22 januari 2014
Ontwikkelen biotinylatable fusie-eiwitten heeft veel potentiële toepassingen in diverse gebieden van onderzoek. Recombinant eiwit-engineering is een rechttoe rechtaan procedure die is kosteneffectief, het verstrekken van hoge opbrengsten van op maat gemaakte eiwitten.
Het algemene doel van deze procedure is om succesvol recombinante gebiotineerde eiwitten te ontwerpen, tot expressie te brengen en te isoleren die kunnen worden opgenomen in een verscheidenheid aan toepassingen zoals sondes, sensoren, medicijnafgifte en weefselengineering. Dit wordt bereikt door eerst het op maat ontworpen plasmide te transformeren in een bacteriële gastheercellijn met behulp van kleinschalige culturen, en vervolgens de expressie van het doeleiwit te induceren. Vervolgens wordt de aanwezigheid en oplosbaarheid van het doeleiwit bepaald om geschikte zuiveringsprocedures te formuleren.
Vervolgens wordt de procedure opgeschaald om grotere opbrengsten van het doeleiwit te produceren, die vervolgens worden geïsoleerd met behulp van affiniteitschromatografietechnieken. Ten slotte worden de eiwitten gezuiverd en vervolgens geconcentreerd voor downstream-toepassingen en -analyses. Uiteindelijk bevestigen SDS-pagina en FPLC-resultaten dat recombinante eiwitten succesvol zijn geïsoleerd en gezuiverd en worden de eiwitten verder getest op functionaliteit.
Het belangrijkste voordeel van recombinante eiwitontwerp is dat het ons in staat stelt om grootschalige of milligram-schalige hoeveelheden op maat ontworpen eiwitten te maken om aan onze exacte wetenschappelijke specificaties te voldoen. Bijvoorbeeld, we kunnen nieuwe functionaliteiten toevoegen aan delen van deze eiwitten om nieuwe eigenschappen mogelijk te maken. We laten u vandaag zien hoe u de uiteinden van specifieke eiwitten kunt biotinen, en we gebruiken dit om deze eiwitten specifiek te immobiliseren of te verankeren op oppervlakken om cellulaire functies zoals neuronale uitgroei of neuronale differentiatie te begeleiden.
Personen die nieuw zijn met deze techniek, zouden niet veel moeite moeten hebben bij het volgen van de procedures voor zowel native als niet-native eiwitsisolatie. Veel stappen zijn hetzelfde, maar vereisen specifieke buffers die zijn geformuleerd voor native of niet-native omstandigheden. Zorgvuldige aandacht voor details tijdens het begin.
Transformatie- en testexpressiefasen zorgen voor een hoge eiwitopbrengst tijdens het latere uiteindelijke opschaalproces. Visuele demonstratie van deze methode is belangrijk omdat het laat zien hoe recombinante eiwitten kunnen worden gemaakt met behulp van eenvoudige laboratoriumapparatuur en benodigdheden. Door gebruik te maken van de eenvoudige batchreactie, worden e-gelijk en groeimedia grootgebracht in leiderschaal, waarbij 10 milligram eiwit per hoofdcultuur wordt geproduceerd.
Bovendien kunnen chromatografietechnieken worden gebruikt en gedemonstreerd om te laten zien hoe eiwitten verder worden gezuiverd voor downstream-toepassingen. Vandaag zal Alicia, afgestudeerde Cinema Lab, de procedure demonstreren. Na het klonen en testen op expressie van het doeleiwit van belang en het kweken van een 20 milliliter cultuur gedurende de nacht. Volgens het tekstprotocol, giet de nachtelijke cultuur in 1,8 liter steriele groeimedium met ampicilline en gebruik een pasterpijpje om zes tot acht druppels steriele anti-schuim 2 0 4 plaats culturen in een waterbad van 37 graden Celsius door een 0,2 micronfilter, laat perslucht door de culturen inbellemen door middel van beluchtingsstenen. Wanneer de cultuur een OD 600 van 0,7 tot 0,8 bereikt bij één millimolair IPTG en induceert deze gedurende vier uur bij 37 graden Celsius of overnacht bij 18 graden Celsius, afhankelijk van of het eiwit werd gevonden in de oplosbare of onoplosbare fractie in de testexpressie.
Experimenten om de cellen te verzamelen, breng de cultuur over in één liter centrifugeerbuizen en centrifugeer gedurende 15 minuten bij 14.000 maal zwaartekracht en vier graden Celsius. Giet de supernatant af en gebruik een dunne spatel om de bacteriële pellet in twee 50 milliliterbuizen te scheppen. Pellet de cellen opnieuw door centrifugatie gedurende enkele minuten voordat de pellets worden bewaard bij min 80 graden Celsius.
Om niet-native eiwitisolatie uit te voeren voor een onoplosbaar eiwit naar elke bevroren e coli-pellet. Voeg 20 milliliter lysis, wasbuffer toe en vortex en schud om op te schorsen om eventuele grote stukken te elimineren.
Na incubatie op een mutator gedurende de nacht, zal de oplossing eruitzien als een viskeuze slurry centrifuge. De slurry bij 20.500 maal zwaartekracht en kamertemperatuur gedurende 30 minuten. Breng de supernatant over naar een verse buis en gooi de pellet weg voor native eiwitisolatie.
Resuspendeer de pellets in lysisbuffer tot een eindvolume van 30 milliliter met de opgeschorte pellet op ijs. Stel de sonicate in op een amplitude van 30% met een puls van 30 seconden aan en 30 seconden uit, en soniceer gedurende vijf minuten. Laat de buis tijdens het soniceren op en neer bobbelen om de celpellet volledig te breken.
Centrifugeer de slurry bij 20.500 maal zwaartekracht en vier graden Celsius gedurende 30 minuten. Breng vervolgens de supernatant over naar een verse buis en gooi de pellet weg. Om affiniteitschromatografie uit te voeren op een niet-natief geïsoleerd eiwit, voegt u één milliliter nikkel NTA-harsoplossing toe aan elke centrifugeerbuis en incubeert u deze op een mutator of schudder bij kamertemperatuur gedurende minimaal één uur.
Giet de slurry in een affiniteitskolom en laat de oplossing volledig druppelen door de stopcockklep in een afvalbeker. Voeg 10 milliliter wasbuffer toe aan de centrifugeerbuis om resterende hars te verwijderen en voeg de oplossing toe aan de kolom nadat de oplossing is gedropt. Gebruik een glazen roerstaaf om de hars te roeren en laat deze volledig druppelen voordat u nog een wasbeurt toevoegt.
Gebruik vervolgens 10 milliliter wasbuffer om de wasbeurt van de centrifugeerbuis te herhalen en breng deze over naar de kolom. Voer vervolgens acht meer wasbeurten uit van de kolom met 10 milliliter lysiswasbuffer voor elke wasbeurt. Nadat de wasbeurten voltooid zijn, sluit u de stopcock en vervangt u de afvalbeker door de 50 milliliter centrifugeerbuis.
Voeg 15 milliliter eluciabuffer toe aan de kolom, roer de hars en laat de oplossing gedurende vijf minuten staan. Open vervolgens de stopcock en verzamel de EIT voordat u herhaalt met
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel bespreekt het ontwerp, de expressie en de isolatie van recombinante gebiotineleerde eiwitten voor diverse toepassingen. Het proces omvat het transformeren van plasmiden in bacteriële cellen, het induceren van eiwitexpressie en het zuiveren van de eiwitten met behulp van affiniteitschromatografie.
De productie van recombinant gebiotineerd eiwit maakt de schaalbare generatie van op maat ontworpen biologische middelen mogelijk voor toepassingen bij de regeneratie van zenuwweefsel. Deze aanpak ondersteunt doelwitvalidatie en het verminderen van mechanische risico's door gedefinieerde moleculaire instrumenten te bieden om neuronale uitgroei- en differentiatiepaden te onderzoeken. De methode biedt voorspellende zekerheid in preklinische modelsystemen via reproduceerbare, affiniteitsgezuiverde eiwit-inputs voor de functionalisering van biomaterialen.
De methode wordt geïntegreerd in vroege discovery-workflows door gevalideerde eiwitreagentia te leveren voor target-engagementstudies, gevolgd door assay-ontwikkeling voor lead-identificatie, en door preklinische validatie mogelijk te maken via eiwitpresentatie geconjugeerd aan biomateriaal.