Name: Een Microfluïdische Techniek om Cell Vervormbaarheid Probe (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 47 s
Description: Leer een microfluïdische techniek om celvervormbaarheid te meten met PDMS-apparaten en drukgestuurde stroming. Deze methode biedt hoge doorvoer voor het bestuderen van celbiomechanica en gedrag.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs willen graag Lloyd Ung erkennen voor constructieve inbreng in de eerste versies van deze techniek, Dr Jeremy Agresti voor druk cap design tips, en Dr Dongping Qi voor zijn hulp bij het fabriceren van de druk cap. We zijn dankbaar voor de laboratoria van M. Teitell en P. Gunaratne voor het verstrekken van een verscheidenheid aan mobiele monsters voor het testen. We zijn dankbaar voor de National Science Foundation (Career Award DBI-1254185), de UCLA Jonsson Comprehensive Cancer Center, en de UCLA Clinical and Translational Science Institute voor de ondersteuning van dit werk.

1 Microfluïdische Device Ontwerp NB: Het ontwerp apparaat heeft vier fundamentele functionele gebieden: toegangspoort, cel filter, vernauwing array, en exit-poort (figuur 1). De inrichting kan worden toegepast op een breed scala aan celtypen, met kleine aanpassingen afmetingen. Hier zijn een paar eenvoudige ontwerp aanbevelingen samen met device parameters die effectief zijn voor een selectie van zowel primaire als onsterfelijke cellen zijn. <ol><li> Selecteer de breedte van beklemming matrix kanalen (Figuur 1B) ongeveer 30-50% van de gemiddelde cel diameter zijn; Deze vernauwing naar celgrootte verhouding resulteert in aanzienlijke celvervorming maar minimale verstopping. Gegeven een celtype dat niet eerder is getest, is het verstandig om een ​​scala van beklemming breedtes ontwerpen van ~ 30-50% van de cel diameter om de optimale breedte te vinden. Zoals met vele soorten van microfluïdische apparaten, kan meer dan 120 apparaatrecords mallen worden patroon op een zondegle 4 inch siliciumwafel, waardoor een reeks verschillende ontwerpen inrichting wordt vervaardigd in een enkel fabricageproces. </li><li> Selecteer de goothoogte ten minste 50% van de cel diameter zijn; Dit zorgt ervoor dat de cel beperkt in 2 dimensies. Om kanaal instorting tijdens bonding te voorkomen, ervoor zorgen dat het kanaal beeldverhouding is niet minder dan 1:10 (hoogte: breedte) in het hele apparaat. Voor kanalen die dit aspect ratio moet groter zijn dan, voeg steunpalen instorting te voorkomen. Space standpijpen op een afstand die ten minste tweemaal de diameter cel naar cel stroom niet belemmeren. </li><li> Onder andere een filter aan de ingang poorten om puin cel clusters (figuur 1B) te verwijderen en uit elkaar getrokken. De grootte en afstand van de filter posten zodat de afstand tussen de staanders is ongeveer gelijk aan een cel diameter. OPMERKING: De ondergrens van feature size wordt door de resolutie waarmee de lithografie masker dient te worden afgedrukt. Ervoor te zorgen dat alle functies zijn binnen de resolution termijn die het masker leverancier. </li></ol> 2 Supplies en voorbereiding LET OP: Voordat u begint met de proef moeten de volgende punten worden voorbereid. Een schema van de gehele installatie is gegeven in figuur 1. <ol><li> Vervaardig de apparaatrecords toepassing van standaardtechnieken voor lithografische micromachining 14,15. Controleer de hoogte van het patroon functies met behulp van een profilometer. Opmerking: hoewel masters gemakkelijk kan worden vervaardigd in een cleanroom faciliteit hebben sommige laboratoria goedkope lithografische werkwijzen ontwikkeld voor gebruik in een semi-schoon milieu 16,17. </li><li> De lucht bron voor te bereiden op drukgedreven stroom, met behulp van een tank van perslucht en de volgorde van de lucht regelgevers en fittingen (figuur 1A). <ol><li> Opzetten van een luchttoevoer tank en handmatige regelaar. OPMERKING: Een samenstelling van 5% CO2 in lucht zorgt voor een soortgelijke omgeving als een typische celkweek incubator, maar andere gasmengsels kunnen ook worden gebruikt. </li><li> Opzetten van een elektronisch gestuurde drukregelaar in lijn met de handmatige regelaar. Met een elektro-pneumatische omzetter te reguleren en een stabiele drukval over de kanalen bijhouden die drukschommelingen van minder dan 2 kPa. Gebruik de eenvoudige code geschreven in LabVIEW (aanvullende informatie) voor het invoeren van de gewenste druk. OPMERKING: De elektro-pneumatische omvormer gebruikt een interne terugkoppeling aan de klep uitlaatdruk naar de opgegeven druk over de microfluïdische apparaat overeenkomen passen. </li><li> Stel een drukkamer om stroming van de celsuspensie drijven. Monteer een celsuspensie kamer van een standaard stroomcytometer buis en een bewerkte cap die een druk-afdichting op de buis ontstaat. OPMERKING: De drukkamer dop bevat twee openingen: een inham die verbinding maakt met de perslucht tank, en een uitlaat waardoor cellen vloeien voort uit de onder druk staande kamer in het apparaat (Figure 2). </li></ol></li><li> Stel een omgekeerde microscoop uitgerust met een camera die een opnamesnelheid van ten minste 100 beelden per seconde om beelden van de cellen stroomt door de vernauwing matrix vangen heeft. De interface van de camera met een video capture-kaart en een computer. </li><li> Bereid een voorraad oplossing van oppervlakteactieve stof van 10% g / g Pluronic F-127 in fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS) het toevoegen van een kleine hoeveelheid F127 het celmedium oplossing helpt om celadhesie aan de PDMS wanden minimaliseren. De F127 oplossing, vortex en warmte bereiden voorzichtig bij 37 ° C om de F127 lossen. Voor gebruik laat de oplossing door een 0,2 urn spuitfilter en bewaren bij kamertemperatuur. Bereid de oppervlakte-actieve oplossing van tevoren als vortexen en filtering zal bellen die zal blijven bestaan ​​voor meer dan 24 uur te genereren. </li></ol> 3 Microfluïdische Device Fabrication <ol><li> Fabriceren PDMS blok met microfluïdische kanalen. <ol><li> Mix PDMS grondig eenta verhouding van 1:10 (w / w) curing agent base. </li><li> Giet het mengsel over het apparaat master (Stap 2.1). Degas in een glazen stolp met toegepaste vacuüm totdat de ingesloten luchtbellen verdwijnen, of voor ongeveer 10-20 minuten. OPMERKING: Na deze tijd, kunnen er nog steeds bubbels in de lucht-PDMS-interface, wat normaal is; Deze zal kenmerkend elimineren tijdens het bakken. Het is zeer cruciaal om te waarborgen dat er geen resterende luchtbellen aangrenzend aan de kanalen. </li><li> Bak de ontgaste apparaat bij 65 ° C gedurende 4 uur. Kanalen voorkomen instorten, bak het apparaat gedurende de nacht verder verknopen de PDMS voor een inrichting met een hogere elasticiteitsmodulus die meer resistent kanaal instorten. Merk echter op dat het bakken uitgebreid bros ook de PDMS en kan leiden tot scheurtjes als het ponsen van gaten (Stap 3.3). </li></ol></li><li> Verwijder microfluïdische apparaten van de meester mal. Snijd individuele microfluïdische apparaten uit de PDMS blok met een scheermesje en haal het apparaat uit de masteh. Begin met voorzichtig til een hoek van de inrichting; langzaam en zacht peeling, in tegenstelling tot het opheffen van de PDMS blok recht omhoog, vermindert de belasting van zowel de PDMS en de master. </li><li> Punch gaten in het PDMS apparaat aansluitingen te creëren voor toegang tussen slangen en microkanalen. Maak gaten met een biopsie punch en punch uit het kanaal zijkant door de buitenzijde van de inrichting. OPMERKING: Een biopsie punch met een 0,75 mm binnendiameter creëert openingen die interface perfect bij polyetheretherketone (PEEK) buis (buitendiameter = 1/32 &quot;of 0,79 mm) of polyethyleen buis (PE-20, buitendiameter = 0,043&quot; of 1,09 mm ). Gebruik een ring licht te helpen gaten in apparaten visualiseren met ondiepe kanalen 18. Zorg ervoor dat de biopsie punch is scherp; Na herhaald gebruik het snijvlak stompt en de biopsie punch moet worden weggegooid en vervangen. </li><li> Spoel de PDMS apparaat met isopropanol (HPLC-kwaliteit) om stof en ingediende stukken PDMS verwijderen. Zorg ervoor dat degeponste gaten zijn door het richten van een gestage stroom van zuiver isopropanol uit een knijpfles door de gaten vrij van afval. Föhnen met gefilterde lucht. Na het reinigen, plaats PDMS blokken met kanalen naar boven in een schone petrischaal netheid apparaat te onderhouden. Indien nodig, op te slaan apparaten in deze vorm tot binding. </li><li> Reinig de glazen substraat door spoelen met methanol (HPLC-kwaliteit), föhnen met gefilterde lucht, en te plaatsen op een 200 ° C kookplaat gedurende 5-10 minuten om ervoor te zorgen het glas is volledig schoon en droog zijn voor plasma behandeling. OPMERKING: De glazen substraat vormt de bodem van elk kanaal. Typisch een glasplaatje voldoende, aangezien een 10X of 20X objectief is ideaal voor het afbeelden van meerdere kanalen in parallel. Voor hogere resolutie imaging, bond het apparaat op een dekglaasje (# 1.5 dikte). </li><li> Bond het PDMS apparaat het glassubstraat. <ol><li> Zuurstofplasma behandeling van het kanaal van het PDMS blok en 1 kant van een glasplaatje. OPMERKING: Wet een draagbare ontlader, gebruikt een behandelingstijd van 1 min, maar optimale behandeling in elk zuurstofplasma inrichting. </li><li> Plaats het kanaal van het PDMS bovenop de behandelde zijde van het glas direct na de behandeling. </li><li> Houd met lichte druk gedurende ~ 10 seconden om binding te bevorderen. Bak de gehele inrichting bij een verhoogde temperatuur (60-80 ° C) gedurende ten minste 15 min hechting verbeteren. </li></ol></li></ol> 4 Vervormingspi Cellen door vernauwde Channels <ol><li> Inspecteer de microfluïdische apparaat onder een microscoop. Zorg ervoor dat de kanalen niet zijn ingestort of gebroken en dat zowel de inlaat en uitlaat gaten sluit rechtstreeks in het apparaat kanalen met behulp van een low-power doelstelling (10X). Aanwijzen defecte apparaten door het scoren van het oppervlak van het PDMS met een scheermesje en daar geen gebruik van te proeven. </li><li> Bereid de celkweek monsters te testen. Kweekcellen met standaardomstandigheden. <ol><li> Fof bijvoorbeeld cultuur HL-60 cellen in RPMI-1640 medium aangevuld met 1% penicilline-streptomycine-oplossing en 10% foetaal runderserum in 5% CO2 incubator bij 37 ° C. </li><li> Voor hechtende cellen, oogsten ze door behandeling met trypsine en resuspendeer in vers groeimedium. Gebruik een standaard behandeling met trypsine-protocol; bijvoorbeeld, voeg ~ 0,5 ml trypsine in een kolf met 25 cm 2 cultuur gebied, en mengen in ~ 30 ml vers medium. Onderscheid HL-60 cellen in neutrofiel-achtige cellen door all-trans retinoic (ATRA) in een uiteindelijke concentratie van 5 uM per 1 x 10 5 cellen / ml zoals eerder beschreven 19,20. </li><li> Centrifugeer de cellen bij 300 g gedurende 3 minuten voorzichtig zuig het supernatant en resuspendeer cellen om de juiste uiteindelijke dichtheid in vers kweekmedium met 0,1% v / v F-127. </li></ol></li><li> Tel de cellen met behulp van een Coulter teller, hemacytometer of flowcytometer. Stel de celsuspensie tot een dichtheid van 1 x 06-5 oktober x 10 <sup&gt; 6 cellen / ml. Wanneer de opschorting dichtheid is ingesteld, aan te vullen met ongeveer 0,1% v / v F-127. OPMERKING: De celdichtheid en surfactant concentratie moet worden aangepast afhankelijk van de bepaalde celsystemen, Tabel 1 geeft een overzicht van eerder gebruikte concentraties van cellen en F-127 voor verschillende celtypen. </li><li> Plaats celsuspensie in een doorstroomcytometer buis en verbinding maken met de druk cap. Alvorens de slang op het microfluïdische apparaat, stel de druk tot ongeveer 14-21 kPa en spoelen totdat de celsuspensie Uit het uiteinde van de buis. Dit zal helpen om luchtbellen in de slang en het apparaat te minimaliseren. </li><li> Steek de punt van de catheter met de celsuspensie in de inrichting inlaat. Als het apparaat is verbonden met een dekglaasje, plaats het apparaat op een vlakke, stevige ondergrond, zoals de microscoop stadium vóór het aansluiten van de slang; het dekglaasje is kwetsbaar en kan anders breken. </li><li> Plaats een stuk slang into de uitlaatopening en route deze in een lege buis voor afvalinzameling zoals een lege Falcon buis plakband aan de kant van de microscoop podium. Om consistent in de totale vloeibare weerstand van de inrichting tussen experimenten zorgen dat de inlaat en uitlaat slang van dezelfde diameter en ongeveer dezelfde lengte voor elk experiment. </li><li> Voorzichtig opvoeren van de druk tot ongeveer 28 kPa of totdat de cellen stromen door de kanalen. Plaats het toestel zodat meerdere kanalen in het gezichtsveld en loodrecht op de bodem van het scherm. Als de camera wordt beperkt door gegevensgrootte verwerven meerdere video een voldoende aantal onafhankelijke gegevenspunten genereren. Stel de framesnelheid die voor de gewenste data output. Om veranderingen in cel vorm vast te leggen, maken gebruik van hoge snelheid beeldvorming bij 300 frames per seconde (fps); om transittijden van cellen te meten, gebruiken framerates van ongeveer 100 fps. </li></ol> 5 Data Analysis <ol><li> Open het bestand Master_script.m (Downloadable Aanvullende File) en start het programma. </li><li> Selecteer de eerste video worden geanalyseerd vanuit de Windows Verkenner-venster dat verschijnt. Geef de frame rate van de geselecteerde video en druk op enter. OPMERKING: Een cijfer verschijnt dat vraagt ​​de gebruiker om een ​​rechthoekig bijsnijden venster voor de eerste video te selecteren. </li><li> Selecteer een venster dat alle kanalen van links naar rechts omvat en snijdt de kanalen boven de eerste lamp van de reeks kanalen boven en onder (figuur 3). </li><li> Selecteer de vernauwing regio&#39;s van de bijgesneden afbeelding. Besteed speciale aandacht aan een vaste pixel afstand tussen de boven-en onderkant raam grens voor elke video geselecteerde behouden. OPMERKING: Het bovenste venster rand geeft de bovenste vernauwing en onderste venster rand geeft de onderste vernauwing (figuur 4); intermediaire vernauwingen worden benaderd vanuit deze input van de gebruiker. Vervolgens het algoritme toont de segmentation van cellen voor de eerste 50 frames van elke video (Figuur 5). </li><li> Controleer het linker beeld (figuur 5A) dicht te bepalen of het algoritme nauwkeurig lokaliseren cellen; een gebinariseerd beeld wordt gesuperponeerd op de bronvideo om de locatie van de geïdentificeerde cellen vertonen. LET OP: De verschillende vensters, (figuren 5B-5D) zijn voor code diagnose en tonen de videobeelden na specifieke beeldverwerking operaties. </li><li> Selecteer de volgende video van het venster van Windows Verkenner te verwerken. OPMERKING: Het algoritme zal herhalen de stappen 5,2-5,5 voor elke video geselecteerd. </li><li> Selecteren annuleren zodra alle gewenste video&#39;s zijn toegevoegd via het venster van Windows Verkenner naar de functie die de video lijst compleet te instrueren. OPMERKING: Het algoritme zal de resterende bewerkingen uitvoeren zonder tussenkomst van de gebruiker. Dit zal ongeveer 1-2 uur duren, afhankelijk van het aantal verwerkte video en computer performance. Na voltooiing zal het algoritme een histogram van de transittijd gegevens te produceren en de gegevens op te slaan in de map als een MATLAB .mat bestand en een Microsoft Excel xls-bestand. </li></ol>

<ol><li>Doerschuk, C. M., Beyers, N., Coxson, H. O., Wiggs, B., Hogg, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+neutrophil+and+capillary+diameters+and+their+relation+to+neutrophil+sequestration+in+the+lung%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied+physiology%22%5BJournal%5D)">Comparison of neutrophil and capillary diameters and their relation to neutrophil sequestration in the lung.</a> Journal of applied physiology. 74 (6), 3040-3045 (1993).</li>
<li>Fidler, I. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathogenesis+of+cancer+metastasis%3A+the+%60seed+and+soil%E2%80%99+hypothesis+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">The pathogenesis of cancer metastasis: the `seed and soil’ hypothesis revisited.</a> Nature Reviews Cancer. 3, 453-458 (2003).</li>
<li>Jowhar, D., Wright, G., Samson, P. C., Wikswo, J. P., Janetopoulos, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+access+microfluidic+device+for+the+study+of+cell+migration+during+chemotaxis%5BTitle%5D)+AND+%22Integrative+biology%3A+quantitative+biosciences+from+nano+to+macro%22%5BJournal%5D)">Open access microfluidic device for the study of cell migration during chemotaxis.</a> Integrative biology: quantitative biosciences from nano to macro. 2 (11-12), 648-658 (2010).</li>
<li>Hou, H. W., Li, Q. S., Lee, G. Y. H., Kumar, A. P., Ong, C. N., Lim, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deformability+study+of+breast+cancer+cells+using+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Biomedical+microdevices%22%5BJournal%5D)">Deformability study of breast cancer cells using microfluidics.</a> Biomedical microdevices. 11 (3), 557-564 (2009).</li>
<li>Byun, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+deformability+and+surface+friction+of+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Characterizing deformability and surface friction of cancer cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (19), 7580-7585 (2013).</li>
<li>Rosenbluth, M. J., Lam, W. A., Fletcher, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+cell+mechanics+in+hematologic+diseases+with+microfluidic+biophysical+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Analyzing cell mechanics in hematologic diseases with microfluidic biophysical flow cytometry.</a> Lab on a chip. 8 (7), 1062-1070 (2008).</li>
<li>Chen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Classification+of+cell+types+using+a+microfluidic+device+for+mechanical+and+electrical+measurement+on+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Classification of cell types using a microfluidic device for mechanical and electrical measurement on single cells.</a> Lab on a Chip. 11 (18), 3174(2011).</li>
<li>Zheng, Y., Shojaei-Baghini, E., Azad, A., Wang, C., Sun, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+biophysical+measurement+of+human+red+blood+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">High-throughput biophysical measurement of human red blood cells.</a> Lab on a Chip. 12 (14), 2560(2012).</li>
<li>Zheng, Y., Nguyen, J., Wang, C., Sun, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+measurement+of+red+blood+cell+deformability+on+a+microfluidic+device%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Electrical measurement of red blood cell deformability on a microfluidic device.</a> Lab on a Chip. 13 (16), 3275(2013).</li>
<li>Hogg, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+kinetics+and+lung+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied+physiology%22%5BJournal%5D)">Neutrophil kinetics and lung injury.</a> Journal of applied physiology. 67 (4), 1249-1295 (1987).</li>
<li>Hochmuth, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropipette+aspiration+of+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+biomechanics%22%5BJournal%5D)">Micropipette aspiration of living cells.</a> Journal of biomechanics. 33 (1), 15-22 (2000).</li>
<li>Yap, B., Kamm, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoskeletal+remodeling+and+cellular+activation+during+deformation+of+neutrophils+into+narrow+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+applied+physiology%22%5BJournal%5D)">Cytoskeletal remodeling and cellular activation during deformation of neutrophils into narrow channels.</a> Journal of applied physiology. 99 (6), 2323-2330 (2005).</li>
<li>Bow, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfabricated+deformability-based+flow+cytometer+with+application+to+malaria%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">A microfabricated deformability-based flow cytometer with application to malaria.</a> Lab on a Chip. 11 (6), 1065-1073 (2011).</li>
<li>Qi, D., Hoelzle, D. J., Rowat, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+single+cells+using+flow+in+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22The+European+Physical+Journal+Special+Topics%22%5BJournal%5D)">Probing single cells using flow in microfluidic devices.</a> The European Physical Journal Special Topics. 204 (1), 85-101 (2012).</li>
<li>Doll, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SU-8+force+sensing+pillar+arrays+for+biological+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">SU-8 force sensing pillar arrays for biological measurements.</a> Lab on a Chip. 9, 1449-1454 (2009).</li>
<li>Huntington, M. D., Odom, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Portable%2C+Benchtop+Photolithography+System+Based+on+a+Solid-State+Light+Source%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">A Portable, Benchtop Photolithography System Based on a Solid-State Light Source.</a> Small. 7 (22), 3144-3147 (2011).</li>
<li>Grimes, A., Breslauer, D. N., Long, M., Pegan, J., Lee, L. P., Khine, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shrinky-Dink+microfluidics%3A+rapid+generation+of+deep+and+rounded+patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+chip%22%5BJournal%5D)">Shrinky-Dink microfluidics: rapid generation of deep and rounded patterns.</a> Lab on a chip. 8 (1), 170-172 (2008).</li>
<li>Rowat, A. C., Weitz, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chips+%26+Tips%3A+see+where+to+punch+holes+easily+in+a+PDMS+microfluidic+device%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Chips & Tips: see where to punch holes easily in a PDMS microfluidic device.</a> Lab on a Chip. 8, 1888-1895 (2008).</li>
<li>Meyer, P., Kleinschnitz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinoic+Acid+Induced+Differentiation+and+Commitment+in+HL-60+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Health+Perspectives%22%5BJournal%5D)">Retinoic Acid Induced Differentiation and Commitment in HL-60 cells.</a> Environmental Health Perspectives. 88, 179-182 (1990).</li>
<li>Olins, A., Herrmann, H., Lichter, P., Olins, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinoic+Acid+Differentiation+of+HL-60+Cells+Promotes+Cytoskeletal+Polarization%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Retinoic Acid Differentiation of HL-60 Cells Promotes Cytoskeletal Polarization.</a> Experimental Cell Research. 254 (1), 130-142 (2000).</li>
<li>Rosenbluth, M. J., Lam, W. A., Fletcher, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force+Microscopy+of+Nonadherent+Cells%3A+A+Comparison+of+Leukemia+Cell+Deformability+%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Force Microscopy of Nonadherent Cells: A Comparison of Leukemia Cell Deformability .</a> Biophysical Journal. 90 (8), 2994-3003 (2006).</li>
<li>Tsai, M., Waugh, R., Keng, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+HL-60+cell+deformability+during+differentiation+induced+by+DMSO%5BTitle%5D)+AND+%22Biorheology%22%5BJournal%5D)">Changes in HL-60 cell deformability during differentiation induced by DMSO.</a> Biorheology. 33 (1), 1-15 (1996).</li>
<li>Rowat, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+Envelope+Composition+Determines+the+Ability+of+Neutrophil-type+Cells+to+Passage+through+Micron-scale+Constrictions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Nuclear Envelope Composition Determines the Ability of Neutrophil-type Cells to Passage through Micron-scale Constrictions.</a> Journal of Biological Chemistry. 288 (12), 8610-8618 (2013).</li>
<li>Lam, W. A., Rosenbluth, M. J., Fletcher, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemotherapy+exposure+increases+leukemia+cell+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Chemotherapy exposure increases leukemia cell stiffness.</a> Blood. 109 (8), 3505-3508 (2007).</li>
<li>Bhattacharya, S., Datta, A., Berg, J. M., Gangopadhyay, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+surface+wettability+of+poly%28dimethyl%29+siloxane+%28PDMS%29+and+glass+under+oxgen-plasma+treatment+and+correlation+with+bond+strength%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Microelectromechanical+Systems%22%5BJournal%5D)">Studies on surface wettability of poly(dimethyl) siloxane (PDMS) and glass under oxgen-plasma treatment and correlation with bond strength.</a> Journal of Microelectromechanical Systems. 14 (3), 590-597 (2005).</li>
<li>Wu, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+poly%28dimethylsiloxane%29+surface+modification+to+control+cell+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Surface+and+Interface+Analysis%22%5BJournal%5D)">Simple poly(dimethylsiloxane) surface modification to control cell adhesion.</a> Surface and Interface Analysis. 41 (1), 11-16 (2009).</li>
<li>Unger, M. A., Chou, H. P., Thorsen, T., Scherer, A., Quake, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monolithic+Microfabricated+Valves+and+Pumps+by+Multilayer+Soft+Lithography%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Monolithic Microfabricated Valves and Pumps by Multilayer Soft Lithography.</a> Science. 288 (5463), 113-116 (2000).</li>
</ol>

De auteurs hebben geen belangenconflicten te onthullen.

Hier bieden we een uitgebreide experimentele procedure voor het analyseren van de vervorming van de cellen op doorreis in ingesnoerd microfluïdische kanalen met behulp van druk-driven flow. Een MATLAB script maakt geautomatiseerde gegevensverwerking (Aanvullend materiaal); een bijgewerkte versie van de code wordt gehandhaafd ( <a href="www.ibp.ucla.edu/research/rowat" target="_blank">www.ibp.ucla.edu/research/rowat</a> ). Meer algemeen kan de hier gepresenteerde technieken worden aangepast in vele cellen gebaseerde assa...

Veranderingen in de cel vorm zijn van cruciaal belang in tal van biologische contexten. Bijvoorbeeld, erytrocyten en leukocyten vervormen door capillairen die kleiner zijn dan hun eigen diameter 1. In metastase, moeten kankercellen vervormen door smalle spleten interstitiële alsook kronkelige vaten en lymfatische netwerken om zaad op secundaire locaties 2. Om het fysieke gedrag van individuele cellen te onderzoeken, microfluïdische apparaten presenteren een ideaal platform dat kan worden aangepast aan een reeks van cel gedrag met inbegrip van hun vermogen om te migreren door smalle openingen 3 en passief vervormen door micronschaal vernauwingen 3 9 bestuderen. Polydimethylsiloxaan (PDMS) microfluïdische apparaten zijn optisch transparant, waardoor cel vervormingen worden gevisualiseerd met behulp van een lichtmicroscoop en het gebruik van de basisfuncties voor beeldbewerking gereedschap geanalyseerd. Bovendien kunnen reeksen van vernauwingen nauwkeurig worden ingesteld, zodat de analyse van meerdere cellen tegelijk metthroughput dat veel bestaande technieken 10,11 overschrijdt. Hier presenteren we een gedetailleerde experimentele protocol voor het sonderen cel vervormbaarheid met behulp van de &#39;Cell Deformer&#39; PDMS microfluïdische apparaat. De inrichting is zo ontworpen dat cellen passage door opeenvolgende vernauwingen; deze geometrie is gebruikelijk in fysiologische context, zoals de pulmonaire capillaire bed 12. Naar cel vervormbaarheid peilen, transittijd biedt een handige metric die gemakkelijk wordt gemeten als de tijd die nodig is voor een individuele cel voor doorvoer door een enkele vernauwing 4,6. Om een ​​constante drukval over de vernauwde kanalen tijdens cel doorgang te behouden, maken we gebruik van drukgedreven flow. Onze protocol bevat gedetailleerde instructies apparaat ontwerp en fabricage, werking van het apparaat door druk aangedreven stroming, voorbereiding en beeldvorming van cellen, alsook beeldverwerking van de tijd gedurende cellen vervormen door een reeks insnoeringen meten. Wij zijn onder anderezowel apparaat ontwerpen en visie gegevensverwerking code als aanvullende bestanden. Als representatieve steekproef van gegevens, tonen wij cel reistijd door een reeks insnoeringen in functie van het aantal vernauwingen gepasseerd. Analyse van de tijdschaal cellen voor doorvoer hoewel smalle vernauwingen van een microfluïdische inrichting kan verschillen in vervormbaarheid van verschillende celtypen 4,5,13 onthullen. Het apparaat hier gedemonstreerd unieke enquêtes cel doorvoer door een reeks van micron-schaal vernauwingen; dit ontwerp emuleert het kronkelige pad dat cellen ervaren in circulatie en maakt ook vervolma fysieke kenmerken van de cellen zoals relaxatietijd.

<table><tbody><tr><td>Pluronic F-127 Block Copolymer Surfactant&nbsp;</td><td>Fisher Scientific&nbsp;</td><td>8409400</td><td>Geproduceerd door BASF, ook verkrijgbaar via Sigma</td></tr><tr><td>PDMS base en crosslinker</td><td>Essex Brownell</td><td>DC-184-1.1</td><td>Product vaak genoemd Sylgard 184 Elastomer</td></tr><tr><td>Oxygen plasma ontlaadapparaat</td><td>Enercon</td><td>Dyne-A-Mite 3D Treater</td><td></td></tr><tr><td>Biopsy Punch, Harris Uni-Core (0.75 mm)</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>15072</td><td></td></tr><tr><td>Fingertight Ferrule, 1/32"</td><td>Upchurch Scientific</td><td>UP-F-113</td><td></td></tr><tr><td>Fingertight III Fitting, 10-32</td><td>Upchurch Scientific</td><td>UP-F-300X</td><td></td></tr><tr><td>Polyetheretherketon (PEEK) buis, buitendiameter = 1/32"of 0.79 mm</td><td>Valco</td><td>TPK.515-25M</td><td></td></tr><tr><td>Polyethyleen (PE-20) buis, 0.043"of 1.09 mm</td><td>Becton Dickinson</td><td>427406</td><td></td></tr><tr><td>Drukregelaar</td><td>Airgas of Praxair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Polyurethaan buis, 5/32&rdquo; OD</td><td>McMaster Carr</td><td>5648K284</td><td></td></tr><tr><td>Push-to-connect fittingen</td><td>McMaster Carr</td><td>5111K91</td><td></td></tr><tr><td>Voltage naar Druk (E/P) Elektropneumatische Converter</td><td>Omega</td><td>IP413-020</td><td></td></tr><tr><td>16-bit, 250 kS/S, 80 Analoge Inputs Multifunctioneel DAQ</td><td>National Instruments</td><td>NI PCI 6225-779295-01</td><td></td></tr><tr><td>Analoge Connector Block-Schroefklemmen</td><td>National Instruments</td><td>SCB-68-776844-01</td><td></td></tr><tr><td>LabView Systeem Ontwerp Software</td><td>National Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATLAB Software</td><td>The MathWorks, Inc.</td><td>MATLAB R2012a</td><td>Code vereist de Image Processing Toolbox</td></tr><tr><td>Afgeschermde Kabel</td><td>National Instruments</td><td>SHC68-68</td><td></td></tr></tbody></table>

een microfluïdische techniek om cell vervormbaarheid probe

A Microfluidic Technique to Probe Cell Deformability

Hier hebben gedetailleerd ontwerp, fabricage en het gebruik van een microfluïdische apparaat om de vervormbaarheid van een groot aantal afzonderlijke cellen te evalueren op een efficiënte wijze. Meestal kan gegevens ~ 10 2 cellen verkregen bij een experiment 1 uur. Een geautomatiseerde beeldanalyse programma maakt efficiënte post-experiment analyse van beeldgegevens, zodat verwerking voltooid binnen enkele uren is. De geometrie inrichting is uniek in die cellen moeten vervormen door een reeks van micron-schaal vernauwingen, waardoor het mogelijk de initiële vervorming en tijd-afhankelijke relaxatie van individuele cellen te testen. De toepasbaarheid van deze methode op menselijke promyelocytische leukemie (HL-60) cellen aangetoond. Rijden cellen vervormen door micronschaal vernauwingen behulp drukgedreven flow, zien we dat de mens promyelocytaire (HL-60) cellen tijdelijk af te sluiten de eerste vernauwing voor een mediane tijd van 9,3 msec voordat sneller passage door de daaropvolgende vernauwenionen met een mediane transittijd van 4,0 msec per vernauwing. Daarentegen, all-trans retinoic zuur behandelde (neutrofiel-type) HL-60 cellen occluderen de eerste vernauwing slechts 4,3 msec voor passage door de daaropvolgende vernauwingen met een gemiddelde looptijd van 3,3 msec. Deze methode kan inzicht verschaffen in de visco-elastische aard van de cellen, en uiteindelijk onthullen de moleculaire oorsprong van dit gedrag.

Om de vervormbaarheid van verschillende celtypes, humane myeloïde leukemiecellen (HL-60), gedifferentieerde neutrofiele cellen, muis lymfocyt cellen en menselijke eierstokkanker cellijnen (OVCAR8, HEYA8) onderzoeken worden beoordeeld volgens het &quot;Cell Deformer &#39;microfluïdische techniek. Representatieve resultaten voor de transittijd van de HL-60 en neutrofielen type HL-60 cellen laten zien van de termijn voor een enkele cel tot doorvoer door een reeks van vernauwingen, zoals weergegeven in figuur 6.</st...

We demonstreren een-microfluidics gebaseerde test om de termijn voor de cellen om de doorvoer te meten door middel van een opeenvolging van micron-schaal vernauwingen.

Een Microfluïdische Techniek om Cell Vervormbaarheid Probe

Here we detail the design, fabrication, and use of a microfluidic device to evaluate the deformability of a large number of individual cells in an ...

Het algemene doel van het volgende experiment is om de vervormbaarheid van verschillende celtypen te onderzoeken met behulp van een eenvoudige assay op basis van microfluidica. Dit wordt bereikt door het vervaardigen van een microfluidisch apparaat van polydimethylsiloxaan of PDMS om de tijdschaal van celpassage door een reeks vernauwingen op micronschaal te onderzoeken. Vervolgens wordt drukgestuurde stroming gebruikt om cellen door de microfluidische kanalen te drijven, waardoor de vervorming en de tijdsafhankelijke relaxatie van individuele cellen kunnen worden geanalyseerd. Daarna wordt het geautomatiseerde beeldanalyseprogramma uitgevoerd om de video's te verwerken en een histogram van de transitietijdgegevens te verkrijgen.De resultaten laten zien dat verschillende celtypen verschillen vertonen in celvervormbaarheid op basis van hun transitietijd door een reeks vernauwingen. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande technieken, zoals atoomkrachtmicroscopie of micropipet-aspiratie, is dat microfluïdische apparaten succesvol kunnen werken met hoge doorvoercapaciteiten. Hoewel andere microfluïdische apparaten ook kunnen worden gebruikt om de celvervormbaarheid te analyseren.Wij ontwerpen ons apparaat zodanig dat cellen door opeenvolgende vernauwingen passeren, een geometrie die gebruikelijk is in fysiologische contexten zoals het pulmonaire capillaire bed. Begin met het ontwerpen van het microfluïdische apparaat door de breedte van de kanalen in de vernauwingsmatrix vast te stellen op ongeveer 30 tot 50% van de gemiddelde celdiameter en de kanaelhoogte op ten minste 50% van de celdiameter. Plaats een filter bij de inlaatpoorten om debris te verwijderen en celclusters te desaggregeren.Voordat u aan het experiment begint, vervaardigt u de master van het apparaat met standaardtechnieken voor lithografische micromachining. Verifieer de hoogte van de patroonkenmerken met een profilometer. Stel vervolgens de luchtbron voor drukgestuurde stroming in met behulp van een tank met perslucht en een reeks luchtdrukregelaars en koppelingen.Stel eerst een luchtvoorraadtank en een handmatige drukregelaar op. Plaats vervolgens een elektronisch aangestuurde drukregelaar in serie met de handmatige regelaar. Gebruik de eenvoudige LabVIEW-code om de gewenste druk in te voeren.De elektropneumatische omvormer maakt gebruik van een interne feedbackloop om de uitlaatdruk van het ventiel aan te passen, zodat deze overeenkomt met de opgegeven druk over het microfluïdische apparaat. Stel een onder druk gezette kamer in om de stroming van de celsuspensie aan te sturen door een celsuspensiekamer te assembleren uit een standaard flowcytometrie-buis en een bewerkte dop die een drukdichte afdichting op de buis vormt. De dop van de drukkamer bevat twee openingen: een inlaat die verbonden is met de persluchttank en een uitlaat waardoor cellen vanuit de onder druk gezette kamer naar het apparaat stromen.Stel vervolgens een geïnverteerde microscoop in, uitgerust met een camera met een acquisitiesnelheid van ten minste 100 frames per seconde. Om beelden vast te leggen van de cellen die door de vernauwingen stromen, dient er een voorraad surfactantoplossing in fosfaatgebufferde zoutoplossing of PBS te worden bereid, aangezien het toevoegen van een kleine hoeveelheid surfactant aan de celmediumoplossing helpt om celadhesie aan de PDMS-wand te minimaliseren. Om het PDMS-blok met microfluidische kanalen te vervaardigen, voegt u één gram hardingsmiddel toe aan 10 gram PDMS-basis en mengt u dit grondig.Giet het mengsel over het apparaat. Ontgas het mengsel in een stolp onder vacuüm totdat de ingesloten luchtbellen zijn verdwenen, of gedurende ongeveer 10 tot 20 minuten. Na deze tijd kunnen er nog bellen aanwezig zijn op het grensvlak tussen de lucht en de PDMS, wat normaal is.Deze zullen doorgaans verdwijnen tijdens het bakken. Bak vervolgens het ontgassingsapparaat gedurende vier uur bij 65 °C nadat het apparaat is afgekoeld. Verwijder de microfluïdische apparaten uit de mastermal.Begin met het voorzichtig optillen van één hoek van het apparaat. Door het PDMS-blok langzaam en voorzichtig af te pellen in plaats van het recht omhoog te tillen, wordt de spanning op zowel het PDMS als de master verminderd. Snijd individuele microfluïdische apparaten uit het PDMS-blok met een scheermesje en verwijder het apparaat van de master. Pons gaten in het PDMS-apparaat om aansluitpoorten te maken voor de verbinding tussen de buisjes en de microkanalen. Maak gaten vanaf de kant van het kanaal tot aan de buitenkant van het apparaat met behulp van een biopsietpons.Spoel het PDMS-apparaat met isopropanol om stof en PDMS-fragmenten te verwijderen. Zorg ervoor dat de geponste gaten vrij zijn van vuil door een gestage stroom pure isopropanol vanuit een knijpfles door de gaten te richten. Droog het apparaat door er gefilterde lucht op te blazen.Reinig het glazen substraat door het af te spoelen met methanol. Blaas het daarna droog met gefiltreerde lucht en plaats het vijf tot 10 minuten op een warmteplaat van 200 °C om er zeker van te zijn dat het glas volledig schoon en droog is vóór de plasmabehandeling. Inspecteer het microfluïdische apparaat onder een microscoop, zoals gedetailleerd beschreven in het tekstprotocol.Controleer met behulp van een objectief met een lage vergroting of de kanalen niet zijn ingestort of gebroken, en of zowel de inlaat- als uitlaatgaten direct aansluiten op de kanalen van het apparaat. Plaats de celсусpensie in een flowcytometrie-buis en sluit deze aan op de drukdop voordat de slang aan het microfluïdische apparaat wordt gekoppeld; stel de druk in op ongeveer 14 tot 21 kilopascals en spoel door totdat de celsuspensie uit de punt van de slang komt. Plaats het apparaat vervolgens op een vlak oppervlak om de slang in de inlaat van het apparaat te steken.Aangezien het glazen dekglas dat aan de onderzijde van het PDMS-apparaat is gehecht fragiel is, moet men voorzichtig te werk gaan. Voer de punt van de slang met de cel-suspensie in de inlaat van het apparaat. Steek vervolgens een stuk slang in de uitlaatpoort en leid deze naar een lege buis voor afvalverzameling, zoals een lege Falcon-buis die met tape aan de zijkant van de microscooptafel is bevestigd.Verhoog de druk voorzichtig tot ongeveer 28 kilopascals of totdat de cellen door de kanalen stromen. Positioneer het apparaat zodanig dat meerdere kanalen in het gezichtsveld vallen en loodrecht op de onderkant van het scherm staan. Open het master script m-bestand en voer het programma uit om te beginnen met de data-analyse.Selecteer de eerste te analyseren video uit het verschijnende Windows Verkenner-venster. Specificeer de beeldsnelheid voor de geselecteerde video en druk op enter. Er verschijnt een afbeelding waarin de gebruiker wordt gevraagd een rechthoekig uitsnedevlak te selecteren.Selecteer voor de eerste video een venster dat alle kanalen van links naar rechts omvat en de kanalen snijdt net boven de eerste bulb van de kanaalmatrix. Selecteer boven- en onderaan de vernauwingsgebieden uit de bijgesneden afbeelding. Het algoritme toont de segmentatie van cellen voor de eerste 50 frames van elke video.Houd het beeld linksboven nauwgezet in de gaten om vast te stellen of het algoritme de cellen nauwkeurig lokaliseert. Een bewerkte afbeelding is over de bronvideo geplaatst. Om de locatie van de geïdentificeerde cellen aan te tonen, selecteert u de volgende te verwerken video vanuit het Windows Verkenner-venster.Het algoritme zal zich herhalen. Selecteer 'annuleren' voor elke geselecteerde video. Zodra alle gewenste video's via het Windows Verkenner-venster zijn toegevoegd om de functie te instrueren dat de videolijst compleet is, tonen de representatieve resultaten voor de transittijd van HL 60 en neutrofiele HL 60-cellen de tijdschaal voor een enkele cel om door een reeks vernauwingen te transiteren.De tijd wordt gemeten voor een populatie van individuele cellen bij elke vernauwing van zeven micrometer in een reeks van zeven vernauwingen. Bij een aandrijvingsdruk van 28 Kilopascals occluderen HL 60-cellen de eerste vernauwing tijdelijk gedurende een mediaan van 9,3 milliseconden voordat ze door de volgende vernauwingen passeren. In tegenstelling hiermee occluderen neutrofiele HL 60-cellen de eerste vernauwing slechts 4,3 milliseconden voordat ze passeren.Zodra ze door de eerste vernauwing zijn, passeren de cellen de resterende vernauwingen twee tot zeven sneller, met een mediane transitietijd van 4,0 milliseconden voor de HL 60-cellen en 3,3 milliseconden voor de neutrofiele cellen. Door de transitietijd tussen celpopulaties te vergelijken, kunnen verschillen in de vervormbaarheid van cellen worden onthuld. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe de vervormbaarheid van verschillende celtypen kan worden gemeten met behulp van deze eenvoudige microfluïdische assay.Hier wordt drukgestuurde stroming gebruikt om cellen door microfluïdische kanalen te drijven, waardoor de vervorming en relaxatie van individuele cellen kunnen worden geanalyseerd.

a-microfluidic-technique-to-probe-cell-deformability

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Beschrijven we een protocol voor de fabricage van microfluïdische apparaten die cel te vangen en cultuur kunnen inschakelen. In deze benadering patroon microstructuren, zoals groeven in microfluïdische kanalen worden gebruikt om lage shear stress regio's waarbinnen de cel kan dock te creëren.

Een microfluïdische apparaat met Groove patronen voor het bestuderen van Cellular Gedrag

In dit protocol, tonen we de fabricage van een Microactuator reeks van verticaal verschoven berichten op de technologie gebaseerd is, en hoe deze basistechnologie kunnen worden gewijzigd om high-throughput mechanisch dynamische celkweek te voeren in zowel twee-dimensionale en drie-dimensionale cultuur paradigma's.

Microfabricated Platforms voor Mechanisch Dynamic Cel Cultuur

Hier beschrijven we een snelle en eenvoudige methode om cellen stijfheid te meten. Het algemene principe van deze benadering is membraan vervorming te meten in reactie op welbepaalde negatieve druk aangebracht door een micropipet op het celoppervlak. Deze methode biedt een krachtig hulpmiddel om biomechanische eigenschappen van substraat-aangehechte cellen te bestuderen.

Micropipet Aspiratie van substraat-attached Cellen to Cell Stijfheid Schatting

Rapid mechanische vervorming van de cellen heeft ontpopt als een veelbelovende,-vector vrije methode voor intracellulaire levering van macromoleculen en nanomaterialen. Dit protocol biedt gedetailleerde stappen over hoe het systeem te gebruiken voor een breed scala aan toepassingen.

Cel Knijpen als een robuuste, Microfluidic Intracellular Delivery Platform

Er werd een nieuw beeldvormingsprotocol ontwikkeld met behulp van een op maat gemaakte motorgestuurde mechanische actuator om de meting van realtime-responsen op mechanische spanning in levende cellen mogelijk te maken. Relevant voor mechanobiologie, kan het systeem spanningen tot 20% toepassen terwijl het realtime beeldvorming met confocale of atomaire krachtmicroscopie mogelijk maakt.

Live cell imaging tijdens Mechanical Stretch

Dit artikel biedt gedetailleerde methoden voor het vervaardigen en karakteriseren van een pneumatisch bedienend microfluïdisch apparaat voor chondrocyten compressie.

Een Microfluïdisch platform voor het stimuleren van chondrocyten met dynamische compressie

Mechanische krachten zijn belangrijk voor het beheersen van de Celmigratie. Dit protocol demonstreert het gebruik van elastische hydrogels die kunnen worden vervormd met behulp van een glazen micro pipet en een micro manipulator om cellen te stimuleren met een lokale stijfheids gradiënt om veranderingen in celstructuur en migratie teweeg te brengen.

Enkelvoudige cel Duro Taxis assay voor de beoordeling van de mechanische controle van cellulaire beweging en gerelateerde signalering van gebeurtenissen

Dit werk presenteert een flexibel protocol voor het gebruik van fluorescerend gelabelde elastomeer contracteerbare oppervlakken (FLECS) -technologie in microwell-formaat voor vereenvoudigde, hands-off kwantificering van contractiele krachten met één cel op basis van gevisualiseerde verplaatsingen van fluorescerende eiwitmicropatronen.

Vereenvoudigde, high-throughput analyse van eencellige contractiliteit met behulp van microgepatterde elastomeren

Hier wordt een protocol gepresenteerd om een snel en niet-destructief systeem te bouwen voor het meten van cel- of kerncompressie op basis van acoustofluidic microdevice. Veranderingen in mechanische eigenschappen van tumorcellen na epitheliaal-mesenchymale overgang of ioniserende straling werden onderzocht, wat het toepassingsperspectief van deze methode in wetenschappelijk onderzoek en klinische praktijk aantoont.

Meting van de samendrukbaarheid van cel en kern op basis van Acoustofluidic Microdevice

Hier wordt een methode gepresenteerd om afzonderlijke cellen mechanisch te fenotyperen met behulp van een op elektronica gebaseerd microfluïdisch platform dat mechano-node-pore sensing (mechano-NPS) wordt genoemd. Dit platform handhaaft een gematigde doorvoer van 1-10 cellen / s terwijl het zowel de elastische als viskeuze biofysische eigenschappen van cellen meet.

Mechano-Node-Pore Sensing: een snel, labelvrij platform voor multi-parameter single-cell visco-elastische metingen

Hier wordt een protocol gepresenteerd voor mechanische vermoeidheidstests in het geval van menselijke rode bloedcellen met behulp van een amplitude-gemoduleerde elektrodeformatiebenadering. Deze algemene benadering kan worden gebruikt om de systematische veranderingen in morfologische en biomechanische kenmerken van biologische cellen in een suspensie van cyclische vervorming te meten.

Amplitude-gemoduleerde elektrodeformatie om mechanische vermoeidheid van biologische cellen te evalueren

Leer een microfluïdische techniek om celvervormbaarheid te meten met PDMS-apparaten en drukgestuurde stroming. Deze methode biedt hoge doorvoer voor het bestuderen van celbiomechanica en gedrag.

Een Microfluïdische Techniek om Cell Vervormbaarheid Probe

Meer video's verkennen