Name: Chirurgische ingrepen voor een Rat Model van deelspoelen orthotope levertransplantatie met hepatische arteriële reconstructie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-07T12:30:00.000+00:00
Duration: 18 min 47 s
Description: Leer een chirurgische methode voor orthotope levertransplantatie bij ratten met hepatische arteriële reconstructie. Dit model met 50% partiële graft is essentieel voor transplantatieonderzoek en evaluatie van leverfunctie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

De auteurs danken Pascal Paschenda en Mareike Schulz voor hun technische bijstand.

<ol><li>Puhl, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Low+viscosity+histidine-tryptophan-ketoglutarate+graft+flush+improves+subsequent+extended+cold+storage+in+University+of+Wisconsin+solution+in+an+extracorporeal+rat+liver+perfusion+and+rat+liver+transplantation+model%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Transpl%22%5BJournal%5D)">Low viscosity histidine-tryptophan-ketoglutarate graft flush improves subsequent extended cold storage in University of Wisconsin solution in an extracorporeal rat liver perfusion and rat liver transplantation model.</a> Liver Transpl. 12, 1841-1849 (2006).</li>
<li>Yagi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+Preservation+and+Microcirculation+with+POLYSOL+After+Partial+Liver+Transplantation+in+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Improved Preservation and Microcirculation with POLYSOL After Partial Liver Transplantation in Rats.</a> J Surg Res. 167, e375-e383 (2011).</li>
<li>Engemann, R., Ulrichs, K., Thiede, A., Muller-Ruchholtz, W., Hamelmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Value+of+a+physiological+liver+transplant+model+in+rats.+Induction+of+specific+graft+tolerance+in+a+fully+allogeneic+strain+combination%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Value of a physiological liver transplant model in rats. Induction of specific graft tolerance in a fully allogeneic strain combination.</a> Transplantation. 33, 566-568 (1982).</li>
<li>Sumimoto, R., Shinomiya, T., Yamaguchi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+hepatic+arterial+blood+flow+in+rats+with+liver+transplants.+Examination+of+donor+liver-derived+serum+class+I+MHC+antigen+in+rats+with+liver+transplants+with+or+without+hepatic+arterial+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Influence of hepatic arterial blood flow in rats with liver transplants. Examination of donor liver-derived serum class I MHC antigen in rats with liver transplants with or without hepatic arterial reconstruction.</a> Transplantation. 51, 1138-1139 (1991).</li>
<li>Chaland, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+artery+anastomoses.+Hemodynamics+and+response+to+hemorrhage+in+conscious+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation with hepatic artery anastomoses. Hemodynamics and response to hemorrhage in conscious rats.</a> Transplantation. 49, 675-678 (1990).</li>
<li>Imamura, H., Rocheleau, B., Cote, J., Huet, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+consequence+of+rat+orthotopic+liver+transplantation+with+and+without+hepatic+arterial+reconstruction%3A+a+clinical%2C+pathological%2C+and+hemodynamic+study%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Long-term consequence of rat orthotopic liver transplantation with and without hepatic arterial reconstruction: a clinical, pathological, and hemodynamic study.</a> Hepatology. 26, 198-205 (1997).</li>
<li>Zhong, Z., Theruvath, T. P., Currin, R. T., Waldmeier, P. C., Lemasters, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIM811%2C+a+mitochondrial+permeability+transition+inhibitor%2C+prevents+mitochondrial+depolarization+in+small-for-size+rat+liver+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Transplant%22%5BJournal%5D)">NIM811, a mitochondrial permeability transition inhibitor, prevents mitochondrial depolarization in small-for-size rat liver grafts.</a> Am. J. Transplant. 7, 1103-1111 (2007).</li>
<li>Spiegel, H. U., Palmes, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+techniques+of+orthotopic+rat+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Surg%22%5BJournal%5D)">Surgical techniques of orthotopic rat liver transplantation.</a> J. Invest. Surg. 11, 83-96 (1998).</li>
<li>Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A technique for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 16, 664-669 (1973).</li>
<li>Lee, S., Charters, A. C. 3rd, Orloff, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simplified+technic+for+orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Simplified technic for orthotopic liver transplantation in the rat.</a> Am. J. Surg. 130, 38-40 (1975).</li>
<li>Kamada, N., Calne, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+liver+transplantation+in+the+rat.+Technique+using+cuff+for+portal+vein+anastomosis+and+biliary+drainage%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage.</a> Transplantation. 28, 47-50 (1979).</li>
<li>Howden, B., Jablonski, P., Grossman, H., Marshall, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+importance+of+the+hepatic+artery+in+rat+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">The importance of the hepatic artery in rat liver transplantation.</a> Transplantation. 47, 428-431 (1989).</li>
<li>Gao, W., Lemasters, J. J., Thurman, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+new+method+for+hepatic+rearterialization+in+rat+orthotopic+liver+transplantation.+Reduction+of+liver+injury+and+improvement+of+surgical+outcome+by+arterialization%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Development of a new method for hepatic rearterialization in rat orthotopic liver transplantation. Reduction of liver injury and improvement of surgical outcome by arterialization.</a> Transplantation. 56, 19-24 (1993).</li>
<li>Zhao, D., Zimmermann, A., Wheatley, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphometry+of+the+liver+after+liver+transplantation+in+the+rat%3A+significance+of+an+intact+arterial+supply%5BTitle%5D)+AND+%22Hepatology%22%5BJournal%5D)">Morphometry of the liver after liver transplantation in the rat: significance of an intact arterial supply.</a> Hepatology. 17, 310-317 (1993).</li>
<li>Omura, T., Ascher, N. L., Emond, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fifty-percent+partial+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Fifty-percent partial liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 62, 292-293 (1996).</li>
<li>Lehmann, T. G., Bunzendahl, H., Langrehr, J. M., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterial+reconstruction+in+rat+liver+transplantation--development+of+a+new+tubing+technique+of+the+common+hepatic+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Transpl.+Int%22%5BJournal%5D)">Arterial reconstruction in rat liver transplantation--development of a new tubing technique of the common hepatic artery.</a> Transpl. Int. 18, 56-64 (2005).</li>
<li>Reck, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+arterialization+on+hepatic+oxygen+supply%2C+tissue+energy+phosphates%2C+and+outcome+after+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Impact of arterialization on hepatic oxygen supply, tissue energy phosphates, and outcome after liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 62, 582-587 (1996).</li>
<li>Hasuike, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+orthotopic+liver+transplantation+with+arterial+reconstruction+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A simple method for orthotopic liver transplantation with arterial reconstruction in rats.</a> Transplantation. 45, 830-832 (1988).</li>
<li>Steffen, R., Ferguson, D. M., Krom, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+method+for+orthotopic+rat+liver+transplantation+with+arterial+cuff+anastomosis+to+the+recipient+common+hepatic+artery%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A new method for orthotopic rat liver transplantation with arterial cuff anastomosis to the recipient common hepatic artery.</a> Transplantation. 48, 166-168 (1989).</li>
<li>Knoop, M., Bachmann, S., Keck, H., Steffen, R., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experience+with+cuff+rearterialization+in+600+orthotopic+liver+grafts+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Experience with cuff rearterialization in 600 orthotopic liver grafts in the rat.</a> Am. J. Surg. 167, 360-363 (1994).</li>
<li>Hickman, R., Engelbrecht, G. H., Duminy, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+liver+transplantation+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A technique for liver transplantation in the rat.</a> Transplantation. 48, 1080(1989).</li>
<li>Liu, T., Freise, C. E., Ferrell, L., Ascher, N. L., Roberts, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+modified+vascular+%22sleeve%22+anastomosis+for+rearterialization+in+orthotopic+liver+transplantation+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">A modified vascular "sleeve" anastomosis for rearterialization in orthotopic liver transplantation in rats.</a> Transplantation. 54, 179-180 (1992).</li>
<li>Li, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+sleeve+anastomosis+for+reconstruction+of+the+hepatic+artery+in+rat+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Modified sleeve anastomosis for reconstruction of the hepatic artery in rat liver transplantation.</a> Microsurgery. 22, 62-68 (2002).</li>
<li>Martins, P. N., Theruvath, T. P., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rodent+models+of+partial+hepatectomies%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Int%22%5BJournal%5D)">Rodent models of partial hepatectomies.</a> Liver Int. 28, 3-11 (2008).</li>
<li>Russell, W. M. S., Burch, R. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRussell%2C+WMS+%22The+Principles+of+Humane+Experimental+Technique%22">The Principles of Humane Experimental Technique</a>. , Methuen & Co. Ltd. London. reprinted by UFAW (1992).</li>
</ol>

We hebben geen conflicterende belangen te onthullen. De ratten worden ondergebracht onder specifieke-pathogeen-vrije omstandigheden volgens de richtlijnen van de Federatie voor Proefdierkunde Associations (FELASA). Alle experimenten werden uitgevoerd in overeenstemming met de Duitse federale wet betreffende de bescherming van dieren en &quot;Gids voor de zorg en het gebruik van proefdieren&quot; (National Institutes of Health publicatie nr. 86 tot 23, herzien 1985).

Het eerste model van rat OLT werd door Lee et al.. 9 in 1973, waarbij alle vaten zoals de leverslagader werden gereconstrueerd door een handgenaaide methode en de extracorporale portosystemische shunt werd gebruikt. Dit model was technisch ingewikkeld en moeilijk uit te voeren. Het volgende model was een zonder lever arteriële reconstructie en de extracorporale shunt, ontwikkeld door dezelfde auteurs 10 in 1975. Vervolgens in 1979, Kamada et al.. Introduceerde de manchet anastomose techniek voor het model zonder lever rearterialization 11. Met deze wijzigingen, OLT in ratten een vereenvoudiging verkorte anhepatische tijd ontvanger operaties en is op grote schaal gebruikt als een aanvaard experimenteel model. Toch is er sprake van aanzienlijke controverse sinds die tijd over de betekenis van de lever arterialization in de rat OLT 8, omdat de arterialization was een veeleisende taak, maar did geen invloed op de overleving na transplantatie. Talrijke studies op de hepatische arterialization met diverse reconstructietechnieken gemeld 8, zoals een aorta segment naar aorta anastomose 3,9,17, een manchet anastomose techniek 18,19,20, een telescopische techniek 5, een stent techniek 13, 16 en een huls anastomose techniek 12,21-23. Hoewel de techniek voor rat OLT nog niet gestandaardiseerd heden is de arterialized model steeds meer voorkeur in termen van fysiologische superioriteit 8,12,13,14. Onder de hierboven genoemde technieken, werd een stent techniek die was eenvoudig en snel uit te voeren die door Lehmann et al.. 16 in 2005. De studie toonde goede resultaten: geen occlusie werd waargenomen in de gereconstrueerde leverslagader in 8 uur, 24 uur en 6 maanden na reperfusie. Daarom heeft deze techniek op hepatische arterialization. We Performa de hand genaaid anastomose voor de wederopbouw van de SHVC en IHVC. Deze methode de anastomose plaats met optimale fysiologische omstandigheden, waardoor de verminderde incidentie van trombose 8 en het beste microchirurgie simulatie en training voor chirurgen. Bovendien kan de anastomose mogelijk zelfs korte stompen vaartuig. Wat de anastomose van IHVC is deze methode geen lange IHVC de graft kant in vergelijking met de manchet anastomose techniek. Wanneer derhalve de donor nierader wordt ontleed om het transplantaat IHVC lang te maken is deze werkwijze voor transplantatie van een kleine graft met een lange IHVC, zoals een 30% graft die bestaat uit rechter laterale en caudate lobben met een korte intrahepatic noodzakelijk vena cava zonder SHVC 2. Met betrekking tot de technieken van leverresectie bij ratten, met verschillende methoden op heden zijn gemeld, de twee belangrijkste technieken zijn de klassieke massa ligatuur technieken het vat gerichte techniek 24. We voeren de klassieke techniek ligatuur 50% leverresectie 15, maar onder een chirurgische microscoop om de procedure fijner te maken en om beschadiging van de resterende lobben en structuren te vermijden. We beschreven de representatieve resultaten van de ontvanger ratten in ons model, de ratten overleefde tijdens de 7-dagen durende observatieperiode zonder duidelijke complicaties. Het model kan worden aangepast voor verschillende doeleinden van experimenten door te kiezen voor de verschillende instellingen, zoals langdurig koude opslag, langdurige warme ischemie die donatie na hartdood omvat, en het gebruik van kleinere lever transplantaties of enten van experimentele modellen van leverschade of ziekten. In onze ervaring, zijn er drie belangrijke factoren in de procedures die de overleving na transplantatie, de meest betrouwbare parameter voor de resultaten van de rat OLT kan van invloed zijn: de hoeveelheid bloedverlies, de bedrijfstijd, especiaal klemmen tijd van de poortader en IHVC, en de toereikendheid van de wederopbouw van elk vaartuig, wat kan leiden tot stenose, trombose, of bloeden. In een stage van dit model, kan het grootste deel van de mislukkingen waarschijnlijk gerelateerd aan deze factoren. In deze video artikel zullen we stap-voor-stap instructies voor de chirurgische procedures voor onze rat model van partiële OLT met een verminderde arteriële reconstructie. Terwijl een rat model van OLT is ingewikkeld en vereist geavanceerde microchirurgische vaardigheden, dit artikel biedt veel praktische informatie, die moet dienen als een goede gids voor de opleiding en het leren van dit model. Leren dit model efficiënt is vooral van belang voor het inkorten van de leerperiode, vermindering van het aantal dieren en de kosten die nodig zijn voor de praktijk, en later reproduceren betrouwbare resultaten bij experimenten. Dit is in lijn met de 3 V&#39;s concept (vervanging, vermindering en verfijning) van dierproeven, die door Russell en Burch gepostuleerd in1959 25.

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Reacties </td></tr><tr><td> Operatiemicroscoop </td><td> Leica </td><td> M651 </td><td></td></tr><tr><td> Lichtbron </td><td> Schott </td><td> KL1500LCD </td><td></td></tr><tr><td> Wattenstaafjes </td><td> NOBA Verbandmittel </td><td> 974202 </td><td></td></tr><tr><td> Gaaskompressen (5x5 cm) </td><td> Fuhrmann </td><td> 10002 </td><td></td></tr><tr><td> povidon-joodoplossing </td><td> Mundipharma </td><td> 6108022.00.01 </td><td></td></tr><tr><td> Op olie gebaseerde klei </td><td> Debika bedrijf </td><td> 090148 </td><td></td></tr><tr><td> TachoSil </td><td> Takeda Pharmaceuticals International GmbH </td><td> EU/1/04/277/001-004</td><td> Toegepast op gereseceerde leveroppervlak </td></tr><tr><td> Scalpel nr. 11 </td><td> Pfm medische </td><td> 200130011 </td><td> Bereiding van manchet en stents </td></tr><tr><td> 14-gauge katheter </td><td> B. Braun </td><td> 4268210S </td><td> Manchet voor PV </td></tr><tr><td> 18-gauge katheter </td><td> B. Braun </td><td> 4268130S </td><td> Perfusie via PV </td></tr><tr><td> 24-gauge katheter </td><td> B. Braun </td><td> 4269071S </td><td> Stent voor BD en HA </td></tr><tr><td> 4-0 zijden hechtdraad </td><td> Resorba </td><td> H3F </td><td> Leverresectie </td></tr><tr><td> 6-0 zijden hechtdraad </td><td> Resorba </td><td> H1F </td><td></td></tr><tr><td> 7-0 Prolene (polypropyleen) hechtdraad </td><td> Ethicon </td><td> 8701H </td><td> SHVC en IHVC </td></tr><tr><td> 4-0 Vicryl hechtmateriaal </td><td> Ethicon </td><td> V304H </td><td> Abdominale sluiting </td></tr><tr><td> 5-ml spuit </td><td> Terumo </td><td> SS + T05ES1 </td><td> Back kussen </td></tr><tr><td> Verwarmingskussen </td><td> Thermo </td><td> 190 x 260 mm </td><td></td></tr><tr><td> Magnetische fixator retractie systeem </td><td> Fine Science Tools Inc </td><td> 18.200-01 18.200-02 18.200-03 18.200-12 </td><td></td></tr><tr><td> Koud waterbad </td><td> Huber </td><td> 740.000X </td><td> Graft behoud </td></tr><tr><td> Bipolaire forceps </td><td> Bijdragende </td><td> MBC-200 </td><td></td></tr><tr><td> Mosquito tang </td><td> BONIMED </td><td> 451-476-03 </td><td> Gebruikt twee paar </td></tr><tr><td> Adson micro pincet </td><td> Dimeda </td><td> 10.176.12 </td><td></td></tr><tr><td> Gebogen micro tang </td><td> AESCULAP </td><td> FD281R </td><td></td></tr><tr><td> Rechte micro pincet </td><td> Bonimed </td><td> 451-476-03 </td><td></td></tr><tr><td> Gebogen micro schaar </td><td> Medicon </td><td> 05.15.83 </td><td></td></tr><tr><td> Rechte micro schaar </td><td> AESCULAP </td><td> FD12 </td><td> Fijn incisie </td></tr><tr><td> Schaar </td><td> AESCULAP </td><td> BC211W </td><td></td></tr><tr><td> Micro naaldhouder </td><td> AESCULAP </td><td> FD241R </td><td> Reconstructie </td></tr><tr><td> Burgemeester-Hegar Naaldhouder </td><td> Mizuho Ikakogyo </td><td> 06-798-00 </td><td> Abdominale sluiting </td></tr><tr><td> DeBakey Bulldog klem (recht) </td><td> ULRICH </td><td> CV3054 </td><td></td></tr><tr><td> DeBakey Bulldog klem (gebogen) </td><td> Codman </td> &lt;td&gt; 37-1.062 </td><td></td></tr><tr><td> Satinsky klem </td><td> Mizuhoika </td><td> 09-230-24 </td><td></td></tr><tr><td> Perifere vasculaire klem </td><td> Teleflex Medical </td><td> 353494 </td><td> Ontvanger SHVC </td></tr><tr><td> Micro schip klem (wegwerp) </td><td> AROSurgical Instruments Corporation </td><td> TKM-1-60 g </td><td> PV, graft IHVC, en de ontvanger HA </td></tr><tr><td> Micro schip klem (metaal) </td><td> Fine Science Tools Inc </td><td> 18.052-01 </td><td> Ontvanger IHVC </td></tr><tr><td> Ringerlactaat </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 6150917.00.00 </td><td></td></tr><tr><td> Fysiologische zoutoplossing </td><td> DeltaSelect </td><td> 1299.99.99 </td><td></td></tr><tr><td> HTK-oplossing </td><td> Dr Franz Köhler Chemie GmbH </td><td> 31268.00.00 </td><td> Preservatievloeistof </td></tr><tr><td> Heparine-Natrium </td><td> Ratiopharm </td><td> 5394.02.00 </td><td> 500 IE voor graft perfusie </td></tr><tr><td> 8,4% natriumbicarbonaat </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 4399.97.99 </td><td> 0,5 ml na reperfusie </td></tr><tr><td> 5% glucose-oplossing </td><td> B. Braun </td><td> 6714567.06.00 </td><td> 1,0 ml na reperfusie </td></tr><tr><td> Cefuroxim natrium </td><td> Fresenius Kabi </td><td> 38985.01.00 </td><td> Antibiotica, 16 mg / kg </td></tr><tr><td> Buprenorfine </td><td> Essex Pharma </td><td> 997.00.00 </td><td> Pijnstiller, 0,1 mg / kg </td></tr><tr><td> Intensive Care Unit Cage </td><td> Brinsea Products Ltd </td><td> Vetario S10 </td><td> Postoperatieve zorg </td></tr></tbody></table>

chirurgische ingrepen voor een rat model van deelspoelen orthotope levertransplantatie met hepatische arteriële reconstructie

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotope levertransplantatie (OLT) bij ratten met behulp van een gehele of gedeeltelijke graft is een onmisbare experimenteel model voor transplantatie onderzoek, zoals onderzoek bij graft behoud en ischemie-reperfusie schade 1,2, immunologische reacties 3,4, hemodynamiek 5,6, en kleine-for-size-syndroom 7. De rat OLT is een van de moeilijkste diermodellen in experimentele chirurgie en vraagt ​​om geavanceerde microchirurgische vaardigheden die een lange tijd om te leren nemen. Derhalve is het gebruik van dit model beperkt. Aangezien de betrouwbaarheid en reproduceerbaarheid zijn belangrijke componenten van de experimenten waarin dergelijke complexe diermodellen worden gebruikt, is het essentieel voor chirurgen die betrokken zijn bij rat OLT worden getraind in goed gestandaardiseerde en verfijnde procedures voor dit model. Terwijl verschillende technieken en modificaties van OLT bij ratten zijn gemeld 8 sinds de eerste model was described. by Lee et al.. 9 in 1973, de eliminatie van de hepatische arteriële reconstructie 10 en de invoering van de manchet anastomose techniek Kamada c.s.. waren 11 een belangrijke vooruitgang in dit model omdat de reconstructie procedures vereenvoudigd in hoge mate . In het model van Kamada c.s.. Werd de lever rearterialization ook geëlimineerd. Omdat ratten kon overleven zonder hepatische arteriële flow na levertransplantatie, was er veel controverse over de waarde van de lever arterialization. Echter, de fysiologische superioriteit van de arterialized model in toenemende mate onderkend, met name in termen van het behoud van de galwegen systeem 8,12 en de lever integriteit 8,13,14. In dit artikel presenteren we gedetailleerde chirurgische procedures voor een rat model van OLT met een lever-arteriële reconstructie met behulp van een 50% gedeeltelijke transplantaat na ex vivo lever resectie. De reconstructie procedures voor elk vaartuig en de galwegen worden uitgevoerd door de volgende methoden: een 7-0 polypropyleen continue hechtdraad voor de supra-en infrahepatic vena cava, een manchet techniek voor de poortader, en een stent techniek voor de leverslagader en de galwegen.

Alle ontvangende ratten (n = 20) overleefden zonder duidelijke complicaties tot geplande euthanasie voor bloedbemonstering op 1, 3, 24 en 168 uur (7 dagen) na portal reperfusie (n = 5 op elk tijdstip). De bloedmonsters werden uit de IHVC door een directe lek met een 27-gauge naald. Na het centrifugeren bij 5340 g gedurende 10 min werden de serummonsters verkregen en geanalyseerd op alanine aminotransferase (ALT), die de mate van hepatocellulaire schade na transplantatie weerspiegelen. Het tijdsverloop van veranderingen in serum ALT niveaus is weergegeven in figuur 16. De ALT-niveaus een piek bij 24 uur (gemiddeld ± standaarddeviatie: 212,6 ± 67,9 IE / L) en vervolgens binnen de normale grenzen af ​​op 168 uur (33,6 ± 6,8 IE / L). <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig1.jpg" /> Figuur 1. Een manchet voor de poortader (PV) van een 14-gauge katheter en stents voor de leverslagader (HA) en galwegen (BD) van 24-gauge catheters. <img alt="Figuur 2" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig2.jpg" /> Figuur 2. Schema van de verwijdering van de lever van de donor ratten BD, galgang,. HA, leverslagader, IHVC, infrahepatic vena cava, PV, poortader, SHVC, suprahepatic vena cava. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig3.jpg" /> Figuur 3. Donor werking. een. de rat wordt op een verwarmingskussen met een magnetische fixator veersysteem. Het abdomen wordt geopend door incisie met bilaterale extensions. B. Inbrengen van de stent in de galwegen. C. Perfusie van de lever via de poortader. Afkortingen verklarened in figuur 2. <img alt="Figuur 4" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig4.jpg" /> Figuur 4. Bevestiging van een manchet om de poortader. a, b. DeBakey Bulldog De klem die de portale veneuze stam grijpt wordt over de metalen kom. De beker is gemonteerd in de plastic doos gevuld met gemalen ijs. C. De poortader wordt gebracht door middel van de manchet. D. De wand van de vena porta is eversie over de manchet met de stomp van de milt ader buiten de manchet op de 7 uur positie en een uitbreiding van de manchet op de 12 uur positie. e. De poortader is beveiligd met een omtrek 6-0 zijden draad op de manchet. De zwarte pijlen geven de stomp van de milt ader. <img alt="Figuur 5" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig5.jpg" /> Figuur 5. Ex vivoinbrengen van een stent in de leverslagader. een. de lever wordt door klemmen beide randen van het membraan en de leverslagader wordt getrokken rechtstreeks houdt de draad geligeerd de slagader. b. de voorwand van de kleine incisie in de leverslagader wordt gehouden met een rechte micro forceps . c, d. de stent wordt ingebracht in de leverslagader en vastgezet met een 6-0 zijden draad. <img alt="Figuur 6" fo:content-width="3.5in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig6highres.jpg" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig6.jpg" /> Figuur 6. Het schema van ex vivo 50% leverresectie. Lobben in grijze kleur worden verwijderd. ACL, anterior Spiegelse kwab, PCL-, achterste Spiegelse kwab, LLL, linker laterale kwab, LML, linker gedeelte van de mediaan kwab, RML, rechter gedeelte van het mediane lob, SRL, superieure rechter laterale kwab, IRL, inferieure rechter laterale kwab. Figuur 7. Ex vivo 50% leverresectie. een. Ligatie van de pedikel van de achterste caudate kwab. b. Ligatie van de pedikel van het linker deel van de mediaan kwab. c. de lever voor 50% resectie. d. de lever na 50% resectie. <img alt="Figuur 8" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig8.jpg" /> Figuur 8. Ex vivo plastie van de suprahepatic vena cava. een. de lever wordt door klemmen beide randen van het membraan met de mug forceps. b. Blijf hechtingen met 7-0 polypropyleen zijn bevestigd aan beide hoeken. <img alt="Figuur 9" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/4376/4376fig9highres.jpg" src = &quot;/ files/ftp_upload/4376/4376fig9.jpg&quot; /&gt; Figuur 9. Schema van het transplantaat implantatie in de ontvanger rat. De reconstructie procedures worden uitgevoerd voor de supra-en infrahepatic vena cava (SHVC en IHVC) met een 7-0 doorlopende hechting, de poortader (PV) door een manchet techniek en de lever slagader (HA) en galwegen (BD) met een stent techniek. <img alt="Figuur 10" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig10.jpg" /> Figuur 10. Ontvanger operatie tot het verwijderen van de natieve lever. een. Het abdomen wordt geopend door een incisie. b. het recht bijnier ader geligeerd. c. de natieve lever uitgesneden. Afkortingen worden toegelicht in figuur 2. <img alt="Figuur 11" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig11.jpg" /> Figuur 11. Anastomose van de suprahepatic vena cava. a, b. de perifere vasculaire klem voor de suprahepatic vena cava is bevestigd in een klomp klei oliebasis. Het verblijf hechtingen op beide hoeken worden onderhouden met zachte tractie superiolaterally om de anastomose te verbreden. C. Continue intraluminale hechtdraad van de achterste rij aan de gang. D. Continue hechtdraad van de voorste rij in de vooruitgang. <img alt="Figuur 12" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig12.jpg" /> Figuur 12. Reconstructie van de poortader. a, b. De mug tang vastzetten van de poortader wordt vastgesteld in de op olie gebaseerde klei en trok in de richting van de lever navel. cfr. Plaatsen van de manchet in de poortader. <img alt="Figuur 13" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig13.jpg" /> Figuur 13. Reconstructie van de leverslagader. a, b. </stron<html> g&gt; inbrengen van een stent in de ontvanger gemeenschappelijke leverslagader (CHA) bij de vertakking van de juiste leverslagader (PHA) en gastroduodenale slagader (GDA). <img alt="Figuur 14" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig14.jpg" /> Figuur 14. Anastomose van de infrahepatic vena cava. een. Het verblijf hechtingen op beide hoeken. b. Continue hechtdraad van de achterste rij. c. Continue hechtdraad van de voorste rij. d. Reperfusie van de infrahepatic vena cava. Afkortingen worden toegelicht in figuur 2. <img alt="Figuur 15" src="/files/ftp_upload/4376/4376fig15.jpg" /> Figuur 15. Alle reconstructie procedures zijn voltooid. Afkortingen worden toegelicht in figuur 2. <img alt="&lt;/ Html">&quot;Figuur 16&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/4376/4376fig16.jpg&quot; /&gt; Figuur 16 Postoperatieve tijdsverloop van veranderingen in de alanine aminotransferase (ALT)-spiegels (n = 20, n = 5 op elk tijdstip).. De gegevens worden uitgedrukt als gemiddelden met foutstaven die standaard afwijkingen geven. De ALT-niveaus een piek bij 24 uur (212,6 ± 67,9 IE / L) en vervolgens binnen de normale grenzen af ​​op 168 uur (33,6 ± 6,8 IE / L).

Orthotope levertransplantatie bij ratten is een onmisbare experimenteel model voor biomedisch onderzoek. Hier presenteren we onze chirurgische procedures voor orthotope rat levertransplantatie met een lever-arteriële reconstructie met behulp van een 50% gedeeltelijke graft.

Chirurgische ingrepen voor een Rat Model van deelspoelen orthotope levertransplantatie met hepatische arteriële reconstructie

Orthotope levertransplantatie (OLT) bij ratten met gebruik van een volledige of partiële graft is een onmisbaar experimenteel model voor transplantatieonderzoek, zoals ...

Het algemene doel van deze procedure is het uitvoeren van een partiële orthotope levertransplantatie bij ratten als een reproduceerbaar experimenteel model voor transplantatieonderzoek. Dit wordt bereikt door eerst de lever uit de donorrat te explanteren. De tweede stap is de ex vivo preparatie van het levertransplantaat, inclusief een leverresectie van 50%.Vervolgens wordt de eigen lever van de ontvangende rat verwijderd. De laatste stap is de implantatie van het partiële levertransplantaat in de ontvangende rat. Ten slotte worden de serumalanine-aminotransferasewaarden gemeten om de hepatocellulaire schade aan het levertransplantaat na transplantatie te beoordelen.Over het algemeen hebben personen die nieuw zijn met deze procedure moeite vanwege de complexiteit die geavanceerde microchirurgische vaardigheden vereist. Om met deze procedure te beginnen, plaatst u de geanestheseerde donorrat op een warmtemat nadat u via een knijptest bij de teen heeft bevestigd dat het dier volledig is geanestheseerd; fixeert u vervolgens de bovenarmen met behulp van het magnetische fixatiesysteem voor retractie. Scheer de vacht van het gehele buikgebied van de rat en steriliseer de betreffende huid met een povidonjodiumoplossing.Open de buikholte via een mediane incisie met bilaterale extensies. Plaats een spuit van 5 ml onder de rug van de rat zodat de vena cava suprahepatica ventraal wordt opgetild met behulp van een mosquito-klem; trek dit geheel richting de kop en breng subcostale retractoren aan om het operatieveld te openen. Vanwege de noodzaak om de retractoren en de spuit van 5 ml tijdens de procedure frequent te manipuleren, worden er geen chirurgische doeken rond de incisie gebruikt. Dissekeer, onder een chirurgische microscoop bij een 16 x vergroting, het ligamentum falciforme en het linker ligamentum triangulare en klem de linker vena phrenica door; trek de mediane en linker laterale lobben omhoog met een nat gaasje.Coaguleer en verdeel de para-oesofagele vaten tussen de linker laterale en de anteriore coördinatenlob met bipolaire pincetten. Verplaats de darmen buiten de buikholte naar de linkerzijde van de rat en dek deze af met een nat gaasje. Retracteer de rechter laterale lob naar boven met een nat gaasje.Isoleer de infrahepatische vena cava uit het retroperitoneale weefsel en ligatureer de rechter bijniervene, die later vlak voor de verwijdering van het transplantaat zal worden doorgesneden om een stent in de galgang in te brengen; ligatureer eerst de galgang op het niveau van de vertakking van de arteria gastroduodenalis. Maak een kleine incisie in de voorwand van de galgang proximaal van het ligatiepunt en gebruik vervolgens een gebogen micropincet in de rechterhand om een stent in de gang in te brengen, terwijl de voorwand van de incisie met een rechte micropincet in de linkerhand wordt vastgehouden. Fixeer deze met een 6-0 zijden draad.Houd een van de afgeknipten uiteinden van de hechtdraad aan de galgang op een lengte van vier millimeter, zodat de draad tijdens de latere anastomose vastgehouden kan worden. Maak de vena portae vrij van de venae mesenterica superior en lienis door deze af te binden en door te snijden; bind de arteria gastroduodenalis af en snijd deze door. Isoleer vervolgens de arteria hepatica communis vanaf de pancreaskop tot aan de oorsprong.Draai de lever met wattenstaafjes naar rechts en ontleed het ligament rond de achterzijde van de lever en de slokdarm zodra de voorbereidingen voltooid zijn. Voor de excisie van de lever: verwijder de retracteurs, de muggenklemmen bij het xiphoïd-proces en de spuit van vijf milliliter onder de rug van de rat.Plaats de darmen terug in de buikholte. Injecteer 500 IU heparinenatrium in twee milliliter normale zoutoplossing via de penielvene. Na ongeveer drie minuten worden de vijf milliliter spuit, de muggenklem en de retractor verwijderd en wordt de arteria hepatica communis proximaal van de oorsprong afgebonden.Houd een van de afgesneden uiteinden van de draad geligeerd voor de arteria hepatica communis. Klem de vena cava infrahepatisch, dicht bij de vena renalis dextra, met een mosquito-klem.Klem de poortader af met een wegwerpklamp voor microvaten onder de stomp van de miltader. Incideer de voorwand van de poortader en voeg een 18 gauge katheter in de poortader in. Perfuseer de lever in situ met 60 milliliters koude histidine-tryptofaan-ketoglutaraatoplossing.Bij een hydrostatische druk van 20 centimeter worden het diafragma, de vena cava intrathoracica en de voorwand van de vena cava infrahepatica onmiddellijk geopend om de perfusie-oplossing uit de lever te spoelen. Klem de vena cava infrahepatica af met een microvatklem net onder de lever. Exciteer de lever door de vena cava infrahepatica te dissekeren.De poortader, het diafragma, de overige ligamenten, de rechter bijnierader en de arteria hepatica communis. Plaats de geëxciteerde lever in een metalen beker met koude HTK-oplossing, gemonteerd in een plastic bak gevuld met geknoten ijs. Procedures voor het levertransplantaat worden uitgevoerd in de metalen beker gevuld met ijskoude HTK-oplossing; voor het bevestigen van een manchet aan de poortader wordt de poortaderstam afgeklemd met een DeBakey bulldog-klem, waarbij de klem in een overbruggingspositie over de beker wordt geplaatst.Plaats de poortader door de manchet en klem de al-ader opnieuw samen met de verlenging van de manchet op de 12-uurspositie, vouw de wand van de poortader over de manchet om de stomp van de miltader buiten de manchet op de 7-uurspositie te positioneren en zet de poortader vast met een 6-0 zijden draad om een stent in de leverarterie in te brengen. Fixeer de lever door beide randen van het diafragma met pincetten te klemmen en trek de gemeenschappelijke leverarterie recht door de geligeerde draad vast te houden met de DeBakey bulldog-klem en een rechte microschaar. Maak met de linkerhand een kleine incisie in de voorwand van de gemeenschappelijke leverarterie.Houd de voorwand van de incisie vast met een rechte micropincet en voer met de rechterhand een stent in de arteria hepatica communis in. Bevestig de stent met een 6-0 zijden draad met behulp van een gebogen micropincet en laat één van de afgeknipten uiteinden van de draad vier millimeter lang. Spoel de lever via de arteriële katheter met 5 mL koude HTK-oplossing voor de 50% leverresectie.Klem eerst de posterieure coördinaatlob met een muggenpen om deze op zijn plaats te fixeren. Ligeeer vervolgens de pedikel met een 4-0 zijden draad en resecteer de lob.De anteriore corate lob wordt op dezelfde manier verwijderd. Draai vervolgens de plastic doos 90 graden. Klem de rechterrand van het diafragma en het linkergedeelte van de mediane lob vast.Maak een kleine incisie aan de bovenrand van de grens van de bilaterale delen van de mediale lob en verwijder vervolgens het linker gedeelte na ligatie. Na ligatie van de pedikel met een vier-nul zijden hechtdraad, verwijdert u de linker laterale lob en cauteriseert u het geresecteerde leveroppervlak zorgvuldig met bipolaire pincetten. De levermassa is nu met ongeveer 50% verminderd voor plasty van de vena cava suprahepatica.Fixeer eerst de positie van de lever door beide randen van het diafragma vast te klemmen met een muggenklem. Trim vervolgens de voorwand van de vena cava suprahepatica door het bijbehorende diafragma te verwijderen. Bevestig 2 7 0 polypropyleen hechtingen van buiten naar binnen in beide hoeken als houdehechtingen voor de latere anastomose.Trim daarna de achterwand van de vena cava suprahepatica. Bewaar het levertransplantaat op vier graden Celsius in HTK-oplossing in een koudwaterbad. Bereid de ontvanger op soortgelijke wijze voor op de operatie als bij de donoroperatie en open het abdomen via een middenlijnincisie.Plaats een nat gaasje over de rechterkant van het duodenum en de gehele darmen. Om een chirurgisch veld rond de vena cava infrahepatisch te verkrijgen, worden de linker laterale en mediane lobben in de linker subfrenische holte gelegd en wordt de rechter laterale lob met een nat gaasje naar boven getrokken.Isoleer de vena cava infrahepatica van het retroperitoneale weefsel en scheid de rechter bijniervene met vochtig gaas en wattenstaafjes. Roteer de lever naar links en disseceer het ligament rond de achterzijde van de lever. Transecteer de galgang net onder de aftakking van het caudale lob.Houd één van de afgeknoopte uiteinden van de draad vast voor de gallgang van vier millimeter lang. Ligeer en deel de arteria gastroduodenalis en de arteria hepatica propria op een afstand van drie millimeter van de vertakking vanuit de arteria hepatica communis om een brede arteriële structuur aan het uiteinde van de arteria hepatica communis te creëren. Klem de vena cava infrahepatica af met een metalen microvaatklem net boven de vena renalis dextra en de poortader op het niveau van de bifurcatie in de leverhilus met een mosquito-klem. Klem de vena cava suprahepatica samen met het diafragma af met een perifere vaatklem en fixeer de klem in een klomp oliehoudende klei. Reduceer de anesthesie met isofluraan naar 0,4 volume-procent. Verwijder de recipientenlever door de vena cava suprahepatica te ontleden op de grens tussen de vena cava suprahepatica en de lever.De poortader net boven de bek van de muggentang en de vena cava infrahepatisch iets onder het middenpunt tussen de lever en de rechter nieraorta. Plaats het levertransplantaat orthotoop. De reconstructie van de vaten is het moeilijkste en belangrijkste onderdeel van deze procedure.Dit moet zeer zorgvuldig maar snel worden uitgevoerd voor de anastomose van de suprahepatische vena cava met een doorlopende hechting. Plaats de eerste fixatiehechting in de suprahepatische vena cava van de ontvanger van binnen naar buiten met de bijgevoegde 7-0 polypropyleenhechtdraad in de rechterhoek van het transplantaat, gevolgd door het knopen ervan op dezelfde wijze. Plaats de tweede fixatiehechting in de linkerhoek.Dit zal de beginsteek zijn van een doorlopende hechting. Om de anastomose te verbreden, worden de hechtingen in beide hoeken vastgegrepen en vastgehouden met DeBakey bulldogklemmen, waarbij een lichte tractie superieur lateraal wordt uitgeoefend. Doorboor vervolgens de hechting in de linkerhoek door de wand aan de zijde van het transplantaat, van buiten naar binnen, vlakbij de knoop aan de buitenkant, en hecht de posterieure rij van de satic vena caver intraluminaal met zeven tot acht steken naar de rechterhoek.Zet de eerste paar hechtingen zorgvuldig, zodat de binnenste lumina in de juiste hoek tegenover elkaar staan. Steek de zeven nul polypropyleenhechtdraad vanuit de graftzijde door het vat naar buiten. Hecht de voorste rij van buitenaf van rechts naar links met ongeveer 10 hechtingen.Spoel de binnenzijde door met lactaatringeroplossing. Om luchtbellen te verwijderen, wordt de laatste hechting vlakbij de steunhechting geplaatst, waarna deze samen worden aangetrokken. Voor de reconstructie van de poortader wordt de poortader afgeklemd met een microvatklem en wordt de muggenklem in de klei gefixeerd. Maak vervolgens een incisie in de voorwand van de poortader, net onder de kaken van de muggenklem.Spoel de binnenkant van de ontvangende poortader en de cuff schoon met lactaat-Ringeroplossing. Plaats de cuff in de poortader en zet deze vast met een circumferentiële zijden hechtdraad van maat 6-0. Herperfuseer tot slot de lever.Verwijder de spuit van vijf milliliter uit de rug van de rat en verhoog de concentratie isofluraan naar 0,8 volumeprocent voor de reconstructie van de lever door middel van een stenttechniek. Houd eerst de draad van de arteria hepatica propria vast met mosquito-klemmen en fixeer deze in de klei. Klem vervolgens de ontvangende arteria hepatica communis af.Maak een kleine incisie in de vertakking van de Y-structuur aan het uiteinde van de arteria hepatica communis om een trechtervormige opening te creëren. Houd de stent die in de arteria hepatica communis van het transplantaat is geplaatst vast met een gebogen micropincet. Schuif de stent in de arteria hepatica communis van de ontvanger en zet deze vast met een zijden hechtdraad van zes nul. Knoop één uiteinde van dit draad en de draad van vier millimeter op de arteria hepatica communis van het transplantaat samen, zodat beide arteriae hepaticae communes dichter bij elkaar komen te liggen met een verminderde spanning op de anastomotische plaats.Laat daarna de klem voor de anastomose van de infrahepatische vena cava los door middel van een continue hechting, op dezelfde wijze als bij de suprahepatische vena cava, maar gebruik meer hechtingen met fijnere steken. Verhoog na het verwijderen van de klem de concentratie van het anesthesicum naar 1,0 volume procent voor de reconstructie van de galgang. Houd de draad van de galgang van de ontvanger vast met een mosquito-klem en fixeer deze in de klei.Maak een kleine incisie in de galgang op het juiste niveau, zodat de gereconstrueerde galgang niet te lang wordt. Plaats de stent en zet deze vast met een zes-nul zijden hechtdraad. Knoop deze draad samen met de draad van het transplantaatkanaal.Alle reconstructieprocedures zijn nu voltooid. Sluit de abdominale incisie in lagen met continue 4-0 Vicryl-hechtingen. Behandel de ontvangende rat direct na de operatie met een subcutane injectie van sphero sodium en buprenorfine in een totaal van 1,5 milliliters normale zoutoplossing.Laat de rat 60 minuten herstellen in een speciale kooi voor intensive care met warme lucht en een zuurstofvoorziening voordat deze wordt teruggeplaatst in een normale kooi. Alle ontvangende ratten overleefden tot de geplande euthanasie voor bloedafname op 1, 3, 24 en 168 uur na portale reperfusie. Serummonsters werden geanalyseerd op alanine-aminotransferase-spiegels, die de mate van hepatocellulaire schade aan de levertransplantaten na transplantatie weerspiegelen.Zoals in deze grafiek wordt getoond, bereikten de LT-waarden een piek na 24 uur en daalden daarna binnen de normale grenzen na 168 uur. Na deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in hoe u een partiële topic levertransplantatie bij ratten uitvoert als reproduceerbaar experimenteel model voor transplantatieonderzoek.

surgical-procedures-for-rat-model-partial-orthotopic-liver

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

We een gemakkelijk te stellen herziening van de klassieke twee manchet techniek orthotope levertransplantatie in rat.

Orthotope levertransplantatie bij ratten

Auxiliary levertransplantatie biedt een tijdelijke ondersteuning in acuut leverfalen, tot de regeneratie van het falende lever. Heterotopisch extra levertransplantatie (HALT) met poortader arterialization (PVA) maakt voldoende leverfunctie. We ontwikkelden een analoge techniek in de rat, de invloed van de poortader arterialization de morfologie en functie van het transplantaat te onderzoeken.

Heterotopische Auxiliary Rat Liver Transplantation Met Flow-gereguleerd poortader Arterialization in acuut leverfalen

Hier, wordt een protocol met betrekking tot de gedeeltelijke levertransplantatie opnieuw arterialized rat gepresenteerd. 70% lever was precies gereseceerd in vivo met behulp van een bijgewerkte techniek van het vaartuig georiënteerde hepatectomy. De hepatische slagader werd gereconstrueerd op een end-to-side wijze. De manchet techniek was aangepast zodat het verkorten van de infrahepatic vena cava anastomose.

Opnieuw Arterialized Rat gedeeltelijke lever transplantatie met een in vivo vaartuig georiënteerde 70% Hepatectomy

De wederopbouw van de suprahepatic vena cava (SHVC) blijft een moeilijke stap in rat orthotopic lever transplantatie. In dit artikel tonen we een stapsgewijze protocol voor SHVC wederopbouw in ratten met behulp van een roman magnetische wapendrager-techniek.

Een Rat Model van Orthotopic met behulp van een roman magnetische Anastomosis techniek voor Suprahepatic Vena Cava wederopbouw levertransplantatie

Het doel van deze studie is om de rat orthotopische levertransplantatie model te wijzigen om beter te vertegenwoordigen menselijke levertransplantatie en verbetering van de overleving van de ontvanger. De gepresenteerde methode hersteld leverslagaderlijke instroom door het aansluiten van de donor lever gemeenschappelijke lever slagader aan de juiste lever van de ontvanger slagaderslagader.

Verminderde complicaties na arteriële heraansluiting in een ratmodel van orthotopische levertransplantatie

Het hier beschreven heterotope hulplevertransplantatieprotocol bij ratten biedt een praktisch onderzoeksinstrument voor het onderzoeken van mechanismen van afstoting van het levertransplantaat. Dit model helpt bij het verlichten van de chirurgische hindernissen en dierlijke stress van orthotope levertransplantatie bij ratten.

Heterotopisch aanvullend transplantaatmodel voor ratten in de hele lever met behulp van een hepaticouretostomie voor onderzoeken naar afstoting van transplantaten

Deze video toont de orthotope aorta transplantatie model als een eenvoudig model om de ontwikkeling van transplantatie vasculopathie (TVP) studie bij ratten.

Orthotope Aorta Transplantatie: Een Rat Model voor de ontwikkeling van chronische vasculopathie Study

Hier presenteren we een nieuw model van een gehumaniseerde muizenlever, gegenereerd in Alb-toxinereceptor-gemedieerde cel-knockout (TRECK)/SCID-muizen na de transplantatie van onvolgroeide en uitbreidbare menselijke hepatische stamcellen.

Genereren van een gehumaniseerd muis lever met behulp van menselijke lever stamcellen

Een unieke rattenlever hilaire clamp model ontwikkeld voor het bestuderen van de effecten van farmacologische moleculen bij het verbeteren van ischemie-reperfusieletsel. Dit model omvat directe canulatie van het portaal toevoer naar het segment ischemische lever via een tak van de poortader, zodat hij direct hepatische afgifte.

Wijze van Direct Segmentale Intra-lever Delivery Met behulp van een Rat Liver Hilar Clamp Model

Het doel van dit manuscript en protocol is uit te leggen en in detail de chirurgische ingreep van orthotopic nier transplantatie bij ratten te tonen. Deze methode is vereenvoudigd om de juiste doorbloeding van de donor nier te bereiken en de reperfusie tijd te verkorten met behulp van de veneuze en urineleider manchet anastomosis techniek.

Orthotopic rat nier transplantatie: een nieuwe en vereenvoudigde chirurgische aanpak

Leer een chirurgische methode voor orthotope levertransplantatie bij ratten met hepatische arteriële reconstructie. Dit model met 50% partiële graft is essentieel voor transplantatieonderzoek en evaluatie van leverfunctie.

Chirurgische ingrepen voor een Rat Model van deelspoelen orthotope levertransplantatie met hepatische arteriële reconstructie

Meer video's verkennen