Name: Microdialyse van alcohol tijdens de operante ethanol zelftoediening en ethanol bepaling door gaschromatografie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 11 s
Description: Leer microdialyse van ethanol in de hersenen van ratten tijdens operante zelftoediening. Deze methode maakt real-time monitoring mogelijk met gaschromatografie en is minder invasief dan traditionele bloedafname.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dit onderzoek werd ondersteund door subsidies van NIH / NIAAA (AA11852 en AA007471).

1. Stereotaxische Chirurgie <ol><li> Alle procedures volgen de NIH gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren en werden goedgekeurd door de Institutional Animal Care en gebruik Comite. </li><li> Met een stereotaxische inrichting goed behandeld Long-Evans ratten verdoofd met isofluraan, geïmplanteerd met een 21-gauge canule (voor later microdilaysis probe insertie) (Plastics One, Roanoke, VA) boven de hersenen gebied van belang en een tether bout is ingebouwd in de kop stadium (gebruikt bij de microdialyse-apparatuur te ondersteunen). </li><li> Zorgvuldig te controleren ratten tijdens en na de operatie. Zorg ervoor dat alle dieren ten minste een week van post-operatieve zorg en herstel ontvangen en zijn gezond voor het begin van de volgende procedures. Een Jove video van de stereotactische operatie methode beschikbaar is. 1 </li></ol> 2. Operante Training <ol><li> Na een week post-chirurgisch herstel worden de dieren getraind om hefboom pers 10% sucrose solution in een Med Associates operante kamer (MedAssociates, Inc, Vermont, USA) uitgerust met een lickometer, intrekbare hendel en sipper buis (zoals eerder beschreven in Howard et al.., 2009). 2 Software van MedAssociates wordt gebruikt om alle ontwerpen operant&#39;s (MedAssociates, Inc, Vermont, USA). </li><li> Eenmaal getraind om op voor sucrose, ratten allereerst een geschikte trainingsschema waarbij ethanol geleidelijk toegevoegd aan de oplossing over meerdere sessies drinken. </li><li> Bijvoorbeeld, onze lab gebruikt momenteel een 8-daagse training schema, waarbij ethanol is vervaagd in de oplossing afgesloten met een 10% ethanol / 10% sucrose drinken oplossing. Controle dieren ontvangen slechts 10% sucrose of geen drinken oplossing. Het specifieke type operant schema te gebruiken kan sterk variëren, maar de algemene procedures hieronder beschreven voor microdialyse bemonstering nog worden uitgevoerd. Drie </li></ol> 3. Pre-microdialyse Procedure: Tethering <ol&gt; <li> De avond voor de een na laatste training (in ons voorbeeld is dit de 7e training), worden de dieren gewend aan de ketting lente, die aan de ketting bout hecht op hun hoofd podium. De veer wordt bevestigd aan de microdialyse zwenk-en tegengewicht hefboomarm, die naast de kooi opgehangen, zodat met een ring stand en klemmen dat het dier vrij kan bewegen binnen zijn kooi. Tethered dieren brengen de nacht door in de operante kamer, in hun huis kooi met ad libitum voedsel en water, om ze te wennen aan de tethering-opgericht. </li><li> De volgende dag, de rat voltooit zijn operant programma met de ketting op zijn plaats, om het dier wennen aan het gevoel van de ketting tijdens het uitvoeren van zijn gedrag taken. Monteer de tethering apparaat aan de wand van de operante kamer in de buurt van de top tot opschorting van de ketting en draaibare boven het midden van het dak van de operante kamer mogelijk te maken. Dit alles wordt geplaatst binnen de geluidwerende kamer. After de sessie, de terugkeer van de rat naar zijn kooi op de operante kamer te microdiaysis sonde inbrengen af ​​te wachten. </li></ol> 4. Pre-microdialyse Procedures: De microdialyse sonde wordt de dag vóór de microdialyse experiment, nadat de rat is voltooid gedragstraining voor de dag <ol><li> De dag voor de microdialyse experiment, is na de rat voltooide een operante sessie terwijl vastgebonden, de rat verdoven met isofluraan en verwijder de obturator uit de gids canule. Langzaam (over ~ 5 min) plaats een microdialyseproben geperfundeerd met kunstmatige cerebrospinale vloeistof (ACSF), door de craniale geleidingscanule in de hersenen gebied van belang. We maken gebruik van laboratorium-geconstrueerde sondes en microdialyse procedures gemodelleerd naar Doyon et al.., 2003, en Pettit en Justitie, 1991. 3, 4 </li><li> De eerder besproken tethering de inrichting en afvoerleidingen van de sonde boven het dier te schorten. </li><li> Draai de probe debiet tot 0,2 ul / min. Nogmaals, de rat brengt de nacht in de operante kamer. </li></ol> 5. Microdialyse Procedure: Het verzamelen van monsters tijdens zelftoediening sessie met gescheiden appetitieve en consummatory fasen <ol><li> Ten minste 2 uur voor het experiment begint, zet de sonde zijn werk debiet. We gebruiken ofwel 1.0 of 2.0 ul / min afhankelijk van het hersengebied. Controleer of de probe debiet consistent is en ten minste 90% van de ingestelde stroom met een Hamilton spuit volume te meten tijd. </li><li> Dialyse monsters (5 of 7 min) worden voor, tijdens en na de operante sessie. De bemonstering is afhankelijk van het hersengebied, neurotransmitter geanalyseerd, dialysaat concentratie van de analyt, en de gevoeligheid van de analytische chemie apparatuur worden gebruikt voor de analyse. De gedrags fasen zijn: <ol><li> Baseline: Aan het begin van het experiment,verzamelen dialyse monsters in het huis van de dier kooi (4 monsters). </li><li> Transfer: Na het verzamelen van kooi basislijn monsters, de rat over te dragen aan de operante kamer. Overdracht van de tethered rat vereist grote zorgvuldigheid om ervoor te zorgen dat de microdialyse vloeistof overdracht lijn niet verward worden, en dat de rat blijft kalm. Onmiddellijk na de overdracht, activeert u de operante programma u vanaf de basislijn / overdracht monster naar de eerste wachten monster. </li><li> Wachten: Blijf monsters als rat wacht de hefboom uit te breiden in de kamer (3-4 samples afhankelijk hersengebied). </li><li> Drinken: Na de hendel wordt gepresenteerd en geperst, een fles drinken oplossing (10% sucrose/10% ethanol of 10% sucrose) wordt ter beschikking gesteld van de rat gedurende ongeveer 20 minuten (3-4 monsters). </li><li> Post-drank: Na drink periode, de fles trekt, maar de rat blijft in de operante kamer voor ongeveer 20 minuten (3-4 monsters). </li></ol></li></ol> 6. Microdialyse Procedure: Voorbereiding van microdialyse monster voor ethanol analyse <ol><li> Twee monsters voordat de dieren zelf het beheer van de ethanol-oplossing, en alle monsters na, worden geëvalueerd voor ethanol concentratie. Pipetteer een 1 of 2 pi aliquot van het monster van interesse in een 2 ml glazen flacon. Dan sluit de flacon met een luchtdichte septum (9 mm Rood Poly Schroefdop, PTFE / Sil Septa, Agilent Technologies). Het volume van de hoeveelheid ethanol analyse (1 of 2 pi) afhankelijk van het totale volume en het monstervolume vereist extra analyses. </li><li> Indien de monsters zullen worden gebruikt voor later neurochemische analyse Het monster na het pipetteren de juiste hoeveelheid voor kwantificering ethanol. </li><li> Bijvoorbeeld, onze lab analyseert de monsters voor dopamine. Om dit te bereiken, plaatst de monsters op droog ijs tijdens het experimenten dan slaan de monsters bij -80 ° C na het experiment. We gebruiken 2 ui aliquots voor ethanol analyse van een 5 min monster verzameld met een stroomsnelheid van 2,0 ul / min voor sondes in de nucleus accumbens. Dit maakt ten minste 7 pl resterende latere analyse van dopamine met hoge prestatie vloeistofchromatografie met elektrochemische detectie. </li><li> Voor monsters van de prefrontale cortex, die een veel lagere extracellulaire dopamine concentraties heeft, gebruiken we een 1 pi aliquot van ethanol uit een analyse van 7 min monster met een stroomsnelheid van 1,0 ul / min. </li></ol> 7. Post-microdialyse procedures <ol><li> Na het sluiten van de microdialyse experiment, verdoven de rat en verwijder de sonde. Vervang de obturator indien het dier niet onmiddellijk gedood. Verzamel de hersenen binnen drie dagen na het experiment. Anders kan visualisatie van de probe darmkanaal niet mogelijk. </li><li> De hersenen worden verwijderd in overeenstemming met goedgekeurde gebruik van dieren protocollen. We gebruiken natriumpentobarbital (150 mg / kg, ip) overdosering, gevolgd door cardiale perfusie met fysiologisch zout en formaline in zoutoplossing. Onderdompelen hersenen in een formaline-zoutoplossing gedurende ten minste 12 uur vóór het snijden. </li><li> Coronaalwaarts sectie van de hersenen in 100 micrometer plakjes. Stain schijfjes met cresyl violet, en te onderzoeken voor de juiste sonde plaatsing. 5, 6 </li></ol> 8. Analyse van de monsters voor ethanolconcentratie <ol><li> De verzamelde monsters, alsook externe normen (0,3125 tot 20 mM ethanol) worden uitgevoerd op onze gaschromatograaf met een vlam ionisatie detectie systeem. Dit systeem bestaat uit een Varian CP 3800 gaschromatograaf met een vlamionisatiedetector, een Bruker (Varian) 8400 autosampler headspace verwarmd tot 50 ° C, en een HP Innowax capillaire kolom (30 mx 0,53 mm x 1,0 um laagdikte) met helium als mobiele fase. </li><li> Chromatogrammen worden geregistreerd en geanalyseerd met Chromatography software, zoals de Varian Star Chromatografie Workstation software die hier specifiek zullen worden besproken. </li><li> Om het systeem voor te bereiden op ethanol analyse, verwarm de autosampler plaat met behulp van een recirculerende waterbad, en open de twee extra gastanks (lucht en waterstof; helium is altijd laat draaien om de was kolom te behouden). </li><li> Noteer de gastank druk, evenals het aantal monsters dat u van plan dit te draaien dat je telling van het aantal keren dat houden de vezels en septum zijn gebruikt, zodat ze kunnen indien nodig (vezel-500 injecties worden gewijzigd; septum -100 puncties). </li><li> Start de start-up methode, die het systeem om monsters (programma parameters in tabel 2) run bereidt. Wacht totdat het systeem te melden dat het &quot;Ready&quot;. </li><li> Start een 20-min &quot;branden&quot;, die de vezel voor monsteranalyse bereidt door het aan een hoge temperatuur te desorberen mogelijke verontreinigingen is opgenomen in rust. </li><li> Normen worden gemaakt doorverdunnen 238 pi van 95% ethanol met water tot een eindvolume van 100 ml met een maatkolf in een zuurkast. Hierdoor ontstaat een 40 mM ethanol. We gebruiken een 1:1 seriële verdunning tot 20, 10 maken, 5, 2,5, 1,25, 0,625, 0,3125 mM normen. Voor elke concentratie van standaard gebruiken dezelfde hoeveelheid volume dat wordt uit de dialyse monsters. Pipetteer het monster in een 2 ml glazen flesje, en dan het flesje af te dichten met een luchtdichte septum. </li><li> Alle ethanol monsters worden verwarmd in de autosampler totdat de gehele hoeveelheid vloeistof is verdampt. Wij verwarmen onze monsters gedurende ongeveer 30 minuten. </li><li> Deze paragraaf beschrijft de Star Workstation software die we gebruiken met onze gaschromatograaf. Andere software kan worden gebruikt, maar de onderstaande beschrijving niet van toepassing. </li><li> Om monsters te draaien, maakt u een lijst met voorbeelden van merken die monster waarin autosampler slot, en hoe vaak het monster moet worden doorboord. Zorg ervoor dat u de route van de gegevensbestanden op uw geselecteerde vouwer. Selecteer vervolgens de methode van keuze voor uw monsters, en beginnen met de run. We gebruiken de bedrijfsparameters vermeld in tabel 2. </li><li> Het dialysaat ethanolprogramma absorbeert het monster gedurende 3 minuten en desorbeert in de stroom helium, die weer de was kolom, 1 min. Echter, kunnen programma&#39;s worden geschreven om aan uw specifieke wensen tegemoet te komen. </li><li> De monstercomponenten in de was afzonderlijke kolom en dan door de vlamionisatiedetector waar de koolstof bevattende verbindingen, zoals ethanol, en laat verbranden ionen. Dit verhoogt elektronenstroom van de detector anode naar de kathode creëren van een stroom, die wordt omgezet in spanning en opgenomen waardoor chromatogrammen zoals hieronder getoond (Figuur 1). De verandering in spanning is evenredig met de hoeveelheid koolstof die door de detector in time.7 </li><li> Nadat het systeem is voltooid het uitvoeren van de samples die u nodig hebt om de integratie van elke piek te controleren. Voor Star Workstation software,klik op de blauwe piek pictogram in de werkbalk. Klik op kleur die elke piek en sleep de pijlen om de basislijn te passen. Re-integreren elke piek voordat u naar de volgende groep van pieken. De piek analyse software kan alle algemene chromatografie software. </li><li> Voor Star Workstation software, click op de batch rapport pictogram in uw werkbalk. Sleep elk monster van uw opgegeven map naar de batch rapport aan het monster rapporten af ​​te drukken. Rapportage software kan worden aangepast met de meest gangbare chromatografie software systemen. </li><li> De rapporten kunnen worden geprogrammeerd om de informatie van uw keuze weer te geven. Momenteel gebruiken we piekhoogte, maar de rapporten kunnen ook worden geprogrammeerd om piekoppervlakte te gebruiken. </li><li> Voor het afsluiten van het systeem, start u de shut-down methode (parameters vermeld in tabel 2), zet het waterbad, en sluit de waterstof en lucht tanks als de kolom oven temperatuur bereikt 30 ° C. </li></ol> 9. Ethanol gegevens <ol><li> Teken de piekhoogte alseen functie van elke bekende uitwendige standaard ethanol concentratie (Figuur 2A). Gebruik de lineaire functie gegeven door deze punten de ethanolconcentratie berekenen van de piekhoogte door elk monster dialysaat. </li><li> Getrokken waarbij de concentratie van ethanol in het dialysaat tijd, we het patroon van ethanol in de hersenen gebied van belang tijdens onze gedrag sessie. Voorbeeld gegevens hieronder (Figuur 2B) worden weergegeven als de concentratie van ethanol in het dialysaat in de tijd tijdens het zelf toedienen sessie. </li></ol> 10. Algemeen onderhoud: De vezel moet worden veranderd om de 500 puncties, en het septum elke 100 puncties Om de vezel te wijzigen <ol><li> Op de gaschromatograaf toetsenbord drukt u op Menu, selecteert u 8400, druk op enter, selecteer verandering spuit, druk op enter. De autosampler zal positioneren om de vezel (SPME Fiber Vergadering, 75 micrometer Carboxen-PDMS, Supelco Analytische, BellefoNTE, PA) te verwijderen. </li><li> Open de deur met betrekking tot de vezel. Draai de borgmoer, en beweeg de grendel om de vezel montage worden verwijderd. Neem de vezel voorzichtig uit. Draai de moer waarmee de vezels in de vergadering houdt, en schroef de vezel. </li><li> Vervang de oude vezel met een nieuwe, en monteer de vezel montage. Vervang de montage in de autosampler, opnieuw vergrendelen en schroeven van de montage op zijn plaats. Als u klaar bent, drukt u op &quot;wijzigen gedaan&quot; op het toetsenbord, en de autosampler zal klaar zelf voor gebruik. </li></ol> Om het septum te wijzigen <ol><li> Ten eerste, draai de beschermdop van de septum (Hi-Temp 0.450 Dia. Generic Geconditioneerde Septa, Varian) en verwijder de oude septum. Plaats de nieuwe septum naar beneden in de fitting. Re-schroef de dop en draai deze vast met de moersleutel. Gebruik vervolgens een injectienaald te doorboren van het septum, zodat de vezel niet breken eerst de septum geprikt wordt. </li></ol&gt; 11. Representatieve resultaten Figuur 1 toont bijvoorbeeld chromatogrammen drie concentraties ethanol normen en een rat dialysaat monster verzameld aan het einde van de ethanol zelftoediening sessie. Ethanol pieken moeten relatief symmetrisch, hebben consistente retentietijden en een signaal-ruisverhouding&gt; 10. Het niet voldoen aan deze criteria houdt in dat uw systeem onderhoud nodig heeft. Kwaliteit chromatografie en kunnen bereid normen een lineaire ijklijn (R2 ≥ 0,99; figuur 2A) die wordt gebruikt om de concentratie van ethanol dialysaat monsters van ethanol berekenen zelfadministrerend dieren in de loop van de zelftoediening zitting (Figuur 2B) . <img src="/files/ftp_upload/4142/4142fig1.jpg" alt="Figuur 1" /> Figuur 1. Voorbeeld chromatogrammen. Een microliter van ethanol standaard of dialysaat monster werd geladen in een gas chromatograph flacon en geanalyseerd zoals beschreven in de tekst. A) Overlay pieken gegenereerd uit 2,5, 5,0 en 10 mM ethanol normen. B) Peak gegenereerd op basis van een dialysaat monster van een rat die zelf in te vullen ethanol heeft. <img src="/files/ftp_upload/4142/4142fig2.jpg" alt="Figuur 2" /> Figuur 2. Grafische resultaten van voorbeeld experiment weergegeven in figuur 1. A) Ethanol standaardcurve. B) Tijdsverloop van dialysaat ethanol concentratie over een ethanol zelftoediening sessie. <table border="1"><tbody><tr><td> Hardware </td><td> Parameter </td><td> Start-up instelling </td><td> Running instelling </td><td> Resting instelling </td></tr><tr><td colspan="5"> 8400 Bruker (Varian) Autosampler </td></tr><tr><td></td><td> Injectiemodus </td><td> SPME </td><td> SPME </td><td> n / a </td></tr> &lt;tr&gt; <td></td><td> Oplosmiddel indringdiepte </td><td> 0% </td><td> 20% </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Voorbeeld indringdiepte </td><td> 20% </td><td> 20% </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Absorptie tijd </td><td> 0,01 min </td><td> 3 min </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Desorptie tijd </td><td> 19 min </td><td> 1 min </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Reinig modus oplosmiddel bron </td><td> Ik </td><td> Ik </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Clean-modus adsorptie en desorptie tijd </td><td> 0,01 min </td><td> 0,01 min </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Waterbad (heats autosampler) * </td><td> 50 ° C </td><td> 50 ° C </td><td> Uit </td></tr><tr><td colspan="5"> CP-3800 Varian gaschromatograaf </td></tr><tr><td> Injector Oven </td&gt; <td> Vermogen oven </td><td> Op </td><td> Op </td><td> Op </td></tr><tr><td></td><td> Oventemperatuur </td><td> 250 ° C </td><td> 220 ° C </td><td> 30 ° C </td></tr><tr><td> Column Oven </td><td> Stabilisatietijd </td><td> 0,10 min </td><td> 0,10 min </td><td> 0.10min </td></tr><tr><td></td><td> Temperatuur </td><td> 65 ° C </td><td> 65 ° C </td><td> 30 ° C </td></tr><tr><td> Kolom </td><td> Mobiele fase debiet </td><td> 8,5 ml / min </td><td> 8,5 ml / min </td><td> n / a </td></tr><tr><td></td><td> Kolomdruk </td><td> ~ 6 psi </td><td> ~ 6 psi </td><td> ≥ 0,1 psi </td></tr><tr><td> FID detector </td><td> Vermogen oven </td><td> Op </td><td> Op </td><td> Op </td></tr><tr><td></td><td> Temperatuur </td><td> 220 ° C </td><td> 220 ° C </td><td> 120 ° C </td></tr&gt; <tr><td></td><td> Elektronica </td><td> Op </td><td> Op </td><td> Uit </td></tr><tr><td></td><td> Tijdconstante </td><td> Snel </td><td> Snel </td><td> Snel </td></tr><tr><td></td><td> Reeks </td><td> 11 </td><td> 11 </td><td> 11 </td></tr><tr><td></td><td> Autozero </td><td> Ja </td><td> Ja </td><td> Ja </td></tr></tbody></table> Tabel 2. Gaschromatograaf met vlamionisatiedetectie systeemparameters. Deze tabel toont de parameters voor de drie programma&#39;s gebruikt voor het bereiden (start-up instellingen), run (hardlopen instellingen) en onderhouden van het systeem, terwijl niet in gebruik is (rust-instellingen).

<ol><li>Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survivable+stereotaxic+surgery+in+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Survivable stereotaxic surgery in rodents.</a> J. Vis. Exp. (20), e880(2008).</li>
<li>Howard, E. C., Schier, C. J., Wetzel, J. S., Gonzales, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dopamine+response+in+the+nucleus+accumbens+core-shell+border+differs+from+that+in+the+core+and+shell+during+operant+ethanol+self-administration%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol+Clin.+Exp.+Res%22%5BJournal%5D)">The dopamine response in the nucleus accumbens core-shell border differs from that in the core and shell during operant ethanol self-administration.</a> Alcohol Clin. Exp. Res. 33, 1355-1365 (2009).</li>
<li>Doyon, W. M., York, J. L., Diaz, L. M., Samson, H. H., Czachowski, C. L., Gonzales, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+activity+in+the+nucleus+accumbens+during+consummatory+phases+of+oral+ethanol+self-administration%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol+Clin.+Exp.+Res%22%5BJournal%5D)">Dopamine activity in the nucleus accumbens during consummatory phases of oral ethanol self-administration.</a> Alcohol Clin. Exp. Res. 27, 1573-1582 (2003).</li>
<li>Pettit, H. O., Justice, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+dose+on+cocaine+self-administration+behavior+and+dopamine+levels+in+the+nucleus+accumbens%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Effect of dose on cocaine self-administration behavior and dopamine levels in the nucleus accumbens.</a> Brain Res. 539, 94-102 (1991).</li>
<li>Paxinos, G., Kus, L., Ashwell, K. W. S., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22Chemoarchitectonic+Atlas+of+The+Rat+Forebrain%22">Chemoarchitectonic Atlas of The Rat Forebrain</a>. , Academic Press Inc. (1998).</li>
<li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPaxinos%2C+G+%22The+Rat+Brain+in+Stereotaxic+Coordinates%22">The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates</a>. , Academic Press Inc. (1986).</li>
<li>Skoog, D. A., Holler, F. J., Nieman, T. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSkoog%2C+DA+%22Principles+of+Instrumental+Analysis%22">Principles of Instrumental Analysis</a>. , 5th Edition, Thomson Learning, Inc. (1998).</li>
<li>Doyon, W. M., Anders, S. K., Ramachandra, V. S., Czachowski, C. L., Gonzales, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+operant+self-administration+of+10%25+ethanol+plus+10%25+sucrose+on+dopamine+and+ethanol+concentrations+in+the+nucleus+accumbens%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Effect of operant self-administration of 10% ethanol plus 10% sucrose on dopamine and ethanol concentrations in the nucleus accumbens.</a> J Neurochem. 93, 1469-1481 (2005).</li>
<li>Carrillo, J., Gonzales, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+single+exposure+to+voluntary+ethanol+self-administration+produces+adaptations+in+ethanol+consumption+and+accumbal+dopamine+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol%22%5BJournal%5D)">A single exposure to voluntary ethanol self-administration produces adaptations in ethanol consumption and accumbal dopamine signaling.</a> Alcohol. 45, 559-5566 (2011).</li>
<li>Howard, E. C., Schier, C. J., Wetzel, J. S., Duvauchelle, C. L., Gonzales, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+shell+of+the+nucleus+accumbens+has+a+higher+dopamine+response+compared+with+the+core+after+non-contingent+intravenous+ethanol+administration%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">The shell of the nucleus accumbens has a higher dopamine response compared with the core after non-contingent intravenous ethanol administration.</a> Neuroscience. 154, 1042-1053 (2008).</li>
<li>Robinson, D. L., Lara, J. A., Brunner, L. J., Gonzales, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+Ethanol+Concentrations+in+the+Extracellular+Fluid+of+the+Rat+Brain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Quantification of Ethanol Concentrations in the Extracellular Fluid of the Rat Brain.</a> J. Neurochem. 75, 1685-1693 (2000).</li>
<li>Gonzales, R. A., McNabb, J., Yim, H. J., Ripley, T., Bungay, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+Microdialysis+of+Ethanol+in+Rat+Striatum%5BTitle%5D)+AND+%22Alcohol+Clin.+Exp.+Res%22%5BJournal%5D)">Quantitative Microdialysis of Ethanol in Rat Striatum.</a> Alcohol Clin. Exp. Res. 22, 858-867 (1998).</li>
</ol>

Dit artikel werd gefinancierd door Med Associates, Inc

Toepassingen en beperkingen Drug zelfbestuur wordt gebruikt in knaagdieren te modelleren drugsverslaving. Veel drugs die gemodelleerd op deze wijze intraveneus worden toegediend, waarbij het geneesmiddel direct wordt afgegeven aan de centrale compartiment. Dit zorgt voor een nauwkeurige controle van de dosis over een zelftoediening sessie. Omdat ethanol is meestal oraal eigen beheer, is het veel moeilijker om toezicht te houden drug niveaus als gevolg van individuele verschillen in absorptie en metabolisme. Door het gebruik van microdialyse om te proeven van de hersenen regio van belang, zijn we niet alleen in staat om het patroon van ethanol het bereiken van de regio te volgen, maar we zijn ook in staat om gelijktijdig neurotransmitter veranderingen in dezelfde regio te volgen in de tijd tijdens elke zelftoediening fase. Neurochemische wijzigingen en drug-geïnduceerde responsen in de hersenen geassocieerd met drugsgebruik en afhankelijkheid, dus de mogelijkheid om gelijktijdig meazeker neurochemische en geneesmiddelconcentraties tijdens specifieke zelftoediening fasen is een zeer krachtig en uniek hulpmiddel. Een probleem om in gedachten te houden voor het correleren van dialysaat de concentraties te analyseren met het gedrag is de fysieke kenmerken van de microdialyse sanitair. Met name de tijd die vloeistof worden overgedragen van het lumen van de microdialysesonde de verzamelbuis is kritisch en kortere beter. In ons lab, construeren we de sondes, zodat de tijd is ongeveer 90 seconden. Met deze omstandigheden hebben wij gevonden dat er een accumbal dopamine toename in de inleiding van ethanol consumptie, die afneemt in de loop van de drank en post-drink perioden het dialysaat ethanol concentratie toeneemt. 2,3,8,9 Deze experimenten , in combinatie met gegevens uit farmacologische studies, hebben ons in te ontleden uit de strikt farmacologische effecten van ethanol en zelfbestuur in verband omgevingsfactoren op changes in neurotransmitter concentraties. Het moet worden opgemerkt dat deze specifieke toepassing van gecombineerde gedrags-microdialyse technieken is geschikt voor de huidige interesses van ons laboratorium. Het is ontworpen om het tijdspatroon van ethanol die in de hersenen in vergelijking met het patroon van neurotransmitter veranderingen in hetzelfde gebied zodanig te evalueren, dat we deze maatregelen betreffen synchrone zelftoediening gedrag. De afgeleide dialysaat ethanol concentraties niet gecorrigeerd voor in vivo probe herstel en slechts een fractie van de hersenen ethanol weefselconcentratie. Wanneer kwantitatieve microdialyse ethanol vereist, moet de extractie fractie van ethanol dat diffundeert vanuit de extracellulaire ruimte in de cel experimenteel bepaald worden. Zie eerdere publicaties uit ons laboratorium voor methoden en verdere discussie. 10,11,12 Hoewel dit protocol illustreert het gebruik van gas chromatography met vaste fase microextraction van ethanol uit de kopruimte van microdialysaten, kunnen andere methoden voor analyse van de ethanol van de microdialyse monster worden gebruikt. Echter kunnen alternatieve methoden hebben een aantal nadelen. Bijvoorbeeld kunnen minder gevoelige analytische methoden vereisen een groter monstervolume die noodzakelijk sampling maal groter dan de hier getoonde 5-7 minuten. Het type systeem hier besproken gebruikt een vaste fase microextraction dat de concentraten ethanol in de dampfase in de afgedichte monsterflesje doordat absorptie van de vezel geplaatst in de flacon headspace. Dit verbetert de detectiegrens vergeleken met direct headspace sampling die typisch maakt 50-100 microliter van de damp te injecteren. Een ander groot voordeel van de headspace methode is dat het monster geïnjecteerd voor analyse is zeer schoon en vrij van zouten. Directe injectie van de vloeistof microdialyse monster kan ook worden gebruikt met hogere Sensitivity, maar dit zal meer instrument down time als gevolg van regelmatig onderhoud vereist is voor het schoonmaken van de geïnjecteerde zouten vereisen. Storingen en andere noten <ol><li> Voordat uw experiment begint, geef jezelf genoeg tijd om te controleren of uw microdialyse set-ups naar behoren functioneren en tot problemen-schieten eventuele problemen. We raden u aan een extra set-up, perfusie met ACSF, klaar om uit te schakelen met een slecht functionerende set-up om jezelf te redden tijd, zoals de meeste operante sessies hebben de neiging om zich op een bepaalde tijd elke dag. </li><li> Zorg ervoor dat de microdialyse probes worden ingebracht over een periode van ongeveer 5 min aan de weefselschade door afschuiving van het weefsel als de sonde binnen dringt minimaliseren. </li><li> Bij de overdracht van de rat in de operante kamer is het handig om een ​​tweede persoon, zodat bij te staan ​​dat de overdracht lijn (een deel van de microdialyse set-up) niet verward te worden, zo en dat het operante programma kan worden initiated op tijd. </li><li> Zorg ervoor dat u de autosampler waterbad ruim de tijd om de juiste temperatuur te bereiken geven. Het vereist gewoonlijk twee uur naar 50 ° C. Ook verzekeren dat uw monsters volledig worden verdampt voordat het analyseren van de monsters. We meestal visueel bevestigen dat dit heeft plaatsgevonden voor het starten van monsteranalyse. </li><li> Standaard goede analytische chemie praktijken moeten worden gevolgd. Deze omvatten, maar zijn niet beperkt tot, validatie van individuen, apparatuur en procedures. Kortom, we maken gebruik van de volgende richtlijnen: Individuele gebruikers moeten de mogelijkheid hebben om reproduceerbare piekhoogte waarden voor standaard-concentraties en lineaire standaard curves (R2 ≥ 0,99) voor meerdere dagen te genereren aan te tonen. Om na te gaan van de GC-FID-systeem goed werkt, moeten de bestaande normen altijd worden geanalyseerd voordat er dialysaat monsters worden geïnjecteerd. De standaardcurve gegenereerd moet een R2 ≥ 0,99. </li><li> De apparatuur wewerd gekocht door Varian, Inc, dat door Agilent Technologies overgenomen in 2010. Op dit moment, Bruker Scientific Instruments verkregen Varian&#39;s laboratorium gaschromatografie instrumenten business. Voor nieuwe aankopen, raadplegen beide bedrijven. </li><li> Dit protocol geeft operante gedrag met ratten, maar de toeschouwer moet zich bewust zijn dat er meer verstoring van gedrag kan optreden met de kleinere muismodel. Een ander probleem zich bewust zijn van is dat plaatsing van een microdialyse probe in de hersenen van andere regio&#39;s dan de mediale prefrontale cortex of nucleus accumbens kan operant gedrag verstoren in een grotere mate dan hier getoond. Het is belangrijk om grondig onderzoek talrijke gedragsparameters te bepalen of de schade veroorzaakt door probe plaatsing tot ernstige gedragsveranderingen. </li></ol>

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> 95% Ethanol </td><td> AAPER Alcohol en Chemical Co, Shelbyville, KY </td><td> E190, 111000190 </td></tr><tr><td> Ultra-zuivere sacharose </td><td> MP Biomedicals, LLC, Solon, OH </td><td> 821721 </td></tr><tr><td> Ultra High Purity Helium </td><td> Gasmengsel </td><td> HE UHP300 </td></tr><tr><td> Lucht </td><td> Gasmengsel </td><td> AIZ300 </td></tr><tr><td> Waterstof </td><td> Gasmengsel </td><td> AIZ300 </td></tr><tr><td> GC 2 ml flacons </td><td> Agilent </td><td> # 8010-0015 </td></tr><tr><td> GC afwipdopjes met PTFE / siliconen septa </td><td> Agilent </td><td> # 8010-0084 </td></tr></tbody></table> Tabel 1. Reagentia

microdialyse van alcohol tijdens de operante ethanol zelftoediening en ethanol bepaling door gaschromatografie

Microdialysis of Ethanol During Operant Ethanol Self-administration and Ethanol Determination by Gas Chromatography

Operante zelftoediening methoden worden vaak gebruikt om de gedrags-en farmacologische effecten van veel drugs van misbruik, met inbegrip van ethanol te bestuderen. Echter ethanol typisch oraal eigen beheer, in plaats van intraveneus zoals vele andere drugs. De farmacokinetiek van oraal toegediende geneesmiddelen zijn complexer dan intraveneus toegediende geneesmiddelen. Omdat van de relatie tussen de farmacologische en gedragseffecten van ethanol vereist kennis van het tijdsverloop van ethanol die in de hersenen tijdens en na het drinken, gebruiken we in vivo microdialyse gaschromatografie met vlamionisatiedetectie de hersenen dialysaat ethanolconcentraties volgen in de tijd. Gecombineerd microdialyse-gedragsexperimenten gepaard met het gebruik van verschillende technieken. In dit artikel stereotactische chirurgie, gedragstraining en microdialyse, die kunnen worden aangepast om een ​​veelheid van zelftoediening en neu testenrochemical gecentreerde hypothesen, worden slechts opgenomen om te illustreren hoe zij betrekking hebben op de volgende fasen van het nemen van monsters en het dialysaat ethanol analyse. Dialysaat ethanolconcentratie analyse via gaschromatografie met vlam-ionisatie detectie, die specifiek is voor ethanol studies is beschreven. De gegevens die door deze methoden onthullen het patroon van ethanol het bereiken van de hersenen tijdens de zelftoediening procedure, en wanneer deze is gekoppeld met neurochemische analyse van dezelfde dialysaat monsters, kunnen conclusies worden getrokken ten aanzien van de farmacologische en gedragsmatige effecten van ethanol.

Een methode om het tijdsverloop van ethanol concentratie in de hersenen van ratten te bepalen tijdens operant ethanol zelftoediening beschreven. Gaschromatografie met vlamionisatiedetectie wordt gebruikt om ethanol te kwantificeren in het dialysaat monsters, omdat het de gevoeligheid vereist voor kleine volumes die worden gegenereerd.

Microdialyse van alcohol tijdens de operante ethanol zelftoediening en ethanol bepaling door gaschromatografie

Methoden voor operante zelftoediening worden veelvuldig gebruikt om de gedragsmatige en farmacologische effecten van veel misbruikte drugs, waaronder ethanol, te bestuderen.

Het algemene doel van deze procedure is het monitoren van de ethanolspiegels in het dialysaat van de hersenen tijdens een sessie van ethanol-zelftoediening. Om deze meting te kunnen vergelijken met synchrone zelftoedieningsgedragingen, wordt dit bereikt door eerst chirurgisch een microdialysegeleider, canule en bevestigingsbout te implanteren, en vervolgens ratten te trainen om operant ethanol zelf toe te dienen. De tweede stap is om de ratten te laten wennen aan de tether van de head stage, zodat deze de ethanol-zelftoediening tijdens de microdialyse niet belemmert.Vervolgens wordt microdialyse uitgevoerd tijdens een sessie van zelfadministratie van ethanol, waarbij een deel van het dialysaat wordt klaargemaakt voor ethanolanalyse. Daarna worden de dialysaatmonsters geanalyseerd op de ethanolconcentratie met behulp van een gaschromatograaf met vlamionisatiedetectie. Uiteindelijk laten de verkregen resultaten het verloop zien van de tijd waarin ethanol de betreffende hersenregio bereikt tijdens een sessie van zelfadministratie van ethanol.Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals punctie van de staart- of vena saphena, is dat deze procedure minimaal belastend is tijdens de monstername en het mogelijk maakt om de drugconcentratie in de hersenregio van belang in de loop van de tijd te meten terwijl het dier een gedragstaak uitvoert. Over het algemeen zullen personen die nieuw zijn met deze methode moeite hebben, omdat er een aantal gespecialiseerde vaardigheden vereist zijn, waarvan vele alleen door herhaald oefenen of ervaring kunnen worden verworven. De procedure wordt gedemonstreerd door Jeffrey Dilley, een undergraduate onderzoeksassistent in ons laboratorium.Alle getoonde dierprocedures zijn goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee van de University of Texas en volgen alle richtlijnen voor de zorg en het gebruik van laboratoriumdieren. De University of Texas at Austin is een ALAC-geaccrediteerde faciliteit; voor deze gedragskundige microdialyse-experimenten worden Long Evans-ratten gebruikt die zorgvuldig zijn behandeld en waarin chirurgisch een 21 gauge canule boven het relevante hersengebied is geïmplanteerd. Alle dieren moeten ten minste één week postchirurgische zorg en herstel hebben ontvangen en gezond zijn voordat aan de volgende procedures wordt begonnen.Plaats de rat in een operante kamer van Med Associates, uitgerust met een inklapbare Lichter-hendel en een tipperbuis, en train de rat om op de hendel te drukken voor toegang tot een 10% sucrose-oplossing. Nadat de rat is getraind om te reageren op de sucrose-oplossing, wordt gestart met een passend trainingsschema waarbij ethanol geleidelijk aan de oplossing wordt toegevoegd over meerdere drinksessies, de avond voor de voorlaatste operante sessie. Nadat het dier is geanestheseerd en het sedatieniveau is gecontroleerd, wordt de trekveer bevestigd aan de tetherbout op de headstage van de rat om het dier te laten wennen aan de apparatus, bestaande uit een tegenwichthendel, arm, draaibare tether, veer en ringstandaard.Laat de rat de nacht doorbrengen in de operante kamer in zijn thuiskooi met vrije toegang tot voedsel en water, en voltooi vervolgens de trainingssessie van de volgende dag met de tether en de bijbehorerende apparatuur op hun plaats, één dag voor het microdialyse-experiment. Nadat de rat is geanestheseerd met isofluorine, dient de sedatie te worden gecontroleerd door middel van een teenknijptest, waarna een microdialyseprobe wordt ingebracht die is geperfuseerd met kunstmatig cerebrospinaal vocht. Bevestig de probe op de juiste wijze en stel vervolgens de stroomsnelheid van de probe in op 0,2 µL per minuut.Plaats de rat in de thuiskooi in de operante kamer om de nacht door te brengen met alle dialyseapparatuur op hun plek en met vrije toegang tot voedsel en water. De dag na het inbrengen van de probe, ten minste twee uur voordat het experiment begint, moet de probe worden ingesteld op de werkstroomsnelheid. Controleer met een Hamilton-spuit of de stroomsnelheid van de probe consistent is en ten minste 90% van de ingestelde stroomsnelheid bedraagt.Als neurotransmitters in de dialysemonsters worden geëvalueerd, neem dan monsters tijdens alle fasen van het experiment. Begin met het verzamelen van dialysemonsters terwijl het dier zich in zijn thuiskooi bevindt. Bewaar de monsters op een geschikte wijze voor latere analyse.Plaats de rat voorzichtig in de operante kamer en start het operante programma dat de kamer aanstuurt. Blijf monsters nemen terwijl de rat wacht tot de hendel in de kamer uitschuift, waarbij twee monsters worden genomen voordat de hendel uitschuift. Begin met het verzamelen van een deel van elk dialysaatmonster voor ethanolanalyse door een passende aliquot dialysaat in een glazen vial van twee milliliter te pipetteren en de vial te verzegelen met een luchtdicht septum; pipetteer en verzegel de ethanolmonsters snel.Aangezien ethanol vluchtig is en het monstervolume klein is, zullen inconsistente of trage monstervoorbereidingen leiden tot onnauwkeurige resultaten. Bewaar het resterende deel voor neurotransmitteranalyse. De drinkperiode van 20 minuten begint nadat het computerprogramma van Med Associates de hendel in de kamer schuift en de rat deze indrukt om toegang te krijgen tot een fles drinkoplossing.Ga door met het nemen van monsters gedurende de gehele drinkperiode; na afloop van de drinkperiode trekt het computerprogramma de fles uit de kamer terug. Houd het dier aan het einde van het microdialyse-experiment nog 20 minuten in de kamer voor een post-drinkperiode. Verwijder de probe nadat de rat is geanestheseerd.Indien het dier niet onmiddellijk humaan wordt geëuthanaseerd, plaats dan de obturator terug om de visualisatie van het sondekanaal te waarborgen. Neem de hersenen binnen drie dagen na het experiment af. Analyseer de monsters samen met externe ethanolstandaarden met behulp van een gaschromatograaf met een vlamionisatiedetector, een headspace-autosampler die is verwarmd tot 50 °C en een capillaire kolom met helium als mobiele fase.Gebruik voor het registreren en analyseren van de chromatogrammen chromatografie-workstationsoftware om het systeem voor te bereiden op de analyse van ethanol. Gebruik een recirculerend waterbad om de plaat van de autosampler te verwarmen en open de lucht- en waterstoftanks. Start vervolgens het opstartprogramma.Zodra deze gereed is, start een verbranding van 20 minuten om de vezel te decontamineren. Maak standaarden door 238 µL 95% ethanol met water te verdunnen tot een eindvolume van 100 milliliter in een maatkolf van 100 milliliter. Gebruik een seriële verdunning van één-op-één om de standaarden te maken.Pipetteer de standaarden in glazen vials en sluit deze af op precies dezelfde wijze als de monsters zijn voorbereid. Zorg ervoor dat er een waterblindmonster samen met de standaarden wordt meegenomen. Plaats de standaarden en monsters in het tray van de autosampler en verhit deze totdat het volledige vloeibare aliquot is verdampt.Maak voor het analyseren van de standaarden en monsters een monsterlijst waarin wordt aangegeven welk monster zich in welke slot van de autosampler bevindt, en vermeld dat elk monster gepuncteerd moet worden. Stuur vervolgens de databestanden naar een geselecteerde map, kies de gewenste methode voor de monsters en start de run. Controleer nadat het systeem alle monsters heeft verwerkt of het programma elke piek correct heeft geïntegreerd.Zet de piekhoogte uit als functie van elke bekende externe standaard ethanolconcentratie. Gebruik de lineaire functie die door de punten wordt gevormd om de ethanolconcentratie van elk dialysaatmonster te interpoleren.Deze figuur toont voorbeeldchromatogrammen voor drie concentraties ethanolstandaarden en één voor een dialysaataalmonster van een rat, verzameld aan het einde van de sessie voor zelftoediening van ethanol. Ethanolpieken moeten relatief symmetrisch zijn, consistente retentietijden hebben en een signaal-ruisverhouding groter dan 10 vertonen. Indien niet aan deze criteria wordt voldaan, is onderhoud aan het systeem vereist; kwalitatieve chromatografie en correcte standaarden leveren een lineaire standaardcurve op die wordt gebruikt om de ethanolconcentratie te berekenen van dialysaatmonsters die gedurende de zelftoediening zijn verzameld bij dieren die ethanol zelf toedienen.De afgeleide ethanolconcentraties in het dialysaat zijn niet gecorrigeerd voor het in vivo herstel van de probe en vormen slechts een fractie van de ethanolconcentratie in het hersenweefsel. Indien kwantitatieve microdialyse van ethanol vereist is, wordt de extractiefractie van ethanol die vanuit de extracellulaire ruimte in de probe diffundeert experimenteel bepaald. Zodra men deze techniek beheerst, kan deze in ongeveer vier tot vijf uur worden voltooid, mits deze correct wordt uitgevoerd.Dit zal variëren op basis van de lengte van de gedragssessie. De succesvolle voltooiing van de microdialyse-fase van het experiment hangt sterk af van de kwaliteit van de voorbereidende fasen. Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om er zeker van te zijn dat uw ratten goed zijn gehanteerd en dat u ze hebben laten wennen aan eventuele afleidende stimuli die tijdens het dialyse-experiment kunnen optreden, zodat het zelfadministratiegedrag van het dier niet wordt beïnvloed.

microdialysis-ethanol-during-operant-ethanol-self-administration

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

We tonen de bouw van alcohol damp kamers met behulp van gemakkelijk beschikbare materialen die tegelijk huisvesten 6 muis kooien. We gebruik ervan verder te beschrijven in een muismodel van foetale blootstelling aan alcohol gelijk aan alle 3 trimesters van de zwangerschap bij de mens. Dit paradigma bloot dieren tijdens de dracht en postnatale dagen 1-12.

Bouw van Vapor Chambers gebruikt om muizen bloot te stellen aan alcohol tijdens het equivalent van alle drie trimesters van Menselijke Ontwikkeling

Eenvoudige tests voor het meten van ethanolgevoeligheid en snelle tolerantie bij Drosophila vergemakkelijken het gebruik van dit modelorganisme voor het onderzoeken van deze belangrijke ethanol-gerelateerde gedragingen. Hier wordt een relatief eenvoudige, schaalbare test beschreven voor het meten van ethanolgevoeligheid en snelle tolerantie bij vliegen.

Een goedkope, Scalable Behavioral Test voor het meten Ethanol Sedatie Gevoeligheid en Rapid Tolerantie in<em&gt; Drosophila</em

Dit protocol beschrijft een nieuwe en efficiënte methode om snel te starten operante reageren voor ethanol in ratten die, in tegenstelling tot standaard methoden, geen water ontbering of saccharine / sucrose vervagen te initiëren reageren vereist.

Een methode voor het evalueren van de versterkende eigenschappen van ethanol in ratten zonder Water beroving, sacharine Fading of Extended Access Training

We beschrijven een protocol voor het induceren van belonen en nonrewarding ervaringen in fruitvliegjes (Drosophila melanogaster) met behulp van vrijwillige ethanol consumptie als maat voor veranderingen in de beloning staten.

Een eenvoudige manier om Veranderingen Meet in Reward-zoekend gedrag Met behulp<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Alcohol gebruik stoornis (AUD) is een grote nationale gezondheidsprobleem en de ontwikkeling van effectievere behandelingen is vereist ter compensatie van de behoeften van deze patiënten populatie. Te dien einde het volgende protocol maakt gebruik van twee eenvoudige knaagdier drinken modellen om te beoordelen van de preklinische werkzaamheid van anti-alcohol loodverbindingen.

RattenUitrustingen drinken modellen in de ontwikkeling van farmacotherapieën voor alcoholisme: drinken in de donkere en twee-fles keuze

Dit werk beschrijft een protocol om ethanolniveaus in een embryo van zebravissen te kwantificeren met behulp van hoofdruimtegaschromatografie van de juiste blootstellingsmethoden voor embryoverwerking en ethanolanalyse.

Kwantificering van ethanolniveaus in zebravisembryo's met behulp van head space gaschromatografie

Deze studie heeft tot doel aan te tonen dat het Progressive-Ratio Computer-assisted Alcohol-Infusion System (CAIS) paradigma een betrouwbare en gevoelige methode is die kan worden gebruikt om de motiverende eigenschappen te onderzoeken die gepaard gaan met zelftoediening van alcohol bij mensen.

De motivatie voor alcoholbeloning: voorspellers van progressieve intraveneuze alcoholzelftoediening bij mensen

Hier wordt een protocol gepresenteerd voor het 2BC/CIE-model van alcoholverslaving bij muizen om alcoholgebruiksstoornis te bestuderen.

Chronische intermitterende blootstelling aan ethanoldamp gekoppeld aan keuze uit twee flessen om alcoholgebruiksstoornis te modelleren

Dit protocol beschrijft een standaard home cage drinkparadijs met twee flessen met intermitterende toegang om alcoholconsumptie bij ratten te modelleren. Daarnaast biedt het stapsgewijze instructies om het standaardprotocol aan te vullen met een doe-het-zelf likke-detectiesysteem dat microstructurele analyse van drinkgedrag mogelijk maakt.

Modellering van alcoholconsumptie bij knaagdieren met behulp van drinken in een thuiscamer met een keuze uit twee flessen en microstructurele analyse

Drug zelftoediening en ultrasone vocalisaties (USV) worden gebruikt als gedragsmatige evaluaties in dierproeven, maar zelden in combinatie. Het doel van dit artikel is het beschrijven van de voordelen van het opnemen van USVs tijdens de drug zelf de administratieve procedures om affectieve reacties beoordelen drugservaring.

Beoordeling van Ultrasone Spreken Tijdens Drug Zelf-toediening bij ratten

Leer microdialyse van ethanol in de hersenen van ratten tijdens operante zelftoediening. Deze methode maakt real-time monitoring mogelijk met gaschromatografie en is minder invasief dan traditionele bloedafname.

Microdialyse van alcohol tijdens de operante ethanol zelftoediening en ethanol bepaling door gaschromatografie

Meer video's verkennen