18 november 2013
Neurale stamcellen geoogst uit de volwassen hersenen worden steeds gebruikt in toepassingen, variërend van het fundamenteel onderzoek van de ontwikkeling van het zenuwstelsel aan het verkennen van potentiële klinische toepassingen in de regeneratieve geneeskunde. Dit maakt strenge controle op de isolatie en kweekomstandigheden gebruikt om deze cellen cruciaal voor experimentele resultaten goed groeien.
Het algemene doel van het volgende experiment is om neurale stamcellenculturen te genereren uit verschillende delen van de volwassen knaagdierhersenen. Dit wordt bereikt door weefsel te verzamelen van een gebied van belang om de aanwezigheid en potentieel van neurale stamcellen te onderzoeken. Als tweede stap, verwerk het weefsel tot een cellensuspensie voor het plateren als een monolaagcultuur.
Vervolgens gebruiken we gedefinieerde kweekcondities om de neurale stamcellen selectief te vermenigvuldigen, waarbij hun potentieel voor zelfvernieuwing wordt gevalideerd. In vitro resultaten laten zien dat de neurale stamcellen multipotent zijn op basis van hun differentiatiepotentieel en hoe verschillende factoren hun zelfvernieuwing en lot kunnen beïnvloeden. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van belangrijke vragen in de neurowetenschappen en regeneratieve geneeskunde, zoals waar endogene neurostamcellen verblijven en hoe ze te manipuleren.
We dachten eerst aan deze techniek toen we signalenreductiepaden ontdekten. Dat stelde ons in staat om zowel putatieve endogene neurostamcellen te identificeren als ook om hun aantal te reguleren. Dus we pasten deze kennis toe om robuuste culturen van deze cellen uit verschillende delen van de hersenen te vestigen.
Bestudeer hun eigenschappen en stel de vraag, zijn het inderdaad stamcellen? Goede voorbereiding van de kweekschotel is cruciaal twee dagen voorafgaand aan de geplande dissectie, bedek de schalen met poly L ornithine op 75 microgram per milliliter. Incubeer vervolgens de platen 's nachts, aspergeer de poly L ornithine ine en was elke put twee keer met drie milliliter PBS gedurende vijf minuten per wasbeurt.
De platen kunnen vervolgens maximaal drie weken in een incubator worden bewaard. Na het verwijderen van de laatste wasbeurt, voeg fibro nin toe, verdund één op 250 in PBS door voorzichtig te pipetteren. Wees voorzichtig om de oplossing niet te overmatig te roeren. Incubeer vervolgens de platen 's nachts op de dag van de dissectie.
Aspergeer de fibronectine en was de schalen twee keer met PBS. Breng de platen met de laatste PBS-was terug in de incubator en wacht op het gedissocieerde weefsel. Ongebruikte platen kunnen maximaal een week in de incubator worden bewaard, maar laat ze niet uitdrogen en schud ze niet.
De demonstratie van dit protocol is geschaald naar drie volwassen ratten. Zorg er eerst voor dat het hersensectieblok op ijs wordt gekoeld voorafgaand aan het euthaniseren van de eerste rat. Bereid vervolgens een 15 milliliter conische buis op ijs voor met vijf milliliter N twee medium en basis FGF.
Na het verwijderen van de hersenen van een geëuthanasieerde rat, plaats de hersenen in een 10 centimeter petrischaal met ijskoud PBS. Breng vervolgens de hersenen over naar een tweede schaal met PBS zonder resterend haar of bloed. Plaats nu de hersenen in het gekoelde sectieblok en voeg een nieuwe schone scheermes toe aan het blok in de nabijheid van het gebied van belang waaruit cellen zullen worden gegenereerd.
Voeg vervolgens een tweede schone scheermes toe. Drie millimeter naast de eerste scheermes. Til voorzichtig de bladen uit het blok en neem het gewenste sectie mee.
Laat de sectie van het mes zweven door het in PBS te dompelen. Haal nu het gebied van belang binnen met nummer vijf tang. In dit voorbeeld bevat de sectie de voorste commisuur. Zeker.
Verzamel de sectie in de 15 milliliter conische buis met vijf milliliter N twee medium met basis FGF. Vervolgens wordt het volume van de oplossing gereduceerd tot één tot twee milliliter. Vervolgens, in een celkweekhood, dompel een 1 milliliter pipettentip naar de bodem van de kegel en gebruik ongeveer 20 stromingen van oplossing om het weefsel mechanisch te dissociëren.
Stop de tation wanneer de oplossing homogeen wordt en laat het een paar minuten staan zodat grotere niet-geassocieerde weefsels naar de bodem zullen bezinken. Breng nu de homogene supernatant zonder enige weefselklompjes over in een kegelvormige buis met 8,5 milliliter gesupplementeerd en twee media. Meng de inhoud van de buis en houd een voorbereide zesklap klaar.
Welplaat. Verwijder de PBS uit de putten en voeg vervolgens drie milliliter celmengsel per put toe aan drie putten gedurende de volgende 10 tot 14 dagen van cultiveren. Vervang het medium elke dag met vers gesupplementeerd N twee, beginnend 24 uur na het plateren elke dag, voeg een verse volume supplementen toe in N twee.
Medium tot het medium dat al op de cellen staat. Zorgvuldigheid van de mediaomstandigheden is essentieel om de cellen ongedifferentieerd te houden en hun expansie mogelijk te maken. Na de eerste mediumverversing bleef een grote hoeveelheid cellulaire puinhopen achter samen met bloedvaten.
Echter, gedurende de volgende paar dagen werden kolonies van duidelijk proliferende stamcellen zichtbaar. Ook aanwezig waren meer langwerpige spindelvormige celpopulaties. Dit zijn geen neurale stamcellen en werden uiteindelijk overgenomen naarmate de neurale stamcellen zich vermenigvuldigden.
In de loop van de volgende twee weken groeiden de neurale stamcellen dichter totdat ze conflueren bereikten. Deze culturen kleurden positief voor een aantal stamcelmarkers, inclusief SOX twee, hesi en nest. Dit geeft vertrouwen dat de celpopulaties die zijn geselecteerd en uitgebreid inderdaad neurale stamcellen zijn.
Verdere bevestiging kwam nadat FGF uit het medium werd teruggetrokken, wat de cellen in staat stelde om zich 10 dagen te differentiëren in neuronen, astrocyten en alle cendracyten. Om differentiatie te induceren. Vervang het gesupplementeerde N twee medium door ongesupplementeerd N twee medium en kweek de cellen op deze manier gedurende 10 dagen, waarbij het N twee elke 48 uur wordt vervangen. Na 10 dagen, aspergeer het medium en fixeer de cellen met twee milliliter 4% para formaldehyde per put gedurende 20 minuten.
Was de fixeermiddel uit met drie milliliter PBS twee keer gedurende vijf minuten per wasbeurt. Na het aspergeren van de tweede wasbeurt, voeg twee milliliter
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie richt zich op het genereren van neurale stamcelculturen uit verschillende regio's van het brein van volwassen knaagdieren. Het proces omvat het oogsten van weefsel, het maken van een celsuspensie en het gebruik van specifieke kweekcondities om neurale stamcellen te propageren, waarbij hun potentieel voor zelfvernieuwing wordt gevalideerd.
Het opzetten van gedefinieerde neurale stamcelculturen uit verschillende hersengebieden maakt mechanistische risicoreductie mogelijk bij de targetvalidatie voor neurodegeneratieve en regeneratieve therapieën. Deze aanpak ondersteunt het voorspellend vertrouwen door multipotente populaties te isoleren en hun differentiatiepotentieel onder gecontroleerde omstandigheden te beoordelen. De methode faciliteert translationele continuïteit van ontdekking naar preklinische evaluatie door een reproduceerbaar systeem te bieden voor farmacologische en genetische analyse.
De methode kan worden geïntegreerd in vroege discovery-workflows door een gevalideerd neuraal stamcelplatform te bieden voor studies naar target-engagement en het werkingsmechanisme voorafgaand aan de lead-optimalisatie.