Name: Het beoordelen van de ontwikkeling van de Muriene plasmacytoïde dendritische cellen in Peyers Patches Met behulp adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-17T16:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 34 s
Description: Leer adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers om plasmacytoïde dendritische cellen te genereren in Peyer-patches van muizen. Deze methode analyseert de ontwikkeling van immuuncellen in darm-geassocieerde lymfoïde weefsels.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wij danken Drs. Alex Gelbard en Willem Overwijk voor advies over hydrodynamische gentransfer. Dit werk werd ondersteund door subsidies van de NIH (AI098099, SSW), het MD Anderson Cancer Center for Epigenetica, de MD Anderson Centrum voor kanker en inflammatie (SSW), en de RE Bob Smith Fund Onderwijs (HSL).

Institutionele goedkeuring moet worden verkregen bij voorbaat voor alle experimentele manipulaties hierin beschreven waarbij muizen. Deze omvatten het gebruik van C57BL6 muizen voor isolatie van beenmerg stamcellen, IFNAR - / - muizen als ontvangers voor adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers en het gebruik van HGT voor cytokine overexpressie in vivo. Passende huisvesting en verzorging van dieren moeten ook worden verleend door de onderzoeker of instelling. Bovendien kan institutionele goedkeuring vereist voor de plasmiden gebruikt in hydrodynamische gentransfer (dwz recombinant DNA goedkeuring). De hier beschreven studies werden goedgekeurd door het Comite Institutional Animal Care en gebruik aan de UT MD Anderson Cancer Center. 1. Hydrodynamische Gene Transfer (HGT) Deze stap moet 2 dagen uitgevoerd te worden voordat de adoptieve overdracht van CDP induceren circulerende Flt3L DC expansie in vivo 5. Prepare minstens 5 ontvangende muizen / groep. <ol><li> Om efficiënte HGT bereiken, de bloedvaten van de ontvanger IFNAR - / - muizen moet (CD45.2 +) worden verwijd door het blootstellen van muizen een warmtelamp gedurende 5-10 minuten. </li><li> Plaats de muis in een restrainer apparaat en te desinfecteren zijn staart met 70% ethanol. </li><li> Injecteer 5 ug van plasmide dat codeert Flt3L in 2 ml steriele PBS in de staart ader met behulp van een 27 G naald. Voor de controle cohort, injecteren 5 ug van lege vector (Porf) via de staart ader zoals aangegeven. </li><li> Monitor muizen voor 15-30 minuten om ervoor te zorgen dat er geen schadelijke effecten van de staart ader injectie. Terug muizen tot huisvesting faciliteit voor 2 dagen. </li></ol> 2. Isolatie van hematopoëtische voorlopers van Mouse Bone Marrow Deze stap moet worden uitgevoerd 2 dagen na HGT. Gebruik congenic CD45.1 + muizen als de bron van het beenmerg voorouders voor adoptieve overdracht in ontvangende IFNAR - /- dieren (CD45.2 +). In dit protocol zijn congene stammen moeten donor en ontvanger-afgeleide DCs te onderscheiden, en om te voorkomen immuun-gemedieerde depletie door MHC mismatch. Ongeveer 10-20 muizen zullen moeten voldoende aantallen hematopoietische progenitorcellen (10 5 cellen / ontvanger muis) voor de overdracht experimenten. <ol><li> Euthanaseren 10 congenic CD45.1 + muizen door CO 2 stikken en cervicale dislocatie. </li><li> Plaats elk karkas op een dissectie tray en steriliseer de buik en benen met 70% ethanol. </li><li> Maak een insnijding in het midden van de buik en snijd door de huid van de buik om elk been, snijden huid over de lengte van het been. </li><li> Verwijder voorzichtig de huid van elk been, en af ​​en haal de poten van het karkas aan het heupgewricht met behulp van scherpe een schaar. </li><li> Verwijder voorzichtig de spieren van het bovenbeen en onderbeen van elk been met een scherp mes. </li><li> Verwijderenbeide uiteinden van de femur en de tibia met een scherpe scalpel en plaats botten in een kweekschaal met compleet RPMI (RMPI met 10% hitte-geïnactiveerd foetaal runderserum, 1% penicilline / streptomycine, 1 mM natriumpyruvaat en 50 uM β-mercapto-ethanol) . </li><li> Bereid een spuit met 1 ml compleet RPMI, verbonden met een 27 G naald. </li><li> Breng de 27 G naald in een uiteinde van de femur of tibia. Spoel het beenmerg van de femur of tibia voorzichtig injecteren complete RPMI in het bot. Controleer of beenmergcellen worden uit het been verwijderd, dit kan worden bereikt door visueel detecteren verdreven media die troebel weergegeven. </li><li> Herhaal het spoelen elk bovenbeen en onderbeen 3x om beenmergcellen grondig te verwijderen. </li><li> Bereid een enkele cel schorsing door de pipet voorzichtig cellen op en neer 3-5x in de cultuur schotel. </li><li> Verwijder vuil door het passeren van de beenmergcellen door een 40 uM cel zeef, het plaatsen van de straalde cellen in een nieuwe culture gerecht. Breek een cel klonten die op de zeef door lichte druk met het uiteinde van een steriele spuitplunjer. </li><li> Lyse de rode bloedcellen (RBC) in de totale beenmerg celsuspensie commerciële RBC lysisbuffer instructies van de fabrikant. Gebruik 2 ml RBC lysis buffer/4-6 x 10 7 cellen (gewoonlijk cellen van een muis) en een incubatietijd van 5 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Was de beenmergcellen van pellets cellen door centrifugatie gedurende 4 minuten bij 500 xg voorzichtig opzuigen het kweekmedium resuspenderen in 10 ml FACS-buffer (1x PBS + 2 mM EDTA + 1% FBS), omhullingen cellen door centrifugering en voorzichtig opzuigen wash buffer. </li><li> Herhaal het wassen, zoals beschreven in stap 2.13, voor een totaal van 2 wasbeurten. </li></ol> 3. Fluorescentie-geactiveerde celsortering (FACS) te CDP Isoleer Deze stap vereist toegang tot een MidiMACS celseparator en MACS LD kolommen voor een eerste negatieve selectie procedure,alsmede een FACS machine met minstens 3 lasers om de veelkleurige progenitor deelverzameling zuiveren na kleuring met fluorescent geconjugeerde antilichamen. <ol><li> Na de tweede wasbeurt in stap 2.14, tel de beenmergcellen. Pellet de cellen door centrifugatie zoals beschreven in stap 2.13 en resuspendeer in FACS buffer tot een eindconcentratie van 4 x 10 7 cellen per 30 ui FACS buffer bereiken. </li><li> Om cellen voor FACS bereiden, zijn lineage-negatieve cellen eerst verrijkt door een negatieve selectie techniek die geslacht-positieve cellen verwijdert uit het beenmerg mengsel met behulp van magnetische kraal kolomchromatografie. Voor de negatieve selectieprocedure, voeg 1 ug van elk van de volgende commerciële rat anti-muis antilichamen (Abs) die hematopoietische afkomst merkers herkennen: CD3, CD19, CD 11 c, CD 11 b, en Ter-119 Abs. De Abs worden toegevoegd in een volume van 2 pl / Ab de 30 pi celsuspensie in FACS-buffer. </li><li> Incubeer de celsuspensie bij 4 ° C gedurende 30min. Na de incubatie, was de cellen tweemaal met 10 ml FACS-buffer zoals beschreven in stap 2.13. </li><li> Resuspendeer cellen om een eindconcentratie van 4 x 10 7 cells/40 pi FACS-buffer bereiken. Voeg 20 ul van geit anti-rat IgG magnetische microbolletjes per elke 40 pi celsuspensie. Meng voorzichtig en incubeer bij 4 ° C 30 minuten. Was de cellen met 10 ml FACS-buffer zoals beschreven in stap 2.13. </li><li> Resuspendeer tot 10 8 beenmergcellen in 500 ui FACS-buffer. </li><li> Laad een MACS LD kolom op een MidiMACS celseparator instructies van de fabrikant en voorspoeling de kolom met 2 ml FACS-buffer. </li><li> Breng het beenmerg celsuspensie op de kolom laden tot 5 x 10 8 cellen in 2,5 ml van FACS-buffer. Zorgen voor een verzameling buis (15 ml conische buis) in de kolom geplaatst. Was de kolom 3x met 2 ml FACS buffer / wasbeurt en verzamel de cellen die doorheen de kolom, die wordt verrijktlineage-negatieve cellen. Tel de cellen in het geëlueerde materiaal (was-through) van de kolom. </li><li> Om positieve selectie van hematopoietische voorlopercellen subsets uitvoeren door FACS, vlek cellen met de volgende fluorescent geconjugeerde Abs: IL-7R (Pacific Blue), Flt3 (PE), Sca-1 (PE.Cy7), CD115 (APC), c-kit (APC.Cy7) Abs, plus een mengsel van afstamming marker Abs gericht tegen CD3, CD19, CD 11 c, CD11b, F4/80 en Ter119 (alle gelabeld met PerCP Cy5.5). Gebruik 0,5-1 ul van elk Ab in een totaal volume van 100 pl. Incubeer celsuspensie bij 4 ° C gedurende 20-30 minuten. </li><li> Was de cellen zoals in stap 2.13 en resuspendeer in FACS buffer bij een concentratie van 2-3 x 10 7 cellen / ml. Filter cellen door een 35 uM cel zeef cap tube naar cel klonten te verwijderen. Deze laatste stap is cruciaal om te voorkomen dat verstopping van de FACS-machine. </li><li> Plaats de celsuspensie in een FACS buis op de FACS podium en sorteren CDPs (lin - c-kit lo CD115 + Flt3 +) op debasis van de aangegeven merkerprofiel. Verzamel gezuiverde cellen in een 15 ml buis met 5 ml compleet RPMI. </li><li> Noteer het absolute aantal gesorteerde cellen aan het einde van de FACS run. Pellet de cellen door centrifugatie zoals in stap 2.13 en resuspendeer in steriele PBS gedurende adoptieve overdracht experimenten. </li></ol> 4. Adoptieve overdracht van CDP Deze stap wordt meestal gedaan in het dierenverblijf waar de ontvangende muizen gehuisvest. Afhankelijk van de locatie van de FACS gebruikt, kan dit transport van de gezuiverde voorlopercellen celpopulaties omvatten in het dierenverblijf voor adoptieve overdracht. Stamceltransplantatie schorsingen moeten steriel worden bewaard en vervoerd op ijs. <ol><li> Bereid celsuspensies voor injectie door verdunning 10 5 gezuiverd CDP in een totaal volume van 100 pi steriel PBS. Plaats celsuspensie in een injectiespuit bevestigd aan een 27 G naald. </li><li> Expose de ontvanger IFNAR - / - </sup&gt; muizen (CD45.2 +) een warmtelamp gedurende 5-10 minuten efficiënte injectie bereiken via staartader. </li><li> Plaats de muis in een restrainer apparaat en te desinfecteren zijn staart met 70% ethanol. </li><li> Injecteer 10 5 FACS-gezuiverd CDP&#39;s in 100 ul PBS in de staart ader met behulp van een 27 G naald. </li><li> Monitor muizen voor 15-30 minuten om ervoor te zorgen dat er geen schadelijke effecten van de staart ader injectie. Terug muizen tot huisvesting faciliteit. </li></ol> 5. Isolatie van PP en waardering van pDC Bedragen <ol><li> Op 7-10 dagen na adoptieve overdracht, euthanaseren de ontvangende muizen. Open voorzichtig de muis door dissectie en de darm bloot. </li><li> Verwijder de gehele darm en plaats het op PBS-doordrenkte papieren handdoeken. Verzamel alle zichtbare PP&#39;s langs de wand van de dunne darm met behulp van fijne tang en schaar. C57BL6 en IFNAR - / - muizen hebben gewoonlijk 5-10 PP / muis, die verschillen van geïsoleerde lymfefollikels gevonden zijnlangs de dunne darm 18. Merk op dat de PP&#39;s zijn vaak structureel verschillende zelfs binnen een enkele muis, zo zorgvuldig zorgen dat alle PP&#39;s worden geïdentificeerd en ontleed. </li><li> Pps een petrischaal met PBS en een tang om ontlasting te verwijderen. Herhaal deze procedure twee keer te reinigen PP. </li><li> Digest PP met 1 mg / ml collagenase IV in 10 ml 1 x Hank&#39;s gebalanceerde zoutoplossing (HBSS) in een 50 ml kolf onder krachtig roeren gedurende 1 uur bij 37 ° C. </li><li> Plaats het verteerde PP in het bovenste compartiment van een 40 um cel zeef en kracht cellen door zeef met een steriele spuit zuiger. Verzamel de PP celsuspensie in een 15 ml conische buis. </li><li> Pellet gespannen PP cellen door centrifugatie bij 500 xg gedurende 5 minuten en resuspendeer in 6 ml 37% Percoll-oplossing (37% Percoll in RPMI-medium). Plaats voorzichtig 6 ml 70% Percoll-oplossing (70% Percoll in RPMI medium) onder de celsuspensie, een Percoll stapgradiënt vormen. </li><li> Centrifugeer cellen gedurende 20 min eent 800 xg met de centrifuge afbreken. Mononucleaire cellen migreren naar de 37/70% interface. Na centrifugatie dient de mononucleaire celpopulatie verzameld door voorzichtig pipetteren op het grensvlakgebied. Pellet cellen verzameld door centrifugatie en tweemaal wassen in 50 ml compleet RPMI / was. Een groot volume wordt gebruikt om volledige verwijdering te garanderen Percoll. </li><li> Vlekken op de verzamelde PP cellen met de volgende antilichamen tegen muizen pDCs die voortvloeien uit de adoptief overgedragen voorlopercellen (CD45.1 +) of ontvangende muizen (CD45.2 +) op te sporen: CD45.1 (APC.Cy7), CD45.2 (PE . Cy7), CD11c (Pacific Blue), CD11b (PerCP Cy5.5), B220 (APC), Siglec-H (PE) en PDCA-1 (FITC) Abs. Voer flowcytometrie analyse van PP cellen zoals aangegeven in stap 3.9 en 3.10. Identificeer pDCs door hun CD11c + CD11b - B220 + Siglec-H + PDCA-1 + fenotype. PDC absolute getallen kan worden bepaald door de volgende vergelijking:% pDCs x teTal PP aantal cellen = PP pDCs. </li></ol>

<ol><li>Cella, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+monocytes+migrate+to+inflamed+lymph+nodes+and+produce+large+amounts+of+type+I+interferon%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid monocytes migrate to inflamed lymph nodes and produce large amounts of type I interferon.</a> Nat. Med. 5 (8), 919-923 Forthcoming.</li>
<li>Siegal, F. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nature+of+the+principal+type+1+interferon-producing+cells+in+human+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The nature of the principal type 1 interferon-producing cells in human blood.</a> Science. 284 (5421), 1835-1837 Forthcoming.</li>
<li>Asselin-Paturel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+type+I+IFN-producing+cells+are+immature+APCs+with+plasmacytoid+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mouse type I IFN-producing cells are immature APCs with plasmacytoid morphology.</a> Nat. Immunol. 2 (12), 1144-1150 Forthcoming.</li>
<li>Contractor, N., Louten, J., Kim, L., Biron, C. A., Kelsall, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutting+edge%3A+Peyer%27s+patch+plasmacytoid+dendritic+cells+%28pDCs%29+produce+low+levels+of+type+I+interferons%3A+possible+role+for+IL-10%2C+TGFbeta%2C+and+prostaglandin+E2+in+conditioning+a+unique+mucosal+pDC+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cutting edge: Peyer's patch plasmacytoid dendritic cells (pDCs) produce low levels of type I interferons: possible role for IL-10, TGFbeta, and prostaglandin E2 in conditioning a unique mucosal pDC phenotype.</a> J. Immunol. 179 (5), 2690-2694 (2007).</li>
<li>Li, H. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-intrinsic+role+for+IFN-alpha-STAT1+signals+in+regulating+murine+Peyer+patch+plasmacytoid+dendritic+cells+and+conditioning+an+inflammatory+response%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Cell-intrinsic role for IFN-alpha-STAT1 signals in regulating murine Peyer patch plasmacytoid dendritic cells and conditioning an inflammatory response.</a> Blood. 118 (14), 3879-3889 (2011).</li>
<li>D'Amico, A., Wu, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+early+progenitors+of+mouse+dendritic+cells+and+plasmacytoid+predendritic+cells+are+within+the+bone+marrow+hemopoietic+precursors+expressing+Flt3%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">The early progenitors of mouse dendritic cells and plasmacytoid predendritic cells are within the bone marrow hemopoietic precursors expressing Flt3.</a> J. Exp. Med. 198 (2), 293-303 Forthcoming.</li>
<li>Fogg, D. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+clonogenic+bone+marrow+progenitor+specific+for+macrophages+and+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A clonogenic bone marrow progenitor specific for macrophages and dendritic cells.</a> Science. 311 (5757), 83-87 Forthcoming.</li>
<li>Liu, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+dendritic+cell+development+and+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of dendritic cell development and homeostasis.</a> Science. 324 (5925), 392-397 (2009).</li>
<li>Naik, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+plasmacytoid+and+conventional+dendritic+cell+subtypes+from+single+precursor+cells+derived+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Development of plasmacytoid and conventional dendritic cell subtypes from single precursor cells derived in vitro and in vivo.</a> 8 (11), 1217-1226 Forthcoming.</li>
<li>Onai, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+clonogenic+common+Flt3%2BM-CSFR%2B+plasmacytoid+and+conventional+dendritic+cell+progenitors+in+mouse+bone+marrow%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Identification of clonogenic common Flt3+M-CSFR+ plasmacytoid and conventional dendritic cell progenitors in mouse bone marrow.</a> Nat. Immunol. 8 (11), 1207-1216 (2007).</li>
<li>Sathe, P., Vremec, D., Wu, L., Corcoran, L., Shortman, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Convergent+differentiation%3A+myeloid+and+lymphoid+pathways+to+murine+plasmacytoid+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Convergent differentiation: myeloid and lymphoid pathways to murine plasmacytoid dendritic cells.</a> Blood. 121 (1), 11-19 Forthcoming.</li>
<li>Hirai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C%2FEBPbeta+is+required+for+%27emergency%27+granulopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">C/EBPbeta is required for 'emergency' granulopoiesis.</a> Nat. Immunol. 7 (7), 732-739 (2006).</li>
<li>Overwijk, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunological+and+antitumor+effects+of+IL-23+as+a+cancer+vaccine+adjuvant%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immunological and antitumor effects of IL-23 as a cancer vaccine adjuvant.</a> J. Immunol. 176 (9), 5213-5222 (2006).</li>
<li>Cervantes-Barragan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+dendritic+cells+control+T-cell+response+to+chronic+viral+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid dendritic cells control T-cell response to chronic viral infection.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109 (8), 3012-3017 (2012).</li>
<li>Goubier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+dendritic+cells+mediate+oral+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid dendritic cells mediate oral tolerance.</a> Immunity. 29 (3), 464-475 (2008).</li>
<li>Lande, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophils+activate+plasmacytoid+dendritic+cells+by+releasing+self-DNA-peptide+complexes+in+systemic+lupus+erythematosus%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Transl.+Med%22%5BJournal%5D)">Neutrophils activate plasmacytoid dendritic cells by releasing self-DNA-peptide complexes in systemic lupus erythematosus.</a> Sci. Transl. Med. 3 (73), Forthcoming.</li>
<li>Liu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+dendritic+cells+induce+NK+cell-dependent%2C+tumor+antigen-specific+T+cell+cross-priming+and+tumor+regression+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid dendritic cells induce NK cell-dependent, tumor antigen-specific T cell cross-priming and tumor regression in mice.</a> J. Clin. Invest. 118 (3), 1165-1175 (2008).</li>
<li>Fagarasan, S., Honjo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+IgA+synthesis%3A+regulation+of+front-line+body+defences%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Intestinal IgA synthesis: regulation of front-line body defences.</a> Nat. Rev. Immunol. 3 (1), 63-72 (2003).</li>
<li>Cisse, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factor+E2-2+is+an+essential+and+specific+regulator+of+plasmacytoid+dendritic+cell+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Transcription factor E2-2 is an essential and specific regulator of plasmacytoid dendritic cell development.</a> Cell. 135 (1), 37-48 (2008).</li>
<li>Blasius, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+marrow+stromal+cell+antigen+2+is+a+specific+marker+of+type+I+IFN-producing+cells+in+the+naive+mouse%2C+but+a+promiscuous+cell+surface+antigen+following+IFN+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Bone marrow stromal cell antigen 2 is a specific marker of type I IFN-producing cells in the naive mouse, but a promiscuous cell surface antigen following IFN stimulation.</a> J. Immunol. 177 (5), 3260-3265 (2006).</li>
<li>Symons, A., Budelsky, A. L., Towne, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+Th17+cells+in+the+gut+pathogenic+or+protective%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Are Th17 cells in the gut pathogenic or protective.</a> Mucosal. Immunol. 5 (1), 4-6 (2012).</li>
</ol>

De auteurs verklaren geen concurrerende financiële belangen.

De adoptieve overdracht techniek hierin beschreven onderzocht de bijdrage van CDP aan de PP pDC bevolking in de ontvangende muizen die deficiënt zijn in PP pDCs zijn (bv. IFNAR - / - muizen). In toekomstige experimenten, zal het belangrijk zijn om de mogelijkheden van andere voorlopercellen subsets te evalueren in het genereren van PP pDCs, met name of PP pDCs ontlenen Flt3 + CLPs. Deze vraag is belangrijk, want het blijft onduidelijk waarom PP pDCs zijn uniek gevoelig voor IFNAR-STAT1 sig...

Hier tonen we een protocol om te beoordelen of gemeenschappelijke dendritische cel voorlopers (CDP&#39;s) in staat zijn die aanleiding geven tot de plasmacytoide dendritische cel (PDC) bevolking in de Peyer&#39;s patch (PP). Het algemene doel van het gebruik van deze methode was om de ontwikkelingsdoelen regulering van pDCs in Peyer&#39;s patch (PP pDCs) te evalueren. De reden dat dit belangrijk is dat PP pDCs verschillen pDCs gevonden in andere weefsels, zoals beenmerg, bloed en milt, en daarom is het onduidelijk of PP pDCs en andere pDC populaties ontwikkelingsgebied en / of functioneel gerelateerd. Specifiek worden pDCs alom bekend als de belangrijkste type I interferon (IFN) producenten binnen het hematopoietische systeem, het reageren op Toll-like receptor 7 en 9 (TLR7 / 9) stimulatie door snelle IFN secretie 1-3. Echter, PP pDCs zijn deficiënte type I IFN reactie op TLR agonist stimulatie 4,5. Bovendien PP pDCs ook verschillen pDCs gevonden in beenmerg en miltwaarbij signalen van het type I interferon (IFN)-receptor (IFNAR1) of IFN-signalerend molecuul STAT1 voor hun ontwikkeling en / of accumulatie 5. Deze gegevens hebben de mogelijkheid dat verschillende regulerende mechanismen beheersen PP pDCs versus pDCs in andere organen (bijvoorbeeld beenmerg, milt) 5 voorgesteld. De reden die leidde tot de ontwikkeling van deze methode was gebaseerd op de recente vooruitgang in het begrip dendritische cel (DC) biologie. De meeste, zo niet alle, DC subsets afkomstig van hematopoëtische voorlopers die het FMS-achtige tyrosinekinase receptor 3 (Flt3) 6-10 expressie, maar is DC ontwikkeling niet beperkt tot de klassieke myeloïde en lymfoïde wegen. Bijvoorbeeld, Flt3 + gemeenschappelijke myeloïde voorlopercellen (CMP, lin - IL-7R - Sca-1 - c-kit + CD34 + FcyR lo / -) aanleiding geeft tot CDPs (lin - c-kit lo CD115 + Flt3 +), which verder differentiëren in pDCs en conventionele DC (CDC) 9,10. Daarentegen Flt3 + gemeenschappelijke lymfoïde voorlopercellen (CLPs, lin - IL-7R + SCA-1 lo c-kit lo) ontwikkelen voornamelijk in pDCs 11. Daarom voorafgaande studies geven pDCs voortvloeien uit minstens 2 verschillende hematopoietische voorlopercellen bevolking onder de regulering van Flt3L, hoewel de typische analyse is beperkt tot het beenmerg, de milt en / of bloed pDC subsets. Zo is de stamvader populatie (s) die PP pDCs genereert vereist onderzoek. Begrijpen van de oorsprong van PP pDCs zal licht werpen op de vraag of zij gemeenschappelijke ontwikkelingstrajecten met andere pDC bevolking, of gebruik maken van verschillende mechanismen tijdens hun generatie in PP. Een uniek voordeel van de hierin beschreven benadering is het gebruik van muizen die een ernstig tekort in PP pDCs als ontvangers voor de adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers tonen. Muizen met gentic deletie in het gen dat codeert IFNAR1 (IFNAR - / - muizen) of STAT1 (Stat1 - / -) bleek een opvallende afname in PP pDCs 5. Daarom zijn deze stammen bieden een omgeving waarin PP pDCs gereduceerd, waardoor adoptieve overdracht studies bij afwezigheid van krachtige cel ablatie regimes als letale bestraling worden uitgevoerd. Een extra sterkte van de hier gepresenteerde methode het gebruik van hydrodynamische genoverdracht (HGT) verhoogde circulerende hoeveelheden Flt3L stimuleren. Dit levert een rendabele aanpak Flt3L induceren in vivo versus injectie van recombinant eiwit. Talrijke studies, waaronder die in ons laboratorium hebben HGT gebruikt om cytokine bedragen induceren in een verscheidenheid van experimentele omstandigheden 5,12,13. De verdeling van arbeid en precieze immuunfuncties voor ontwikkelingslanden is van groot belang in de immunologie. Vooral pDCs zijn belangrijke mediatoren van orale tolerantie en systemische antiviralereacties, maar ze lijken ook bijdragen aan de ontwikkeling en persistentie van auto-immuniteit en kanker 14-17. De hierin beschreven protocol zal de ontwikkeling mechanismen tot regeling van PP pDCs meer te worden onderzocht. Bovendien kan deze aanpak laten studies naar PP PDC-functie te beoordelen, en kan worden uitgebreid tot het begrip van de regulatie en functie van andere immuun-populaties in PP.

<table><tbody><tr><td>C57BL/6J</td><td>JAX</td><td>664</td><td></td></tr><tr><td>B6.SJL</td><td>JAX</td><td>2014</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Invitrogen</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>15 ml Conical tubes</td><td>BD Biosciences</td><td>352095</td><td></td></tr><tr><td>50 ml Conical tubes</td><td>BD Biosciences</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>Steriele chirurgische pincetten</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steriele kleine schaar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Steriele grote schaar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>40 &mu;m celzevener</td><td>BD Biosciences</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>35 &mu;m celzevener kapbuizen</td><td>BD Biosciences</td><td>352235</td><td></td></tr><tr><td>RBC lyseringsbuffer</td><td>Sigma</td><td>R7757</td><td></td></tr><tr><td>FACS buffer</td><td></td><td></td><td>PBS, 2 mM EDTA, 1% FCS, filter gesteriliseerd</td></tr><tr><td>Percoll</td><td>GE Healthcare</td><td>17089102</td><td></td></tr><tr><td>10x HBSS</td><td>Sigma</td><td>H4641</td><td></td></tr><tr><td>Collageenase IV</td><td>Worthington</td><td>LS004188</td><td></td></tr><tr><td>Geiten anti-rat IgG microbeads</td><td>Milteyni Biotec</td><td>130-048-501</td><td></td></tr><tr><td>LD kolom</td><td>Milteyni Biotec</td><td>130-042-901</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-D3</td><td>BD Biosciences</td><td>555273</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-CD19</td><td>BD Biosciences</td><td>553783</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-CD11b</td><td>BD Biosciences</td><td>553308</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-CD11c</td><td>BD Biosciences</td><td>553799</td><td></td></tr><tr><td>Rat anti-Ter119</td><td>BD Biosciences</td><td>553671</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD3 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0031</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD19 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0193</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD11b (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0112</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD11c (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0114</td><td></td></tr><tr><td>Anti-F4/80 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-4801</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Ter119 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-5921</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Sca-1 (PE.Cy7)</td><td>eBiosciences</td><td>25-5981</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD115 (APC)</td><td>eBiosciences</td><td>17-1152</td><td></td></tr><tr><td>Anti-c-kit (APC.Cy7)&nbsp;</td><td>eBiosciences</td><td>47-1171</td><td></td></tr><tr><td>Anti-IL-7R (Pacific Blue)</td><td>eBiosciences</td><td>48-1271</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Flt3 (PE)</td><td>eBiosciences</td><td>12-1351</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD45.1 (APC.Cy7)</td><td>BD Biosciences</td><td>560579</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD45.2 (PE.Cy7)</td><td>Biolegend</td><td>109830</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD11c (Pacific Blue)</td><td>eBiosciences</td><td>48-0114</td><td></td></tr><tr><td>Anti-B220 (APC)</td><td>eBiosciences</td><td>25-0452</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Siglec-H (PE)</td><td>eBiosciences</td><td>12-0333</td><td></td></tr><tr><td>Anti-PDCA-1 (FITC)</td><td>eBiosciences</td><td>Nov-72</td><td></td></tr><tr><td>Celsorteer</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>bijv. BD Fortessa</td></tr><tr><td>Warmtelamp</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Muisbegrenzer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 ml Spuit</td><td>Becton Dickinson</td><td>309602</td><td></td></tr><tr><td>27&frac12; G naalden (sterieel)</td><td>Becton Dickinson</td><td>305109</td><td></td></tr></tbody></table>

het beoordelen van de ontwikkeling van de muriene plasmacytoïde dendritische cellen in peyer&#39;s patches met behulp adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers

Assessing the Development of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells in Peyer's Patches Using Adoptive Transfer of Hematopoietic Progenitors

Dit protocol detailleert een methode om het vermogen van gezuiverd hematopoëtische voorlopers aan plasmacytoïde dendritische cellen (PDC) in intestinale Peyer&#39;s Patch (PP) genereren analyseren. Gemeenschappelijke dendritische cel voorlopers (CDP, lin - c-kit lo CD115 + Flt3 +) werden gezuiverd uit het beenmerg van C57BL6 muizen door FACS en overgebracht naar ontvangende muizen die een aanzienlijke pDC bevolking PP beschikken, in dit geval, IFNAR - / - muizen werden als ontvangers overdracht. In sommige muizen, werd overexpressie van de dendritische cel groeifactor Flt3 ligand (Flt3L) voorafgaand aan de overdracht van de CDP adoptief afgedwongen, met behulp van hydrodynamische genoverdracht (HGT) van Flt3L-codering plasmide. Flt3L overexpressie breidt DC populaties afkomstig van overdracht (of endogene) hematopoëtische voorlopers. Op 7-10 dagen na voorlopercellen overdracht is pDCs die voortkomen uit de adoptief overgedragen voorlopers onderscheiden van ontvangende cellen op debasis van CD45 marker expressie, met pDCs uit overgedragen CDP&#39;s zijn CD45.1 + en ontvangers zijn CD45.2 +. Het vermogen overgedragen CDP bijdragen aan de PDC bevolking PP en reageren Flt3L werd geëvalueerd door flowcytometrie PP enkelvoudige celsuspensies van ontvangende muizen. Deze werkwijze kan worden getoetst of andere populaties voorlopercellen kunnen genereren PP pDCs. Bovendien kan deze benadering worden gebruikt om de rol van factoren die voorspeld beïnvloeden pDC ontwikkeling PP, door overdracht progenitor subsets met een geschikt knockdown, knockout of overexpressie van de vermeende ontwikkelingsfactor en / of door het manipuleren van circulerende cytokinen via HGT onderzocht . Deze methode kan ook de analyse van de manier waarop PP pDCs invloed op de frequentie of de functie van andere immuun subsets in PPs mogelijk te maken. Een uniek kenmerk van deze methode is het gebruik van IFNAR - / - muizen, die ernstig uitgeput PP pDCs opzichte van wildtype dieren, waardoor allowi tonenng reconstitutie van PP pDCs in afwezigheid van verstorende effecten van letale bestraling.

Onze resultaten tonen de gating strategie voor de isolatie van CDP uit beenmergcellen van de muis (figuur 1), zoals beschreven in de Protocollen 2 en 3. CDP&#39;s bevatten ongeveer 0,1% van de totale beenmergcellen, en ongeveer 4-6 x 10 4 CDP&#39;s kunnen worden geïsoleerd van een muis. Bij adoptieve overdracht, CDPs differentiëren in pDCs en CDCs 10. <img alt="Figuur 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_uplo...

Dit protocol beschrijft experimentele procedures om de differentiatie van plasmacytoïde dendritische cellen in Peyer&#39;s patch van zachte dendritische celvoorlopers nagegaan met behulp van technieken met FACS-gemedieerde isolatie hydrodynamische gentransfer en flow-analyse van immune subsets in Peyer&#39;s patch.

Het beoordelen van de ontwikkeling van de Muriene plasmacytoïde dendritische cellen in Peyer&#39;s Patches Met behulp adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers

This protocol details a method to analyze the ability of purified hematopoietic progenitors to generate plasmacytoid dendritic cells (pDC) in intestinal ...

Het algemene doel van de volgende procedure is om het vermogen van gezuiverde hematopoëtische progenitorcellen te onderzoeken om plasmacytoïde dendritische cellen te genereren in intestinale Peyerse platen na adoptieve transfer. Dit wordt bereikt door eerst hydrodynamische genoverdracht uit te voeren van het plasmide dat codeert voor de dendritische celgroeifactor FLT3-ligand in muizen met een defect in de plasmacytoïde dendritische cellen van de Peyerse platen.In de tweede stap worden algemene dendritische progenitorcellen uit wild-type beenmerg geïsoleerd via magnetische kraalseparatie en flow-sortering. In de laatste stap worden de progenitorcellen door middel van intraveneuze injectie adoptief overgedragen naar pyres patch plasmacytoïde dendritische cel-geïmpregneerde muizen die zijn behandeld met hydrodynamische gentransfer. Uiteindelijk kan de uit donorhematopoëtische progenitorcellen afgeleide PI's patch plasmacytoïde dendritische celpopulatie worden geëvalueerd via flowcytometrie.Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen binnen het veld van de immunologie, zoals de ontwikkelingsherkomst van de plasmacytoïde dendritische cellen die zich in de Peyerse platen lokaliseren. Hoewel deze methode inzicht kan bieden in de herkomst van plasmacytoïde dendritische cellen in de Peyerse platen, kan zij ook worden toegepast om te begrijpen hoe plasmacytoïde dendritische cellen de lymfocytenpopulaties binnen deze weefsels beïnvloeden.Twee dagen voor de adoptieve overdracht worden de bloedvaten van vijf CD 45 2 positieve interferon-alfa-receptor-knockout ontvanger-muizen gedurende vijf tot 10 minuten gedilateerd onder een warmtelamp. Plaats vervolgens elke muis in een fixatieapparaat en desinfecteer de staart met 70% ethanol. Injecteer daarna met een naald van 27 gauge vijf microgram plasma en coating flit three liganden en twee milliliters steriele PBS in de staartvene van elk dier.Injecteer voor de controlegroep vijf microgram van de lege vector. Plaats de muizen na een observatieperiode van 15 tot 30 minuten terug in hun huisvesting. Plaats op de dag van het experiment het gedisseceerde dijbeen en scheenbeen van 10 congene CD 45 1 positieve C 57 black six muizen in een kweekschaal met compleet medium.Plaats vervolgens een naald van 27 gauge in één uiteinde van elk bot en gebruik volledig medium om het beenmerg drie keer per bot in de schaal te spoelen. Controleer of de beenmergcellen worden verwijderd door vast te stellen dat het uitgestoten medium troebel oogt. Maak een enkelcellosuspenzie door het medium in de kweekschaal voorzichtig drie tot vijf keer op en neer te pipetteren.Verwijder vervolgens het debris door de beenmergcellen door een cellzeef van 40 micrometer te filteren en breek eventuele celklonten voorzichtig op met het uiteinde van een steriele spuiterplunjer. Centrifugeer de cellen in de zeef, verwijder het supernatant en lyseer de rode bloedcellen in twee milliliters lysisbuffer per vier tot zes keer 10^7 cellen gedurende vijf minuten bij kamertemperatuur. Voeg vervolgens 10 milliliters FACS-buffer toe aan de beenmergcellen en centrifugeer gedurende vier minuten bij 500 ×g bij kamertemperatuur.Na het voorzichtig aspireren van het supernatant, wast u de pellet in 10 milliliters fax-buffer. Kleur vervolgens de cellen met antilichamen die hematopoëtische lineage-markers herkennen, volgens de procedure voor antilichaamskleuring en wassen. Incubeer de cellen met magnetische microbeads tegen geiten-anti-rat.Laad tijdens de incubatie van de microbeads een max LD-kolom op een MIDI max celseparator en spoel de kolom voor met twee milliliter fax-buffer. Plaats vervolgens een conische buis van 15 milliliter onder de kolom en breng maximaal vijf keer 10^8 cellen in 2,5 milliliter fax-buffer op de kolom aan. Was de kolom drie keer met telkens twee milliliter fax-buffer, waarbij de lineage-negatieve cellen die door de kolom passeren worden opgevangen in de buis van 15 milliliter.Tel de geëludeerde cellen. Breng het monster vervolgens over naar een FACS-buis voor het sorteren van de gemeenschappelijke dendritische progenitoren op basis van het gewenste markerprofiel, nadat de cellen zijn gekleurd met de passende fluorescentiegeconjugeerde antilichamen. Verzamel de via FACS gezuiverde cellen in een buis van 15 milliliter met vijf milliliter compleet medium en noteer aan het einde van de FACS-run het absolute aantal gesorteerde cellen.Na het centrifugeren worden de cellen verdund tot 1 x 10⁵ gezuiverde gemeenschappelijke dendritische progenitoren per 100 µL totaal volume steriele PBS per muis, waarna de celsuspensies worden opgezogen in spuiten uitgerust met naalden van gauge 27. Injecteer vervolgens de CD45.1-positieve progenitorcellen in de staartvene van elke ontvangende CD45.2-positieve interferon-alfareceptor-knockoutmuis, zoals zojuist gedemonstreerd, zeven tot 10 dagen na de adoptieve transfer. Verwijder de darmen uit de muizen die zijn geïnjecteerd met gemeenschappelijke dendritische celprogenitoren en plaats de weefsels op met PBS doordrenkte papieren handdoeken.Gebruik vervolgens een fijne pincet en een schaar om alle zichtbare Peyerse platen langs de wand van de dunne darm te verzamelen. Let erop dat de Peyerse platen vaak structureel verschillend zijn, zelfs binnen één enkele muis, dus zorg ervoor dat alle Peyerse platen worden geïdentificeerd en gedisseceerd. Was de geïsoleerde Peyerse platen drie keer in een Petrischaal met PBS, waarbij de pincet wordt gebruikt om de feces te verwijderen.Verteer vervolgens de P'S-patches met één milligram per milliliter collagenase four in 10 milliliter HBSS in een kolf van 50 milliliter onder krachtig roeren bij 37 °C. Giet na een uur de verteerde PIs-patches door een cellzeef van 40 µm en gebruik de zuiger van een steriele spuit om de cellen in een conische buis van 15 milliliter te persen. Na het centrifugeren van de gefilterde cel-suspensie wordt het pellet geresuspendeerd in zes milliliter 37%per call-oplossing en overgebracht naar een buis van 15 milliliter.Plaats vervolgens voorzichtig zes milliliter van een 70% Percoll-oplossing eronder om een Percoll-stapsgradiënt te vormen. Centrifugeer de cellen nu gedurende 20 minuten bij 800 ×g bij kamertemperatuur met de rem uitgeschakeld. Verzamel vervolgens de populatie mononucleaire cellen op de interface.Nadat de verzamelde cellen zijn gepellet, worden deze twee keer gewassen in 50 milliliters compleet medium. Kleur ze vervolgens met de passende antilichamen om de CD 45 1 positieve PYS-patch te detecteren. Plasmacytoïde dendritische cellen die afkomstig zijn van de adoptief overgedragen CD 41 positieve progenitoren.Analyseer de cellen via flowcytometrie. De plasmacytoïde dendritische cellen kunnen worden geïdentificeerd aan hun CD 11 C positieve clec H positieve PDCA one positieve B twee 20 positieve CD 11 B negatieve fenotype. Bepaal tot slot het absolute aantal plasmacytoïde dendritische cellen met behulp van deze vergelijking.Deze dot-plots geven de gating-strategie weer voor de isolatie van algemene dendritische progenitorcellen. Voor muurgenmergcellen, zoals zojuist gedemonstreerd, vormen algemene dendritische progenitorcellen ongeveer 0,1% van de totale beenmergcellen; er kunnen ongeveer vier tot zes × 10⁴ van deze cellen uit één muis worden geïsoleerd om plasmacytoïde dendritische cellen via flowcytometrie te identificeren.Er wordt gebruikgemaakt van een initiële gating-strategie op basis van forward- en side-scatter, gevolgd door gating voor CD 11 C positieve clec H positieve cellen. Interferon alpha receptor knockout-muizen vertonen een significante afname van pys patch plasmacytoïde dendritische cellen in vergelijking met wildtype-muizen. Gemeenschappelijke dendritische progenitorcellen differentiëren tevens tot conventionele dendritische cellen.In tegenstelling tot plasmacytoïde dendritische cellen worden CD 11 C-positieve clec H-negatieve conventionele dendritische cellen in vergelijkbare hoeveelheden waargenomen in zowel wild-type als knockout-muizen. Daarom bieden interferon-alfa-receptor knockout-muizen een mogelijkheid om de reconstitutie van PS-patch plasmacytoïde dendritische cellen te onderzoeken zonder de effecten van letale bestraling. De adoptieve transfer van wild-type gemeenschappelijke dendritische progenitoren in interferon-alfa-receptor knockout-muizen, zoals zojuist aangetoond, stimuleert een toename van PIs-patch plasmacytoïde dendritische cellen.Bovendien versterkt voorbehandeling met hydrodynamische gentransfer van FL3-ligand de expansie van plasmacytoïde dendritische cellen in PIs-patches verder, wat impliceert dat overgedragen gemeenschappelijke dendritische progenitoren en mogelijk endogene FL3-positieve progenitoren reageren op FL3-ligand door pyrus-patch plasmacytoïde dendritische cellen te induceren. Beide condities stimuleren ook de productie van CD11c-positieve clecH-negatieve conventionele dendritische cellen, wat consistent is met de ontwikkelingsherkomst van conventionele dendritische cellen. PYS-patch plasmacytoïde dendritische cellen expresseerden traditionele plasmacytoïde dendritische celmarkers, waaronder clecH, PDCA-1 en B220, en LAC CD11b. Daarnaast laat analyse van de PYS-patches van interferon-alfareceptor-knockoutmuizen, die zowel hydrodynamische gentransfer van FL3-ligand als overgedragen gemeenschappelijke dendritische progenitoren hebben ontvangen, zien dat ongeveer 70% van de plasmacytoïde dendritische cellen afkomstig is van donor CD45.1-positieve gemeenschappelijke dendritische progenitoren.Collectief tonen deze gegevens aan dat adoptieve overdracht van gemeenschappelijke dendritische progenitoren de PIs patch plasmacytoïde dendritische celpopulatie induceert als reactie op signalen gemedieerd door FL three ligand in vivo. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u pars patch plasmacytoïde D-cellen kunt isoleren en identificeren.

assessing-development-murine-plasmacytoid-dendritic-cells-peyer-s

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie en Infectie

Deze video toont de procedure voor de differentiatie van myeloïde dendritische cellen van de muis beenmerg. Isolatie van de muis scheenbeen en dijbeen, en verwerking van het beenmerg worden aangetoond. Foto's tonen celmorfologie voor en na de differentiatie, en figuren afbeelden cel fenotype en IL-12 productie na rijping met behulp van CpG worden weergegeven.

Cultuur van myeloïde dendritische cellen uit beenmerg precursors

Antigeen presentatie in secundaire lymfoïde organen door de dendritische cellen is cruciaal voor de opening van het T-cel gemedieerde adaptieve immuunrespons. Hier laten we zien de cultuur van beenmerg afgeleide dendritische cellen van muizen, activering, en de etikettering voor 2-photon imaging.

Generatie van beenmerg afgeleide Murine dendritische cellen voor gebruik in twee-foton Imaging

This video demonstrates an in vitro assay to generate plasmacytoid dendritic cells (pDCs) from common lymphoid progenitor cells (CLPs). Upon co-culturing purified CLPs with γ-irradiated feeder cells in the presence of Fms-like tyrosine kinase-3 ligand (FL), the CLPs differentiate into non-adherent pDCs, the presence of which is confirmed using flow cytometry.

In Vitro Generation of Plasmacytoid Dendritic Cells from Common Lymphoid Progenitors

Er is een toenemende belangstelling voor het begrijpen van de immunologische functies van specifieke subpopulaties van cellen in platen van Peyer (PP), de primaire inductieve plaatsen van darm-geassocieerd lymfeweefsel. Hier schetsen we parallel protocollen voor de voorbereiding van PP enkele cel voorbereidingen voor flowcytometrische analyse en PP cryocoupes voor immunokleuring.

Isoleren En Immunokleuring Lymfocyten en dendritische cellen uit Patches Murine Peyer

In deze studie presenteren we een in vitro kweeksysteem dat efficiënt pDC's kan genereren door co-cultiveren van gemeenschappelijke lymfoïde progenitorcellen met AC-6 feedercellen in aanwezigheid van Flt3-ligand.

In vitro generatie van Muriene plasmacytoïde dendritische cellen van Common Lymfoïde Progenitors met behulp van de AC-6 Feeder System

Wij rapporteren een protocol met behulp van fluorescentie-geactiveerde celsortering met plasmacytoïde dendritische cellen (PDC) met hoge zuiverheid uit het beenmerg van lupus-muizen gevoelig voor functionele studies pDC isoleren.

Fluorescentie-geactiveerde Cell Sorting voor Zuivering van plasmacytoïde dendritische cellen van de muis Bone Marrow

Hier presenteren we een protocol te ontwikkelen en karakteriseren van tolerogenic dendritische cellen (TolDCs) en evalueren van hun immunotherapeutische nut.

Ontwikkeling en functionele karakterisering van lymfkliertest Tolerogenic dendritische cellen

Hier presenteren we een protocol om te isoleren van dendritische cellen uit lymfkliertest milt door magnetische cel Sorteren en latere adoptief overdracht naïef muizen. Het model van hoge-zout geactiveerde dendritische cellen werd gekozen om de stapsgewijze procedures voor de overdracht van de geadopteerde en stroom cytometry uitleggen.

Isolatie en adoptief overdracht van hoge zout behandeld antigeen-presenteren dendritische cellen

Graft-versus-host ziekte is een belangrijke complicatie na allogene beenmergtransplantatie. Dendritische cellen spelen een cruciale rol in de pathogenese van graft-versus-host ziekte. Het huidige artikel beschrijft een nieuw beenmergtransplantatieplatform om de rol van dendritische cellen te onderzoeken bij de ontwikkeling van graft-versus-host ziekte en het graft-versus-leukemie-effect.

Beenmergtransplantatie Platform om de rol van dendritische cellen in graft-versus-host ziekte te onderzoeken

Hier bieden we een protocol voor het screenen van potentiële transcriptiefactoren die betrokken zijn bij de ontwikkeling van dendritische cel (DC) met behulp van lentivirale transductie van shRNA om stabiele knockdown-cellijnen te verkrijgen voor in vitro DC-differentiatie.

Studie van dendritische celontwikkeling door korte haarspeld RNA-gemedieerde gen knockdown in een hematopoëtische stam en voorlopercellijn in vitro

Leer adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers om plasmacytoïde dendritische cellen te genereren in Peyer-patches van muizen. Deze methode analyseert de ontwikkeling van immuuncellen in darm-geassocieerde lymfoïde weefsels.

Het beoordelen van de ontwikkeling van de Muriene plasmacytoïde dendritische cellen in Peyers Patches Met behulp adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers (Video) | JoVE Journal

Het beoordelen van de ontwikkeling van de Muriene plasmacytoïde dendritische cellen in Peyer's Patches Met behulp adoptieve overdracht van hematopoëtische voorlopers

Meer video's verkennen