Name: Identificatie van Sleeping Beauty Transposon inserties in vaste tumoren met Linker-gemedieerde PCR (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 34 s
Description: Leer hoe je oncogenen en tumorsuppressorgenen identificeert door Sleeping Beauty-transposon-inserties in muizen te karteren met behulp van linker-gemedieerde PCR. Deze methode maakt onbevooroordeelde detectie van kankerstuurders mogelijk.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs willen graag Branden Moriarity, David Largaespada, en Vincent Keng dank aan de Universiteit van Minnesota, en Adam Dupuy aan de Universiteit van Iowa voor hun hulp bij de ontwikkeling van het hierboven beschreven protocol.

1. Veredeling en Aging van transgene dieren <ol><li> Selecteer de stammen van transgene muizen geschikt is voor uw experiment. Een typisch experiment zullen drie transgene lijnen, een voorwaardelijke transposase muis, een muis herbergt een concatamer van transposons en een muis expressie Cre Recombinase in de cellen beschouwd als de cellen van oorsprong voor de gewenste kanker. Als de kanker wordt gemodelleerd met een bekende mutatie in een groot percentage van de patiënten kan het wenselijk zijn om deze mutatie bij aanvang nemen. Voorbeelden van deze &quot;predisponerende&quot; mutaties omvatten geactiveerd Kras, dominant negatieve TP53 of een floxed PTEN allel. Door het toevoegen van een predisponerende mutatie van het model kan beter vertegenwoordigen de kanker bij de mens (zie 1.3). Verschillende Doornroosje transposase en transposon muizen zijn verkrijgbaar bij het ​​National Cancer Institute Mouse Repository ( <a href="http://mouse.ncifcrf.gov/" target="_blank">http://mouse.ncifcrf.gov/</a> ). </li><li> Breed voorwaardelijke transposase muizen met muizen die de transposons uiteindelijk verkrijgen muizen die homozygoot zijn voor beide allelen indien mogelijk. Breed homozygote nageslacht Recombinase Cre muizen die om triple transgene experimentele muizen (Figuur 2) genereren. Opmerking: Het verkrijgen van homozygote muizen niet altijd mogelijk of ideaal. Bijvoorbeeld homozygoot dominante negatieve p53 muizen veel moeilijker te fokken dan heterozygote muizen. Bovendien is het nuttig om te zorgen dat nesten Mendeliaanse genetica volgt te bevestigen dat de kweekschema succesvol is. </li><li> Bij gebruik van een gepredisponeerd achtergrond eerste ras muizen met de transposase aan muizen met predisponerende allel. Tegelijkertijd breed Recombinase Cre muizen die met muizen die de transposons. Maak homozygote muizen voor elk allel indien mogelijk. Tot slot, fokken de homozygote nakomelingen van de vorige twee fokprogramma&#39;s te verviervoudigen transgene experimentele anim genererenALS. </li><li> Naast de proefdieren genereren cohorten controle muizen. De controlegroep bestaat doorgaans uit nestgenoten van proeffokstation dat slechts erven twee van de drie allelen (figuur 2). Bij een gepredisponeerd achtergrond zal muizen, inclusief drie van de vier allelen ook nodig. </li><li> Monitor experimentele en controle muizen dagelijks voor de ontwikkeling van tumoren en / of moribundity. Volg je de institutionele dierlijke zorg en gebruik comite (IACUC) eisen voor de veehouderij. Ook is het typisch om te bepalen een leeftijd waarin u een dier te offeren als het is nog niet ten dode opgeschreven. Achttien maanden is een typische leeftijd waarop muizen geëuthanaseerd. </li></ol> 2. Autopsie van transgene dieren <table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> Sure-Seal Inductie Kamer </td><td> Brain Tree Wetenschappelijke </td><td> EZ-177 </td></tr><tr><td> Cryovial </td><td> Bioexpress </td><td> C-3355-2 </td></tr><tr><td> 10% gebufferde formaline </td><td> Sigma Aldrich </td><td> HT501128-4L </td></tr></tbody></table> Tabel 1. Reagentia nodig. <ol><li> Wanneer een muis stervende is of het einde van de bepaalde levensduur, euthanaseren dier met een CO 2 kamer na uw IACUC richtlijnen. In het algemeen, plaats het dier in een schone gaskamer, opent u de gastank en stel de regelaar op niet hoger dan 5 pond lezen per vierkante inch. Vul langzaam naar neus-en oogirritatie en afkeer van CO 2 te beperken. Zorg ervoor dat het dier hart niet meer kloppen en niet reageert bij aanraking in het oog. </li><li> Spray buitenkant van opgeofferd muis met 70% ethanol. </li><li> Plaats de muis op een autopsie bord en zet vast met ontleden pinnen. Gebruik een schaar eend pincet om de muis te openen en te verwijderen organen. Bepalen welke organen moeten worden verzameld is het project afhankelijk. Het is echter aan te raden om altijd het verzamelen van de milt en de lever als deze organen vaak belangrijk inzicht te geven in de reden waarom de muis was ten dode opgeschreven. Verzamelen ook het borstbeen voor mogelijke analyse van beenmerg. Bovendien is altijd nuttig om elk orgaan of weefsel dat abnormaal lijkt verzamelen. </li><li> Weefsels en tumoren die worden verzameld moet worden verdeeld in vier secties. Een deel wordt gefixeerd in 10% gebufferde formaline gedurende 18 uur gevolgd door 70% ethanol. Deze sectie kan worden gebruikt voor H &amp; E kleuring en / of IHC. De overige drie delen, die in het algemeen 50 tot 100 mg omvang, snel bevroren in vloeibare stikstof. Deze kunnen gebruikt worden voor DNA, RNA en eiwit isolatie. </li><li> Gooi karkas en de resterende weefsels volgens IACUC richtlijnen. </li></ol> 3. Isoleren Genomisch DNA van tumoren <table border="1"><tbody><tr><td> &lt;strong&gt; Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> Protein Precipitation oplossing </td><td> Qiagen </td><td> 158910 </td></tr><tr><td> Cellysis buffer </td><td> Qiagen </td><td> 158906 </td></tr><tr><td> Proteinase K </td><td> Qiagen </td><td> 158920 </td></tr><tr><td> RNase A </td><td> Qiagen </td><td> 158924 </td></tr><tr><td> TE Buffer </td><td> Promega </td><td> V6232 </td></tr></tbody></table> Tabel 2. Reagentia nodig. <ol><li> Fijn gehakt de bevroren tumormonster (50 tot 100 mg) met een schoon scheermesje. </li><li> Plaats gehakt weefsel in een 1,5 ml microcentrifuge buis en voeg 1 ml van cel lysis buffer die 5 ul Proteinase K oplossing (20 mg / ml). </li><li> Vortex grondig. </li><li> Incubeer in een 55 ° C schudinrichting bij 250 rpm ingesteld ten minste 4 uur, bij voorkeur overnacht. </li><li> Voeg 1 ul RNase A oplossing (10 mg / ml) en omkeren buis 25 keer. </li><li> Incubeer bij 37 ° C gedurende 30 minuten. </li><li> Koel af tot kamertemperatuur door op ijs gedurende 3 min. </li><li> Voeg 333 ul Eiwit Neerslag oplossing en vortex krachtig. </li><li> Centrifugeer bij 14.000 rpm 10 min. Eiwitten moeten pellet. Als pellet is zeer klein, vortex weer, incubeer op ijs gedurende 5 minuten, en probeer dan opnieuw centrifuge. </li><li> Giet het supernatans bevattend DNA in een schone centrifugebuis van 15 ml. </li><li> Voeg gelijk volume 100% isopropanol en meng voorzichtig omkeren 50 keer. </li><li> Centrifugeer bij 3.500 tpm gedurende 3 minuten. </li><li> Gooi supernatant. </li><li> Voeg 1 ml 70% ethanol en omkeren buis meerdere malen om de pellet te wassen. </li><li> Breng de pellet gewassen met ethanol om een ​​1,5 ml microcentrifugebuis. </li><li> Centrifugeer bij 14.000 rpm gedurende 5 min bij 4 ° C. </li><li> Giet ethanol en zwenken buis aan de lucht drogen (ongeveer 5 tot 30 min). </li><li> Resuspendeer DNA pEllet in 50 tot 500 ui TE afhankelijk van de grootte van DNA pellet. </li><li> Optioneel incubatie bij 37 ° C te mengen DNA. </li><li> Bewaar bij 4 ° C of -20 ° C voor lange termijn opslag. </li></ol> 4. Linker-Mediated PCR gebruikmaking van genomisch DNA van tumoren <table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td></tr><tr><td> BfaI </td><td> New England Biolabs </td><td> R0568S </td></tr><tr><td> NlaIII </td><td> New England Biolabs </td><td> R0125S </td></tr><tr><td> MinElute platen met 96 putjes </td><td> Qiagen </td><td> 28051 </td></tr><tr><td> QIAvac 96 Vacuum spruitstuk </td><td> Qiagen </td><td> 19504 </td></tr><tr><td> Multi-MicroPlate Genie, 120V </td><td> Scientific Industries, Inc </td><td> SI-4000 </td></tr><tr><td> T4 DNA ligase met 5x ligatiebuffer </td><td> Invitrogen </td><html><td> 15224-041 </td></tr><tr><td> BamHI </td><td> New England Biolabs </td><td> R0136S </td></tr><tr><td> 25 mM dNTPs </td><td> Bioexpress </td><td> C-5014-200 </td></tr><tr><td> Platinum Taq </td><td> Invitrogen </td><td> 10966-034 </td></tr><tr><td> FastStart Taq DNA Polymerase </td><td> Roche </td><td> 12032929001 </td></tr><tr><td> Agarose </td><td> Promega </td><td> V3121 </td></tr><tr><td> TAE buffer </td><td> Promega </td><td> V4271 </td></tr><tr><td> TE Buffer </td><td> Promega </td><td> V6232 </td></tr><tr><td> Ethidiumbromide </td><td> Promega </td><td> H5041 </td></tr></tbody></table> Tabel 3. Reagentia nodig. Linker Sequences BfaI linker + 5 &#39;GTAATACGACTCACTATAGGGCTCCGCTTAAGGGAC 3&#39; BfaI linker-5&#39;-Phos TAGTCCCTTAAGCGGAG 3&#39;NH2 &quot;&gt; NlaIII linker + 5&#39;GTAATACGACTCACTATAGGGCTCCGCTTAAGGGACCATG 3 &#39; NlaIII linker-5&#39;-Phos GTCCCTTAAGCGGAGCC 3 &#39; Primersequenties Primaire PCR voren rechterkant (NlaIII): Spl IRDR R1 1 GCTTGTGGAAGGCTACTCGAAATGTTTGACCC Primaire PCR LV opzij (BfaI): Spl IRDR L1 1 CTGGAATTTTCCAAGCTGTTTAAAGGCACAGTCAAC Primaire PCR omgekeerde voor zowel rechts en links: Spl Link1 1 GTAATACGACTCACTATAGGGC Secundaire PCR forward rechterkant: Voorbeeld van een barcode Illumina secundaire primer 5 &#39;AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNNNNNNNNaGgtgtatgtaaacttccgacttcaa (The N vertegenwoordigen de 12 bp barcode, sequentie in hoofdletters zijn vereist voor de Illumina platform, en de volgorde kleine letters zullen binden aan het transposon.) Secundaire PCR LV kant: Voorbeeld van een Illumina barcode Secondary primer 5&#39;AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTNNNNNNNNNNNNaAgtgtatgtaaacttccgacttcaa (The N vertegenwoordigen de 12 bp barcode, sequentie in hoofdletters zijn vereist voor de Illumina platform, en de volgorde kleine letters zullen binden aan het transposon.) Secundaire PCR omgekeerde voor zowel links en rechts: linker geneste reverse primer 5 &#39;CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTAGGGCTCCGCTTAAGGGAC <ol><li> Annealen de + en - linkers zowel BfaI linkers en linkers NlaII door mengen 50 ul linker + (100 uM) met 50 ul van linker-(100 uM) en voeg 2 ui NaCl (5 M) in een 1,5 ml microcentrifugebuis. In 95 ° C warmteblok gedurende 5 minuten. Schakel verwarmingsblok en laat langzaam afkoelen tot kamertemperatuur (dit duurt een uur of meer). Na afkoelen kan uitgegloeid linkers worden opgeslagen in een -20 ° C vriezer tot gebruik. </li><li> Bereid twee aliquots van de tumor DNA, elk aliquot met 1 ug DNA. Een aliquot wordt gedigereerd witha restrictie-enzym dat in de buurt van de &#39;juiste&#39; einde van de transposon te snijden. Het tweede aliquot wordt gedigereerd met een restrictie enzym dat knipt op een &quot;links&quot; einde van het transposon. Dit wordt gedaan om de kans te amplificeren elke transposoninsertie site te maximaliseren. </li><li> Digest de tumor DNA in een aliquot met behulp van de &quot;juiste&quot; kant enzym NlaII, en verteren de tumor DNA in het andere monster met behulp van de &quot;linker&quot; kant enzym BfaI: combineer 1 pi van het enzym, 5 pi 10x NEB buffer # 4, DNA ( 1 ug) en ddH 2 O tot een totaal volume van 50 ul. Digest DNA overnacht bij 37 ° C in een waterbad of incubator. </li><li> Verwarm enzymen te inactiveren (BfaI = 80 ° C gedurende 20 min, NlaIII = 65 ° C gedurende 20 min). </li><li> Reinig de verteerde monsters door het plaatsen van monsters in MinElute plaat met 96 putjes, laat de plaat staan ​​in vacuüm manifold en vacuüm gedurende ongeveer 15 min tot bronnen kijken droog. </li><li> Verwijder de plaat uit vacuüm spruitstuk en blot bodem van plaat met 96 putjes met een papieren handdoek om alle liqui verwijderend </li><li> Voeg 30 ul ddH 2 O aan elk putje en schud op een schudapparaat ingesteld op hoog voor 2 min, of op en neer pipetteren 20 tot 40 keer. </li><li> Breng gehele volume in wells (30 ul) van MinElute plaat met 96 putjes in schone platen met 96 putjes. </li><li> Voer linker ligatiereacties met gedigereerd DNA uit stap 4.8 en linkers uit stap 4.1. Mix 10 ul gedigereerd DNA, 4 pi 5x ligatiebuffer, 5,5 pl gegloeid linkers (950 pg / pl), 0,5 pi T4 ligase (5 U / pl). </li><li> Incubeer gedurende 4 uur tot een nacht bij 16 ° C. </li><li> Verwarm het inactiveren T4 DNA ligase bij 65 ° C gedurende 10 minuten. </li><li> Opruimen ligatie met MinElute 96 putjes en een vacuüm mondstuk zoals beschreven in stap 4,5 tot 4,6. </li><li> Resuspendeer in 30 ul H2O en naar een schone plaat met 96 putjes. </li><li> Voer een tweede DNA-vertering om te vernietigen resterende concatamer transposons. Dit wordt bereikt door het snijden van de DNA nogmaals met een enzym dat het plasmide v snijdtector DNA dat werd gebruikt om de transgene muizen die het transposon concatamer maken. </li><li> Digest DNA met BamHI (links en rechts): Mix 25 pl linker-geligeerde DNA uit stap 4,13, 5 pl 10x NEB buffer # 3, 0,5 pl BamHI (20 U / ul), 0,5 ui BSA (10 mg / ml ), en 19 ul ddH 2 O. </li><li> Digest 3-6 uur of overnacht bij 37 ° C. </li><li> Voer primaire PCR met een primer specifiek voor de transposon en een primer specifiek voor de linker. Deze zullen variëren afhankelijk van wat transposon en linker u gebruikt. De primers die in de bovenstaande tabel primer werk voor de T2/Onc en T2/Onc2 transposons. </li><li> Primaire PCR: 5 pl 10x buffer, 2,0 pl MgCl2 (50 mM), 4 pi dNTPs (2,5 nM), 1 pi Primer 1 (20 uM), 1 pi Primer 2 (20 uM), 0,25 pl Platinum Taq (5 U / ul), 3 pl gedigesteerd DNA met linkers (bedrag kan variëren) tot 50 pi ddH 2 O. </li><li> PCR programma: 94 ° C gedurende 5 min, 30 cycli van 94 ° C gedurende 30 sec, 60 &amp; deg; C gedurende 30 sec, 72 ° C gedurende 90 sec. Laatste verlenging bij 72 ° C gedurende 5 minuten. </li><li> Opruimen PCR product met MinElute 96 putjes en een vacuüm mondstuk zoals hierboven beschreven. </li><li> Resuspendeer in 30 ul H2O en naar een schone plaat met 96 putjes. </li><li> Maak een 1:75 verdunning van de 1 ° PCR door verdunning 2 pl DNA uit stap in 148 ui 4,21 ddH 2 O </li><li> Voert secundaire PCR met geneste versies van de primers die ook de vereiste volgorde voor de Illumina GAIIx machine en een 12 base paar barcode die uniek is voor elk tumormonster verwerkt (zie primer bovenstaande tabel voorbeelden van deze primers). </li><li> Secundaire PCR: 10 pl 10x buffer met MgCl2, 8 pi dNTPs (2,5 mM), 1 gl Illumina barcode secundaire primer (20 uM), 1 pi Illumina Nest 1 tweede primer (20 uM), 0,25 pi FastStart Taq (5 U / pl ), 2 pi DNA van primaire PCR verdund 1:75 tot 100 pl ddH 2 O. </li><li> PCR programma: 94 °; C gedurende 2 min, 30 cycli van 94 ° C gedurende 30 sec, 53 ° C gedurende 45 sec, 72 ° C gedurende 90 sec. Laatste verlenging bij 72 ° C gedurende 5 minuten. </li><li> Run 45 pi van deze PCR-reactie op een 1% agarose gel die ethidiumbromide (0,5 ug / ml). Er zou een &quot;smear&quot; van PCR producten die amplicons van de vele transposon inserties in de tumor (Figuur 3). </li><li> Opruimen resterende 50 pl PCR product met MinElute 96 putjes en een vacuüm mondstuk zoals hierboven beschreven. Was een keer door het plaatsen van 50 ul ddH 2 O in de putten en stofzuigen weer. </li><li> Resuspendeer in 30 ul TE en naar een schone plaat met 96 putjes. </li><li> De concentratie van DNA in elk monster. Combineer gelijke hoeveelheden DNA in een 1,5 ml microfugebuis. Dit zal de bibliotheek die wordt afgewisseld met een enkele rijstrook van een Illumina HiSeq 2000 machine. Het is mogelijk om honderden sequentie tumoren in een laan van een Illumina run. </li><li> Voorleggende interne buis met gelijke hoeveelheden DNA van alle tumoren sequencing. Dit kan gedaan worden door uw instelling of commercieel. </li></ol> 5. Analyse van Transposon Insertions <ol><li> Software voor het analyseren van transposon insertie gegevens is beschikbaar als gratis download via SourceForge ( <a href="http://sourceforge.net/projects/tapdancebio/" target="_blank">http://sourceforge.net/projects/tapdancebio/</a> ). Het programma, genaamd tapdance, vereist de volgorde bestand van de Illumina platform en een barcode voor bibliotheek kaart tekstbestand. </li></ol>

<ol><li>Fearon, E. R., Vogelstein, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetic+model+for+colorectal+tumorigenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A genetic model for colorectal tumorigenesis.</a> Cell. 61, 759-767 (1990).</li>
<li>Wood, L. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Genomic+Landscapes+of+Human+Breast+and+Colorectal+Cancers%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The Genomic Landscapes of Human Breast and Colorectal Cancers.</a> Science. 318, 1108-1113 (2007).</li>
<li>Ivics, Z., Hackett, P. B., Plasterk, R. H., Izsvák, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Reconstruction+of+Sleeping+Beauty%2C+a+Tc1-like+Transposon+from+Fish%2C+and+Its+Transposition+in+Human+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Molecular Reconstruction of Sleeping Beauty, a Tc1-like Transposon from Fish, and Its Transposition in Human Cells.</a> Cell. 91, 501-510 (1997).</li>
<li>Starr, T. K., Largaespada, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+gene+discovery+using+the+Sleeping+Beauty+transposon%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Cancer gene discovery using the Sleeping Beauty transposon.</a> Cell Cycle. 4, 1744-1748 (2005).</li>
<li>Mueller, P. R., Wold, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vivo+Footprinting+of+a+Muscle+Specific+Enhancer+by+Ligation+Mediated+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">In Vivo Footprinting of a Muscle Specific Enhancer by Ligation Mediated PCR.</a> Science. 246, 780-786 (1989).</li>
<li>Bergemann, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+methods+for+finding+common+insertion+sites+and+co-occurring+common+insertion+sites+in+transposon-+and+virus-based+genetic+screens%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+acids+research%22%5BJournal%5D)">New methods for finding common insertion sites and co-occurring common insertion sites in transposon- and virus-based genetic screens.</a> Nucleic acids research. 40, 3822-3833 (2012).</li>
<li>Copeland, N. G., Jenkins, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Harnessing+transposons+for+cancer+gene+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">Harnessing transposons for cancer gene discovery.</a> Nature Reviews Cancer. 10, 696-706 (2010).</li>
<li>Collier, L. S., Carlson, C. M., Ravimohan, S., Dupuy, A. J., Largaespada, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+gene+discovery+in+solid+tumours+using+transposon-based+somatic+mutagenesis+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cancer gene discovery in solid tumours using transposon-based somatic mutagenesis in the mouse.</a> Nature. 436, 272-276 (2005).</li>
<li>Starr, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+transposon-based+genetic+screen+in+mice+identifies+genes+altered+in+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A transposon-based genetic screen in mice identifies genes altered in colorectal cancer.</a> Science. 323, 1747-1750 (2009).</li>
<li>Keng, V. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+conditional+transposon-based+insertional+mutagenesis+screen+for+genes+associated+with+mouse+hepatocellular+carcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A conditional transposon-based insertional mutagenesis screen for genes associated with mouse hepatocellular carcinoma.</a> Nature. 27, 264-274 (2009).</li>
<li>Dupuy, A. J., Akagi, K., Largaespada, D. A., Copeland, N. G., Jenkins, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+mutagenesis+using+a+highly+mobile+somatic+Sleeping+Beauty+transposon+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mammalian mutagenesis using a highly mobile somatic Sleeping Beauty transposon system.</a> Nature. 436, 221-226 (2005).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Een voorwaartse genetische scherm met behulp van de Sleeping Beauty transposon systeem biedt een methode voor het identificeren van mutaties die kanker veroorzaken. Door de juiste promotor Cre recombinase controle naast eventuele predisponerende mutaties zal de SB scherm identificeren bekende en nieuwe kandidaat kankergenen. Het succes van een SB scherm is grotendeels afhankelijk van de geselecteerde muizen voor het maken van het scherm. Voor het transposon, raden wij u aan...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Opmerkingen (optioneel) </td></tr><tr><td> Sure-Seal Inductie Kamer </td><td> Brain Tree Wetenschappelijke </td><td> EZ-177 </td><td></td></tr><tr><td> Cryovial </td><td> Bioexpress </td><td> C-3355-2 </td><td></td></tr><tr><td> 10% gebufferde formaline </td><td> Sigma Aldrich </td><td> HT501128-4L </td><td></td></tr><tr><td> Protein Precipitation oplossing </td><td> Qiagen </td><td> 158910 </td><td></td></tr><tr><td> Cellysis buffer </td><td> Qiagen </td><td> 158906 </td><td></td></tr><tr><td> Proteinase K </td><td> Qiagen </td><td> 158920 </td><td></td></tr><tr><td> RNase A </td><td> Qiagen </td><td> 158924 </td><td></td></tr><tr><td> TE Buffer </td> &lt;td&gt; Promega </td><td> V6232 </td><td></td></tr><tr><td> BfaI </td><td> New England Biolabs </td><td> R0568S </td><td></td></tr><tr><td> NlaIII </td><td> New England Biolabs </td><td> R0125S </td><td></td></tr><tr><td> MinElute platen met 96 putjes </td><td> Qiagen </td><td> 28051 </td><td></td></tr><tr><td> QIAvac 96 Vacuum spruitstuk </td><td> Qiagen </td><td> 19504 </td><td></td></tr><tr><td> Multi-MicroPlate Genie, 120V </td><td> Scientific Industries, Inc </td><td> SI-4000 </td><td></td></tr><tr><td> T4 DNA ligase met 5x ligatiebuffer </td><td> Invitrogen </td><td> 15224-041 </td><td></td></tr><tr><td> BamHI </td><td> New England Biolabs </td><td> R0136S </td><td></td></tr><tr><td> 25 mM dNTPs </td><td> Bioexpress </td><td> C-5014-200 </td><td></td></tr><tr><td> Platinum Taq </td><td> Invitrogen </td><td&gt; 10966-034 </td><td></td></tr><tr><td> FastStart Taq DNA Polymerase </td><td> Roche </td><td> 12032929001 </td><td></td></tr><tr><td> Agarose </td><td> Promega </td><td> V3121 </td><td></td></tr><tr><td> TAE buffer </td><td> Promega </td><td> V4271 </td><td></td></tr><tr><td> TE Buffer </td><td> Promega </td><td> V6232 </td><td></td></tr><tr><td> Ethidiumbromide </td><td> Promega </td><td> H5041 </td><td></td></tr></tbody></table>

identificatie van<em&gt; sleeping beauty</em&gt; transposon inserties in vaste tumoren met linker-gemedieerde pcr

Identification of Sleeping Beauty Transposon Insertions in Solid Tumors using Linker-mediated PCR

Genomic, proteomics, transcriptoom, en epigenomisch analyses van menselijke tumoren aan te geven dat er duizenden van afwijkingen binnen elke kanker genoom in vergelijking met geëvenaard normaal weefsel. Op basis van deze analyses is het duidelijk dat er vele onbekende genetische oorzaken van kanker 1. Helaas zijn deze drivers zijn verborgen in een veel groter aantal passagiers afwijkingen in het genoom die niet direct bijdragen aan de vorming van tumoren. Een ander aspect van de kanker genoom dat er een aanzienlijke genetische heterogeniteit binnen soortgelijke tumortypen. Elke tumor kan haven verschillende mutaties die een selectief voordeel voor tumorvorming 2 verzoekt. Het uitvoeren van een onpartijdige vooruit genetische screen in muizen biedt de tools om tumoren te genereren en analyseren van hun genetische samenstelling, terwijl het verminderen van de achtergrond van de passagier mutaties. The Sleeping Beauty (SB) transposon systeem is een dergelijke methode 3. Het SB systeem maakt gebruik van mobiele vEctors (transposons) die het gehele genoom worden ingebracht door de transposase enzym. Mutaties zijn beperkt tot een specifiek celtype door het gebruik van een voorwaardelijke transposase allel dat wordt geactiveerd door Cre recombinase. Veel muis lijnen bestaan ​​die uitdrukkelijke Cre-recombinase in specifieke weefsels. Door kruising van een van deze lijnen de voorwaardelijke transposase allel (bijvoorbeeld Lox-stop-Lox-SB11) wordt de SB systeem alleen geactiveerd in cellen die Cre recombinase. Het Cre-recombinase zal accijnzen een stop cassette dat blokkeert de expressie van het transposase allel, waardoor het activeren van transposon mutagenese binnen het aangewezen celtype. Een SB scherm wordt geïnitieerd door drie stammen fokken van transgene muizen, zodat de experimentele muizen dragen een voorwaardelijke transposase allel een concatamer van transposons en een weefsel-specifieke Cre recombinase allel. Deze muizen mogen leeftijd tot tumoren vorm en ze worden ten dode opgeschreven. De muizen worden vervolgenssterven en genomisch DNA wordt geïsoleerd uit de tumoren. Vervolgens wordt het genomische DNA onderworpen aan linker-gemedieerde PCR (LM-PCR) die resulteert in amplificatie van genomische loci die een transposon SB. LM-PCR uitgevoerd op een tumor zal resulteren in honderden verschillende amplicons die de honderden genomische loci die transposon inserties in een tumor 4. Het transposon inserties in alle tumoren worden geanalyseerd en gemeenschappelijke insteekopeningen (CISS) geïdentificeerd met behulp van een geschikte statistische methode 5. Genen binnen de CIS zeer waarschijnlijk oncogenen of tumor suppressor genen, en worden beschouwd als kandidaat kankergenen. De voordelen van het systeem SB kandidaat kanker genen te identificeren zijn: 1) het transposon gemakkelijk kan worden gelokaliseerd in het genoom omdat de sequentie bekend is, 2) de omzetting kan worden gericht op bijna elk celtype en 3) het transposon kan introductie van zowel de winst-en verlies-van-functie mutaties 6. De following protocol wordt beschreven hoe u bedenken en uitvoeren van een voorwaartse genetische screen gebruik van de SB transposon systeem voor kandidaat-kanker genen (Figuur 1) te identificeren.

Na de kweek regeling is vastgesteld, moet kwekers produceren een nestje elke negentien-eenëntwintig dagen. Worpgrootte varieert tussen 5 en 12 pups, afhankelijk van de leeftijd van de kwekers en de genetische achtergrond. Bovendien, zorg ervoor dat het genotype van het nest Mendeliaanse genetica volgt als een manier om te bevestigen dat het fokken regeling is zowel correct en succesvol. Voor het experiment slagen, moet tumorincidentie in de proefdieren significant groter zijn dan tumorincide...

Werkwijze voor het identificeren van onbekende oorzaken van kanker met een objectieve benadering beschreven. De methode maakt gebruik van de<em&gt; Sleeping Beauty</em&gt; Transposon een willekeurige mutageen gericht op specifieke weefsels. Genomic in kaart brengen van transposon inserties die tumorvorming rijden identificeert nieuwe oncogenen en tumor suppressor genen

Identificatie van<em&gt; Sleeping Beauty</em&gt; Transposon inserties in vaste tumoren met Linker-gemedieerde PCR

Genomic, proteomic, transcriptomic, and epigenomic analyses of human tumors indicate that there are thousands of anomalies within each cancer genome ...

Deze procedure laat zien hoe nieuwe oncogenen en tumorsuppressorgenen kunnen worden geïdentificeerd door middel van het in kaart brengen van transpose op inserties in de muis die tumorvorming veroorzaken. Dit wordt bereikt door eerst tumoren te genereren en te verzamelen uit het transgene muismodel. De volgende stappen van de procedure zijn het isoleren van het tumor-DNA, het uitvoeren van linker-gemedieerde PCR, het sequencen van de versterkte DNA-monsters en het analyseren van de transpose op inserties.Uiteindelijk identificeert de procedure kandidaat-tumordrivergenen. Het grote voordeel van het gebruik van linker-gemedieerde PCR in combinatie met een onbevooroordeelde genetische screening met behulp van slaapschoonheid transposons, is dat we gemakkelijk nieuwe genetische drivers van kanker kunnen identificeren. Begin altijd de dissectie door het uiterlijk van de geofferde muis te besproeien met 70% ethanol.De verzamelde weefsels en tumoren moeten in vier secties worden verdeeld, met een grootte van 50 tot 100 milligram. Fixeer een sectie in 10% gebufferde formin gedurende 18 uur, gevolgd door 70% ethanol. Deze sectie kan worden gebruikt voor h en e kleuring en/of immunohistochem

identification-sleeping-beauty-transposon-insertions-solid-tumors

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

gDNA-verrijking voor NGS-sequencing is een eenvoudig en krachtig hulpmiddel voor de studie van constitutionele mutaties. In dit artikel presenteren we de procedure om eenvoudig de volledige sequentie van 11 genen te analyseren die betrokken zijn bij DNA-schadeherstel.

gDNA Verrijking door een-Transposase gebaseerde technologie voor NGS analyse van de hele reeks van BRCA1, BRCA2, En 9 genen betrokken bij DNA-schade te herstellen

Hier beschrijven we een efficiënt en veelzijdig protocol om nieuwe glioblastoma (GBM) te induceren, monitoren en analyseren met behulp van transposon DNA dat in de ventrikels van neonatale muizen wordt geïnjecteerd. Cellen van de subventriculaire zone, die het plasmide opnemen, transformeren, prolifereren en genereren tumoren met histo-pathologische kenmerken van menselijk GBM.

Transposon Mediated Integratie van plasmide DNA in de subventriculaire zone van pasgeboren muizen om Novel Modellen van glioblastoma Genereer

Hier presenteren we een gedetailleerd protocol voor het identificeren van homologe recombinatie gebeurtenissen die hebben plaatsgevonden in muis embryonale stamcellen met behulp van Southern blotting en/of PCR. Deze methode wordt geïllustreerd door de generatie van nonmuscle myosin II genetische vervanging Muismodellen met behulp van traditionele embryonale stamcel gebaseerde homologe recombinatie-gemedieerde targeting technologie.

Identificatie van homologe recombinatie gebeurtenissen in muis embryonale stamcellen met behulp van Southern Blotting en de Kettingreactie van de Polymerase

Hier presenteren we een protocol voor het genereren van kanker cel klonen met een MS2 sequence tag op een enkele subtelomere. Deze aanpak, afhankelijk van het MS2-GFP-systeem, maakt de visualisatie van de endogene transcripten van Telomere herhalen-bevattende RNA (TERRA) uitgedrukt uit een enkele telomeer in levende cellen.

Generatie van kanker cel klonen te visualiseren Telomere Repeat-bevattende RNA TERRA uitgedrukt uit een enkele Telomere in levende cellen

Dit artikel beschrijft een methode voor het identificeren van klonale en subclonale veranderingen tussen verschillende specimens van een bepaalde patiënt. Hoewel de hier beschreven experimenten gericht zijn op een specifiek tumor type, is de aanpak algemeen toepasbaar op andere vaste tumoren.

Vergelijkende laesies analyse door middel van een gerichte sequentie benadering

Dit artikel schetst een eenvoudige PCR-gebaseerde assay om de activiteit van een actieve lijn-1 retrotransposon te monitoren en de Novo retrotransposities in een gegeven genoom in kaart te kunnen krijgen. Met behulp van de MCF7 cellijn tonen we hierin hoe deze methode kan worden toegepast om de activiteit van een lijn-1 te detecteren op 22q 12.1.

Detectie van de Retrotransponerings activiteit van Hot LINE-1S door de lange afstand inverse PCR

Dit werk presets een geavanceerd protocol om nauwkeurig te beoordelen tumor laden door detectie van groene fluorescerende eiwitten en bioluminescentie signalen, alsmede de integratie van kwantitatieve moleculaire detectie techniek.

Studeren Triple Negatieve Borstkanker met behulp van Orthotopische Borstkanker Model

Hier presenteren we een protocol om de werkzaamheid van gerichte therapieën geselecteerd op basis van de genomische samenstelling van een tumor te testen. Het protocol beschrijft identificatie en validatie van structurele DNA-herschikkingen, engraftmentatie van tumoren van patiënten in muizen en het testen van reacties op overeenkomstige geneesmiddelen.

Testen gerichte therapieën bij kanker met behulp van structurele DNA-wijzigingsanalyse en patiënt-afgeleide Xenografts

Laser microdissectie (LMD) is een gevoelige en zeer reproduceerbare techniek die kan worden gebruikt om paden die glioom heterogeniteit en invasie te bemiddelen blootleggen. Hier beschrijven we een geoptimaliseerd protocol om discrete gebieden te isoleren van glioomweefsel met behulp van laser LMD, gevolgd door transcriptomische analyse.

Laser Capture Microdissection of Glioma Subregions for Spatial and Molecular Characterization of Intratumoral Heterogeneity, Oncostreams, and Invasion

Het gebruik van een immunocompetent, autochtoon tumormodel aangedreven door gemeenschappelijke patiëntmutaties voor preklinische tests is van cruciaal belang voor immunotherapeutische tests. Dit protocol beschrijft een methode om muismodellen voor hersentumoren te genereren met behulp van op elektroporatie gebaseerde afgifte van plasmide-DNA die veelvoorkomende patiëntmutaties vertegenwoordigen, waardoor een nauwkeurig, reproduceerbaar en consistent muismodel wordt verkregen.

Modellering van hersentumoren in vivo met behulp van op elektroporatie gebaseerde afgifte van plasmide-DNA dat de handtekeningen van patiëntmutaties vertegenwoordigt

Leer hoe je oncogenen en tumorsuppressorgenen identificeert door Sleeping Beauty-transposon-inserties in muizen te karteren met behulp van linker-gemedieerde PCR. Deze methode maakt onbevooroordeelde detectie van kankerstuurders mogelijk.

Identificatie van

Meer video's verkennen