we ConA toevoegen aan de celcultuur, bindt dit aan het glycosyleerde T-celreceptorcomplex. Door gelijktijdig aan meerdere complexen te binden, vindt er een proces plaats dat we capping noemen. Hierbij aggregeren de receptoren aan het celoppervlak tot clusters, wat een activatiesignaal in de T-lymfocyten induceert.Nadat de cellen zijn geactiveerd, zullen ze gaan prolifereren. Ze zullen in omvang toenemen en vervolgens cytokines gaan uitscheiden. Oorspronkelijk dachten we dat TCGF voornamelijk bestond uit interleukine 2, maar we weten nu dat dit niet echt het geval is.Het bevat ook interferon gamma, TNF alfa en waarschijnlijk ook cytokinen in zeer kleine hoeveelheden die net nodig zijn om de cellen na 48 uur in kweek in leven te houden. De cellen hebben alle cytokinen geproduceerd die we nodig hebben. Daarom gaan we de cellen verwijderen, en wanneer we de cellen hebben verwijderd en alleen het supernatant overhouden, bevindt er zich nog steeds wat vrij conal in het supernatant. Dat gaat een probleem vormen, omdat we onze T-celgroeifactor echt willen gebruiken om T-cellijnen te laten groeien.En als we de ConA vrij laten, zullen de cellen worden geactiveerd op momenten dat we dat niet willen. Om dat probleem op te lossen, voegen we een overschot aan een suiker toe die zal binden aan alle vrije ConA in het concentraat. Hierdoor wordt het volledig geïnactiveerd en zal het niet binden aan andere glycosylereceptoren op de cellen wanneer we de TCGF aan de cultuur toevoegen.Laten we beginnen. De eerste stap van dit experiment is het verwijderen van de milt uit de rat direct na euthanasie. Dat is wat ik nu ga doen met behulp van steriele instrumenten.Zodra ik de milten heb verwijderd, plaats ik ze in PBS aangevuld met antibiotica; als antibiotica gebruik ik penicilline en streptomycine. Laten we beginnen. Ik spray de rat in met 70% ethanol om er zeker van te zijn dat er geen contaminatie van mijn cultuur optreedt.Vervolgens maak ik met mijn instrumenten een kleine incisie in de huid. Daarna verwijder ik een laag spierweefsel en komt de milt hier tevoorschijn. Met een andere pincet trek ik de milt voorzichtig naar buiten zonder deze te beschadigen.Ik verwijder het bindweefsel op deze manier. Nu heb ik een milt. Natuurlijk ben ik zeer voorzichtig om niets anders in de buikholte te beschadigen, omdat elke beschadiging aan de darm zal leiden tot onmiddellijke contaminatie van mijn milt.Vervolgens breng ik mijn milt over naar een buis met PBS en antibiotica. Deze buis bewaar ik op ijs. Ik heb nu de milten van drie ratten geoogst.We zijn nu klaar om een enkelcellige suspensie te bereiden uit deze milten. Nu ik de milten heb, breng ik ze naar een weefselkweekkast om er met behulp van 70 micron cellstrainers een enkelcellige suspensie van te maken. Ik heb verschillende benodigdheden nodig om de enkelcellige suspensie uit de milten te bereiden.Ik heb steriele instrumenten nodig, één pincet en één schaar. Daarnaast heb ik de zuiger van een steriele spuit van 1 mL in de petrischaal. Ik ga mijn milten in PBS met antibiotica plaatsen.En in een andere Petrischaal heb ik een cellzeef van 70 micron geplaatst in 10 milliliter PBS plus antibiotica. De eerste stap is om er zeker van te zijn dat de milten schoon zijn, want zoals u hier kunt zien, zitten er nog kleine stukjes bindweefsel en deze ga ik verwijderen omdat ze de cellzeef erg snel zullen verstoppen. Hiervoor snijd ik simpelweg weg wat ik niet wil hebben en gooi ik dit in het deksel van de Petrischaal.Mijn milten zijn nu grotendeels schoon, dus ik zal de milten één voor één nemen, ze in de cell strainer plaatsen en in kleine stukjes snijden. Vervolgens meng ik alle drie de milten. De volgende stap is het maken van een single-cell suspensie. Omdat ik alles steriel wil houden, raak ik de cell strainer niet aan en gebruik ik de zuiger van een steriele spuit van 1 ml om de stukjes milt door de cell strainer te drukken.En zoals u kunt zien aan de buitenkant van de cell trainer, wordt er een suspensie van enkelvoudige cellen gemaakt. Bij de eerste ronde zitten er nog enkele kleine stukjes milt in, maar ik zal de suspensie van enkelvoudige cellen nu al gaan opvangen. Ik heb deze al overgebracht naar een buis van 50 ml die ik op ijs heb bewaard.Vervolgens vul ik mijn celzeef aan met nog 10 mL PBS met antibiotica. Ik neem dus ongeveer 10 mL PBS met antibiotica; dit hoeft niet zeer nauwkeurig 10 mL te zijn, aangezien we enkel aan het wassen zijn. Ik voeg dit toe aan de celzeef en volg daarna dezelfde procedure.Ik ga terug naar de zuiger van mijn spuit en druk nog iets meer van de milt door. Natuurlijk zul je nooit alles erdoor krijgen, omdat er bindweefsel en kleine stukjes vet zijn die ik niet kon verwijderen en die in de celzeef zullen blijven zitten. Maar het grootste deel van de milt zou door de celzeef moeten gaan.Vervolgens herhaal ik precies wat ik eerder heb gedaan. Ik ga mijn enkelcel-suspensie oogsten en deze aan dezelfde tand toevoegen. Tegen deze tijd is er bijna niets meer van het scherm in de celzeef achtergebleven en de PBS die eruit komt is veel helderder. Ik ga simpelweg nogmaals wassen en tegen die tijd zouden de meeste cellen eruit moeten zijn.Nu ik mijn enkelcel-suspensie van PLE-cyten heb, ga ik deze centrifugeren om ze simpelweg te pelletten. Centrifugeren gedurende 8 tot 10 minuten is hiervoor voldoende. We hebben de PLE-cyten nu gecentrifugeerd en er is een mooie pellet ontstaan.Ik ga nu het supernatant verwijderen en vervolgens de rode bloedcellen lyseren. Hiervoor suspendeer ik de myocyten in ammoniumchloride. Ik gebruik hiervoor een oplossing van 0,15 M ammoniumchloride, met een volume van 5 mL per milt.Aangezien ik drie milten had, gebruik ik 15 milliliter ammoniumchloride en doe ik dit op ijs. Om de erytrocyten te lyseren, pipetteer ik het mengsel drie minuten lang voorzichtig op en neer. Oké, we gebruiken dit shot met de hogere belichting hier.Ik heb de elektrocyten nu drie minuten geanalyseerd. Ik ga mijn buis vullen met PBS, of u kunt ook medium gebruiken. Dit is om de osmolariteit van de oplossing terug te brengen naar het normale bereik voor de cellen.Vervolgens centrifugeer ik de cellen, zoals eerder gedaan, gedurende 8 tot 10 minuten om ze tot een pellet te brengen. Daarna was ik ze twee keer met dezelfde PBS met antibiotica. We centrifugeren nu de cellen na het lyseren van de elektrolyten; maak u geen zorgen, we krijgen nooit een honderds procentige vrijgave van de elektrolyten.Het pellet zal nog steeds rood zijn, maar het supernatant zal helderder zijn. Nu ga ik het supernatant afgieten, het pellet resuspenderen, PBS toevoegen tot 50 ml, centrifugeren en deze stap nogmaals herhalen zodat ik twee wasbeurten heb. Daarna kan ik ze tellen. Ik heb de myocyten twee keer gewassen, ze vervolgens gesuspendeerd in kweekmedium en ze geteld met een cytometer.Zoals verwacht. Uit drie milten heb ik ongeveer 600 miljoen cellen verkregen, wat verwacht wordt aangezien één milt normaal gesproken 200 tot 250 miljoen cellen oplevert. Wat ik nu ga doen, is de cellen zaaien met een dichtheid van 2 miljoen per ml in mijn medium dat is aangevuld met 10% foetaal kalfserum.Aan dat medium voeg ik 2 µg/mL Concanavaline A toe om de cellen te stimuleren. Daarna plaats ik de cellen simpelweg gedurende 48 uur in de incubator. De cellen hebben nu 48 uur in de incubator gestaan en, zoals ik zal laten zien, zijn ze goed gegroeid.Het medium is oranje geworden. We zijn nu klaar om onze voorbereiding voor de TCGF af te ronden. Zoals u zult weten, heb ik con carnaval toegevoegd aan mijn celsuspensie om de cellen te activeren.De Concanavaline A is een lectine. Deze zal binden aan de suikers op alle receptoren van de T-cel en al deze cellen kunstmatig activeren. Het probleem waar we nu voor staan, is dat er nog steeds Concanavaline A aanwezig is in het supernatant van de cellen.En aangezien we concanavaline A in andere T-celculturen zullen gebruiken om de cellen uit te breiden, willen we niet dat er concanavaline A aanwezig is in die celculturen. Om dit te verwijderen, ga ik een overmaat aan suiker toevoegen waaraan concanavaline A bindt, namelijk methyl alpha D-glucoside, hier getoond. Ik zal een overmaat van deze suiker toevoegen en deze volledig oplossen.Het zal al het resterende conc naval binden en zodra dat is voltooid, ga ik mijn celsupernatanten steriel filteren en ga ik aliquoten invriezen voor gebruik in de komende weken of maanden. Laten we beginnen met deze laatste stap. Ik voeg mijn celkweeksupernatant toe aan 50 ml buisjes om ze te kunnen centrifugeren om de cellen te verwijderen.Ik vul dus simpelweg zoveel buisjes als nodig is. Dat doe ik niet in de steriele werkbank; dat zou kunnen, maar aangezien ik mijn oplossing aan het einde sowieso moet filteren omdat ik suiker toevoeg die niet steriel is, doe ik dit gewoon op de werkbank. Dat is makkelijker. Ik heb nu al mijn cellen en supernatant in mijn 50 ml falcon-buisjes gegoten.Ik zal ze nu in de centrifuge plaatsen en ongeveer 10 minuten centrifugeren. Het enige doel van het centrifugeren is om de cellen te pelletteren, zodat ik heldere supernatanten krijg. De cellen zijn nu neergeslagen, waardoor de supernatant helder is en dit is wat ik wilde verzamelen.Ik verzamel alle supernatant in een schone fles van 150 vierkante centimeter. Aan deze fles voeg ik de suiker toe. Terwijl de cellen centrifugeerden, heb ik voldoende suiker afgewogen om een concentratie van 15 milligram per ml supernatant toe te voegen.Ik laat het volledig oplossen en daarna filter ik mijn supernatant steriel. Nu voeg ik de suiker toe, 15 milligram per ml supernatant. Ik plaats de dop terug en aangezien ik niet onder steriele omstandigheden werk, maakt het niet uit of er wat in de dop komt, dus ik meng tot alle suiker is opgelost.Dat zou vrij snel moeten gaan. Ja, alle suiker is nu opgelost. Dus het enige wat ik nog moet doen is het supernatant steriel filteren en het vervolgens in aliquoten verdelen.Normaal gesproken maak ik aliquots van 10 tot 15 µL die ik bewaar bij -20 °C. Aliquots zoals deze kunnen meerdere maanden bewaard worden. U kunt uw TCGF ook in de koelkast bewaren, maar dan zou ik het binnen de komende 10 tot 15 dagen gebruiken.In de afgelopen twee dagen heb ik u laten zien hoe u T-celgroeifactor bereidt; dit supernatant is zeer eenvoudig te maken en zeer goedkoop om voor te bereiden. Daarom gebruiken we het zeer vaak in het laboratorium om onze T-cellijnen in cultuur te houden zonder dat we dure cocktails van cytokines hoeven te kopen. Veel succes met uw experimenten.

preparing-t-cell-growth-factor-from-rat-splenocytes

Research

JoVE Journal

Biology

Biologie

Ex vivo Uitbreiding van Tumor-reactieve T-cellen door middel van Bryostatin 1/Ionomycin en de Gemeenschappelijke Gamma Chain Cytokines Formulering

This video demonstrates the screening of immunomodulatory compounds via fluorescent-based assay. Transgenic mouse-derived T lymphocytes with green fluorescent protein expression cassettes are treated with these compounds. The enhanced and reduced GFP signals enable the identification of the compounds' stimulatory and inhibitory effects, respectively.

A Fluorescence-Based Assay Using Engineered Lymphocytes for Screening Immunomodulatory Compounds

The video showcases a flow cytometry-based assay for assaying immunodominance in cytotoxic T lymphocytes or CTL responses. Injected fluorescent target cells exhibit varying fluorescence corresponding to immunogenic epitopes. Post-spleen collection and sorting reveal a reduction in high-intensity fluorescent cells, confirming immunodominance in CTL responses.

An Assay to Evaluate Immunodominance in Cytotoxic T Lymphocyte Responses

This video demonstrates a technique for the ex vivo generation of tumor antigen-specific chimeric antigen receptor (CAR) T cells. Retroviral vectors carrying transgenic RNA are mixed with spleen cells in a medium supplemented with interleukin-2 to promote T-cell survival and proliferation. The mixture is then transferred to a plate coated with recombinant human fibronectin fragments and centrifuged to facilitate the fusion of the virus with the cell, allowing the RNA to integrate into the host...

An Ex Vivo Technique to Generate Tumor-Specific Chimeric Antigen Receptor T Cells

This video demonstrates a technique for generating antigen-specific chimeric antigen receptor (CAR) T cells through retroviral transduction. Activated murine CD8+ T cells are added to a microwell plate coated with recombinant fibronectin fragments. Retroviral vectors containing transgenic RNA encoding an antigen-specific chimeric antigen receptor (CAR) are then introduced, and the plate is centrifuged to facilitate transduction. After incubation, the transduced cells express antigen-specific...

A Technique for the Generation of Antigen-Specific CAR T Cells

De lymfodeletieve en immunomodulerende effecten van chemotherapie en stralingsstandaardzorg kunnen worden benut om de antitumor-effectiviteit van T-celimmunotherapie te verbeteren. We schetsen een methode voor het genereren van EGFRvIII-specifieke chimere antigeenreceptor (CAR) T-cellen en het toedienen ervan in de context van glioblastoma standaardzorg.

Generatie van de CAR T-cellen voor adoptieve Therapie in de context van glioblastoma Standard of Care

Hier presenteren we een protocol te differentiëren lymfkliertest granulocyte-macrophage-colony-stimulating-factor-producing T-helper (THGM) cellen van naïef CD4 + T-cellen, met inbegrip van isolatie van naïeve CD4 + T cellen, differentiatie van THGM, en analyse van gedifferentieerde THGM cellen. Deze methode kan worden toegepast op de studies van de verordening en de functie van THGM cellen.

In Vitro Differentiatie van muis granulocyt-macrofaag-kolonie-stimulerende Factor (GM-CSF)-produceren van T-Helper (THGM) cellen

Hier presenteren we een protocol voor het snel en reproducibly genereren van biologisch geïnspireerde, biologisch afbreekbare articifical antigeen presentatie van cellen (aAPC) met afstembare grootte, vorm en oppervlakte-proteïne presentatie voor T cel expansie ex vivo of in vivo .

Fabricage van anisotrope polymere kunstmatige antigeen presentatie van cellen voor CD8 + T cel activatie

MALT1 regelt aangeboren immuniteit, maar hoe dit gebeurt blijft vaag. We gebruikten de selectieve MALT1 paracaspase remmer MLT-827 te ontrafelen van de bijdrage van MALT1 aan het aangeboren signalering stroomafwaarts van Toll-like of C-type lectine-achtige receptoren, aan te tonen dat MALT1 de productie van myeloïde cytokines regelt, en "downstream" C-type lectine-achtige receptoren, selectief.

Myeloïde aangeboren signalering Pathway regelgeving door MALT1 Paracaspase activiteit

We beschrijven hier een flow Cytometry-based in vivo doden assay die het mogelijk maakt onderzoek van immunodominance in chemo T lymfocyten (CTL) Reacties op een model tumor antigeen. Wij bieden voorbeelden van hoe deze elegante assay kan worden gebruikt voor mechanistische studies en voor de effectiviteit van geneesmiddelen testen.

Maatwerk in vivo chemo tests om Immunodominance in tumor-specifieke CD8+ T Cell responsen te bestuderen

We presenteren verbeterde protocollen voor retrovirale transductie van transportreceptoren en competitieve homing om receptor-gemedieerde orgaan- en micro-omgevingsspecifieke lymfocytenpositionering te bestuderen. Deze methode biedt waardevolle inzichten in mechanismen voor het transport van immuuncellen en heeft potentiële toepassingen in toekomstig fundamenteel en therapeutisch onderzoek.

Efficiënte retrovirale transductie en competitieve homing voor het onderzoeken van GPCR-gemedieerde T-cellokalisatie in diverse weefselmicro-omgevingen

Leer de bereiding van T-cel groeifactor uit rattensplenocyten voor immunologisch onderzoek. Deze methode stimuleert mononucleaire cellen met concanavaline A om cytokineproductie te induceren voor T-celcultuur.

Voorbereiden van T-cel groeifactor van Rat Splenocyten

Meer video's verkennen