Name: Detectie van het genoom en de transcripties van een persistente DNA Virus in neuronale weefsels door Fluorescent In situ Hybridisatie Gecombineerd met Immunokleuring (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-23T14:45:00.000+00:00
Duration: 13 min 22 s
Description: Leer fluorescent in situ hybridisatie om het herpes simplex virus type 1-genoom te detecteren in neuronale weefsels van muizen. Deze methode visualiseert virale genomen en RNA-producten op enkelvoudige-celniveau.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken N. Sawtell (Cincinnati Children&#39;s Hospital Medical Center, Cincinnati, Ohio, USA), S. Efstathiou (Universiteit van Cambridge, UK) en James Hill (LSU Health Sciences Center, New Orleans, USA) voor het verstrekken van monsters van HSV-1 geïnfecteerde muizen en konijnen, respectievelijk, en voor reagentia; H. Masumoto (Kazusa DNA Research Institute, Chiba, Japan) en S. Khochbin (Institut Albert Bonniot, Grenoble, Frankrijk) voor nuttige discussies. Dit werk werd gefinancierd door subsidies van het Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS) (ATIP programma, PL, http://www.cnrs.fr), de Franse Nationale Research Agency (ANR) (ANR-05-MIIM- 008-01, CENTROLAT, <a href="http://www.agencenationale-recherche.fr">http://www.agencenationale-recherche.fr</a> ), de FINOVI Foundation ( <a href="http://www.finovi.org/:fr:start">http://www.finovi.org/:fr:start</a> ), de Labex DEVweCAN (ANR-10-LabX-61 ) van de Universite de Lyon, in het programma &quot;Investissements d&#39;Avenir &quot;(ANR-11-IDEX-0007) geëxploiteerd door de ANR ( <a href="http://www.agence-nationale-recherche.fr">http://www.agence-nationale-recherche.fr</a> ), l&#39;Association pour la Recherche contre le Cancer (ARC-7979 en ARC- 4910, <a href="http://www.arc-cancer.net">http://www.arc-cancer.net</a> ), la Ligue Nationale Contre le Cancer (LNCC, <a href="http://www.ligue-cancer.net">http://www.ligue-cancer.net</a> ) en Inca (EPIPRO programma, <a href="http://www.e-cancer.fr">http://www.e -cancer.fr</a> ). FC en PL zijn CNRS onderzoekers.

De auteurs verklaren geen concurrerende financiële belangen.

De hier beschreven protocol maakt de detectie van HSV-1 genoom latent in neuronen van muizen neuronaal weefsel secties. Onze kennis van de trajecten reguleren virale genexpressie beperkt door een gebrek aan methode HSV-1 genomisch DNA te detecteren in situ in neuronale weefsels. Informatie over genoom kopie aantal en het aandeel van geïnfecteerde neuronen kwam vooral van PCR-analyse op los neuronen 11,12. In het ophelderen van de rol van de gastheer-cel nucleaire architectuur op HSV-1 latentie, zette...

<html> Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) is een hardnekkige menselijke neurotropisch virus, oprichting van een lange-termijn latente infectie in neuronen van de nervus ganglia (TG) van het perifere zenuwstelsel, waaruit reactiveert periodiek te repliceren en te verspreiden. De HSV-1-genoom is een 150 kb dsDNA lokaliseren in de kern van het ontvangende neuron waar het blijft chromatinized multicopy plasmiden die niet integreren in het gastheercelgenoom 1,2. Tijdens latentie wordt de HSV-1 replicatiecyclus genetisch programma sterk onderdrukt en genexpressie beperkt tot de latentie geassocieerde transcriptie (LAT) locus van latentie inrichting inleiding van reactivering 3. LAT produceert een lange 8,5 kb niet-coderende RNA in een grote 2 kb stabiel lasso verwerkt en verschillende miRNA 4-7. HSV-1 latentie wordt derhalve gekenmerkt door de aanwezigheid van het virale genoom DNA, RNA LAT en de afwezigheid van detecteerbare replicatiecyclus eiwitten. NHOUD &quot;&gt; Animal modellen, voornamelijk muizen en konijnen, zijn experimentele modellen indient verschillende kenmerken van latency bij de mens. Een van de voornaamste belangen van deze modellen is dat ze het bestuderen van de fysiologische aspecten van HSV-1 latentie bij immuuncompetente gastheren. In de afgelopen decennia Veel experimenteel hulpmiddelen, zoals genetisch gemodificeerde virussen en muizen, zijn ontwikkeld om de fysiologie, genetica en celbiologie van HSV-1 latentie uit dierlijke weefsels te bestuderen. Tot nu werd viraal genomisch DNA gedetecteerd en gekwantificeerd door Southern blot en qPCR van gedissocieerd TG. Er is echter nog geen methode beschikbaar voor HSV-1-genoom te detecteren door in situ hybridisatie op weefselsecties 8. Daarom wordt latentie routinematig beoordeeld op coupes door de detectie van LAT RNA door RNA in situ hybridisatie plaats virale genoom detecteren. Omdat het onmogelijk is om geïnfecteerde cellen te karakteriseren op basis van de aanwezigheid van virale genomen, this technische beperking is een belangrijk nadeel van de analyse van vele aspecten van de gastheer-virus interacties, zoals de relatie tussen het virale genoom en cellulaire en virale genexpressie of de gastheer-cel gemedieerde immuunrespons 9,10. Belangrijker, de cel-naar-cel heterogeniteit van de latente infectie blijft relatief onontdekt en is aangetoond dat een belangrijk kenmerk van latentie in muizen en menselijke sensorische ganglion neuronen geïmplanteerd in SCID muizen 11-17. Typisch werd aangetoond door qPCR dat de HSV-1-genoom kopieaantal per cel varieert van 5 tot enkele honderden. Hoewel LAT verschijnt als een belangrijke regulator van latentie en reactivatie, qPCR gegevens over geïsoleerde neuronen en in situ PCR aangegeven dat slechts een subset van latent geïnfecteerde neuronen, zo laag als 30%, drukt de LAT locus 11,12,18-21. Hoe de gastheercel en cellulaire omgeving in het weefsel effect van het virus latentie inrichting envirale genexpressie blijft onduidelijk. Hier beschrijven we een sterke fluorescente in situ hybridisatie (FISH) werkwijze voor de efficiënte detectie van laag copy HSV-1 genoom DNA in dierlijke neuronaal weefsel secties. Deze methode is ontworpen en door ons gebruikt om toegang tot hoge resolutie microscopie die nodig is om de interactie van het virale genoom studie met de gastheercel intra-nucleaire componenten 22 krijgen. Verder beschrijven we een meervoudige kleuring werkwijze voor de gelijktijdige detectie van het virale DNA met RNA en eiwitten, die een uniek instrument om de virus-gastheer interacties die virale genexpressie reguleren beschrijven. De werkwijze kan ook worden toegepast voor een breed scala van analyses die de detectie van HSV-1 latent genoom, zoals kwantificeren geïnfecteerde neuronen in groot aantal secties. Een belangrijke stap is antigenen behandelen op het virale DNA hybridisatie toegankelijk maken. Aldus kan dit protocol ook efficiënt voor het detecteren zijnvan andere dsDNA virussen, die momenteel niet gedetecteerd door conventionele DNA-FISH benaderingen binnen dierlijke weefsels.

<table><tbody><tr><td>Balb/c muizen</td><td>Janvier, Frankrijk</td><td></td><td>6 weken oude vrouwtjes</td></tr><tr><td>HSV-1 stammen</td><td>SC16 stam (wild type)</td><td></td><td>Zie Labetoule, M. et al. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci 44, 217&ndash;225 (2003) voor details over HSV-1 stam en virus stock bereiding.</td></tr><tr><td>Ketamine hydrochloride</td><td>Sigma</td><td>K2753</td><td>Intraperitoneale injectie van een oplossing met Ketamine (100mg/kg) en Xylazine (10mg/kg)</td></tr><tr><td>Xylazine hydrochloride</td><td>Sigma</td><td>X1251</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde (PFA)</td><td>Sigma</td><td>158127</td><td>Hang 4 g PFA op in 90 ml water. Voeg 50 &micro;l van 1N NaOH toe, en verwarm op 60 &deg;C in een waterbad met agiterende. PFA lost op in ongeveer 30 min. Voeg 10 ml van 10x PBS toe. Deze oplossing kan van tevoren worden bereid en opgeslagen bij -20 &deg;C in 5 ml buizen. Voorzichtigheid. Manipulatie onder een afzuigkap.</td></tr><tr><td>Fysiologische zoutoplossing</td><td>Sigma</td><td>07982-100TAB-F</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS, pH 7.4 (steriele)</td><td>Life Technologies</td><td>10010-015</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma</td><td>84100</td><td>Bereid een 20% sucrose oplossing in 1x PBS.</td></tr><tr><td>Cryosectioning inbeddingsmedium - Tissue-Tek OCT Compound</td><td>SAKURA</td><td>4583</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Grote vector DNA zuiveringskit</td><td>Qiagen</td><td>12462</td><td>Voor het zuiveren van Cosmid of BAC vector bevattend HSV-1 genoom en bewaar bij -20 &deg;C</td></tr><tr><td>Nick translatie kit</td><td>Roche Applied Sciences</td><td>10 976 776 001</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Cy3-dCTP</td><td>GE Healthcare</td><td>PA53021</td><td>Bescherm tegen licht</td></tr><tr><td>0.5 M EDTA</td><td>Sigma</td><td>E6758</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>G50 Mini spin column</td><td>GE Healthcare</td><td>27-5330-01</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Salmon sperm DNA 10 mg/ml</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>15632-011</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Ethanol moleculaire biologie kwaliteit</td><td>Sigma</td><td>87047</td><td>Bereid een 70% oplossing</td></tr><tr><td>Salmon sperm DNA</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>15632-011</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Formamid moleculaire biologie kwaliteit</td><td>Sigma</td><td>F9037</td><td>Voorzichtigheid. Manipulatie onder afzuigkap.</td></tr><tr><td>HSV-1 biotinylerde commerciële sonde&nbsp;</td><td>Enzo Life Sciences</td><td>ENZ-40838</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>ImmEdge hydrofobe pen</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-4000</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>20x Saline Sodium Citraat (SSC)</td><td>Sigma</td><td>S6639</td><td>Bereid een 2x SSC oplossing in ddH20.</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma</td><td>T8787</td><td>Bereid een 10% stock oplossing in water en bewaar bij +4 &deg;C. Bereid de 0,5% oplossing in 1x PBS vlak voor gebruik.</td></tr><tr><td>10 mM Natriumcitraat pH 6.0</td><td>Sigma</td><td>S1804</td><td>Bereid een 100 mM stock oplossing (10x). Weeg 10,5 g citroenzuur (MW 210,14). Voorzichtigheid, irriterend en toxisch, draag een geschikt masker en handschoenen), en los op in 400 ml water. Pas pH aan op 6,0 met 1 N NaOH (Voorzichtigheid, irriterend, draag handschoenen). Pas aan tot 500 ml met gedestilleerd water. Verdun 10x in gedestilleerd water voor gebruik.</td></tr><tr><td>Azijnzuur</td><td>Sigma</td><td>320099</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Methanol, moleculaire biologie kwaliteit</td><td>Sigma</td><td>322415</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Dextransulfaat - MW 500.000</td><td>Euromedex</td><td>EU0606-A</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Denhardt's oplossing (100x)</td><td>Euromedex</td><td>1020-A</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Rubber Cement "FixoGum"</td><td>Marabut</td><td>290110000</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>DNA zuiveringskit&nbsp; - Qiaquick PCR zuiveringskit</td><td>Qiagen</td><td>28104</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>T7 in vitro transcriptie kit</td><td>Ambion Life Technologies</td><td>AM1314</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Biotin-16-UTP</td><td>Roche Applied Sciences</td><td>11388908910</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>RNA zuiveringsminikolom</td><td>Qiagen</td><td>73404</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Ribonucleoside Vanadyl Complex</td><td>New England Biolabs</td><td>S1402S</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>H2O2</td><td>Sigma</td><td>H3410</td><td>Bereid een 3% oplossing in gedestilleerd water. Bewaar bij +4 &deg;C en bescherm tegen licht.</td></tr><tr><td>Gist tRNA</td><td>Invitrogen</td><td>15401011</td><td>bereid een 10 mg/ml oplossing in RNAse vrij water</td></tr><tr><td>Normaal geitenserum</td><td>Invitrogen</td><td>PCN5000</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Primaire antilichamen</td><td>elke leverancier</td><td></td><td>De volgende primaire antilichamen werden gebruikt in de resultaat sectie: anti-muis CENP-A (konijn mAb C51A7, Cell Signaling Technologies), en anti-ATRX H-300 (Santa Cruz Biotechnology)</td></tr><tr><td>Secundaire fluorescente antilichamen</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td></td><td>De fluorescente secundaire antilichamen die routinematig worden gebruikt in ons protocol zijn Alexa Fluor gelabelde geitenantilichamen (IgG H+L). Het antilichaam dat in de resultaat sectie werd gebruikt is een anti-konijn geitenantilichaam gelabeld met Alexa Fluor 488 (referentie A11001)</td></tr><tr><td>Tyramide Signal Amplification (TSA) kit - Streptavidin + Alexa Fluor 350 (blauwe fluorescentie)</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>#T20937</td><td>TSA kits zijn ook verkrijgbaar van Perkin Elmer</td></tr><tr><td>Tyramide Signal Amplification (TSA) kit - Streptavidin + Alexa Fluor 488 (groene fluorescentie)</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>#T20932</td><td></td></tr><tr><td>Hoechst 33342</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>H3570</td><td>Bereid een 0,5 &micro;g/ml oplossing in 1x PBS direct voor

detectie van het genoom en de transcripties van een persistente dna virus in neuronale weefsels door fluorescent in situ hybridisatie gecombineerd met immunokleuring

Detection of the Genome and Transcripts of a Persistent DNA Virus in Neuronal Tissues by Fluorescent In situ Hybridization Combined with Immunostaining

Enkele cel codetection van een gen, het RNA-product en cellulaire regulerende eiwitten is essentieel voor regulatie van genexpressie te bestuderen. Dit is een uitdaging op het gebied van de virologie, in het bijzonder voor nucleaire replicerende persistente DNA-virussen die dierlijke modellen voor de studie betrokken. Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) is een levenslange latente infectie in perifere neuronen. Latent virus dient als reservoir, waaruit reactiveert en veroorzaakt een nieuwe herpetische episode. De celbiologie van HSV-1 latency blijft slecht begrepen, mede door het ontbreken van methoden om HSV-1 genoom te detecteren in situ in diermodellen. We beschrijven een DNA-fluorescente in situ hybridisatie (FISH) aanpak efficiënt detecteren laag-kopie virale genomen binnen delen van neuronale weefsels van besmette dierlijke modellen. De methode is gebaseerd op warmte gebaseerde antigen ontmaskering, en direct gemerkt zelfgemaakte DNA-probes, of commercieel beschikbare sondes. We ontwikkelden een triple staiNing aanpak, waarbij DNA-FISH met RNA-FISH en immunofluorescentie, met behulp van peroxidase gebaseerd signaalversterking aan elke kleuring eis tegemoet te komen. Een belangrijke verbetering is het vermogen te verkrijgen, binnen 10 urn weefselcoupes, lage achtergrond signalen met hoge resolutie kan worden afgebeeld door confocale microscopie en wide-field conventionele epifluorescentie. Bovendien, de drievoudige kleuring werkte met een groot aantal antilichamen tegen cellulaire en virale eiwitten. Het volledige protocol duurt 2,5 dagen om antilichaam en sondepenetratie tegemoet in het weefsel.

Na enkele maanden van uitgebreide tests, ontdekten we dat warmte gebaseerde chemische ontmaskering gemaakt latent HSV-1 genoom beschikbaar voor fluorescente in situ hybridisatie. Tijdens het proces, we probeerden verschillende ontmaskering procedures en alleen warmte gebaseerde behandelingen (bijv. verwarmen van de onderdelen tot sub-kooktemperatuur in een magnetron) verscheen efficiënt. Vervolgens testten verschillende zoutbuffers die routinematig worden gebruikt in immunohistochemie (IHC) en elektron...

We hebben een fluorescente in situ hybridisatie protocol voor de detectie van een persistente DNA virusgenoom in weefselcoupes van diermodellen. Dit protocol maakt het bestuderen infectie proces codetection van het virale genoom, zijn RNA producten en virale of cellulaire eiwitten in enkele cellen.

Detectie van het genoom en de transcripties van een persistente DNA Virus in neuronale weefsels door Fluorescent In situ Hybridisatie Gecombineerd met Immunokleuring

Single cell codetection of a gene, its RNA product and cellular regulatory proteins is critical to study gene expression regulation. This is a challenge ...

Het algemene doel van deze procedure is het detecteren van het genoom van herpes simplex virus type 1 in coupes van trigeminusganglia van latent geïnfecteerde muizen middels fluorescentie in situ hybridisatie. Dit wordt bereikt door eerst het virus in de lip van het dier te inoculeren, gevolgd door een incubatieperiode van 28 dagen waarin het virus zich vestigt in de trigeminusganglia. Vervolgens worden de trigeminusganglia geoogst, ingebed en cryogesneden.De coupes worden onderworpen aan verschillende voorbehandelingen, waaronder de cruciale stap van het verhitten in een natriumcitraatbuffer. Vervolgens wordt fluorescentie-in-situ-hybridisatie uitgevoerd met gebruik van herpes-specifieke fluorescente probes. Uiteindelijk kan de positionering van het virale genoom in de kern van individueel geïnfecteerde neuronen worden aangetoond middels confocale microscopie.In veel gevallen vereist de studie van diverse levenscycli het gebruik van diermodellen. Het belangrijkste voordeel van de hier gepresenteerde techniek is dat deze gegevens op single-cell niveau biedt met behulp van een in situ fluidisatiebenadering. Het konijnmodel voor HS-infecties reproduceert de meeste aspecten van het na

detection-genome-transcripts-persistent-dna-virus-neuronal-tissues

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Een techniek combineert in situ tetrameer vlekken en in situ hybridisatie (ISTH) maakt visualisatie, in kaart brengen en analyseren van de ruimtelijke nabijheid van virus-specifieke CD8 + T-cellen om hun virus-geïnfecteerde targets, en de bepaling van de kwantitatieve relaties tussen deze immuun-effectoren en doelstellingen voor infecties resultaten.

Een techniek om tegelijkertijd Visualiseer virus-specifieke CD8 + T-cellen en virus-geïnfecteerde cellen In situ</em

Detectie van virale RNA door fluorescentie<em&gt; In situ</em&gt; Hybridisatie (FISH)

In this video, the cells infected with MCPyV virions were subjected to in situ hybridization chain reaction to detect MCPyV specific genomes. Further, the DNA-HCR technique was combined with FISH to visualize the MCPyV DNA in infected human skin cells.

HCR-DNA FISH: A Fluorescence In Situ Hybridization Technique to Detect Viral DNA in Infected Cells

This video demonstrates a method for monitoring infected cell protein 0, ICP0 trafficking in herpes simplex virus-1 infection. Post-de novo synthesis, ICP0 translocates to the nucleus, later moving to the cytoplasm during infection progression. Immunofluorescence microscopy reveals and analyzes the protein's subcellular localization, offering insights into its trafficking across infection phases.

An Immunofluorescence Technique for Viral Protein Localization in Infected Cells

Source: Baleriola, J., et. al., Detection of Axonally Localized mRNAs in Brain Sections Using High-Resolution In Situ Hybridization. J. Vis. Exp. (2015)This video demonstrates the detection of mRNA within cholinergic axons in fixed mouse hippocampal slices using fluorescent in situ hybridization and antibody staining. Fluorescence microscopy reveals the spatial localization of probe-tagged mRNAs and choline acetyltransferase in cholinergic neurons.

Immunostaining of Neurons in Mouse Brain Slices Following Fluorescence In Situ Hybridization

Het lokaliseren van genexpressie naar specifieke celtypen kan een uitdaging zijn vanwege het ontbreken van specifieke antilichamen. Hier beschrijven we een protocol voor gelijktijdige driedubbele detectie van genexpressie door dubbele fluorescentie RNA in situ hybridisatie te combineren met immunokleuring.

De combinatie van Double Fluorescentie<em&gt; In Situ</em&gt; Hybridisatie met immunolabel voor detectie van de expressie van drie genen in de hersenen van muizen Secties

Virale transcriptionele fabrieken zijn discrete structuren die zijn verrijkt met cellulaire RNA polymerase II te verhogen van virale gen transcriptie tijdens reactivering. Hier, wordt een methode om te vinden sites van actief het transcriberen van virale chromatine in 3D-nucleaire ruimte door een combinatie van immunofluorescentie kleuring en in situ hybridisatie van RNA beschreven.

Functionele beeldvorming van virale transcriptie fabrieken met behulp van 3D fluorescentie microscopie

We beschrijven een protocol met behulp van fluorescentie in situ hybridisatie (vissen) om meerdere herpes virale Rna's binnen lytisch geïnfecteerde menselijke cellen te visualiseren, hetzij in suspensie of aanhanger. Dit protocol omvat de kwantificering van fluorescentie die een nucleocytoplasmische verhouding produceert en kan worden uitgebreid voor gelijktijdige visualisatie van gastheer en virale eiwitten met immunofluorescentie (IF).

Kwantitatieve fluorescentie in situ-hybridisatie (vis) en immunofluorescentie (indien) van specifieke genproducten in KSHV-geïnfecteerde cellen

Dit protocol beschrijft een methode voor het combineren van fluorescentie in situ hybridisatie (FISH) en fluorescentie immunohistochemie (IHC) in zowel vers ingevroren als gefixeerde hersensecties van muizen, met als doel het bereiken van multilabel FISH en fluorescentie IHC-signaal. IHC richtte zich op cytoplasmatische en membraangebonden eiwitten.

Combinatie van multiplex fluorescentie in situ hybridisatie met fluorescerende immunohistochemie op vers ingevroren of vaste hersensecties van muizen

Hier wordt een protocol gepresenteerd voor een fluorescentiebeeldvormingsbenadering, multiplex immunofluorescent cell-gebaseerde detection van DNA, RNA en protein (MICDDRP), een methode die in staat is tot gelijktijdige fluorescentie eencellige visualisatie van virale eiwitten en nucleïnezuren van verschillende type en gestrandheid. Deze aanpak kan worden toegepast op een breed scala aan systemen.

Eencellige multiplexed fluorescentie beeldvorming om virale nucleïnezuren en eiwitten te visualiseren en HIV, HTLV, HBV, HCV, Zika-virus en influenza-infectie te controleren

Leer fluorescent in situ hybridisatie om het herpes simplex virus type 1-genoom te detecteren in neuronale weefsels van muizen. Deze methode visualiseert virale genomen en RNA-producten op enkelvoudige-celniveau.

Detectie van het genoom en de transcripties van een persistente DNA Virus in neuronale weefsels door Fluorescent In situ Hybridisatie Gecombineerd met Immunokleuring (Video) | JoVE Journal

Detectie van het genoom en de transcripties van een persistente DNA Virus in neuronale weefsels door Fluorescent In situ Hybridisatie Gecombineerd met Immunokleuring

Meer video's verkennen