Name: Live cell imaging van Alphaherpes Virus Anterograad Transport en Spread (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 31 s
Description: Leer live cell imaging van alphaherpes virus transport en verspreiding in primaire neuronale culturen. Deze methode maakt real-time visualisatie van fluorescente virale deeltjes mogelijk voor virologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

LWE en RK worden ondersteund door de US National Institutes of Health beurzen R37 NS033506-16 en R01 NS060699-03. MPT werd ondersteund door een American Cancer Society Postdoctoraal Research Fellowship (PF-10-057-01-MPC). Het advies en de kennis van dr. Matthew Lyman en Dr Oren Kobiler waren instrumentaal in het ontwerpen van de microscoop configuratie en live cell imaging methoden. Ook dank aan Neal Barlow en Brian T. Kain van Nikon Instruments voor hun technische bijstand bij de aanschaf, installatie en performance van de microscoop.

Sectie 1 - Environmental Control Voorwaarden voor live-cell fluorescentie microscopie <ol><li> 30 min voorafgaand aan de beeldvorming experiment verbinden en de opwarming van de microscoop podium top incubator. <ol><li> Schakel de microscoop, verzonden en epifluorescerende lichtbronnen, en geautomatiseerde hardware controles. Open de microscoop besturingssoftware, NOS Elements, om verbinding met de microscoop en beginnen met het koelen van de EM-CCD-camera. </li><li> Hechten Lens warmere passende doelstelling (ofwel 60X of 100X olie-immersie). Opmerking: Selecteer objectief op basis van het type experiment. De 100X differentieel interferentie contrast (DIC) is het beste voor het bijhouden van anterograde transport virion assemblages, terwijl de 60x fase objectief is geschikt voor anterograde verspreiding visualiseren. Lagere vergroting, hoeft niet-olie-immersie doelstellingen vereisen een lens warmer als ze geen direct contact maken met het monster. </li><li> Bevestig podium top incubator op het gemotoriseerde fase van mi<html> croscope. Zorgen voor de juiste inzetstuk dat zal houden het monster op zijn plaats is. Bevestig de bevochtigde lucht lijn van de incubator controle aan de ingangspoort van de podium top incubator. </li><li> Schakel de incubator en de lens warmere controles en temperatuur instellingen aanpassen om eerder geverifieerde voorwaarden specifiek voor de objectieve en monster in beeld wordt gebracht (zie bespreking). </li><li> Open de regelklep op de 5% CO 2/95% atmosferische tank om de CO 2 aangevuld toevoeren om het podium top incubator. De stroomsnelheid moet tussen 60 en 80 ml gas per minuut. Hogere snelheden zal resulteren in een uitgebreide steekproef uitdroging ondanks het bevochtigen kamer. </li></ol></li><li> Voeg lens olie aan objectief en onmiddellijk plaats de cultuur die wordt afgebeeld in het stadium top incubator. </li><li> Laat evenwicht van de temperatuur in de cultuur ten minste 10 minuten. Een uur heeft de voorkeur, vooral voor overnachting beeldvorming in hoofdstuk 3 beschreven. </li></ol>ve_title &quot;&gt; Deel 2 - Real-time beeldvorming van Anterograde Virion Transport Events Protocol <ol><li> Zes tot acht uur vóór beeldvorming infecteren van een 35 mm dekglaasje-onderste schaal van volwassen, gedissocieerd SCG neuronen met 1 x 10 6 plaque vormende eenheden van het virus van belang (zie tabel 1 bijvoorbeeld virussen) volgens de in Taylor et beschreven werkwijze al.. 2012a 11. Als het testen van meer dan een virus, off-set inentingen door 30-60 min om voor beeldvorming van opeenvolgende monsters op hetzelfde tijdstip na infectie. </li><li> Plaats schotel in podium top incubator voor een minimum van 10 minuten voordat u een experiment. Terwijl de temperatuur evenwicht houdt, wordt het brandvlak verschuiven en zal een negatieve elke imaging experimenten beïnvloeden. </li><li> Met behulp van doorvallend licht en het oculair van de microscoop, het vinden van een neuronale cel lichaam dat een duidelijk geïsoleerd axonale extensie heeft. U kunt ook de juiste fluorescentie verlichting met een cel die detectie vindentafel hoeveelheden fluorescerende eiwitten. Het is belangrijk om de blootstelling van het monster te beperken tot fluorescentieverlichting, bij deze stap en de volgende stappen, door licht geïnduceerde celschade en bleken van fluorescerende eiwitten. </li><li> Verzwakken fluorescentieverlichting de intensiteit van excitatielicht waaraan de cellen worden blootgesteld verminderen. Engage licht verzachtende Neutral Density (ND) filters in de fluorescentie verlichting lichtpad. Voor films langer dan 1 min, minimaal ND4 duren moeten worden gebruikt om te voorkomen fotoblekingsreactie van fluorescente eiwitten en uitgebreide foto-beschadiging van axons. Sterk fluorescerende structuren kan doorgaans worden gevisualiseerd met een ND8 filter op zijn plaats. </li><li> Met behulp van de microscoop software (Figuur 2 en aanvullende Movie 1A), schakelt het licht-pad naar de EM-CCD-camera. </li><li> Bepaal een optimale beeldvorming en-condities voor elk fluorescerende kanaal. <ol><li> Start een live-beeld-venster met behulp van de &quot;Play&quot; knop. &lt;/ Li&gt; <li> Bepaal de optimale belichtingsinstellingen camera voor elke fluorescerend eiwit. Neem niet meer dan 300 msec per kanaal als motionele aberraties van snel bewegende virion structuren zal optreden. Maken gebruik van de EM winst van de camera om een ​​instelling van 300 (door de fabrikant geadviseerde maximale winst), om de blootstelling te minimaliseren en te verbeteren detectie van dim-signalen. Juiste belichting tijden moeten produceren een beeld met een lage achtergrond intensiteit en hoge specifieke signalen. </li></ol></li><li> Na het instellen van vorderingen en het vinden van een goed gedefinieerde regio axon, moet de software worden geconfigureerd om automatische beeldopname te voeren. Stoppen met de live-imaging venster om monster te voorkomen bleken. <ol><li> In de NOS Elements-software, selecteer de 6D - Definieer / Run Experiment toepassing van de &quot;Applications&quot; drop down menu. </li><li> In het venster ND overname, klikt u op het tabblad Time die de frequentie van het beeld overname zal bepalen. Stel de Interval op &quot;No Delay&quot; en de Duration tot 5 min. The software zal dan verwerven afbeelding frames op de hoogste frequentie mogelijk voor de duur van 5 minuten. </li><li> Selecteer het tabblad &quot;Lambda&quot;, die de selectie van de vooraf ingestelde hardware-configuraties gebruikt voor meerdere fluorescerende afbeelding overname stelt. Klik op het eerste vak en in de daarop volgende drop down menu om een ​​geschikte hardwareconfiguratie selecteren. Herhaal voor alle fluorescente proteïnen te beelden. </li><li> Zorg ervoor dat de lipjes voor &quot;XY posities&quot;, &quot;Z-serie&quot; en &quot;Grote Afbeelding&quot; zijn de-geselecteerd. </li><li> Boven de tabbladen, selecteert u het vakje &quot;Save to File&quot; om afbeeldingen automatisch tijdens acquisitie op de harde schijf op te slaan. De locatie en de bestandsnaam van het experiment output bestand configureren. Als opeenvolgende experimenten worden uitgevoerd, zal de software een volgnummer toe te voegen aan het einde van de aangewezen bestandsnaam. </li><li> Zodra alle tabbladen zijn geselecteerd. Initiëren het experiment door te klikken op de &quot;Run-nu&quot; knop. </li><li> Optimaliseren van het beeld overname prijs via belichtingsinstellingen en image grootte. Met behulp van een klein gebied van het beeld-staat gebied zal vaak versnellen kader overname tarieven. Definieer de regio van belang het gebruik van de ROI instrument in NIS-Elements, het selecteren van een gebied tussen de 25% en 50% van het totale beeldgebied. Als alternatief zal kortere belichtingstijden verhogen kader overname tarieven, maar vermindert de kwaliteit van het signaal (zie bespreking). </li></ol></li></ol> Sectie 3 - Overnight Time-lapse beeldvorming van Anterograde Spread Evenementen <ol><li> Vier uur voor de beeldvorming, infecteren van een gecompartimenteerde neuronale cultuur gebouwd op een 35 mm μ-Dish. Inoculeer neuronale cellichamen met 1 x 10 6 plaque vormende eenheden van het virus van belang (zie tabel 1 bijvoorbeeld virussen) volgens de in Taylor et al. beschreven werkwijze. 2012b 12. </li><li> Plaats voorzichtig cultuur schotel op het podium top incubator. Zorg ervoor dat de positie van het doel wordt ingesteld op de zijkant van de schotel. Langzaam breng de doelstelling in beeld, ensurING de doelstelling niet opdrijven in de steekproef. Zodra het veld focus is geïdentificeerd, langzaam het doel in het midden van de schotel, in de buurt van de interne barrière markeren van de interne kant van het axon compartiment. Bij het verplaatsen, zorgen voor de focus diepte wordt onderhouden en te vermijden duwen tot in de steekproef. Doorbuiging van het plastic oppervlak van de doelstelling zal de axonen en de kunststof beschadigen. </li><li> Voeg ongeveer 2 ml warm (~ 37 ° C) fosfaat gebufferde zoutoplossing om de kweekschaal buitenzijde van de teflon ring. Dit omgeeft de neuronale kweek met een ring van PBS te proeven uitdroging minimaliseren en thermische isolatie. </li><li> Laat u de temperatuur voorafgaande evenwicht voor een minimum van 1 uur aan de start van geautomatiseerde beeldacquisitie (3.8). Stappen 3.5 tot 3.7 kan worden ingesteld gedurende deze tijd. </li><li> Beperk de intensiteit van de verlichting tot het laagst mogelijke niveau door deel te nemen alle grijsfilters. Dit zal frequent beeldaanwinst over lange perioden zonder bovenmatige foto-schade. Het verminderen van verlichting zal resulteren in lage signaal, waarbij langere blootstellingen (zie bespreking). </li><li> Gebruik historische belichtingsinstellingen of voorafgaand aan de experimentele set-up genereren een parallelle gerecht van geïnfecteerde epitheliale cellen die het doelwit fluorescerende eiwitten om de belichting vast te stellen, zoals beschreven in paragraaf 2.5. </li><li> Na het instellen van de posities voor de nodige kanalen, is het tijd om de software voor automatische beeldopname configureren. Stoppen met de live-imaging venster te proeven bleken te beperken. <ol><li> In Elements software (Figuur 2 en aanvullende movie 2), selecteert u de 6D - Definieer / Run Experiment toepassing van de &quot;Applications&quot; drop-down menu om het venster ND Overname brengen. </li><li> ND-venster Acquisition, klikt u op het tabblad Tijd. Stel de Interval op &quot;5 min&quot;. Stel de Looptijd tot 20 uur. De lussen veld wordt automatisch berekend voor het aantal herhalingen het program zal presteren. </li><li> Selecteer het tabblad &quot;Lambda&quot;. Klik op het eerste vak en in de daarop volgende drop down menu selecteert u de juiste lambda configuratie voor fase contrast. Herhaal voor de volgende posities, de juiste configuraties voor elke fluorescente proteïne te beelden selecteren. </li><li> Selecteer de &quot;Grote Afbeelding&quot; tab, waarin de parameters van meerdere beelden worden gecombineerd in een groter gezichtsveld bepaalt. Een flinke gebied bestaat uit 5 x 2 beelden met behulp van een 7% stiksels overlap. Dit zal zorgen voor het maximale aantal cellen per positie af te beelden zonder impact op de frequentie van de beeldopname. Ook deselecteer de checkbox voor &quot;Close Active Shutter tijdens Stage beweging&quot;. Deze optie verhoogt de snelheid van de overname door geen luiken tussen de afbeeldingen sluiten. </li><li> Selecteer de tab &quot;XY posities&quot;, naar meerdere posities die sequentieel worden afgebeeld in parallel in de loop van de nacht film identificeren. Selecteer posities die het middelpunt po definiërenint voor elke grote beeldgebied. Selecteer 6-8 afbeelding posities in de steekproef. Een goed imago gebied zal kleine clusters van cellen in nauwe appositie om duidelijk omschreven axonen. De cellen moeten niet worden gestapeld bovenop elkaar en axon bundeling moet worden geminimaliseerd. Het punt van aandacht is de kern van de cel. Plaats het doel zodat een duidelijke kernenvelop gezien de meerderheid van de cellen. </li><li> Zorg ervoor dat het tabblad &quot;Z-serie&quot; is geselecteerd. </li><li> Configureren van de auto-save functie, zoals hierboven in paragraaf 2.6.5 beschreven. </li><li> Test de belichting en positie-instellingen door te klikken op &quot;1 keer loop&quot;. Evalueer de resulterende beelden voor doorvallend licht verlichting, focus en framing. Als focus is verschoven, reset de focus voor elke positie onder het tabblad XY. Wacht 10 minuten en herhaal deze stap totdat nadruk is stabiel. </li><li> Nadat alle instellingen zijn gecontroleerd en getest, inleiding van de geautomatiseerde experiment door te klikken op de &quot;Run Now&quot; knop. </li></ol></li&gt; </ol> Sectie 4 - Image Processing en Export Gegevens exporteren <ol><li> Datasets verkregen bij live-cell imaging van het vervoer en het uitrijden evenementen moeten van de NOS Elements-software worden geëxporteerd naar veelgebruikte bestandstypen voor later gebruik in presentaties en publicaties (aanvullende Movie 3). Om te exporteren in NIS Elements films opent u de bijbehorende grondstoffen. Nd2 bestand en selecteer de &quot;split-component&quot; oog op de gewenste fluorescerende kanalen visualiseren. Afspelen van het bestand op een geschikte snelheid; 5 frames per seconde is een goed uitgangspunt voor de visualisatie van snel transport. </li><li> Onder andere een tijdstempel om een ​​real-time klok tijdens het afspelen van films vertegenwoordigen. Klik met de rechtermuisknop op de afbeelding en selecteer, Voeg ND-informatie. Een digitale teller verschijnt in de linker bovenhoek. <ol><li> Bewerk de tijdstempel om informatie weer te geven. Klik met de rechtermuisknop op de teller en selecteer Bewerken ND-informatie. In de daarop volgende pop-up venster, bewerkt u de tekst aan de verbeelding weer te gevenng parameters die van belang zijn. Wijzig lettertype, kleur en grootte voor de duidelijkheid. </li></ol></li><li> Ga naar het menu &quot;Bewerken&quot; en vinden &quot;Create view snapshot&quot; of druk op de toets &quot;x&quot;. Deze opdracht opent het &quot;snapshot view&quot; venster. Selecteer &quot;gelden voor alle frames&quot; om een ​​8-bits, RGB, export-klaar bestand met de tl-kanalen uit de hele film te genereren. </li><li> Opslaan als een. Avi-bestand voor cross-platform compatibiliteit. Stel weergave snelheid 200 msec per frame. De. Avi-bestanden gegenereerd door NIS Elementen kunnen vervolgens verder worden gecomprimeerd met andere conversie software in het gewenste bestandstype. </li></ol>

<ol><li>Johnson, D. C., Baines, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpesviruses+remodel+host+membranes+for+virus+egress%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews.+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Herpesviruses remodel host membranes for virus egress.</a> Nature reviews. Microbiology. 9 (5), 382-394 (2011).</li>
<li>Mettenleiter, T. C., Klupp, B. G., Granzow, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpesvirus+assembly%3A+a+tale+of+two+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Microbiology%22%5BJournal%5D)">Herpesvirus assembly: a tale of two membranes.</a> Current Opinion in Microbiology. 9 (4), 423-429 (2006).</li>
<li>Saksena, M. M., Wakisaka, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+virus+type+1+accumulation%2C+envelopment%2C+and+exit+in+growth+cones+and+varicosities+in+mid-distal+regions+of+axons%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex virus type 1 accumulation, envelopment, and exit in growth cones and varicosities in mid-distal regions of axons.</a> Journal of Virology. 80 (7), 3592-3606 (2006).</li>
<li>Snyder, A., Wisner, T. W., Johnson, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+Simplex+Virus+Capsids+Are+Transported+in+Neuronal+Axons+without+an+Envelope+Containing+the+Viral+Glycoproteins%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Herpes Simplex Virus Capsids Are Transported in Neuronal Axons without an Envelope Containing the Viral Glycoproteins.</a> Journal of Virology. 80 (22), 11165-11177 (2006).</li>
<li>Snyder, A., Polcicova, K., Johnson, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+virus+gE%2FgI+and+US9+proteins+promote+transport+of+both+capsids+and+virion+glycoproteins+in+neuronal+axons%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex virus gE/gI and US9 proteins promote transport of both capsids and virion glycoproteins in neuronal axons.</a> Journal of Virology. 82 (21), 10613-10624 (2008).</li>
<li>Tomishima, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+conserved+alpha-herpesvirus+protein+necessary+for+axonal+localization+of+viral+membrane+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">A conserved alpha-herpesvirus protein necessary for axonal localization of viral membrane proteins.</a> The Journal of Cell Biology. 154 (4), 741-752 (2001).</li>
<li>Schnell, U., Dijk, F., Sjollema, K. A., Giepmans, B. N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunolabeling+artifacts+and+the+need+for+live-cell+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Immunolabeling artifacts and the need for live-cell imaging.</a> Nature Methods. 9 (2), 152-158 (2012).</li>
<li>Kratchmarov, R., Taylor, M. P., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+the+case%3A+Married+versus+Separate+models+of+alphaherpes+virus+anterograde+transport+in+axons%5BTitle%5D)+AND+%22Reviews+in+Medical+Virology%22%5BJournal%5D)">Making the case: Married versus Separate models of alphaherpes virus anterograde transport in axons.</a> Reviews in Medical Virology. 22 (6), 378-391 (2012).</li>
<li>Antinone, S. E., Smith, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+modes+of+herpesvirus+trafficking+in+neurons%3A+membrane+acquisition+directs+motion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Two modes of herpesvirus trafficking in neurons: membrane acquisition directs motion.</a> Journal of Virology. 80 (22), 11235-11240 (2006).</li>
<li>Del Rio, T., Ch'ng, T. H., Flood, E. A., Gross, S. P., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heterogeneity+of+a+fluorescent+tegument+component+in+single+pseudorabies+virus+virions+and+enveloped+axonal+assemblies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Heterogeneity of a fluorescent tegument component in single pseudorabies virus virions and enveloped axonal assemblies.</a> Journal of Virology. 79 (7), 3903-3919 (2005).</li>
<li>Taylor, M. P., Kramer, T., Lyman, M. G., Kratchmarov, R., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+an+alphaherpesvirus+membrane+protein+that+is+essential+for+anterograde+axonal+spread+of+infection+in+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22mBio%22%5BJournal%5D)">Visualization of an alphaherpesvirus membrane protein that is essential for anterograde axonal spread of infection in neurons.</a> mBio. 3 (2), (2012).</li>
<li>Taylor, M. P., Kobiler, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alphaherpesvirus+axon-to-cell+spread+involves+limited+virion+transmission%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Alphaherpesvirus axon-to-cell spread involves limited virion transmission.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. , (2012).</li>
<li>Kobiler, O., Brodersen, P., Taylor, M. P., Ludmir, E. B., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpesvirus+replication+compartments+originate+with+single+incoming+viral+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22mBio%22%5BJournal%5D)">Herpesvirus replication compartments originate with single incoming viral genomes.</a> mBio. 2 (6), (2011).</li>
<li>Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guide+to+choosing+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">A guide to choosing fluorescent proteins.</a> Nature Methods. 2 (12), 905-909 (2005).</li>
<li>Snapp, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+proteins%3A+a+cell+biologist%27s+user+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Fluorescent proteins: a cell biologist's user guide.</a> Trends in Cell Biology. 19 (11), 649-655 (2009).</li>
<li>Ch'ng, T. H., Flood, E. A., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culturing+primary+and+transformed+neuronal+cells+for+studying+pseudorabies+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+molecular+biology+%28Clifton%2C+N.J.%29%22%5BJournal%5D)">Culturing primary and transformed neuronal cells for studying pseudorabies virus infection.</a> Methods in molecular biology (Clifton, N.J.). , 292-299 (2005).</li>
<li>Curanovic, D., Ch'ng, T. H., Szpara, M., Enquist, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Compartmented+neuron+cultures+for+directional+infection+by+alpha+herpesviruses%5BTitle%5D)+AND+%22Current+protocols+in+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Compartmented neuron cultures for directional infection by alpha herpesviruses.</a> Current protocols in cell biology. Chapter 26 (Unit 26.4), (2009).</li>
<li>Zareen, N., Greene, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+for+culturing+sympathetic+neurons+from+rat+superior+cervical+ganglia+%28SCG%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Protocol for culturing sympathetic neurons from rat superior cervical ganglia (SCG).</a> J. Vis. Exp. (23), e988(2009).</li>
<li>Ch'ng, T. H., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuron-to-Cell+Spread+of+Pseudorabies+Virus+in+a+Compartmented+Neuronal+Culture+System%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Neuron-to-Cell Spread of Pseudorabies Virus in a Compartmented Neuronal Culture System.</a> Journal of Virology. 79 (17), 10875-10889 (2005).</li>
<li>Campenot, R. B., Lund, K., Mok, S. -A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+compartmented+cultures+of+rat+sympathetic+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Production of compartmented cultures of rat sympathetic neurons.</a> Nature Protocols. 4 (12), 1869-1887 (2009).</li>
<li>Kramer, T., Greco, T. M., Taylor, M. P., Ambrosini, A. E., Cristea, I. M., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinesin-3+Mediates+Axonal+Sorting+and+Directional+Transport+of+Alphaherpesvirus+Particles+in+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+%26+Microbe%22%5BJournal%5D)">Kinesin-3 Mediates Axonal Sorting and Directional Transport of Alphaherpesvirus Particles in Neurons.</a> Cell Host & Microbe. 12 (6), 806-814 (2012).</li>
<li>Smith, G. A., Gross, S. P., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpesviruses+use+bidirectional+fast-axonal+transport+to+spread+in+sensory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Herpesviruses use bidirectional fast-axonal transport to spread in sensory neurons.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (6), 3466(2001).</li>
<li>Kramer, T., Enquist, L. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alphaherpesvirus+Infection+Disrupts+Mitochondrial+Transport+in+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Host+%26+Microbe%22%5BJournal%5D)">Alphaherpesvirus Infection Disrupts Mitochondrial Transport in Neurons.</a> Cell Host & Microbe. 11 (5), 504-514 (2012).</li>
<li>Swedlow, J. R., Platani, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+cell+imaging+using+wide-field+microscopy+and+deconvolution%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Structure+and+Function%22%5BJournal%5D)">Live cell imaging using wide-field microscopy and deconvolution.</a> Cell Structure and Function. 27 (5), 335-341 (2002).</li>
<li>Kaech, S., Huang, C. F., Banker, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-Term+High-Resolution+Imaging+of+Developing+Hippocampal+Neurons+in+Culture%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Short-Term High-Resolution Imaging of Developing Hippocampal Neurons in Culture.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2012 (3), (2012).</li>
<li>Frigault, M. M., Lacoste, J., Swift, J. L., Brown, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live-cell+microscopy+-+tips+and+tools%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Science%22%5BJournal%5D)">Live-cell microscopy - tips and tools.</a> Journal of Cell Science. 122 (6), 753-767 (2009).</li>
</ol>

Wij hebben niets te onthullen.

Het doel van live cell imaging is het observeren van biologische processen zoals ze zich voordoen zonder significante verandering door de handeling van observatie. Dit doel wordt bereikt door het optimaliseren van drie variabelen: milieubeheer, snelheid van weergave en fluorescentieverlichting. Deze inter-afhankelijke variabelen moeten worden afgewogen om levensvatbare beeldvorming voorwaarden te bereiken. De protocollen gepresenteerd gebruik van specifieke voorwaarden aan de representatieve resultaten te produceren. We...

Infectie van het perifere zenuwstelsel (PNS) van alphaherpes virussen zoals herpes simplex virus (HSV) -1, -2, en pseudorabies virus (PRV) omvat verschillende complexe en sterk gereguleerde stappen in de virale levenscyclus. Vervoer binnen neuronen van de PNS is cruciaal tijdens de gebeurtenissen van zowel de primaire virale infectie en daaropvolgende inter-host-spread. De moleculaire mechanismen die twee componenten van de virale levenscyclus moduleren; gericht transport van virale assemblages weg van cellichamen binnen axonen (anterograde transport) en de daaropvolgende overdracht van virusdeeltjes aan gevoelige cellen (anterograde spread) zijn van belang om inzicht te herpesvirus pathogenese. Het transport en wegtrekken van virale deeltjes in neuronen afhankelijk montage van een volwassen infectieus virion 1,2. Eerder vaste assays, zoals immunofluorescentie (IF) en elektronenmicroscopie (EM), werden gebruikt om het deeltje samenstel staat en prot bestuderenein interacties in verband met het vervoer virion en verspreiden 3-6. Maar het dynamische karakter van het vervoer virionen en experimentele artefacten geïntroduceerd door chemische fixatie overtuigde de interpretatie van vaste beelden 7,8. Recent zijn een aantal virale fluorescerende fusie-eiwitten is beschreven voor HSV en PRV die verwaarloosbaar effect op proteïne functie. Green Fluorescent Protein (GFP) en rood fluorescerende eiwitten (mCherry of mRFP) fluoroforen worden vaak gekoppeld aan beeldvorming van twee van de drie structurele componenten van een rijpe virion toe: capside, tegument en glycoproteïne 9-11. Live cell imaging van anterograde vervoer met behulp van dual-gelabelde virussen visualiseert de assemblage staat van virale deeltjes tijdens het transport. Soortgelijke fluorofoor expressie virale stammen worden gebruikt om het aantal en de verscheidenheid van virale genomen na verspreiding 12,13 visualiseren. De eigenschappen van de fluorescerende eiwitten (beoordeeld in 14,15) grote invloedhet vermogen om virale of cellulaire samenstellingen visualiseren. De intrinsieke eigenschappen van de fluorescente eiwit, waaronder zelf-interacties en stabiliteit moet worden beschouwd bij het ontwerpen en testen van nieuwe proteïne fusies voor het behoud van wildtype functionaliteit. In combinatie met fluorescerende eiwitfusies, twee goed gekarakteriseerd in vitro celkweek systemen worden ingezet voor live cell imaging van herpes virus infectie: los 16 en gecompartimenteerd 17 (Figuur 1A) rat superieure cervicale ganglia (SCG) neuronen. In beide systemen, embryonale SCG&#39;s worden ontleed, gedissocieerd om eencellige organismen, en vergulde voor in vitro kweken van 18. SCG neuronen zijn onderdeel van het autonome zenuwstelsel en kunnen gemakkelijk worden gekweekt en gedifferentieerd neuronale groeifactor (NGF) tot een volwassen gepolariseerde toestand ex vivo. Gedissocieerd SCG neuronen vormen een uitgebreid netwerk van axonen die f maaktof visualisatie van virale deeltjes onderworpen worden anterograde transport 6. Verzuilde SCG culturen bieden fluïdische isolement van de neuronale cel lichaam (S compartiment) en distale axon-uiteinden (N compartiment) 19. Een aantal gedetailleerde protocollen voor de aanleg en het gebruik van verzuilde neuronen met behulp van originele 20 of gemodificeerde Campenot kamers 17 eerder openbaar werden gemaakt. Vloeibare isolatie zorgt voor selectieve infectie van neuronale cellichamen en detectie van nieuwe virusdeeltjes na vervoer naar afgelegen axon-uiteinden. Plating epitheelcellen over de uiteinden voorafgaand aan infectie biedt ontvangende cellen voor verspreiding van de virale infectie. Er zijn vele essentiële elementen van belang voor alle live cell imaging experimenten, maar het meest relevant zijn voor onze protocollen zijn: automatische beeldopname, tl verlichting, snelheid van de beeldvorming, en milieu-controle. Voor alle grafische experimenten, gebruiken weeen omgekeerde, geautomatiseerd epifluorescentie microscoop verlichting (Figuur 1B). De microscoop is opgebouwd rond de Nikon Eclipse Ti basis en maakt gebruik van een aantal computergestuurde gemotoriseerde systemen om snel opnieuw configureren van de microscoop tijdens automatische beeldopname. Voor fluorescentie verlichting, maken we gebruik van een breed-spectrum kwik booglamp die verzwakt met grijsfilters langs het pad verlichting kan zijn. Excitatiefilters beperken het spectrum van TL-verlichting en wanneer deze is gekoppeld met multi-pass dichroïsch spiegels en fluorescentie-emissie filters specifieke fluorescerende verbindingen visualiseren. De excitatie en emissie filters zijn gemonteerd in onafhankelijke, snel schakelen filter wielen te snel opeenvolgende acquisitie van verschillende fluorescentie kanalen mogelijk. De snelheid van de beeldopname wordt verder versterkt met een gevoelige en snelle EM-CCD-camera, handig voor de detectie van lage intensiteit signalen en korte imago gelezen keer. Milieu-controle op de Microscope wordt bereikt met een fase top verhit incubator en een objectieflens kachel monsters handhaven bij verhoogde temperaturen terwijl een bevochtigde en CO2 verrijkte atmosfeer wordt doorgegeven aan de incubator. De microscoop wordt bewaard in een verduisterde ruimte met omgevingstemperatuur onderhouden dicht bij 25 ° C en buiten licht geminimaliseerd met verduisterende gordijnen voor alle ramen. De volgende protocollen beschrijven het gebruik van dit systeem voor anterograde transport en verspreiding assays. Een aantal alternatieven te controleren voor de variabelen van live cell imaging. De besturing van microscopie instellingen handmatig of via automatische systemen afhankelijk eigen software uitgevoerd. Fluorescentie verlichting kan worden bereikt met halogeen, LED of laser bronnen. De snelheid van beeldvorming wordt gewijzigd door de snelheid van de filter schakeling en de tijd om het signaal met de gepaarde detectiesysteem visualiseren. Milieu-controle kan met gespecialiseerde hardware worden gerealiseerd op de microscope fase behuizing van alle of een deel van de microscoop in een verwarmde en bevochtigde box, of door verhogen van de temperatuur van de ruimte waar microscopie wordt uitgevoerd. Elk van deze alternatieven heeft voor-en nadelen van kosten en prestatie. In de daaropvolgende protocol, we detail het gebruik van beeldvorming van levende cellen snel anterograde vervoer en anterograde verspreiding van virussen alphaherpes studie door het gebruik van recombinante virale stammen. Real-time live cell imaging visualiseert capside, tegument, en / of glycoproteïne co-lokalisatie op dynamische structuren ondergaan vervoer binnen axonen 11. Overnachting timelapse beeldvorming van verzuilde neuronale culturen visualiseert axonale virion uitstappen en infectie van gevoelige cellen 12. De protocollen die hier gepresenteerd zijn geoptimaliseerd voor gebruik met onze specifieke imaging systeem, maar worden gepresenteerd in brede zin ten opzichte van de vier elementen van live cell imaging. In de discussie die wezal nader enkele optimalisatie die nodig zijn voor een succesvolle experimenten is.

<table><tbody><tr><td>35 mm glass bottom culture dish</td><td>MatTek Corporation; Ashland, MA</td><td>P35G-1.5-20-C</td><td></td></tr><tr><td>35 mm &mu;-Dish </td><td>Ibidi USA LLC, Verona, WI</td><td>81156</td><td></td></tr><tr><td>Microscope body </td><td>Nikon Instruments Inc.</td><td>Nikon Eclipse Ti</td><td></td></tr><tr><td>Motorized microscope X-Y stage</td><td>Prior Scientific; Rockland, MA</td><td>H117 ProScan Flat Top</td><td></td></tr><tr><td>Motorized filter wheels</td><td>Prior Scientific</td><td>HF110 10 position filter wheel</td><td></td></tr><tr><td>Fluorescent illumination source </td><td>Lumen Dynamics; Mississauga, Ontario Canada</td><td>X-Cite 120Q</td><td></td></tr><tr><td>Multi-band Fluorescence filter sets</td><td>Chroma Technology Corp.; Bellows Falls, VT</td><td>89000 Sedat Quad - ET 89006 ECFP/EYFP/mCherry - ET</td><td></td></tr><tr><td>EM-CCD camera</td><td>Andor Technology USA; South Windsor, CT</td><td>iXon3 897</td><td></td></tr><tr><td>Chamlide stage top environmental incubator</td><td>Live Cell Instruments; Seoul, South Korea</td><td>TC-L-10</td><td></td></tr><tr><td>Objective lens heater</td><td>Bioptecs; Butler, PA</td><td>150803 Controller 150819-12-08 Heater</td><td></td></tr><tr><td>Analysis software</td><td>Nikon Instruments Inc.; Melville, NY</td><td>NIS Elements</td><td></td></tr></tbody></table>

live cell imaging van alphaherpes virus anterograad transport en spread

Live Cell Imaging of Alphaherpes Virus Anterograde Transport and Spread

Vooruitgang in levende cellen fluorescentie microscopie technieken, alsmede de constructie van recombinante virale stammen die fluorescerende fusie-eiwitten tot expressie zijn real-time visualisatie van transport en verspreiding van alphaherpes virusinfectie van neuronen geactiveerd. Het nut van nieuwe fluorescente fusie-eiwitten om virale membraan, tegument en capsids, in combinatie met live cell imaging, geïdentificeerd virusdeeltje assemblages ondergaan vervoer binnen axonen. Dergelijk gereedschap zijn met succes toegepast voor analyse van cel-cel verspreiding van virale deeltjes naar het aantal en de diversiteit van virions overgedragen tussen cellen te kwantificeren. Belangrijk is dat de technieken van live cell imaging van anterograde transport en verspreiding produceren een schat aan informatie, waaronder deeltjes-transport snelheden, verdelingen van deeltjes, en temporele analyses van eiwit lokalisatie. Naast klassieke virale genetische technieken, zijn deze methodieken verstrekt kritische inzichtenin belangrijke mechanistische vragen. In dit artikel beschrijven we in detail de beeldvormende methoden die werden ontwikkeld om de fundamentele vragen van alphaherpes virus transport en de verspreiding beantwoorden.

Anterograde Transport De toepassing van dit protocol om infecties van gedissocieerde SCG culturen met PRV 348, is een recombinante PRV stam die GFP-US9 en GM-mCherry membraan fusie-eiwitten, de visualisatie van de anterograde vervoer van virusdeeltjes (figuur 3 en aanvullende Movie 4) vergemakkelijkt. Incorporatie van deze fusie-eiwitten in de virale deeltjes resulteert in hun detectie op transport puncta, en de eerder genoemde beeldvorming voorwaarden minimali...

Live cell imaging van alphaherpes virusinfecties maakt analyse van de dynamische gebeurtenissen van gerichte transport en intercellulaire verspreiding. Hier presenteren we methodieken die recombinante virale stammen die fluorescerende fusie-eiwitten tot visualisatie van virale assemblages tijdens infectie van primaire neuronen te faciliteren.

Live cell imaging van Alphaherpes Virus Anterograad Transport en Spread

Advances in live cell fluorescence microscopy  techniques, as well as the construction of recombinant viral strains that  express fluorescent fusion ...

Het algemene doel van deze procedure is het visualiseren van het transport en de verspreiding van het herpesvirus met behulp van fluorescente eiwitfusies in primaire neuronale culturen. Dit wordt bereikt door eerst een monsterincubatie in te stellen bij fysiologisch relevante temperaturen op een microscoop die in staat is tot snel schakelen van fluorescente verlichting. In de tweede stap worden de parameters van de fluorescentiebeeldvorming ingesteld om cellulaire fotobeschadiging te beperken terwijl er bruikbare gegevens worden verzameld.Vervolgens wordt er ofwel een sequentiële acquisitie van de fluorescentiekanalen uitgevoerd, of een multi-positie acquisitie. In de laatste stap worden multi-image tiled frames verworven. De gegevens worden geanalyseerd en geherformatteerd voor presentatie en publicatie.Uiteindelijk wordt deze methode van live-cell imaging gebruikt om de beweging van fluorescente virusdeeltjes binnen neuronen te volgen en om de infectie te monitoren terwijl deze zich tussen cellen verspreidt. Deze methode kan inzicht bieden in het transport en de verspreiding van het herpesvirus in neuronen. Het kan ook worden toegepast op andere dynamische gebeurtenissen in de celbiologie en microbiologie, zoals de endocytische opname van deeltjes of celmigratie.Verbind vóór elk beeldvormingsexperiment de incubator op het microscoopstadium en begin deze op te warmen. Zet na 30 minuten de microscoop, de getransmitteerde en epifluorescentie lichtbronnen en de automatische hardwarebediening aan. Open vervolgens NIS elements, de software voor de aansturing van de microscoop, om verbinding te maken met de microscoop.Hier wordt een screenshot van een standaard gebruikersinterface in NIS elements weergegeven. De afspeel- en stopknoppen besturen het live-beeldvenster dat de huidige hardwareconfiguraties voor beeldvorming weergeeft, evenals wat er op dat moment wordt gefotografeerd. In het bovenste paneel bevindt zich een reeks optische configuraties die de vooraf ingestelde hardware-instellingen implementeren om de microscoop te configureren voor trans-illuminatie of fluorescentiedetectie.De camera-aansturing en belichtingsinstellingen maken het mogelijk om de cameradetectie te configureren om de beeldkwaliteit en snelheid te optimaliseren. Alle experimenten worden gecoördineerd met behulp van de ND-acquisitiebediening. Bevestig vervolgens een lensverwarmer aan het juiste olie-immersieobjectief en bevestig daarna de stage-top incubator aan de gemotoriseerde tafel van de microscoop.Zorg ervoor dat de juiste insert waarin het monster wordt geplaatst is gemonteerd, en sluit vervolgens de bevochtigde luchtleiding van de incubatorregeling aan op de inlaatpoort van de incubator bovenop de tafel. Zet de regelaars van de incubator en de lensverwarmers aan en stel de temperatuurinstellingen in op de eerder geverifieerde condities die specifiek zijn voor het objectief en het monster dat wordt afgebeeld. Open tot slot de regelklep van de tank met 5% carbon dioxide 95% atmosferische lucht om de incubator bovenop de tafel te voorzien van lucht aangevuld met carbon dioxide.Om enter a grade virion transportgebeurtenissen in real-time te beelden, plaatst u eerst een kweekschaal met geïnfecteerde neuronen gedurende minimaal 10 minuten in de stage top incubator voordat u het experiment start. Zoek vervolgens met behulp van doorgelaten licht en het oculair van de microscoop naar een neuronale cellichaam met een duidelijk geïsoleerde axonale extensie.Het vinden van beeldbare gebieden in de neurale cultuur is het moeilijkste deel van deze procedure. Succes wordt gewaarborgd door meerdere culturen aan te leggen voor het geval dat er sprake is van slechte celgroei of infectie, of door de cultuur fysiek te verstoren tijdens de beeldvorming. Gebruik nu de microscoopsoftware om het lichtpad naar de EM CCD-camera te schakelen en klik vervolgens op de afspeelknop om een live-beeldvenster te openen.Nadat de optimale camera-belichtingsinstellingen voor elke set fluorescerende eiwitten zijn bepaald, wordt de elektronmultiplicatieversterking van de camera ingesteld op 300. Dit is om de belichtingstijd te minimaliseren en de detectie van zwakke signalen te verbeteren. Sluit het live-imagingvenster om bleaching van het monster te voorkomen.Stel vervolgens, nadat de belichtingstijden zijn ingesteld en een duidelijk gedefinieerd gebied van het axon in NIS-elementen is gevonden, de software in voor sequentiële beeldacquisitie. Open het vervolgkeuzemenu van de applicaties en selecteer de applicatie "six D define run experiment". Klik in het ND-acquisitievenster op het tabblad tijd om de frequentie van de beeldacquisitie te bepalen.Stel het interval in op geen vertraging en de duur op vijf minuten. Klik nu op het tabblad Lambda om de vooraf ingestelde hardwareconfiguraties te selecteren die worden gebruikt voor de acquisitie van meerdere fluorescentiebeelden. Klik op het eerste vak en selecteer vervolgens in de daaropvolgende vervolgkeuzemenu's een geschikte hardwareconfiguratie.Selecteer het vakje 'opslaan naar bestand' en configureer de locatie en de bestandsnaam van het uitvoerbestand van het experiment. Zodra al deze parameters zijn ingesteld, klikt u op de knop 'nu uitvoeren' om het experiment te starten. De snelheid van de beeldacquisitie wordt geoptimaliseerd via de belichtingsinstellingen en de grootte van het opgenomen beeld.Gebruik de tool voor het selecteren van het interessegebied (region of interest) in NIS elements om het interessegebied te definiëren. Selecteer een gebied tussen 25 en 50% van het totale beeldveld om overnight time-lapse imaging van enteragrade verspreidingsgebeurtenissen uit te voeren. Plaats eerst voorzichtig de kweekschaal in de incubator op het objecttafelblad.Nadat is vastgesteld dat de objectief zich aan de zijkant van de schaal bevindt, wordt de objectief langzaam in focus gebracht, waarbij erop wordt gelet dat deze niet tegen het monster aan duwt. Zodra het focusveld is geïdentificeerd, wordt de objectief langzaam naar het centrum van de schaal bewogen, nabij de interne barrière die de binnenzijde van het axoncompartiment markeert, terwijl de focusdiepte behouden blijft en wordt voorkomen dat de objectief tegen het monster aan duwt. Omring daarna de neuronen in de kweekschaal met ongeveer twee milliliter PBS van 37 °C buiten de Teflon ring om uitdroging van het monster te minimaliseren en thermische isolatie te bieden.Schakel vervolgens alle neutrale dichtheidsfilters in om de intensiteit van de verlichting te beperken tot het laagst mogelijke niveau, zodat frequente beeldacquisitie over lange perioden mogelijk is zonder overmatige fotobeschadiging. Klik in het ND-acquisitievenster op het tabblad 'large image' en selecteer vervolgens een gebied bestaande uit vijf bij twee beelden. Gebruik een stitching-overlap van 7% om sequentieel meerdere posities parallel in beeld te brengen.Select tijdens de nachtelijke opname het tabblad XY-posities. Definieer vervolgens de posities die het middelpunt vormen voor elk groot beeldgebied. Het focuspunt moet de celkern zijn; positioneer het objectief zodanig dat voor de meeste cellen een duidelijk gedefinieerde kernenvelope zichtbaar is.Klik vervolgens eenmalig op loop om de belichtings- en positie-instellingen te testen en evalueer de resulterende beelden op basis van doorgelaten licht, verlichting, focus en inkadering. Nadat alle instellingen zijn geverifieerd en getest, start u het geautomatiseerde experiment door op de knop run now te klikken om de films te exporteren die tijdens de live cell imaging zijn verkregen. Open eerst het betreffende raw ND two-bestand in NIS elements en selecteer de split component-weergave.Speel het bestand af op een geschikte snelheid om de gewenste fluorescentiekanalen te visualiseren. Vijf frames per seconde is een goed startpunt voor de visualisatie van snel transport; voeg een tijdstempel toe om een real-time klok weer te geven tijdens het afspelen van de film. Klik met de rechtermuisknop op de afbeelding en selecteer ADD ND information.Er verschijnt een digitale teller in de linkerbovenhoek; klik met de rechtermuisknop op de teller en selecteer 'edit ND information' om het tijdstempel te bewerken. Pas in het volgende pop-upvenster de tekst aan om de relevante beeldvormingsparameters weer te geven. Pas de letterkleur en -grootte van de tekst aan voor de duidelijkheid.Ga vervolgens naar het bewerkingsmenu en selecteer 'Create view snapshot' om het venster voor view snapshots te openen om een exportklaar 8-bits RGB-bestand te genereren dat de fluorescentiekanalen van de gehele film bevat; selecteer 'apply to all frames'. Sla het bestand ten slotte op in het AVI-formaat voor crossplatformcompatibiliteit en stel de afspeelsnelheid in op 200 milliseconden per frame. In deze fasecontrastafbeelding wordt een representatieve, mature kweek van gedissocieerde superieure cervicale ganglia (SCG) getoond die is gebruikt voor beeldvorming van intergrade viriontransport; neuronen geïnfecteerd met pseudo-rabiësvirus (PRV 3 48) brengen GFP-S9 en GMM-cherry membraanfusie-eiwitten tot expressie.In deze figuur wordt representatieve live-cell imaging van SCG-axonen acht uur na infectie met P RV 3 48 gedemonstreerd; anterograde transporterende structuren binnen distale axonen worden gevisualiseerd in twee fluorescentiekanalen, GFP en mCherry. Een anterograde transporterende structuur, zoals aangegeven door de witte pijlen, beweegt zich voort binnen het axon. De twee fluorescerende eiwitten zijn ruimtelijk verschoven vanwege de sequentiële acquisitie van de fluorescentiekanalen en de snelle beweging van de virale structuren.De toepassing van dit protocol op infecties van gedissocieerde SCG-culturen met PRV 3 48 heeft de visualisatie van het anterograde transport van Vons gefaciliteerd. De incorporatie van deze fusie-eiwitten in virale deeltjes resulteert in hun detectie op transporterende puncta, zoals gevisualiseerd door de bewegende fluorescerende stippen. De bovengenoemde beeldgevingscondities minimaliseren de offset van elke fluor op een bewegend deeltje tijdens het schakelen van filters.Door gebruik te maken van snel schakelende filterwielen en gepaarde multipass dichroïsche spiegels is snelle sequentiële acquisitie van twee of meer fluorescentiekanalen mogelijk met snelheden tot 0,8 frames per seconde in een beeldvenster van drie minuten. Er worden gewoonlijk talrijke transporterende Punta waargenomen en er worden snel grote steekproeven gegenereerd voor colocalisatieanalyses. Hier wordt een schema getoond van het gecompartimenteerde culturesysteem afgebeeld in deze afbeelding, met SCG-neuronen geplaatst in het linkercompartiment en met axonale projecties die onder de interne barrières door uitstrekken naar het uiterst rechtse compartiment.De volgende afbeeldingen zijn geselecteerd uit een grote, betegelde time-lapse film van virionoverdracht van PRV 4 27-geïnfecteerde axonen naar ontvangende epitheelcellen. In dit eerste paneel zijn de samengevoegde YFP- en RFP-fluorescentiebeelden van de overdracht op een bepaald tijdstip na infectie te zien. Er wordt getoond wanneer de ontvangende cellen beginnen met het tot expressie brengen van membraangebonden YFP- en VP 26 MRFP-fusie-eiwitten.Het witte kader markeert een gebied van de ontvangende epitheelcellen dat infecterende capside-assemblages bevat. Hier wordt hetzelfde gebied als in de vorige afbeelding getoond, bekeken via uitsluitend het RFP-kanaal. De doorgetrokken witte lijn geeft de schematische weergave van de celomtrek aan.De gearceerde witte lijnen geven de celkernen aan en de blauwe lijnen omlijnen de axonen. In dit tweede paneel worden alleen de YFP- en RFP-kanalen samen getoond. Let op het grote aantal MRFP-puncta dat geassocieerd is met de axonbanen.Deze cellen zijn onlangs geïnfecteerd en brengen geen van beide fusie-eiwitten tot expressie. Geïnfecteerde cellen kunnen retrospectief worden gevolgd om de fluorescerende capsiden te visualiseren die de virale infectie hebben geïnitieerd. Deze individuele cellen kunnen uit het grote frame worden geïsoleerd en worden gevolgd zonder een significant verlies aan detail.Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om te onthouden dat levend-celmicroscopie invloed heeft op het biologische proces dat wordt geobserveerd. Echter, een zorgvuldige optimalisatie van deze protocollen maakt visualisatie mogelijk zonder dat er wijzigingen optreden.

live-cell-imaging-alphaherpes-virus-anterograde-transport

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Live-cell imaging is met name van nut bij het bestuderen van de dynamiek van organel mensenhandel. Hier beschrijven we een protocol voor live beeldvorming van dense-core blaasjes in gekweekte neuronen met behulp van wide-field fluorescentie microscopie. Dit protocol is flexibel en kan worden aangepast aan image andere organellen, zoals mitochondriën, endosomen, en peroxisomen.

Live-Imaging van dicht-core Blaasjes in het jeugdwerk Gekweekte hippocampale neuronen

Dit gevisualiseerd experiment is een gids voor het gebruik van een fluorescerende moleculaire kloon van HIV voor live confocale imaging experimenten.

Visualiseren Cel-cel Overdracht van hiv met behulp van TL-Klonen van HIV en Live confocale microscopie

Cellulaire processen zoals celmigratie van oudsher bestudeerd op twee-dimensionale, stijve kunststof oppervlakken. Dit rapport beschrijft een techniek voor het direct visualiseren eiwit lokalisatie en het analyseren van eiwitten dynamiek in cellen migreren in een meer fysiologisch relevante, drie-dimensionale matrix.

Live-cell imaging van het migreren van cellen die fluorescent-gemerkte eiwitten in een drie-dimensionale Matrix

We beschrijven een protocol voor real-time videoimaging van neuronale migratie in de muis voorhersenen. De migratie van viraal gemerkte of geënte neuronale precursors opgenomen in acute levende plakjes met breedveld fluorescerende beeldvorming met een relatief snelle verwerving interval de verschillende fasen van celmigratie, zoals de duur van de stationaire en migratiefasen en de snelheid van bestuderen migratie.

Time-lapse imaging van neuroblast migratie in Acute Schijfjes van de volwassen muis voorhersenen

This video demonstrates a method for monitoring infected cell protein 0, ICP0 trafficking in herpes simplex virus-1 infection. Post-de novo synthesis, ICP0 translocates to the nucleus, later moving to the cytoplasm during infection progression. Immunofluorescence microscopy reveals and analyzes the protein's subcellular localization, offering insights into its trafficking across infection phases.

An Immunofluorescence Technique for Viral Protein Localization in Infected Cells

Neuroblast migratie is een fundamentele gebeurtenis in postnatale neurogenese. We beschrijven een protocol voor efficiëntie-etikettering van neuroblasts door in vivo postnatale elektroporatie en de daaropvolgende visualisatie van hun migratie met behulp van time-lapse imaging van acute hersenen plakjes. Wij beschikken over een beschrijving van de kwantitatieve analyse van neuroblast dynamiek door video-tracking.

In vivo Postnatale Elektroporatie en time-lapse imaging van neuroblast Migratie in Muis Acute Brain Slices

We beschrijven een protocol om de radiale mobiliteit van niet-aderente immuuncellen in vitro te monitoren met behulp van een celsedimentatie manifold/slide apparaat. Celmigratie wordt gevolgd op monolagen van tumorcellen of op extracellulaire matrix-eiwitten. Onderzoek door licht- en fluorescentiemicroscopie maakt observatie van celmobiliteit en cytotoxische functionaliteit mogelijk.

Radial Mobiliteit en cytotoxische functie van retrovirale replicerende vector getransduceerde, niet-klevende Alloresponsive T-lymfocyten

ICP0 ondergaat nucleaire-naar-cytoplasmatische translocatie tijdens HSV-1 infectie. Het moleculaire mechanisme van deze gebeurtenis is niet bekend. Hier beschrijven we het gebruik van de confocal microscoop als een hulpmiddel om te kwantificeren ICP0 beweging in HSV-1 infectie, die de basis legt voor het kwantitatief ICP0 translocatie in toekomstige mechanistische studies te analyseren.

Temporele analyse van de nucleaire-naar-cytoplasmatische translocatie van een Herpes Simplex Virus 1 eiwit door immunefluorescentie confocale microscopie

Hier beschrijven we een in vitro Live-imaging methode om intracellulair transport van organellen en de handel in plasma membraan eiwitten in muriene astrocyten te visualiseren. Dit protocol presenteert ook een analysemethode voor het vrachtvervoer en kinetiek.

Visualisering en analyse van intracellulair transport van organellen en andere Cargo's in astrocyten

Hier laten we zien hoe transfectie van primaire hippocampale knaagdierneuronen kan worden gecombineerd met confocale beeldvorming met levende cellen om pathologische eiwitgeïnduceerde effecten op axonaal transport te analyseren en mechanistische routes te identificeren die deze effecten mediëren.

Beeldvorming van levende cellen gebruiken om de effecten van pathologische eiwitten op axonaal transport in primaire hippocampusneuronen te meten

Endocytisch en retrograde transport van eiwitten van het plasmamembraan naar het trans-Golgi-netwerk is essentieel voor het handhaven van de membraanhomeostase en het reguleren van signalering. Hier beschrijven we een methode om endocytisch transport van transmembraan ladingeiwitten in beeld te brengen en te kwantificeren door middel van live-cel microscopie met behulp van afgeleide anti-GFP nanobodies in HeLa-cellen.

Beeldvorming van levende cellen van endocytisch transport met behulp van gefunctionaliseerde nanobodies in gekweekte cellen

Leer live cell imaging van alphaherpes virus transport en verspreiding in primaire neuronale culturen. Deze methode maakt real-time visualisatie van fluorescente virale deeltjes mogelijk voor virologisch onderzoek.

Live cell imaging van Alphaherpes Virus Anterograad Transport en Spread

Meer video's verkennen