Name: Scheiding van Plasmodium falciparum Late Stage-geïnfecteerde erythrocyten met magnetische middelen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 20 s
Description: Leer magnetische scheiding van Plasmodium falciparum-geïnfecteerde erytrocyten met behulp van de paramagnetische eigenschappen van hemozoïne. Deze efficiënte methode behoudt de invasieve capaciteit van de parasieten.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dit werk werd gefinancierd door subsidie ​​PRB-009 CS en een doctoraatsbeurs naar LC, van de Secretaría Nacional de Ciencia y Tecnología (SENACYT), Panama.

Alle stappen van het protocol, behalve centrifugeren, worden uitgevoerd in een kap om het monster steriel. 1. Late Stage Isolatie van P. falciparum geïnfecteerde erythrocyten Alle late stadia van Plasmodium-geïnfecteerde erythrocyten kunnen worden gescheiden met deze methode, aangezien hemozoin die paramagnetisme verleent de parasiet, een gemeenschappelijke metaboliet het genus. Een hoge parasitemie (3-10%) in cultuur wordt aanbevolen om betere opbrengsten te krijgen met dit protocol, maar een typische cultuur 2-4% hematocriet (volumepercentage van rode bloedcellen) en 1-8% parasitemie (percentage geïnfecteerde bevatten rode bloedcellen). Parasieten kunnen worden gekweekt zoals beschreven door Trager en Jansen 1. <ol><li> Een eenvoudige, multi-part setup moet worden gemonteerd voor elke schizont isolatie procedure. Hiervoor LS kolommen, een magnetische MidiMACS Separator en een MACS MultiStand van Miltenyi Biotec (figuur 1 </strong&gt;) gebruikt. Bevestig eerst de magnetische scheider naar de metalen standaard en plaats de magnetische kolom aan de afscheider. </li><li> In een afzonderlijke buis (gebruik in 50 ml conicals), meng 23,2 ml van RPMI 1640 en 750 ul van 7,5% natriumbicarbonaat het werk oplossing. Hebben extra buizen bij de hand voor het teruggooien en het verzamelen van de doorstroming van de parasiet cultuur. </li><li> 3 ml van de oplossing werken de kolom te equilibreren en gooi de doorstroming in een buis. </li><li> Voeg 8 ml P. falciparum cultuur naar kolom zorgen dat zodra het laatste deel van het werk oplossing is geduwd uit de kolom door de cultuur wordt de ontvangende buis vervangen door een verzameling tot herstel van de vrije cultuur beginnen. Dit is noodzakelijk om verdunnen de cultuur verder. </li><li> Zodra de stroom van de cultuur door de kolom is beëindigd, voeg 1 ml van de oplossing werken de resterende RBC duwen van de kolom. </li><li> Wasstap: Voeg een 3 ml van de oplossing werken de kolom en verzamel de stromende vloeistof in de &quot;ontdoen&quot; tube om te voorkomen verdunnen cultuur opgeslagen als doorstroom in de andere buis. </li><li> Elutie: Wanneer de 3 ml zijn door de kolom geleid, deze loslaten van de stand en op een 15 ml buisje. </li><li> Nogmaals, 3 ml werk oplossing op de kolom. Deze stap elueert de erytrocyten geïnfecteerd met parasieten late die werden opgesloten in de kralen van de kolom. </li></ol> Opmerking: Op dit punt, afhankelijk van de hoeveelheid vereiste parasieten, een ander rond / s bezit, uiteraard binnen de grenzen van de parasitemie in de oorspronkelijke cultuur. De kolom kan worden gebruikt zolang de stroming onderhoudt een steady state. <ol start="9"><li> Concentratie van de verzamelde parasieten: Centrifugeer de 15 ml buis met het eluaat gedurende 5 min bij 150 xg bij kamertemperatuureen donkere pellet vormen van geparasiteerde erytrocyten. </li><li> Verwijder het supernatant met genoeg vloeistof een zeer klein monster te nemen en de concentratie en de totale opbrengst door microscopie bepalen (zie stap 2). </li><li> Op dit moment, als de isolatie en vastleggen van late parasieten naar tevredenheid uitgevoerd, opnieuw geïncubeerd de verzamelde cultuur met vers medium. </li><li> Verdun de verzamelde parasieten in het volume en oplossing nodig voor verdere experimenten. </li></ol> 2. Zuiverheid en opbrengst Analyse <ol><li> Controleer de concentratie van parasieten verkregen door een hemocytometer en tellen onder een lichtmicroscoop. Te tellen, voeg 10 ul van de mix van de verzamelde parasieten en de media onder het deksel slip van de hemocytometer. Tel het aantal parasieten in de vier kwadranten van het hemocytometer en verdeel het totale aantal met 4. Vermenigvuldig dat met 10 4 om de concentratie van geïnfecteerde e verkrijgenrythrocytes per ml. </li></ol> Opmerkingen: a) De concentratie van het mengsel wordt bepaald door de gebruiker op het moment van resuspenderen van het pellet, door meer of minder medium. Voorgestelde werkconcentratie 5,5 X 10 4 schizonten per ul (dit wordt typisch bereikt door toevoeging 100-300 pi de verzamelde parasieten). Als 20 ul van deze concentratie wordt toegevoegd aan een eindvolume van 100 pi mix van media en erytrocyten, een parasitemie van ongeveer 1% in een typisch 4% hematocriet cultuur worden verkregen. b) tellen onder hemocytometer moet snel, aangezien de erytrocyten start lyseren het monster droogt binnen de kamer. Geïnfecteerde erythrocyten, die moet de meerderheid zijn, zal een donkere vlek binnen, die hen ten opzichte van niet-besmette dieren. <ol start="2"><li> Voer een dunne laag Giemsa kleuring om de zuiverheid van de collectie beoordelen door vaststelling van de slides zeer snel in 10% methanol, drogen, en onderdompelen tzoom in een 20% oplossing van Giemsa kleuring verdund met gedestilleerd water. Vlekken op de dia gedurende 10 min, waarna ze worden gedroogd door lucht en onder de microscoop onderzocht. Een parasitemie ruim boven de 70% haalbaar moeten zijn. </li></ol>

<ol><li>Jensen, J. B., Trager, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmodium+falciparum+in+culture%3A+use+of+outdated+erythrocytes+and+description+of+the+candle+jar+method%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Parasitology%22%5BJournal%5D)">Plasmodium falciparum in culture: use of outdated erythrocytes and description of the candle jar method.</a> J. Parasitology. 63 (5), 883-886 (1977).</li>
<li>Guzman, I. Y., Francis, S. E., Oksman, A., Smith, C. E., Duffin, K. L., Goldberg, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Order+and+specificity+of+the+Plasmodium+falciparum+hemoglobin+degradation+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Order and specificity of the Plasmodium falciparum hemoglobin degradation pathway.</a> J. Clin. Invest. 93, 1602-1608 (1994).</li>
<li>Rosenthal, P. J., Meshnick, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemoglobin+catabolism+and+iron+utilization+by+malaria+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biochem.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Hemoglobin catabolism and iron utilization by malaria parasites.</a> Mol. Biochem. Parasitol. 83 (2), 131-139 (1996).</li>
<li>Fitch, C. D., Chevli, R., Kanjananggulpan, P., Dutta, P., Chevli, K., Chou, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+ferriprotoporphyrin+IX+is+a+lytic+agent%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Intracellular ferriprotoporphyrin IX is a lytic agent.</a> Blood. 62 (6), 1165-1168 (1983).</li>
<li>Hebbel, R. P., Eaton, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathobiology+of+heme+interaction+with+the+erythrocyte+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Hematol%22%5BJournal%5D)">Pathobiology of heme interaction with the erythrocyte membrane.</a> Semin. Hematol. 26 (2), 136-149 (1989).</li>
<li>Egan, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Haemozoin+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biochem.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Haemozoin formation.</a> Mol. Biochem. Parasitol. 157 (2), 127-136 (2008).</li>
<li>Hempelmann, E., Marques, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+malaria+pigment+from+Plasmodium+falciparum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Toxicol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Analysis of malaria pigment from Plasmodium falciparum.</a> J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 32 (1), 25-30 (1994).</li>
<li>Fitch, C. D., Kanjananggulpan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+state+of+ferriprotoporphyrin+IX+in+malaria+pigment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">The state of ferriprotoporphyrin IX in malaria pigment.</a> J. Biol. Chem. 262 (32), 15552-15555 (1987).</li>
<li>Moore, L. R., Fujioka, H., Williams, P. S., Chalmers, J. J., Grimberg, B., Zimmerman, P. A., Zborowski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemoglobin+degradation+in+malaria-infected+erythrocytes+determined+from+live+cell+magnetophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Hemoglobin degradation in malaria-infected erythrocytes determined from live cell magnetophoresis.</a> FASEB J. 20 (6), 747-749 (2006).</li>
<li>Spadafora, C., Gerena, L., Kopydlowski, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+in+vitro+invasive+capabilities+of+Plasmodium+falciparum+schizonts+isolated+by+Percoll+gradient+or+using+magnetic+based+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Malaria+J%22%5BJournal%5D)">Comparison of the in vitro invasive capabilities of Plasmodium falciparum schizonts isolated by Percoll gradient or using magnetic based separation.</a> Malaria J. 10, 96(2011).</li>
<li>Jackson, K. E., Spielmann, T., Hanssen, E., Adisa, A., Separovic, F., Dixon, M. W., Trenholme, K. R., Hawthorne, P. L., Gardiner, D. L., Gilberger, T., Tilley, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+permeabilization+of+the+host+cell+membrane+of+Plasmodium+falciparum-infected+red+blood+cells+with+streptolysin+O+and+equinatoxin+II%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+J%22%5BJournal%5D)">Selective permeabilization of the host cell membrane of Plasmodium falciparum-infected red blood cells with streptolysin O and equinatoxin II.</a> Biochem. J. 403, 167-175 (2007).</li>
<li>Goodyer, I. D., Johnson, J., Eisenthal, R., Hayes, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+of+mature-stage+Plasmodium+falciparum+by+gelatine+flotation%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Trop.+Med.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Purification of mature-stage Plasmodium falciparum by gelatine flotation.</a> Ann. Trop. Med. Parasitol. 88 (2), 209-211 (1994).</li>
<li>Pasvol, G., Wilson, R. J., Smalley, M. E., Brown, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+viable+schizont-infected+red+cells+of+Plasmodium+falciparum+from+human+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Trop.+Med.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">Separation of viable schizont-infected red cells of Plasmodium falciparum from human blood.</a> Ann. Trop. Med. Parasitol. 72, 87-88 (1978).</li>
<li>Pertoft, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fractionation+of+cells+and+subcellular+particles+with+Percoll%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biochem.+Biophys.+Methods%22%5BJournal%5D)">Fractionation of cells and subcellular particles with Percoll.</a> J. Biochem. Biophys. Methods. 44 (1-2), 1-30 (2000).</li>
<li>Paul, F., Roath, S., Melville, D., Warhurst, D. C., Osisanya, J. O. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+malaria-infected+erythrocytes+from+whole+blood%3A+use+of+a+selective+high-gradient+magnetic+separation+technique%5BTitle%5D)+AND+%22The+Lancet%22%5BJournal%5D)">Separation of malaria-infected erythrocytes from whole blood: use of a selective high-gradient magnetic separation technique.</a> The Lancet. 318, 70-71 (1981).</li>
<li>Trang, D. T., Huy, N. T., Kariu, T., Tajima, K., Kamei, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((One-step+concentration+of+malarial+parasite-infected+red+blood+cells+and+removal+of+contaminating+white+blood+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Malar.+J%22%5BJournal%5D)">One-step concentration of malarial parasite-infected red blood cells and removal of contaminating white blood cells.</a> Malar. J. 3, 7(2004).</li>
<li>Nillni, E. A., Londner, M. V., Spira, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+separation+of+uninfected+erythrocytes+from+those+infected+with+Plasmodium+berghei+and+for+isolation+of+artificially+released+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Z.+Parasitenkd%22%5BJournal%5D)">A simple method for separation of uninfected erythrocytes from those infected with Plasmodium berghei and for isolation of artificially released parasites.</a> Z. Parasitenkd. 64, 279-284 (1981).</li>
</ol>

We hebben niets te onthullen.

In vitro culturen van de malariaparasiet P. falciparum vertonen een beperkte parasitemie, meer dan de helft van de geïnfecteerde rode bloedcellen op het hoogste punt van proliferatie cultuur. Voor de meeste onderzoek experimenten is het wenselijk om alleen met de geïnfecteerde erythrocyten. Daartoe een scheidingstechniek moet de cultuur splitsen naar infectie. Bruikbare methoden omvatten het gebruik van streptolysine O te permeabiliseren en Lyze de geïnfecteerde RBC 11 en een reeks variaties...

<table border="1"><tbody><tr><td> Naam van het reagens </td><td> Vennootschap </td><td> Catalogusnummer </td><td> Opmerkingen (optioneel) </td></tr><tr><td> RPMI 1640 Hepes aangepast </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> R4130 </td><td> Aangevuld met 10% menselijk serum, 2% glucose en 0,2% natriumbicarbonaat </td></tr><tr><td> MidiMACS Separator </td><td> MACS Miltenyi Biotec </td><td> 130-042-302 </td><td></td></tr><tr><td> MACS MultiStand </td><td> MACS Miltenyi Biotec </td><td> 130-042-303 </td><td></td></tr><tr><td> LS Columns </td><td> MACS Miltenyi Biotec </td><td> 130-042-401 </td><td></td></tr><tr><td> Hemacytometer </td><td> Grafco </td><td> Grafco Neubauer kamer </td><td> Kan worden gevonden door vele andere leveranciers </td></tr></tbody></table>

scheiding van<em&gt; plasmodium falciparum</em&gt; late stage-geïnfecteerde erythrocyten met magnetische middelen

Separation of Plasmodium falciparum Late Stage-infected Erythrocytes by Magnetic Means

In tegenstelling tot andere soorten Plasmodium, P. falciparum kunnen worden gekweekt in het laboratorium, dat de studie 1 vergemakkelijkt. Terwijl de behaalde parasitemie bereikt u de ≈ 40%-grens, de onderzoeker houdt meestal het percentage op ongeveer 10%. In veel gevallen moet de parasiet bevattende rode bloedcellen (RBC&#39;s) van de geïnfecteerde die, isoleren de te verrijken met een bepaald experiment gaan. Toen P. falciparum infecteert de erytrocyten, de parasiet degradeert en voert uit hemoglobine 2, 3. Wel moet de parasiet maken met een zeer giftige ijzerhoudende haem groep 4, 5. De parasiet ontsnapt toxiciteit door het transformeren van de haem in een inert kristalpolymeer genoemd haemozoin 6, 7. Dit ijzerhoudende molecule opgeslagen in de vacuole voedsel en metaal in een oxidatieve toestand heeft die verschilt van die in haem 8. De ferri toestand van ijzer in de haemozoin haar een paramagnetische eigenschap afwezig is in niet-geïnfecteerde erythrocyten. Als de binnenvallende parasiet volwassen is, de inhoud van haemozoin verhoogt ook 9, die nog meer paramagnetisme schenkt de laatste stadia van de P. falciparum in de erytrocyt. Op basis van deze paramagnetische eigendom, de laatste stadia van de P. falciparum geïnfecteerde rode bloedcellen worden gescheiden door het passeren van de cultuur door een kolom met magnetische korrels. Deze kralen magnetisch worden wanneer de kolommen met hen op een magneethouder. Geïnfecteerde erytrocyten, vanwege hun paramagnetisme, wordt dan ingesloten in de kolom, terwijl de doorstroom bevat, voor het grootste deel, geïnfecteerde erytrocyten en die welke vroege stadia van de parasiet. Hier beschrijven we de methodologie voor de bevolking van laat stadium parasieten verrijken met magnetische kolommen, die een goede parasiet levensvatbaarheid 10 onderhoudt.Nadat deze procedure kan de losse cultuur worden teruggestuurd naar een incubator om de resterende parasieten blijven groeien.

In figuur 2 is de cultuur door het magnetische kolom weergegeven, voor (A) en na de procedure (B). Een tot twee geïnfecteerde erythrocyten worden meestal gezien op een 100X vergroting veld zoals getoond in figuur 2 met de pijlen om geïnfecteerde erythrocyten in figuur 2A. In een typische procedure, beginnend met een cultuur op 5% parasitemie (figuur 2A), het uitvoeren van deze procedure produceert gewoonlijk erythrocyte...

De paramagnetische eigenschappen van hemozoin gebruikt in latere stadia van isolaat<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt;-Geïnfecteerde rode bloedcellen groeien in cultuur. De methode is eenvoudig en snel en heeft geen invloed op de latere invasieve mogelijkheden van de parasieten.

Scheiding van<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt; Late Stage-geïnfecteerde erythrocyten met magnetische middelen

Unlike other Plasmodium species, P. falciparum can be cultured in the lab, which facilitates its study 1. While the parasitemia achieved can reach the ...

Plasmodium Falciparum is een menselijke parasiet die uitsluitend in rode bloedcellen leeft. Tijdens de groei gebruikt de parasiet de moleculen in de erytrocyten als voedingsbron, en aangezien de ijzermoleculen in het hemoglobine toxisch zouden zijn voor de parasiet, worden deze opgenomen en geplaatst in een inert kristal genaamd hemin. Dit hemo-kristal verleent een zekere paramagnetische eigenschap aan de parasieten.Deze paramagnetische eigenschap wordt gebruikt om geïnfecteerde erytrocyten te scheiden van diegene die geen parasiet bevatten. Met behulp van een magneet kan een cultuur met een zeer laag percentage parasieten worden geconcentreerd om bijna honderd procent parasitemie te bereiken. Deze scheiding van geïnfecteerde en niet-geïnfecteerde rode bloedcellen is zeer wenselijk in een reeks experimenten waarbij een specifiek kenmerk van de parasiet bestudeerd moet worden zonder de storende factoren van overtollige erytrocyten.De hier getoonde methodologie is snel, eenvoudig en ongevaarlijk voor de parasiet. Vandaag beschrijven we de procedure voor de scheiding van de schizonten-stadia van Plasmodium falciparum. Deze multifunctionele apparatuur moet voor elke isolatie worden gea

separation-plasmodium-falciparum-late-stage-infected-erythrocytes

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Selectie van Plasmodium falciparum Parasieten voor Cytoadhesion Human Brain endotheelcellen

Analyse van de Single-cell gentranscriptie door RNA TL<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridisatie (FISH)

Een<em&gt; In vitro</em&gt; Co-infectie model om te onderzoeken<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt;-HIV-1 Interacties in menselijke primaire monocyt-afgeleide immuuncellen

Deze werkwijze onderzoekt de bloedplaatjes-gemedieerde samenklontering...

A Simple Protocol voor bloedplaatjes-gemedieerde Klontvormende van<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt;-Geïnfecteerde erytrocyten in een Slechte Setting Resource

This video demonstrates a flow cytometry-based phagocytosis assay involving labeled and opsonized Plasmodium falciparum-infected erythrocytes by monocytes. Flow cytometry identifies fluorescence in monocytes, confirming the successful identification of opsonized erythrocytes through phagocytosis.

An Assay for Quantifying Antibody-Mediated Phagocytosis of Parasite-Infected Erythrocytes

Het meten van antilichaam-functie is de sleutel tot het begrijpen van immuniteit tegen Plasmodium falciparum malaria. Deze methode beschrijft de zuivering van levensvatbare merozoïeten en meting van opsonisatie-afhankelijke fagocytose door flowcytometrie.

High Yield Zuivering van<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt; Merozoïeten Voor gebruik in opsoniserende antilichaamassays

Menselijk microRNA transloceert van gastheer erytrocyten naar Plasmodium falciparum parasieten. Hier worden de technieken beschreven die worden gebruikt om synthetische microRNA's in gastheer erytrocyten te transfecteren en alle RNA's uit P. falciparum te isoleren. Daarnaast zal dit artikel een methode voor polysoomisolatie in P. falciparum beschrijven om de ribosomale bezetting en translationele potentieel van parasiet transcripten te bepalen.

Methoden om de regulerende rol van kleine RNA&#39;s en Ribosomaal bezetting van Onderzoek<em&gt; Plasmodium falciparum</em

Hier presenteren we een protocol voor de detectie en kwantificering van Plasmodium falciparum in besmette waterige rode bloedcellen, met behulp van een verzwakte totale reflectie infrared spectrometer en multivariate data-analyse.

Detectie en kwantificering van Plasmodium falciparum in waterige rode bloedcellen door verzwakt totale reflectie infraroodspectroscopie en Multivariate Data-analyse

In dit werk beschrijven we protocollen voor het onderzoek naar de rol van extracellulaire blaasjes (EVs) uitgebracht door Plasmodium falciparum geïnfecteerd erytrocyten. In het bijzonder richten we ons op de interacties van EVW met endotheliale cellen.

Beoordeling van extracellulaire vesikel functie tijdens Malaria infectie

Het algemene doel van dit protocol is om instructies te geven over het meten van de capaciteit van antilichamen aanwezig in sera of plasma van individuen, van nature blootgesteld aan Plasmodium falciparum infectie, om fagocytose van de parasiet-geïnfecteerde erytrocyten (IEs) te opsoniseren en induceren.

Het meten van natuurlijk verworven phagocytose-inducerende antilichamen tegen Plasmodium falciparum parasieten door een Flow Cytometrie-Gebaseerde Test

Met behulp van gefocusseerde ionenbundelfrezen om glasvochtlamellen op het rooster te produceren uit bevroren biologische monsters voor cryo-elektronentomografie.

Lamellen bereiden van glasvochtbiologische monsters met behulp van een dual-beam scanning elektronenmicroscoop voor cryo-elektronentomografie

Leer magnetische scheiding van Plasmodium falciparum-geïnfecteerde erytrocyten met behulp van de paramagnetische eigenschappen van hemozoïne. Deze efficiënte methode behoudt de invasieve capaciteit van de parasieten.

Scheiding van

Meer video's verkennen