29 juli 2014
We beschrijven een protocol bij de ontwikkeling van door opioïden veroorzaakte hyperalgesie en tolerantie in muizen te onderzoeken. Op basis van de meting van thermische en mechanische nociceptieve reacties van naïeve en morfine behandelde dieren, het mogelijk om de toename van gevoeligheid voor pijn (hyperalgesie) kwantificeren afname analgesie (tolerantie) geassocieerd met chronische opiaat toediening.
Het algemene doel van het volgende experiment is om de ontwikkeling van opioïde-geïnduceerde hyperalgesie en analgesietolerantie bij muizen te observeren. Dit wordt bereikt door de thermische en mechanische nociceptieve responsen van naïeve muizen te meten na toediening van morfine over een tijdverloop op dag nul als tweede stap. De nociceptieve drempel wordt dagelijks gemeten voorafgaand aan de toediening van morfine op de zevende dag.
Het analgetische effect van morfine wordt opnieuw over een tijdsverloop gemeten om de ontwikkeling van analgetische tolerantie aan te tonen. De resultaten laten een toename in pijnsensitiviteit zien, evenals de ontwikkeling van analgetische tolerantie na herhaalde toediening van morfine.
Hoewel deze methode inzicht kan bieden in de ontwikkeling van pijngevoeligheid en analgesietolerantie bij meerdere muizen na chronische opiaatbehandeling, kan deze ook worden toegepast op andere opiaten of genetisch gemodificeerde muizen. De procedure zal worden gedemonstreerd door een promovendus uit mijn laboratorium. Om stress-geïnduceerde analgesie te minimaliseren, worden de muizen elke dag vijf minuten gehanteerd en gewend gemaakt totdat ze vrijwillig de fixatieset binnengaan.
Zodra de gewenning is voltooid, start de staartdompeltest door de thermostaat op 48 graden Celsius in te stellen. Plaats de muis voorzichtig in de fixatiehouder. Zodra de muis correct is gefixeerd, dompel de uitstekende twee derde van de staart in het waterbad en start de chronometer.
Het onderscheid maken tussen nociceptie en de nociceptieve respons is een essentieel onderdeel van deze procedure. Een juiste beoordeling en oefening zijn cruciaal voor succes. Monitor de beweging van het dier en stop de chronometer.
Zodra de muis zijn staart uit het warme water trekt, wordt de latentietijd van de terugtrekking genoteerd. Plaats de muis terug in de kooi en test het volgende dier tot het einde van de reeks, waarbij dezelfde volgorde wordt aangehouden. Herhaal de metingen van de nociceptieve respons nog twee keer.
De latentietijd van de nociceptieve respons in seconden voor elke muis wordt bepaald als de gemiddelde waarde van drie opeenvolgende bepalingen. Voor de staartdruktest wordt de muis eerst voorzichtig in de fixatiehouder geplaatst en wordt de staart onder de conische punt van de analoge meter gepositioneerd. Zodra deze op zijn plaats zit, wordt de voetschakelaar ingedrukt om een gelijkmatig toenemende druk uit te oefenen op het proximale deel van de staart.
Trek de tip direct terug bij het eerste teken van een nociceptieve reactie. Nociceptieve responsen kunnen bestaan uit worstelen, piepen of het terugtrekken van de staart. Noteer de huidige kracht in grammen die de nociceptieve respons uitlokt.
Herhaal deze meting op de mediane en distale delen van de staart van dezelfde muis in intervallen van 32 seconden, plaats het dier terug in de thuiskooi en herhaal deze stappen totdat alle muizen zijn getest. Definieer vervolgens twee groepen dieren met vergelijkbare gemiddelde nociceptieve waarden. Meet en noteer daarna het lichaamsgewicht van elk dier.
Zodra de zoutoplossings- en morfinegroepen zijn vastgesteld, wordt een morfine-oplossing in fysiologische zoutoplossing bereid voor subcutane toediening. Meet de latentietijden van de nociceptieve respons bij zowel de tail immersion- als de tail pressure-test en noteer deze als tijdstip 0,0 voor elke groep. Injecteer vervolgens morfine of zoutoplossing bij elk dier, afhankelijk van de groep waartoe het behoort.
Begin na 30 minuten met het registreren van de nociceptieve reacties bij elk dier. Let goed op de grenswaarden, aangezien muizen op dit vroege tijdstip waarschijnlijk niet zullen reageren op de schadelijke stimuli. Bij afwezigheid van een nociceptieve reactie wordt een grenswaarde van 25 seconden gehanteerd om weefselbeschadiging te voorkomen, waarbij dezelfde testvolgorde wordt aangehouden.
Herhaal de nociceptieve metingen elke 30 minuten tot 3,5 uur na injectie voor chronische morfinebehandeling. Verkrijg de waarden van dag één door de nociceptieve respons van de dieren op de TIT en TPT te meten, zoals eerder gedemonstreerd. Bereid een verse morfineoplossing.
Dien morfine- of saline-injecties toe volgens de groepsindeling en laat de dieren rusten tot de volgende dag. Meet de volgende dag de nociceptieve responsen op de TIT en TPT voordat een tweede ronde injecties wordt toegediend. Herhaal deze stappen elke dag gedurende zes dagen.
Evalueer op dag zeven de door morfine geïnduceerde analgesie. Volgens het tijdverloop-paradigma dat eerder in de staartonderdompelingsproef werd aangetoond, werd het maximale analgesische effect van morfine bereikt na 30 minuten. Echter, in de staartdrukproef werd het maximale effect bereikt na 60 minuten vergeleken met de zoutoplossing-geïnjecteerde controles.
Deze resultaten laten zien dat dagelijkse morfine-injecties over een behandelperiode van zeven dagen leidden tot een significante en progressieve verlaging van de basale thermische en mechanische nociceptieve waarden. Na chronische behandeling was de basale nociceptieve waarde bij de met morfine behandelde muizen significant lager dan die van de zoutoplossing-geïnjecteerde controlemuizen. Na acute toediening van morfine nam de nociceptieve respons van de chronisch met morfine behandelde groep significant toe, maar overtrof deze slechts gering gesproken de basale nociceptieve waarde van de zoutoplossing-geïnjecteerde controle.
Muizen gemeten na 30 minuten in TIT en TPT en na 60 minuten in TIT; hier zijn de gemeten nociceptieve drempelwaarden 30 minuten na injectie van zoutoplossing of morfine uitgezet voor dag nul en dag zeven van de ontwikkeling. Deze techniek maakte de weg vrij voor onderzoekers in het veld van pijnonderzoek om het effect van farmacologische of genetische interventies te onderzoeken bij de ontwikkeling van pijnhyperesthesie en analgesietolerantie geïnduceerd door chronische toediening van morfine.
Deze studie presenteert een protocol om opioïde-geïnduceerde hyperalgesie en analgesietolerantie bij muizen te onderzoeken. Door thermische en mechanische nociceptieve responsen te meten, kwantificeert het protocol veranderingen in de pijngevoeligheid en analgesie na chronische toediening van morfine.
Opioïde-geïnduceerde hyperalgesie en analgesietolerantie vormen kritieke uitdagingen bij de ontwikkeling van analgetica, waardoor de langetermijneffectiviteit van opioïde therapieën wordt ondermijnd. Dit protocol maakt mechanische risicoreductie mogelijk door thermische en mechanische nociceptieve verschuivingen in vivo te kwantificeren, wat bijdraagt aan targetvalidatie en voorspellende betrouwbaarheid van analgetische kandidaten. De aanpak biedt een ziekterellevant systeem voor het evalueren van genetische en farmacologische modulatoren van de opioïde respons, wat essentieel is voor portfoliotriage en lead-identificatie in pijnonderzoek.
De methode is geïntegreerd in het continuüm van analgesicum-ontwikkeling, van vroege targetvalidatie via lead-optimalisatie tot preklinische werkzaamheidstests, waardoor een iteratieve beoordeling van de analgetische potentie en de therapeutische index mogelijk is.