Name: ECM Eiwit nanovezels en nanostructuren Engineered behulp-Surface geïnitieerde Vergadering (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-17T16:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 33 s
Description: Leer nanovezels en nanostructuren maken van extracellulaire matrix-eiwitten via oppervlak-geïnitieerde assemblage. Deze methode biedt precieze controle over vezelsamenstelling en morfologie voor weefseltechnische toepassingen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Financiële steun werd van de NIH Biomechanica van de NIH Director&#39;s New Innovator Award (1DP2HL117750) verstrekt aan JMS in Regeneratieve Geneeskunde T32 Training Program (2T32EB003392), om QJ van Dowd-ICES Fellowship en AWF.

1. Fabricage van Master Mold Met behulp Fotolithografie <ol><li> De ECM-eiwit nanovezels, nanofabrics en nanostructuren worden gefabriceerd worden eerst ontworpen met behulp van Computer Aided Design (CAD)-software. Deze CAD-bestand wordt vervolgens overgebracht naar een fotomasker. Het type fotomasker hangt af van de resolutie van de functies; met een-transparantie basis photomask voldoende voor functie maten omlaag naar ~ 10 micrometer. Kleinere functies &lt;10 urn zal een chromen op glas fotomasker nodig. Alle van de nanovezels en nanostructuren hier gepresenteerd werden vervaardigd met behulp van een op transparantie gebaseerde photomask, en dus waren nanometerschaal in dikte, maar niet laterale dimensies. Opmerking: Het is belangrijk om onderscheid te maken welke regio&#39;s van de fotomasker donker zal zijn (voorkomen dat UV-licht door) en die transparant zullen (laten UV-licht door te laten), omdat dit, samen met de aard van de fotolak (positief of negatief) , zal de uiteindelijke topografie van de meester mal dicteren. </li><li> Voor fabricage van de master schimmel begint, gedehydreerd een 4 &quot;siliciumwafel door het op een kookplaat ingesteld op 150 ° C gedurende 15 minuten. </li><li> Centreer de wafer op het vacuüm boorkop van een spin-coater. Giet SU8-2015 negatieve fotoresist op het midden van de wafel en verder gieten in concentrische cirkels tot ongeveer tweederde van de wafel bedekt. Opmerking: Bewaar de fles SU8 dicht bij de wafer bij gieten om de vorming van luchtbellen te minimaliseren. </li><li> Programmeer de spincoater als volgt: <ul><li> Spread cyclus: 500 rpm met een versnelling van 100 rpm / sec gedurende 10 sec. </li><li> Centrifuge: 4000 rpm met een versnelling van 100 rpm / sec gedurende 30 sec. </li></ul> Opmerking: Deze spincoating recept zal een fotoresistlaag die ~ 10 pm dik te vormen. Door de draaisnelheid of de SU8 formulering kan de dikte worden aangepast. </li><li> Zachte bak de wafer door het op een kookplaat ingesteld tot 95 ° C gedurende 3 minuten. </li><li> Expose de wafer met UV-licht doorhet fotomasker voor een totale dosering van 140 mJ / cm 2. Opmerking: SU8 is een negatieve fotolak ook regio&#39;s waar UV-licht is in staat om door de photomask te passeren na het ontwikkelen blijft en wordt opgevoed functies op de meester mal. </li><li> Na blootstelling bak de wafer door het op een kookplaat ingesteld op 95 ° C gedurende 4 minuten. </li><li> Ontwikkel de wafer door het in SU8 ontwikkelaar voor 3 minuten. Na 3 minuten, spoel de wafer met isopropylalcohol. Indien een witte film wordt geproduceerd tijdens het spoelen, wordt de wafel niet volledig ontwikkeld en moet weer in de ontwikkelaar nog 30 seconden worden geplaatst. Spoel opnieuw met isopropylalcohol. Herhaal dit proces tot een witte film niet gevormd tijdens de isopropylalcohol spoelen. </li><li> Droog de wafer in een stikstofstroom en in een 150 mm petrischaal bescherming tegen stof. </li></ol> 2. Het maken van de PDMS Postzegels <ol><li> Bereid de PDMS prepolymeer door het combineren van het elastomeer basis en verharder in een10:01 w / w verhouding. Typisch 80 g basis en 8 g verharder worden gebruikt om te zorgen voor voldoende PDMS aan de master schimmel in een 1 cm dikke laag bedekken. </li><li> Mix en ontgas de PDMS met een middelpuntzoekende mixer ingesteld op het volgende: <ul><li> Mix: 2.000 rpm gedurende 2 min. </li><li> Ontgas: 2.000 rpm gedurende 2 minuten. </li></ul></li><li> Als een mixer niet beschikbaar is meng de PDMS met de hand gedurende 10 minuten met behulp van een 10 ml serologische pipet. Ontgas het mengsel door het in een vacuüm exsiccator gedurende 30 minuten om luchtbellen te verwijderen. </li><li> Giet genoeg PDMS pre-polymeer over de meester mal (patroon silicium wafer) aan een 1 cm dikke laag te vormen. Hard de PDMS door bakken bij 65 ° C gedurende 4 uur en bij kamertemperatuur gedurende 48 uur. </li><li> Eenmaal uitgehard, kunnen de gebieden met de patronen worden uitgesneden om de PDMS postzegels vormen. Om de functie zijkant te onderscheiden van de achterkant van de PDMS stempel, snijd een inkeping uit een van de hoeken aan de achterzijde van de stempel. </li></ol> 3. Microcontact Printing van ECM Patterns <ol><li> Clean 25 mm diameter glazen dekglaasjes door sonicatie in 95% ethanol gedurende 1 uur en vervolgens droog in een 65 ° C oven. </li><li> Bereid de PIPAAm oplossing door het oplossen PIPAAm in 1-butanol in een concentratie van 10% (w / v, kenmerkend 1 g in 10 ml). </li><li> Centreer een glazen dekglaasje op de vacuümklem van de spincoater en pipet 200 ul van de oplossing PIPAAm zodat het volledige glasoppervlak bedekt. </li><li> Spincoat het dekglaasje bij 6.000 rpm gedurende 1 minuut. </li><li> Reinig de PDMS stempels door sonicatie in 50% ethanol gedurende 30 minuten en vervolgens droog onder een stikstofstroom. Opmerking: Drogen en volgende stappen moeten in een bioveiligheid kast worden uitgevoerd om de steriliteit voor toepassingen waar de ECM nanostructuren zal worden gebruikt met cellen te behouden. </li><li> Coat het patroon oppervlak van elke PDMS stempel met 200 pl van de eiwitoplossing, typisch 50 ug / ml in steriel gedestilleerd water FN. Incubeer gedurende 1 uur bij kamertemperatuur geroerd. Opmerking: This coating volume voor een 1,5 cm 2 PDMS stempel en moeten worden aangepast aan de grootte van de PDMS stempel, de ECM eiwitten gebruikt en de concentratie van de ECM eiwitten in oplossing. </li><li> Was de PDMS stempels in gedestilleerd water om overtollig eiwit en goed afdrogen onder een stroom van stikstof te verwijderen. Opmerking: Al het water links op de stempel zal de voortijdige ontbinding van de PIPAAm coating triggeren op het dekglaasje blokkeren en de correcte eiwit overdracht. </li><li> Voor steriele fabricage, plaatst de PIPAAm-gecoate dekglaasjes in een gesloten petrischaaltje en steriliseer behulp van UV-blootstelling, 45 min onder de UV licht in een bioveiligheid kast is voldoende. Als steriliteit niet nodig deze stap worden weggelaten. </li><li> Voer microcontact afdrukken door het plaatsen van de functie van het PDMS stempel in contact met de PIPAAm-gecoate dekglaasje. Indien nodig, een tang om licht te tikken op de achterkant van de stempels om eventuele luchtbellen te verwijderen en zorgen voor een gelijkmatige contact. </li><li> Na 5 kmn, trek het PDMS stempel van het dekglaasje. </li><li> In dit stadium kunnen andere ECM eiwitten worden gevormd om complexere en multicomponent structuren. Tot 3 drukken zijn geverifieerd om te werken met dit proces, en meer kan haalbaar zijn. </li></ol> 4. Vrijgave van ECM nanovezels en nanostructuren <ol><li> Plaats de patroon PIPAAm gecoate dekglaasje in een 35 mm petrischaal en inspecteer het patroon trouw gebruik fasecontrastmicroscopie. Afhankelijk van het patroon kan een CCD-camera nodig zijn om de kenmerken van de patroon lossen. Fluorescentie microscopie kan worden gebruikt om het patroon ontvangen de ECM eiwitten fluorescent gelabelde inspecteren. </li><li> Voeg 3 ml van 40 ° C gedestilleerd water aan de petrischaal en laat het water geleidelijk afkoelen. </li><li> Het oplossen van de PIPAAm laag en de afgifte van het ECM-eiwit patronen kunnen worden gevolgd met fasecontrastmicroscopie. Als de toepassing het gebruik van optische tec niet toelaathniques de vrijgave kan worden gevolgd door meting van de temperatuur van de oplossing. Typisch wordt het water gekoeld tot kamertemperatuur, ver onder de LCST van PIPAAm (32 ° C) die de ECM eiwitten nanostructuren zijn vrijgegeven. </li><li> Na de release, zijn de nanovezels, nanofabrics en andere nanostructuren in het water drijven. Om ze te gebruiken voor verdere toepassingen moeten ze worden gemanipuleerd. De exacte benadering is afhankelijk van het experimentele doel en kunnen stappen zoals immobiliseren op een oppervlak bewegen met een micromanipulator systeem of inbedding in een hydrogel. </li></ol>

<ol><li>Geiger, B., Bershadsky, A., Pankov, R., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transmembrane+crosstalk+between+the+extracellular+matrix+and+the+cytoskeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Transmembrane crosstalk between the extracellular matrix and the cytoskeleton.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 2, 793-805 (2001).</li>
<li>Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix Elasticity Directs Stem Cell Lineage Specification. Cell. 126, 677-689 (2006).</li>
<li>Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. -l <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+Cells+Feel+and+Respond+to+the+Stiffness+of+Their+Substrate%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Tissue Cells Feel and Respond to the Stiffness of Their Substrate.</a> Science. 310, 1139-1143 (2005).</li>
<li>Ott, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perfusion-decellularized+matrix%3A+using+nature%27s+platform+to+engineer+a+bioartificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Perfusion-decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart.</a> Nat Med. 14, 213-221 (2008).</li>
<li>Teo, W. E., Ramakrishna, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+review+on+electrospinning+design+and+nanofibre+assemblies%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">A review on electrospinning design and nanofibre assemblies.</a> Nanotechnology. 17, (2006).</li>
<li>Reneker, D. H., Chun, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanometre+diameter+fibres+of+polymer%2C+produced+by+electrospinning%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Nanometre diameter fibres of polymer, produced by electrospinning.</a> Nanotechnology. 7, 216-21 (1996).</li>
<li>Ma, P. X., Zhang, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+nano-scale+fibrous+extracellular+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research%22%5BJournal%5D)">Synthetic nano-scale fibrous extracellular matrix.</a> Journal of Biomedical Materials Research. 46, 60-72 (1999).</li>
<li>Yoshimoto, H., Shin, Y. M., Terai, H., Vacanti, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+biodegradable+nanofiber+scaffold+by+electrospinning+and+its+potential+for+bone+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A biodegradable nanofiber scaffold by electrospinning and its potential for bone tissue engineering.</a> Biomaterials. 24, 2077-2082 (2003).</li>
<li>Li, W. J., Laurencin, C. T., Caterson, E. J., Tuan, R. S., Ko, F. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+nanofibrous+structure%3A+a+novel+scaffold+for+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research%22%5BJournal%5D)">Electrospun nanofibrous structure: a novel scaffold for tissue engineering.</a> Journal of Biomedical Materials Research. 60, 613-621 (2002).</li>
<li>Matthews, J. A., Wnek, G. E., Simpson, D. G., Bowlin, G. L. Electrospinning of Collagen Nanofibers. Biomacromolecules. 3, 232-238 (2002).</li>
<li>Huang, Z. -M., Zhang, Y. Z., Ramakrishna, S., Lim, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospinning+and+mechanical+characterization+of+gelatin+nanofibers%5BTitle%5D)+AND+%22Polymer%22%5BJournal%5D)">Electrospinning and mechanical characterization of gelatin nanofibers.</a> Polymer. 45, 5361-5368 (2004).</li>
<li>Wnek, G. E., Carr, M. E., Simpson, D. G., Bowlin, G. L. Electrospinning of Nanofiber Fibrinogen Structures. Nano Letters. 3, 213-216 (2002).</li>
<li>Bhattarai, N., Edmondson, D., Veiseh, O., Matsen, F. A., Zhang, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrospun+chitosan-based+nanofibers+and+their+cellular+compatibility%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Electrospun chitosan-based nanofibers and their cellular compatibility.</a> Biomaterials. 26, 6176-6184 (2005).</li>
<li>Jin, H. -J., Chen, J., Karageorgiou, V., Altman, G. H., Kaplan, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+bone+marrow+stromal+cell+responses+on+electrospun+silk+fibroin+mats%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Human bone marrow stromal cell responses on electrospun silk fibroin mats.</a> Biomaterials. 25, 1039-1047 (2004).</li>
<li>Wierzbicka-Patynowski, I., Schwarzbauer, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ins+and+outs+of+fibronectin+matrix+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Science%22%5BJournal%5D)">The ins and outs of fibronectin matrix assembly.</a> Journal of Cell Science. 116, 3269-3276 (2003).</li>
<li>Mosher, D. F., Johnson, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+formation+of+disulfide-bonded+fibronectin+multimers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">In vitro formation of disulfide-bonded fibronectin multimers.</a> Journal of Biological Chemistry. 258, 6595-6601 (1983).</li>
<li>Little, W. C., Smith, M. L., Ebneter, U., Vogel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assay+to+mechanically+tune+and+optically+probe+fibrillar+fibronectin+conformations+from+fully+relaxed+to+breakage%5BTitle%5D)+AND+%22Matrix+Biology%22%5BJournal%5D)">Assay to mechanically tune and optically probe fibrillar fibronectin conformations from fully relaxed to breakage.</a> Matrix Biology. 27, 451-461 (2008).</li>
<li>Ulmer, J., Geiger, B., Spatz, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force-induced+fibronectin+fibrillogenesis+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Force-induced fibronectin fibrillogenesis in vitro.</a> Soft Matter. 4, 1998-2007 (2008).</li>
<li>Klotzsch, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibronectin+forms+the+most+extensible+biological+fibers+displaying+switchable+force-exposed+cryptic+binding+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Fibronectin forms the most extensible biological fibers displaying switchable force-exposed cryptic binding sites.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. , (2009).</li>
<li>Feinberg, A. W., Parker, K. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface-Initiated+Assembly+of+Protein+Nanofabrics%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Surface-Initiated Assembly of Protein Nanofabrics.</a> Nano Letters. 10, 2184-2191 (2010).</li>
<li>Deravi, L. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+Contributions+of+Conformation+Extension+and+Domain+Unfolding+to+Properties+of+Fibronectin+Nanotextiles%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Letters%22%5BJournal%5D)">Differential Contributions of Conformation Extension and Domain Unfolding to Properties of Fibronectin Nanotextiles.</a> Nano Letters. 12, 5587-5592 (2012).</li>
<li>Shen, K., Qi, J., Kam, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcontact+Printing+of+Proteins+for+Cell+Biology%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Microcontact Printing of Proteins for Cell Biology.</a> J Vis Exp. , 1065(2008).</li>
<li>Vogel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+Involving+Multimodular+Proteins%3A+Converting+Force+into+Biochemical+Signals%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biophysics+and+Biomolecular+Structure%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction Involving Multimodular Proteins: Converting Force into Biochemical Signals.</a> Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. 35, 459-488 (2006).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat zij geen concurrerende financiële belangen.

De SIA-methode hier gepresenteerde bootst cel gemedieerde matrix assemblage en maakt de engineering van ECM eiwitten nanovezels en nanostructuren met variabele grootte, organisatie en samenstelling. Hoewel niet identiek zijn aan-cel gegenereerd ECM, SIA creëert ECM bestaat uit nanoschaal eiwitfibrillen 20 dat omkeerbaar vouwen ondergaan / ontvouwen tijdens mechanische belasting 21 en kunnen cellen binden 20. Dit biedt een unieke mogelijkheid om ECM-eiwit materiaal dat veel eigenschappen ...

De extracellulaire matrix (ECM) in weefsels bestaat uit multifunctionele proteïnen betrokken bij fysische en chemische regulatie van verschillende celprocessen zoals hechting, proliferatie, differentiatie en apoptose 1-3. De ECM wordt gesynthetiseerd, geassembleerd, en georganiseerd door de cellen en de samenstellende eiwitfibrillen hebben unieke composities, vezelgrootte, geometrieën en onderling verbonden architecturen die variëren met het type weefsel en het ontwikkelingsstadium. Recent onderzoek heeft aangetoond dat de ECM leerzame aanwijzingen kan geven aan cellen om gemanipuleerde weefsels maken 4, wat suggereert dat recapituleren de ECM in termen van samenstelling en structuur kan de ontwikkeling van biomimetische materialen zorgen voor tissue engineering en biotechnologische toepassingen leiden. Een aantal fabricage methoden ontwikkeld polymere scaffolds die aspecten van de ECM kunnen nabootsen in weefsels ingenieur. Bijvoorbeeld, elektrospinnen en fase gescheidenatie hebben zowel vermogen gedemonstreerd poreuze matrices van vezels te vormen met een diameter van enkele tientallen micrometers tot tientallen nanometers 5-7. Beide technieken hebben ook aangetoond dat zeer poreuze matrices van nanovezels cel adhesie en infiltratie in de scaffold 8 kan ondersteunen. Echter, deze aanpak beperkt in de mogelijke vezel geometrieën, oriëntaties en 3D-architecturen die kunnen worden gemaakt. Electrospinning geeft gewoonlijk steigers met ofwel willekeurig georiënteerde of zeer gerichte vezels terwijl fasescheiding produceert steigers met willekeurig georiënteerde vezels. Er zijn ook beperkingen op de materialen, met onderzoekers gewoonlijk gebruik van synthetische polymeren, zoals poly (ε-caprolacton) 8 en poly (melkzuur-co-glycolzuur) 9, die vervolgens worden bekleed met ECM eiwitten celadhesie bevorderen. Natuurlijke biopolymeren worden ook gebruikt, zoals collageen type I 10, 11 gelatine, fibrinogeen 12,chitosan 13, en zijde 14, maar vertegenwoordigen slechts een klein deel van de eiwitten in de eigen weefsel. De meeste weefsels bevatten een groter milieu van ECM eiwitten en polysacchariden zoals fibronectine (FN), laminine (LN), Type IV collageen en hyaluronzuur die moeilijk of onmogelijk te nanovezels Bestaande methoden fabriceren zijn. Om deze uitdaging aan te pakken, hebben we onze onderzoeksinspanningen op het nabootsen van de manier waarop cellen synthetiseren, assembleren en te organiseren ECM eiwitfibrillen in hun omgeving gericht. Hoewel de specifieke fibrillogenese proces varieert voor verschillende ECM eiwitten typisch een conformationele verandering van de ECM eiwitmolecuul wordt veroorzaakt door een enzymatische of-receptor veroorzaakte interactie, die cryptische zelfassemblage plaatsen blootstelt. Hier gebruiken we FN als modelsysteem om beter inzicht in de fibrillogenese proces. Kort FN homodimeren binden aan integrine receptoren op het celoppervlak via de RGD aminozuursequentie in het 10e type IIIk herhaal eenheid. Eenmaal gebonden, de integrines uit elkaar via actomyosine contractie en vouw de FN dimeren cryptische zelfassemblage websites bloot. De blootstelling van deze FN-FN bindingsplaatsen kan de FN dimeren te monteren in een onoplosbare fibrillen direct aan het celoppervlak 15. Werk in cel-vrije systemen heeft aangetoond dat cryptische FN-FN bindingsplaatsen kunnen worden onthuld door ontvouwen behulp denatureermiddelen 16 of oppervlaktespanning bij een lucht-vloeistof-vaste stof grensvlak 17-19. De FN vezels die door deze technieken zijn beperkt tot specifieke vezels afmetingen en geometrieën en zijn meestal gebonden aan een oppervlak. Hier beschrijven we een aanpak genoemd oppervlak geïnitieerd assemblage (SIA) 20 dat deze beperkingen overwint door gebruik te maken van eiwit-oppervlakte interacties tot vrijstaande onoplosbare nanovezels, nanofabrics (2D vellen) en andere nanostructuren bestaande uit een of meerdere ECM eiwitten (figuur 1 maken ). In dit process, worden ECM eiwitten geadsorbeerd uit een compacte, bolvormige conformatie in oplossing en gedeeltelijk gedenatureerd (uitgevouwen) op een patroon, hydrofoob polydimethylsiloxaan (PDMS) stempel. De ECM eiwitten worden dan overgebracht in deze toestand op een thermisch responsieve poly (N-isopropylacrylamide) (PIPAAm) oppervlak door microcontact afdrukken 22. Wanneer gehydrateerd met 40 ° C water de PIPAAm blijft solide, maar wanneer afgekoeld tot 32 ° C het door een lagere kritische oplostemperatuur (LCST) wanneer hydrofiel wordt geeft zwelt met water en vervolgens lost, loslaten van de geassembleerde ECM nanostructuren uit van het oppervlak. De SIA methode biedt controle over de afmetingen met nanometer-schaal precisie. Door het regelen van belangrijke parameters zoals de samenstelling, vezel geometrie en architectuur, is het mogelijk om vele eigenschappen van de ECM gevonden in vivo recapituleren en geavanceerde steigers voor tissue engineering en biotechnologische toepassingen te ontwikkelen.

<table><tbody><tr><td>Poly(N-isopropylacrylamide) / PIPAAm</td><td>Polysciences</td><td>21458-10</td><td>40,000 Mw</td></tr><tr><td>Sylgard 184 Silicone kit (PDMS)</td><td>Dow Corning</td><td></td><td>Mix 10 delen basis met 1 deel uitharder.&nbsp;</td></tr><tr><td>Butanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fibronectin</td><td>BD biosciences</td><td>354008</td><td>Menselijke, 1mg</td></tr><tr><td>Laminin</td><td>BD biosciences</td><td>354239</td><td>Ultrazuiver, muis, 1mg</td></tr><tr><td>Negative Photoresist</td><td>Microchem</td><td>SU8-2015</td><td></td></tr><tr><td>SU8 Developer</td><td>Microchem</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sonicator Branson M3510</td><td>Branson Ultrasonic Corporation</td><td>CPN-952-318</td><td></td></tr><tr><td>Thinky ARE-250 Mixer</td><td>Thinky Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spincoater</td><td>Specialty Coating Systems</td><td>G3P-8</td><td></td></tr><tr><td>Glazen deksel 25mm diameter, No 1.5</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-545-86</td><td></td></tr></tbody></table>

ecm eiwit nanovezels en nanostructuren engineered behulp-surface geïnitieerde vergadering

ECM Protein Nanofibers and Nanostructures Engineered Using Surface-initiated Assembly

De extracellulaire matrix (ECM) in weefsels wordt gesynthetiseerd en geassembleerd door cellen Een 3D-fibrillaire, eiwitten zullen vormen met strak gereguleerd vezeldiameter, samenstelling en organisatie. Naast het verlenen van structurele steun, de fysische en chemische eigenschappen van de ECM speelt een belangrijke rol in verschillende cellulaire processen, waaronder hechting, differentiatie en apoptose. In vivo wordt het ECM geassembleerd door blootstelling cryptische zelfassemblage (fibrillogenese) locaties binnen proteïnen . Dit proces verschilt voor verschillende eiwitten, maar fibronectine (FN) fibrillogenese is goed gekarakteriseerd en dient als een modelsysteem voor cel-gemedieerde ECM montage. Specifiek cellen gebruiken integrine receptoren op het celmembraan FN dimeren en actomyosine gegenereerde contractiele krachten binden ontvouwen en bloot bindingsplaatsen voor montage in onoplosbare vezels. Deze receptor gemedieerde proces maakt cellen te monteren en het organiseren van de ECM van de cellulaire weefsel scales. Hier presenteren we een oppervlak geïnitieerde genaamde methode samenstel (SIA), die celgemedieerde matrix samenstel recapituleert met proteïne-oppervlak interacties ECM eiwitten ontvouwen en assembleren in onoplosbare vezels. Eerst worden ECM eiwitten geadsorbeerd op een hydrofoob polydimethylsiloxaan (PDMS) oppervlak waar ze gedeeltelijk denatureren (uitgevouwen) en cryptische bindende domeinen bloot. Ongevouwen eiwitten worden vervolgens overgebracht in welbepaalde micro-en nanopatronen via microcontact printen op een thermisch gevoelige poly (N-isopropylacrylamide) (PIPAAm) oppervlak. Thermisch geactiveerd ontbinding van de PIPAAm leidt tot eindassemblage en het vrijkomen van onoplosbare ECM eiwitten nanovezels en nanostructuren met goed gedefinieerde geometrieën. Complexe architecturen zijn mogelijk door technische gedefinieerde patronen op de PDMS stempels gebruikt voor microcontact afdrukken. Naast FN kan SIA proces gebruikt laminine, fibrinogeen en collageen type I en IV van meerdere componenten ECM nanostruc creërenturen. Aldus kan SIA worden gebruikt om ECM-eiwitten gebaseerde materialen ingenieur nauwkeurige controle over de eiwitsamenstelling, vezelvorm en steiger architectuur om de structuur en samenstelling van de ECM recapituleren in vivo.

SIA is in staat technische ECM-eiwit nanovezels met nauwkeurige controle over afmetingen vezels. Om dit aan te tonen, werden arrays van FN nanovezels met vlakke afmetingen van 50 x 20 micrometer patroon op een PIPAAm gecoate dekglaasje (Figuur 2A). Na het loslaten, de vezels gecontracteerd omdat ze onder een inherente pre-stress als patroon op de PIPAAm oppervlak (Figuur 2B). Analyse van de FN nanovezels bleek zij monodisperse pre-release met een gemiddelde lengte van 50,19 ± 0,49 pm en...

Werkwijze voor nanovezels en complexe nanostructuren verkrijgen uit een of meerdere extracellulaire matrixeiwitten beschreven. Deze methode maakt gebruik van proteïne-oppervlak interacties vrijstaande eiwit gebaseerde materialen maken met instelbare samenstelling en architectuur voor gebruik in een verscheidenheid van tissue engineering en biotechnologische toepassingen.

ECM Eiwit nanovezels en nanostructuren Engineered behulp-Surface geïnitieerde Vergadering

The extracellular matrix (ECM) in tissues is synthesized and assembled by cells to form a 3D fibrillar, protein network with tightly regulated fiber ...

Het algemene doel van deze procedure is het vervaardigen van vrijstaande nanovezels, nanostructuren en 2D-matrices uit enkele of meerdere extracellulaire matrixeiwitten met behulp van oppervlakte-geïnitieerde assemblage. Dit wordt bereikt door eerst polydimethylsiloxaan- of PDMS-stempels voor te bereiden door de PDMS-prepolymeer op een topografisch gepatrooneerde mastermold te gieten en deze te laten uitharden. De tweede stap bestaat uit het uitsnijden van de uitgeharde PDMS-stempels en het coaten hiervan met een oplossing die de gewenste extracellulaire matrixeiwitten bevat.Vervolgens worden de stempels gewassen, gedroogd en via microcontactprinten aangebracht op een glazen dekglas gecoat met poly N-isopropylacrylamide, of pNIPAM. De laatste stap is het hydrateren van het dekglas met warm gedeïoniseerd water van 40 °C en het geleidelijk laten afkoelen van de oplossing. Een temperatuur onder ongeveer 32 °C triggert de oplossing van de thermisch gevoelige pNIPAM-laag en de vrijgave van de geassembleerde eiwit-nanovezels of nanostructuren.Uiteindelijk zijn de geassembleerde nanovezels en nanostructuren vrijstaand in oplossing, zoals bevestigd door fasecontrast- en/of fluorescentiemicroscopie, en kunnen ze worden gebruikt in verdere toepassingen, zoals scaffolds voor tissue engineering. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals fasescheiding of electrospinning, is de mogelijkheid om ECM-proteine-nanovezels te ontwerpen met een techniek die nauwkeurig nabootst hoe cellen normaal gesproken ECM-vezels in vivo opbouwen. De oppervlakte-geïnitieerde assemblage-techniek biedt een aantal unieke voordelen, waaronder de mogelijkheid om de eiwitsamenstelling, de vezelmorfologie en de architectuur van de scaffold te controleren.Verder kunnen we ECM-proteïnenanovezels vervaardigen uit extracellulaire matrixeiwitten zoals fibronectine, laminine en collageen type IV, wat met andere methoden moeilijk bleek. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen in het veld van tissue engineering door onderzoekers in staat te stellen constructen te ontwikkelen met specifieke en goed gedefinieerde fysieke en chemische signalen om diverse celgedragingen, zoals adhesie en differentiatie, te sturen. Als u nieuw bent met deze techniek, dient u er rekening mee te houden dat u continu de kwaliteit van uw stempels en de getrouwheid van de microcontact-geprinte patronen moet controleren.Dit is essentieel om een correcte assemblage van de ECM-nanovezels en nanostructuren te verkrijgen. Om deze procedure te starten, bereid je het poly dimethylsiloxaan of PDMS-prepolymeer voor door de elastomeerbasis en het uithardingsmiddel te combineren in een gewichtsverhouding van 10 op 1; doorgaans worden 80 gram basis en 8 gram uithardingsmiddel gebruikt om ervoor te zorgen dat er voldoende PDMS is om de mastermal te bedekken met een laag van 1 centimeter dik. Meng en ontgas het PDMS met een centrifugaalmixer ingesteld op de volgende instellingen: mengen op 2000 RPM gedurende twee minuten, ontgassen op 2000 RPM gedurende twee minuten. Giet het mengsel.Breng PDMS-prepolymeer aan over de mastermold om hier een laag van één centimeter dikte te vormen; laat de PDMS uitharden door deze vier uur lang te bakken bij 65 °C. Gebruik na uitharding een scalpel om het gebied met het patroon uit te snijden om de PDMS-stempel te vormen. Doe dit om de zijde met de kenmerken te onderscheiden van de achterzijde van de PDMS-stempel.Snijd een inkeping uit een van de hoeken aan de achterzijde van de stempel. Begin deze procedure door de dekglasplaatjes met een diameter van 25 millimeter te reinigen; soniceren de dekglasplaatjes gedurende één uur in 95% ethanol en droog ze vervolgens in een oven op 65 °C. Bereid vervolgens de poly- en isopropylacrylamide- of piam-oplossing voor door piam op te lossen in 1-butanol met een concentratie van 10%. Plaats een schoon dekglasplaatje centraal op de vacuümhouder van de spin-coater en pipetteer 200 µL van de piam-oplossing op het glasoppervlak om het oppervlak volledig te bedekken.Breng de cover slip via spincoating aan bij 6,000 RPM gedurende één minuut. Reinig de PDMS-stempels door sonicatie in 50% ethanol gedurende 30 minuten en droog deze vervolgens onder een stroom stikstof; al deze en alle volgende stappen moeten in een biologische veiligheidskabinet worden uitgevoerd om de steriliteit te waarborgen voor toepassingen waarbij de extracellulaire matrix of ECM-nanostructuren met cellen worden gebruikt. De stap van microcontactprinten is het meest uitdagende aspect van deze procedure.Het is belangrijk om de PDMS-stempels vóór gebruik te inspecteren op zichtbare defecten. Gebruik daarnaast geen eiwitoplossing die ouder is dan twee weken. Plaats de met PIAM gecoate dekglasjes in een gesloten Petrischaal en steriliseer deze door middel van UV-bestraling.45 minuten onder het UV-licht in een veiligheidskast is voldoende. Bedek het patroonoppervlak van elke PDMS-stempel met 200 µL van de eiwitoplossing. Fibronectine of FN wordt hier gebruikt in een concentratie van 50 µg/mL in steriel gedestilleerd water.Incubeer gedurende één uur bij kamertemperatuur; was na één uur de PDMS-stempels met gedestilleerd water om overtollig eiwit te verwijderen en droog ze grondig onder een stroom stikstof. Het is belangrijk om het water volledig te verwijderen om voortijdige oplosbaarheid van de pijp te voorkomen. Pam-coating op het dekglas en onjuiste eiwitoverdracht.Voer microcontactdruk uit door de zijde met de structuren van de PDMS-stempel in contact te brengen met het met pipe PAM gecoate dekglas indien vereist. Gebruik een pincet om lichtjes op de achterkant van de stempels te tikken om eventuele luchtbellen te verwijderen en een uniform contact na vijf minuten te waarborgen. Pel de PDMS-stempel van het dekglas af.Op dit moment kunnen, afhankelijk van de studie, aanvullende ECM-proteïnen worden gepatroneerd om complexere en multi-component structuren te creëren. Zodra het ECM-patroon is geprint, plaatst u het bedekte dekglas met het gepatroneerde pipe PAM in een Petri-schaal van 35 millimeter en inspecteert u de getrouwheid van het patroon met behulp van fasecontrastmicroscopie.Afhankelijk van het patroon kan een CCD-camera nodig zijn om de kenmerken van het patroon te onderscheiden. Fluorescentiemicroscopie kan ook worden gebruikt om het patroon te inspecteren, mits de ECM-eiwitten fluorescent gelabeld zijn. Voeg na het verifiëren van de getrouwheid van het patroon drie milliliter gedestilleerd water van 40 °C toe aan de petrischaal en laat het water geleidelijk de oplossing van de pijp afkoelen.De PAM-laag en de afgifte van de ECM-proteïnepatronen kunnen worden gemonitord met fasecontrastmicroscopie. Om doorgaans te waarborgen dat de ECM-proteïnenanostructuren zijn vrijgekomen, wordt het water afgekoeld tot kamertemperatuur, ruim onder de onderste kritische oplosstemperatuur van pNIPAM, welke 32 °C bedraagt. Indien de toepassing het gebruik van optische technieken niet toestaat, kan de afgifte worden gemonitord door de temperatuur van de oplossing te meten.Nanovezels en andere nanostructuren zullen in het water drijven na het loslaten van de PAM-laag van de pijp. Voor verdere toepassingen moeten de nanostoffen en andere nanostructuren worden gemanipuleerd, waarbij de exacte aanpak afhankelijk zal zijn van het experimentele doel. Hier worden representatieve resultaten gepresenteerd om aan te tonen dat oppervlakte-geïnitieerde assemblage of SIA in staat is om ECM-proteïnenanovezels te engineeren met preciese controle over de afmetingen van de vezels.Een array van fibronectine-rechthoeken, 50 micrometers lang en 20 micrometers breed, werd gepatroneerd op een met piam gecoat dekglas; toevoeging van DI-water van 40 °C en daaropvolgende afkoeling tot onder de kritische oplosstemperatuur van piam veroorzaakte de oplossing van piam en het vrijkomen van de fibroïnenanovezels. De vezels trokken samen omdat ze onder een inherente voorspanning stonden.Wanneer ze op het piam-oppervlak waren gepatroneerd, onthulde een analyse van de dimensies van de fibronectine-nanovezels vóór vrijgave dat deze monodispers waren, met een gemiddelde lengte van 50.19 ± 0.49 µm en een gemiddelde breedte van 19.98 ± 0.17 µm. Na vrijgave krompen de nanovezels aanzienlijk, maar bleven ze monodispers met een gemiddelde lengte van 14.15 ± 0.92 µm en een gemiddelde breedte van 2.65 ± 0.32 µm. Atoomkrachtmicroscopie bood een perspectief met een hogere resolutie van de dimensionale veranderingen van de vezels die geassocieerd zijn met het SIA-vrijgaveproces.Opmerkelijk was dat de vezels vóór de release een uniforme dikte hadden van ongeveer vijf nanometer, terwijl de vezels na de release een dikte hadden in de orde van enkele honderden nanometer, terwijl de lengte en breedte afnamen. Met het SIA-proces is het mogelijk om diverse nanostructuren van ECM-eiwitten te engineeren met instelbare grootte, vorm en samenstelling. Bijvoorbeeld, fibronectine-nanovezels met een initiële breedte van 20 micrometer en een lengte van één centimeter werden op een buis gepatterned.PAM-gecoat dekglas na afkoeling en spoelen. Na dissolutie van PAM werden de nanovezels vrijgegeven, waarbij lange draden ontstonden met een verminderde breedte van ongeveer drie micrometer. Bovendien is het, aangezien het patroon wordt bepaald door de oppervlaktetopografie van de PDMS-stempel die voor microcontactprinten is gebruikt, mogelijk om complexe ECM-eiwit-nanostructuren als proof of concept te ontwerpen.Er werden meearmige fibroïnestervormen gecreëerd. Thermische release leidde tot contractie van de armen, maar niet van het centrale gebied van de ster waar de armen samenkwamen. SIA werkt ook met andere ECM-eiwitten zoals laminine of LN, en meerdere ECM-eiwitten kunnen in dezelfde structuur worden geïncorporeerd.In dit voorbeeld werden orthogonaal onderling verbonden, 20 micrometer brede lijnen fibronectine (weergegeven in rood) en 50 micrometer brede lijnen laminine (weergegeven in groen), geïntegreerd in een 2D-nanoweefsel, gepatroneerd en vervolgens vrijgegeven; na de vrijgave krompen beide typen nanovezels, maar de algemene onderlinge verbondenheid en de vierkante roosterstructuur bleven behouden. Deze resultaten tonen aan dat SIA kan worden gebruikt om ECM-materialen met uiteenlopende composities en structuren te ontwikkelen. Ten slotte worden enkele voorbeelden getoond van mislukte SIA van ECM-nanovezels.Eén oorzaak is het onjuist loslaten van een onvolledig patroon als gevolg van een gebrekkige overdracht van ECM-eiwit naar het piam-oppervlak. Tijdens microcontactdrukken zullen de aanwezigheid van gaatjes, onregelmatige randen en andere defecten leiden tot nanovezels en nanostructuren die onvolledig zijn en geneigd zijn tot breuk en fragmentatie bij het loslaten. Snelle oplossing van pipe PAM kan ook leiden tot een gebrekkige getrouwheid van het patroon na het loslaten.Gebruik bijvoorbeeld water van 20 °C, een temperatuur die al onder de lagere kritische oplosningstemperatuur ligt. De temperatuur van piam zal ervoor zorgen dat de piam snel opzwelt en oplost. Dit kan ervoor zorgen dat de nanovezels terugveren en breken, zoals geïllustreerd in de 32ste afbeelding, en willekeurige, ongeorganiseerde configuraties vormen, zoals geïllustreerd in de 52ste afbeelding.Controleer vóór het starten van deze procedure de PDMS-stelen op defecten en zorg ervoor dat alle oppervlakken stofvrij zijn. In het tegendeel zal dit een goede eiwitoverdracht belemmeren en leiden tot een gebrekkige assemblage van de ACM-structuren. Na het volgen van deze procedure kunnen de vrijgekomen nanovezels of nanostructuren voor diverse doeleinden worden gebruikt, zoals het analyseren van de mechanische eigenschappen van de eiwitvezels, of als scaffolds voor tissue engineering.Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe ECM-proteïnenanovezels en nanostructuren met een instelbare compositie, geometrie en architectuur kunnen worden ontworpen. Specifiek zult u begrijpen hoe patronen van ECM-proteïnen via microcontactdruk op met pyroon gecoate glazen dekglasjes kunnen worden aangebracht, om vervolgens de oplossing van het oppervlak thermisch te triggeren voor de assemblage van de ECM-structuren.

ecm-protein-nanofibers-nanostructures-engineered-using-surface

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Een efficiënte aanpak voor het bereiden nanovezels ingericht met functionele groepen die specifiek interactie met eiwitten beschreven. De benadering vereist eerst de bereiding van een gefunctionaliseerd polymeer met geschikte functionele groep. De functionele polymeer wordt gefabriceerd in nanovezels door electrospinning. De effectiviteit van de binding van de nanovezels met een eiwitgehalte wordt onderzocht door confocale microscopie.

Procedure voor het vervaardigen van biofunctionele nanovezels

We beschrijven experimentele details van de synthese van patronen en herconfigureerbare deeltjes van tweedimensionale (2D) precursors. Deze methodologie kan worden gebruikt om deeltjes te maken in een verscheidenheid van vormen zoals veelvlakken en grijpinrichtingen bij lengteschalen variërend van micro tot centimeter schaal.

Origami Inspired Zelf-assemblage van Patterned en Herconfigureerbare Deeltjes

Dit document beschrijft de vorming van sterk geordende peptide-gebaseerde structuren door het spontane proces van zelfassemblage. De werkwijze maakt gebruik van commercieel verkrijgbare peptiden en gemeenschappelijke laboratoriumapparatuur. Deze techniek kan worden toegepast op een grote verscheidenheid aan peptiden en kan leiden tot de ontdekking van nieuwe peptiden gebaseerde samenstellingen.

Vorming van Bestelde Biomoleculaire structuren door de zelf-assemblage van korte peptiden

Nanoschalige zee-eilandoppervlakken, samengesteld uit thermoresponsieve blokcopolymeren, werden vervaardigd door de Langmuir-Schaefer-methode voor het controleren van spontane celhechting en loslating. Zowel de bereiding van het oppervlak als de hechting en loslating van cellen op het oppervlak werden gevisualiseerd.

Voorbereiding van de thermoresponsieve nanogestructureerde oppervlakken voor Tissue Engineering

Het huidige werk beschrijft een methode om te fabriceren micellaire nanokristallen, een opkomende grote klasse van nanobiomaterials. Deze methode combineert topdown electrospray, onderop zelf-assemblage, en op basis van oplosmiddel structuur controle. De fabricage methode is grotendeels continu kan produceren hoogwaardige producten en bezit een goedkoop middel structuur controle.

Fabricage van bolvormig en Worm-vormige micellaire nanokristallen door het combineren van Electrospray, zelf-assemblage en controle van de structuur op basis van oplosmiddel

Gepresenteerd is een eenvoudige methode om het fabriceren van nano-micro multiscale structuren, voor functionele oppervlakken, door samenvoeging van nanofibers die zijn vervaardigd met behulp van een filter anodic aluminium oxide.

Multiscale structuren samengevoegd door ingeprinte Nanofibers voor functionele oppervlakken

Op het snijvlak van organische en waterige oplosmiddelen assembleren op maat gemaakte amfifiele elastine-achtige eiwitten zich in complexe supramoleculaire structuren zoals blaasjes, vezels en coacervaten die worden geactiveerd door omgevingsparameters. De beschreven assemblageprotocollen leveren Op eiwitmembraan gebaseerde compartimenten (PMBC's) met tunable eigenschappen, waardoor de inkapseling van verschillende lading.

Geleid Assemblage van Elastin-achtige eiwitten in gedefinieerde supramoleculaire structuren en cargo-encapsulation in vitro

Het doel van dit protocol is om de assemblage van een biomimetische nanomatrix (NM) met Janus basis nanobuisjes (JBNT's) en fibronectine (FN) te tonen. Wanneer ze worden gekweekt met menselijke mesenchymale stamcellen (hMSCs), vertonen de NMs uitstekende bioactiviteit bij het aanmoedigen van hMSCs-adhesie.

Vervaardiging van een biomimetische nanomatrix met Janus Base Nanotubes en Fibronectin voor stamcelhechting

Dit protocol heeft tot doel biofunctionele zelfassemblerende peptiden te evalueren voor celadhesie, organoïde morfologie en genexpressie door immunokleuring. We zullen een colorectale kankercellijn gebruiken om een kosteneffectieve manier te bieden om organoïden te verkrijgen voor intensieve tests.

Fabricage en karakterisering van organoïden van colorectale kanker uit de SW1222-cellijn in ultrakorte zelfassemblerende peptidematrix

Weefselkweekinserts met plastic membranen zijn de gouden standaard in celkweeklaboratoria als permeabele dragers om cellagen en modellen van barrièreweefsels te vestigen. Hierin presenteren we een eenvoudige methode om het plastic membraan te vervangen door een biologisch relevanter membraan gemaakt van een recombinant gefunctionaliseerd spinnenzijde-eiwit.

Nanofibrillaire basale membraan nabootsen gemaakt van recombinant gefunctionaliseerd spinnenzijde in op maat gemaakte weefselkweekinzetstukken

Het volgende protocol presenteert een op afschuiving gebaseerde extrusiemethode voor de fabricage van collageenhydrogels met fibrillen met nanoschaalpatronen, die kan worden toegepast op een breed scala aan weefselengineeringtoepassingen.

Productie van collageen met nanofibrillaire patronen voor weefselmanipulatie

Leer nanovezels en nanostructuren maken van extracellulaire matrix-eiwitten via oppervlak-geïnitieerde assemblage. Deze methode biedt precieze controle over vezelsamenstelling en morfologie voor weefseltechnische toepassingen.

ECM Eiwit nanovezels en nanostructuren Engineered behulp-Surface geïnitieerde Vergadering

Meer video's verkennen