15 januari 2014
De bacteriële celwand bestaat uit peptidoglycan, een macromoleculair netwerk van suikerstrengen gekruist door peptiden. Ultra Performance Liquid Chromatography biedt een hoge resolutie en doorvoer voor nieuwe ontdekkingen van peptidoglycan samenstelling. We presenteren een procedure voor de isolatie van celwanden (sacculi) en hun daaropvolgende voorbereiding voor analyse via UPLC.
Het algemene doel van deze procedure is om bacteriële celwanden te isoleren en te verteren om de identiteiten en relatieve fracties van verschillende neuropeptiden te bepalen. Met behulp van UPLC-analyse wordt dit bereikt door eerst bacteriemonsters te lysen door te koken in natrium ecol sulfaat. Na het uitwassen van SDS is de tweede stap het verteren van monsters met pronase E om de buitenste membraan van gramnegatieve bacteriën te zuiveren.
Vervolgens worden de monsters verdund met mease om het peptidoglycaan op te lossen in individuele neuropeptiden. De laatste stap is om de neuropeptiden te reduceren en de pH aan te passen tot het iso-elektrische punt van de neuropeptiden. Uiteindelijk wordt UPLC gebruikt om neuropeptiden te scheiden op basis van grootte en hydrofobiteit, waardoor de kwantificering van belangrijke celwandkenmerken, zoals de mate van cross-linking en gemiddelde glycaanstrenglengte, wordt vergemakkelijkt.
Deze methode kan helpen om de antwoorden op belangrijke vragen op het gebied van microbiologie te onthullen, zoals de relaties tussen morfogenese, celwandarchitectuur, activering van het immuunsysteem en pathogenese. Hoewel deze methode is ontwikkeld om gramnegatief Peptidyl glycaan te zuiveren, kan deze ook worden toegepast op grampositieve bacteriën met de toevoeging van enkele enzymen en chemische behandelingen. Om de bacterieculturen terug te laten groeien, verdunt u overnachtsculturen een op honderd in 250 milliliters vers medium en laat u deze groeien tot de gewenste optische dichtheid bij 600 nanometer terwijl de verdunde culturen groeien. Stel een kokend waterbad in op een hot plate in een liter beker.
Zodra het water kookt, verdeelt u zes milliliter van 6% natrium dyl sulfaat of SDS in 50 milliliter polypropyleen buizen. Voeg een kleine roerder toe aan elke buis en draai de buisdeksels stevig vast. Plaats de buizen in het kokende waterbad en roer met 500 RPM op de hot plate.
Oogst de 250 milliliters culturen door 5.000 keer G gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur te draaien. Suspensieer de pellets opnieuw in drie milliliters medium of een keer fosfaatgebufferd zoutwater. Pipetteer de celsuspensies langzaam in de 50 milliliters buizen met 6% kokend SDS om de cellen te lyzeren terwijl de buizen ondergedompeld zijn in het kokende waterbad en sluit de deksels opnieuw stevig vast.
Dek het kokende waterbad af en laat de cellen drie uur koken, waarbij u periodiek de waterstand controleert en het waterbad bijvult wanneer dat nodig is. Na drie uur zet u de warmte op de hot plate uit en blijft u overnacht roeren met 500 RPM. Als SDS zich in de 50 milliliters buizen heeft geprecipiteerd gedurende de nacht, zet u het waterbad aan om nog eens één tot twee uur te koken.
Hier wordt getoond hoe een normale cultuur eruit zou moeten zien na overnachts lyse. Let in SDS op de transparantie in tegenstelling tot de ondoorzichtigheid die correleert met precipitatie. Bereid de prone e buffer voor en activeer prone E bij 60 graden Celsius in een heat block gedurende ten minste 30 minuten.
Gebruik een ultracentrifuge ingesteld op 400.000 keer G om monsters 20 minuten bij kamertemperatuur te draaien om de grote peptol glycaan of PG macromoleculen te pelleten en ze daardoor te zuiveren van andere cellulaire componenten. Verwijder voorzichtig het supernatant en suspendeer vervolgens elk pellet opnieuw in kamertemperatuur. Het volume van de ultrazuivere water resuspensie hangt af van het volume van de ultracentrifugebuizen die worden gebruikt.
Gebruik een volume dat de buizen ten minste halverwege vult, maar het maximale volume van de buizen niet overschrijdt. Herhaal het centrifugeren en wassen tot het water geen bubbels vormt tijdens de Resuspensie, wat aangeeft dat het SDS op dit punt volledig is verwijderd. Suspendeer de monsters opnieuw in 900 microliters tris HCL buffer en breng ze over naar twee milliliters buizen met gaten in de bovenkant.
Voeg met een kleine naald 100 microliters geactiveerde pronase E toe aan elk monster voordat u incubeert bij 60 graden Celsius gedurende twee uur. Stop de spijsvertering door 200 microliters 6% SDS toe te voegen aan elk monster en kook de monsters in de 100 graden Celsius heat block gedurende 30 minuten. Gebruik zoals eerder een ultracentrifuge ingesteld op 400.000 keer G om de monsters 20 minuten bij kamertemperatuur te draaien en was met kamertemperatuur ultrazuiver water tot het SDS volledig is verwijderd in de laatste centrifugatiestappen. Suspendeer de monsters opnieuw in 200 microliters 50 millimolair natriumfosfaatbuffer.
Dit volume kan worden aangepast aan de hoeveelheid Pepto glycaan in het monster en kan soortsafhankelijk zijn. Als het monster meer pep glycaan bevat, verhoogt u het suspensievolume. Als het monster weinig peptide glycaan bevat.
Verklein het suspensievolume tot een minimum van 50 microliters. Breng de monsters over naar 1,5 milliliters buizen en voeg een milligram per milliliter mease toe om een eindconcentratie van 40 microgram per milliliter te verkrijgen. Incubeer gedurende zes tot acht uur of een nacht in een 37 graden Celsius heat block.
Om monsters voor UPLC voor te bereiden, zet een heat block aan op 100 graden Celsius. Kook de monsters zonder SDS gedurende vijf minuten om de mease-vertering te stoppen, centrifugeer monsters gedurende 10 minuten bij 16.000 keer G bij kamertemperatuur.
De neuropeptiden bevinden zich nu in het supernatant. Breng het supernatant over naar 13 bij 100 millimeter glazen buizen. Probeer zoveel mogelijk supernatant te recupereren, kom heel dicht bij de palaat zonder het te verstoren.
Pas de pH aan door 500 millimolair boraatbuffer toe te voegen aan het monster voor een eindconcentratie van 100 millimolair boraatbuffer. Boor acht buffer is compatibel met het reducerende middel. Natriumborohydride voegt u verschillende korrels natriumborohydride toe om elk monster te reduceren en laat de reactie gedurende ten minste 30 minuten bij kamertemperatuur verlopen. Pas vervolgens de monsters aan op pH zes zoals gemeten met pH-indicatorpapier met orthofosforzuur met behulp van 20 microliters incrementen, het monster zou moeten borrelen als react
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een procedure voor het isoleren en verteren van bacteriële celwanden om de neuropeptidesamenstelling te analyseren met Ultra Performance Liquid Chromatography (UPLC). De methode omvat het lyseren van bacteriële monsters, het verteren ervan om membranen te zuiveren en het solubiliseren van peptidoglycaan tot neuropeptiden voor analyse.
Deze methode maakt een resolutieanalyse van de peptidoglycaansamenstelling mogelijk, wat doelvalidatie bij de ontdekking van antibacteriële geneesmiddelen ondersteunt door structurele kenmerken zoals cross-linking en de lengte van glycaanstrengen te kwantificeren. Het biedt mechanische risicoreductie voor lead-identificatie door de architectuur van de celwand te koppelen aan fenotypische resultaten in de microbiologie. De workflow verhoogt het voorspellende vertrouwen in preklinische modellen via reproduceerbare, kwantitatieve neuropeptideprofilering.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetvalidatie tot preklinische evaluatie, waardoor iteratieve design-make-test-cycli in antibacteriële programma's mogelijk worden gemaakt.