14 oktober 2014
Prikken herstellen motoriek na een complete dwarslaesie. Sommige spinale-projecterende neuronen goed regeneratoren en andere niet. Dit document illustreert de technieken voor huisvesting zeeprik larven (en onlangs omgebouwd volwassenen), het produceren van volledige ruggenmerg doorsnijdingen en het voorbereiden wholemount hersenen en ruggenmerg voor in situ hybridisatie.
Het algemene doel van deze procedure is om een complete wervelkolom, doorknipping en hersendissectie uit te voeren voor de studie van Axon-geleiding na verwonding. Dit wordt bereikt door eerst een lampre-wervelkolom door te knippen ter hoogte van de vijfde kieuw. Vervolgens wordt de hersenen gedissecteerd en vastgemaakt aan een syl-beschermer.
Na het fixeren van de hersenen kan deze worden opgeslagen in methanol of onmiddellijk worden gebruikt voor in situ hybridisatie, uiteindelijk veranderingen in de expressie van axonaal. Geleidingsreceptoren kunnen worden gezien in een regenererende wervelkolom na een ruggenmergblessure. Het voordeel van de techniek die we vandaag gaan demonstreren ten opzichte van meer conventionele paraffine-doorsneden of cryostaat-doorsneden, is dat het je in staat stelt om de hele hersenen te zien, inclusief neuronen die projecteren naar het ruggenmerg die groot en geïdentificeerd zijn.
De procedure wordt gedemonstreerd door Dr. Kathy Zang, een onderzoekswetenschapper in ons laboratorium. Van de stromen die Lake Michigan voeden, tot de zijrivieren tot de Delaware River in Pennsylvania, of stromen in Maine. Wilde type larvale zeelampers van de soort. Pet mize op Marus werden verkregen.
Larvae van vier tot zeven jaar oud zijn 10 tot 14 centimeter lang en groot genoeg voor de verwonding en dissectie. Houd ze in groepen van 52, honderd. In 50 gallon zoetwatertanks bij 16 graden Celsius.
De tank vereist een grindsubstraat van een inch zodat de lamprei kan lenen. Al het water dat aan de tank wordt toegevoegd, moet worden geconditioneerd met koolstoffilteren en beluchting gedurende minimaal 48 uur voordat het aan de tank wordt toegevoegd. Op voorwaarde dat de dieren binnen een jaar worden gebruikt, is er geen noodzaak om ze voor deze procedure te voeren. Houd vers bereide ringer-oplossing klaar.
Breng eerst een lamp naar een verzadigde waterige benzocaine-oplossing. Zodra het is verdoofd, breng het over naar een schaal half gevuld met sil-bescherming. Plaats de schaal op ijs en bedek de schaal met ijs.
Koude ringer. Bevestig het dier met drie insectenpinnen met een diameter van 0,15, een bij de snuit en twee bij de vijfde kieuw. Plaats het vervolgens onder een stereomicroscoop voor de operatie.
Begin met een schaaltje nummer 11 om een longitudinale insnijding te maken langs de dorsale middenlijn ter hoogte van de vijfde kieuw. Dit zal de wervelkolom onthullen terwijl deze insnijding wordt gemaakt. Gebruik twee haken gemaakt van insectenpinnen om de lichaamswanden vast te zetten met Castro reveal nummer acht, schaar.
Maak een loodrechte snede door de blootgestelde wervelkolom. Inspecteer de gesneden uiteinden van de wervelkolom om er zeker van te zijn dat de doorknipping compleet is. Gebruik vervolgens een pincet om de gesneden uiteinden opnieuw uit te lijnen en de wond te sluiten.
Breng de lampre lava over op een stuk filterpapier gedrenkt in ringer-oplossing. Verplaats de voorbereiding naar een ijsbed gedurende een uur zodat de wond na een uur kan drogen. Breng de lava over naar zijn eigen kleine tank met ijswater.
Laat het daar 24 uur genezen. Controleer na 24 uur op bewegingen cordaal naar de doorknipping. Als er bewegingen zijn, was de doorknipping onvolledig.
Als dat niet het geval is, dan was de doorknipping goed en kan het dier worden verplaatst naar een tank op kamertemperatuur voor herstel terwijl het dier herstelt. Ververs het water om de twee tot drie dagen. Zodra het doorgesneden dier voldoende is hersteld, verdoof het en bereid het voor op dissectie zoals eerder beschreven.
Om de hersenen te dissecteren, begin met een transversale insnijding tussen de neusgat en het pijnappelorgaan. Snijd vervolgens met Castro veal-schaar het weefsel rond de hersenen terwijl het dier wordt vastgezet. Met pincetten.
De witte ovale structuren aan weerszijden van de hersenstam zijn de otische capsules. Zodra de hersenen zijn blootgelegd, gebruik pincetten om de choroïdale plexus te verwijderen. Gebruik vervolgens de gemodificeerde pinhaken om het hoofd van het dier te spreiden en de hersenzenuwen bloot te leggen.
Snij vervolgens de wervelkolom dwars door met de schaar terwijl de wervelkolom met een pincet wordt vastgezet. Snijd de hersenzenuwen om de hersenen te dissecteren. Breng vervolgens de hersenen over naar een klein stuk siliconen en bevestig deze daar.
Gebruik een insectenpin in de wervelkolom en een pin door een van de reukbollen. Snijd vervolgens met de schaar de inter-reukbol commissure, de cerebrale beschermer commissure en de oex van de hersenstam langs de dorsale middenlijn. Zodra de commissuren en oex zijn gesneden, draai de A LR-platen lateraal en prik ze plat op de siliconen met een totaal van zeven insectenpinnen, twee in de reukbollen, twee in de randen van de gesneden, cerebrale beschermer commissure, twee in de verlengde oex, en een in de middenlijn van de wervelkolom.
Nu, met behulp van RNAs-vrije reagentia, fixeer de voorbereiding in 4% para formaldehyde bij kamertemperatuur gedurende drie uur met zachte agitatie. De hersenen kunnen vervolgens worden geanalyseerd door in situ hybridisatie met behulp van de beschreven methode. Expressie van neogen in transcripten werd geïdentificeerd in het ruggenmerg, projecterende neuronen van controle, dieren en bij dieren. Twee weken na de lesie, hier gezien, is een representatieve ongewonde controle.
Na de complete wervelkolomdoorknipping waren er veranderingen in de expressie van de neogen-receptor. Na twee weken werd de neogen-receptor in de niet-controle voorkeursmatig tot expressie gebracht in slechte regeneratoren zoals de M1 I een I twee I vier, of MTH-neuronen. De ontwikkeling van deze techniek heeft de weg geëffend voor ons vermogen om expressie van geleidingsreceptoren, receptoren voor chondroïtinesulfaat, protio, glycanen en activering van castbases allemaal in dezelfde hersenen te verkennen.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Deze studie demonstreert technieken voor het uitvoeren van volledige dwarsdoorsneden van het ruggenmerg en dissecties van de hersenen bij zeemuurnen. Het belicht het herstel van de voortbeweging na letsel aan het ruggenmerg en de regeneratiecapaciteiten van specifieke neuronen die naar het ruggenmerg projecteren.
Dit protocol maakt mechanistische risicoanalyse van targets voor axonale regeneratie mogelijk door een ziekterevante systeem te bieden voor het bestuderen van intrinsieke neuronale reacties op letsel aan het ruggenmerg. De wholemount-preparatie ondersteunt targetvalidatie via directe visualisatie van grote, identificeerbare neuronen die naar het ruggenmerg projecteren, wat vergelijkende genexpressieanalyse tussen goede en slechte regeneratoren faciliteert. Deze aanpak vergroot het voorspellende vertrouwen in de vroege ontdekkingsfase door moleculaire fenotypes te koppelen aan functionele regeneratie-uitkomsten in een vertebrate CNS-model.
De methode integreert in het ontdekkingscontinuüm van doelwitvalidatie tot lead-identificatie door moleculaire readouts te leveren die informatie bieden voor strategieën voor padmodulatie.