Name: Monitoring van Systemische en lever hemodynamische parameters in Muizen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 9 s
Description: Leer de procedure voor het monitoren van systemische en leverhemodynamiek bij muizen. Deze methode meet bloeddruk, veneuze druk en portale doorbloeding voor nauwkeurig fysiologisch onderzoek.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit onderzoek werd gesteund door het Duitse Federale Ministerie voor Onderwijs en Onderzoek (BMBF) gefinancierd &quot;Virtual Lever Netwerk&quot;. Ik wil graag Frank Schubert en Rene Gumpert bedanken van het mediacenter van Jena University Hospital voor hun hulp bij het produceren van de video en het maken van de animatie en Isabel Jank voor het opnemen van de audio.

Huisvesting en alle procedures uitgevoerd waren in overeenstemming met de Duitse wetgeving inzake dierenwelzijn. 1 Sensoren Kalibratie (Volg de instructies van de fabrikant voor Sensoren Kalibratie) 1.1) Millar katheter kalibratie. Bevochtig de tip van de katheter in steriel water of zoutoplossing gedurende 30 min voor evenwicht (nul) en kalibratie. <ol><li> Sluit de Millar-sensor om de millar1 kanaal van de brug versterker en steek de millar sensor tip in de waterkolom. </li><li> Stel de waterkolom waarde 0 cmH 2 O. In data analyse software venster, kiest brug versterken en nul is. De basiswaarde 0 cmH 2 O kan worden ingesteld. </li><li> Stel de waterkolom waarde tot 20 cmH 2 O. Run data analyse software venster vooruitgang, en te stoppen. Kies &quot;eenheden&quot; in het venster van de brug te versterken, zet de basislijn van 0 en 20 cmH 2 O dienovereenkomstig. Pas de &quot;eenheid&quot; te cmH &lt;sub&gt; 2 O. </li><li> Kalibreren van de millar2 voor het meten van het GLB op dezelfde manier (set twee basislijn 90 en 110 cmH 2 O). </li></ol> 1.2) De bloedstroom sonde kalibratie <ol><li> Plaats de sonde in gedeïoniseerd water. Sluit de sonde met transsone luchtsnelheidssonde systeem. </li><li> In data analyse software venster, kies Input versterken om de stroom sonde op nul. Stel de units. </li><li> Druk op de knop om &quot;test kanaal&quot; om het signaal te verzamelen: als het signaal heeft 3-4 bars, betekent dit dat het signaal is goed. Indien een signaal wordt verkregen, kan de procedure worden voortgezet. </li><li> Druk op de knop om &quot;zero channel&quot; en schaal-kanaal om te zien of de waarde is gekalibreerd of niet. </li><li> Druk op de knop om &quot;maatregel kanaal&quot; voor later meten. </li></ol> 2 Bereid de muis voor de chirurgische ingreep <ol><li> Plaats de muis op een inductie kamer en verdoven de muis met 2% isofluraan en0,3 ml / min zuurstof. De operatie kan worden uitgevoerd als de teen-snuifje terugtrekking reflex van de muis is afwezig. </li><li> Scheer de vacht van chirurgische gebieden, waarbij de linker hals en abdomen. </li><li> Plaats de muis op de operatie tafel en zet deze vast met behulp van tapes. Gebruik dierenarts zalf op de ogen tot het droog was tijdens de operatie periode te voorkomen. </li><li> Plaats een gaasje kussen onder de nek voor een optimale belichting van de operatie gebied van de nek. </li><li> Ontsmet het gebied bediening en plaats gesteriliseerde gaasjes om de muis te dekken alleen het verlaten van het chirurgische veld geopend. </li></ol> 3 vitale parameters meten <ol><li> Plaats de ECG naalden subcutaan in de poten van de muis. </li><li> Plaats de luchtwegen sensor onder de achterkant van de muis. </li><li> Plaats de temperatuursensor in het rectum van de muis. </li><li> Record temperatuur, ECG en ademhaling van de muis in de data-analyse software. </li></ol> 4 Neck Operatie voor Systemic Cardiovasculaire Monitoring 4.1) Vessel dissectie <ol><li> Identificeer de middenlijn van de nek, middelpunt van sleutelbeen, de hoek van de onderkaak. </li><li> Wordt 2cm longitudinale incisie van de hoek van de onderkaak middelpunt van vorkbeen die 0,5 cm aan de linkerzijde van de middenlijn. </li><li> Ontleden de submandibulaire klier, draai hem om en bedek het met een zoutoplossing gedrenkt gaasje. </li><li> Identificeer de halsader, ontleden en leg drie 6-0 zijde hechtingen onder de ader voor later ligatie en fixatie. </li><li> Identificeer de sternocleidomastoideus, scheiden van de superieure buik van omohyoid en achterste buik van kauw- spier, en trek hem met een oprolmechanisme voor eenvoudige blootstelling van de halsslagader. </li><li> Ontleden de halsslagader en nog drie 6-0 zijden hechtdraden volgens de slagader later ligatie en bevestiging. </li></ol> 4.2) halsslagader bloedstroom meten <ol><li> Plaats de transsonesonde rond de halsslagader, stabiel te houden, en het contact te optimaliseren met behulp van echografie gel of zoutoplossing. </li><li> Record bloedstroomsnelheid van de halsslagader zoals aangegeven op het kleine scherm van de transsone inrichting met data analysesoftware </li><li> Verwijder de sonde na het voltooien van de meting </li></ol> 4.3) Halsslagader drukmeting (GLB) <ol><li> Afbinden het distale uiteinde van de halsslagader en klem het proximale uiteinde. </li><li> Plaats 2 bevestigingsgaten hechtingen rond de halsslagader. Gebruik 10-0 prolene voor het verblijf hechtdraad. </li><li> Voeg een kleine insnijding op de voorste wand van het vat. </li><li> Plaats de millar katheter en bevestig deze met vooraf geplaatste hechtingen. </li><li> Noteer het GLB in de data-analyse software. </li></ol> 4.4) halsader bloedstroom meten <ol><li> Til de halsader en plaats de transsone stroom sonde om het debiet te meten. </li><li> Noteer de stroomsnelheid gegevensanalyse software. </li></ol> 4.5) Centraal veneuze drukmeting (CVP) <ol><li> Klem het proximale uiteinde van de halsader en ligeren het distale uiteinde. </li><li> Snijd een kleine incisie met microscissors op de voorste wand van het vat. </li><li> Plaats de met vloeistof gevulde katheter en bevestig het met de pre geplaatst hechtdraad lijnen. </li><li> Noteer de CVP in de data-analyse software. </li></ol> 5. buikoperatie voor Overname van Gestoorde Hemodynamica 5.1) identificatie Vessel <ol><li> Voeg een dwarse insnijding op de buik. </li><li> Eventerate de darmen naar de linkerkant en bedekken met natte gaasje. </li><li> Identificeer de inferior vena cava, de poortader, gemeenschappelijke leverslagader en de juiste leverslagader. </li><li> Drop een warme zoutoplossing in de buik en het oppervlak van de darmen elke 5 minuten gedurende de gehele controleprocedure. </li></ol> 5.2) Meting van portaal bloedstroom <ol><li> Ontleden de poortader. </li><li> Plaats 6-0 zijde onder de poortader naar opheffing van het vaartuig, bij het plaatsen van de stroom sonde. </li><li> Plaats de transsone stroom sonde rond de poortader en meet de bloed doorstroming. </li><li> Noteer het bloed debiet van de poortader. </li></ol> 5.3) Meting van de Gemeenschappelijke leverslagader stroom <ol><li> Ontleden de gemeenschappelijke leverslagader voorzichtig. </li><li> Plaats een 6-0 zijden hechtdraad rondom het schip tot opheffing van het vaartuig te vergemakkelijken. </li><li> Plaats de stromingsonde rond de slagader. </li><li> Meet de doorbloeding en de gegevens te verkrijgen. </li></ol> 5.4) Meting van de poortader druk (PVP) <ol><li> Kies een tak van de mesenteriale vene met weinig zijtakken, dat uitmondt recht in de poortader. </li><li> Afbinden het distale uiteinde van de geselecteerde mesenterica. Zorg ervoor dat ligatie dicht bij de intestinale buis. Afbinden haar kleine takken </li><li> Plaats 2 fixing hechtingen met 6-0 prolene rond de ader. Het belangrijkste punt van deze procedure is om te voorkomen dat het aanraken van de mesenterica wanneer ligateren de ader. </li><li> Klem het proximale uiteinde van de poortader. </li><li> Place 2 stay hechtingen met 10-0 prolene. Sommigen bloeden zal optreden sinds het verblijf hechtdraad de vaatwand van de boete mesenterica moet doordringen. </li><li> Maak een kleine incisie in de ader met behulp van een microscissor schuin in een hoek van 45 graden. </li><li> Steek de Millar katheter via de mesenteriale vene in de poortader en repareren </li><li> Noteer de poortader druk. Aan het einde van de procedure, offeren de muizen door verbloeding onder verdoving. </li></ol>

<ol><li>Albuszies, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+increased+cardiac+output+on+hepatic+and+intestinal+microcirculatory+blood+flow%2C+oxygenation%2C+and+metabolism+in+hyperdynamic+murine+septic+shock%5BTitle%5D)+AND+%22Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock.</a> Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).</li>
<li>Bernhard, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phosphatidylcholine+molecular+species+in+lung+surfactant%3A+composition+in+relation+to+respiratory+rate+and+lung+development%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).</li>
<li>Cheever, A. W., Warren, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Portal+vein+ligation+in+mice%3A+portal+hypertension%2C+collateral+circulation%2C+and+blood+flow%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow.</a> 18, 405-407 (1963).</li>
<li>Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+increase+of+portal+pressure+during+the+acute+and+chronic+phases+of+murine+schistosomiasis+mansoni+and+its+reversibility+after+treatment+with+oxamniquine%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Trop%22%5BJournal%5D)">On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine.</a> Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).</li>
<li>Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Venous+resistance+increases+during+rat+anaphylactic+shock%5BTitle%5D)+AND+%22Shock%22%5BJournal%5D)">Venous resistance increases during rat anaphylactic shock.</a> Shock. 29 (6), 733-739 (2008).</li>
<li>Geerts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+research+models+of+portal+hypertension+in+mice%3A+macroscopic%2C+histological+and+portal+pressure+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Exp.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation.</a> Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).</li>
<li>Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraoperative+vital+and+haemodynamic+monitoring+using+an+integrated+multiple-channel+monitor+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats.</a> Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).</li>
<li>Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+noninvasive+computerized+tail-cuff+system+for+measuring+blood+pressure+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice.</a> Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).</li>
<li>Kuga, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+and+local+autoregulation+of+cerebrovascular+blood+flow%3A+a+deep-brain+imaging+study+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol.%22%5BJournal%5D)">Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse.</a> J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).</li>
<li>Muraki, T., Strain Kato, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((difference+in+the+effects+of+morphine+on+the+rectal+temperature+and+respiratory+rate+in+male+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).</li>
<li>Nielsen, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+volume+measurement+in+mice+by+conductance+catheter%3A+evaluation+and+optimization+of+calibration%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).</li>
<li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+portal+hypertension+and+hepatic+blood+flow+in+cirrhotic+rats+by+oestrogen%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen.</a> Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).</li>
<li>Reverter, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+deep+sedation+on+the+accuracy+of+hepatic+and+portal+venous+pressure+measurements+in+patients+with+cirrhosis%5BTitle%5D)+AND+%22Liver+Int%22%5BJournal%5D)">Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis.</a> Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat zij geen concurrerende financiële belangen.

Monitoring van de lever hemodynamiek is een belangrijk onderzoeksinstrument in hepatologie en hepatobiliair chirurgie. Verwerving van hepatische hemodynamische gegevens helpen het effect van hepatobiliaire procedures karakteriseren de bloedsomloop. Verwerving van de lever hemodynamische data is ook nodig om het effect van geneesmiddelen die van invloed portal druk en portal flow, bijvoorbeeld studeren, als dat nodig is in de studies ter evaluatie van vasoactieve geneesmiddelen. Onda...

Het algemene doel van deze video is om een ​​real-time monitoring procedure aan te tonen voor het verwerven van systemische en lever hemodynamische parameters. De reden voor de ontwikkeling van deze procedure is een grote waarde voor experimentele interventies bij muizen die vereisen dat het verkrijgen van systemische en lever hemodynamische parameters. De procedure kan worden toegepast op naïeve dieren en tijdens of na een bepaalde lever en gal experimentele chirurgische ingreep, zoals een gedeeltelijke leverresectie, poortader ligatie en levertransplantatie. Verwerving van de lever hemodynamische data bij knaagdieren vereist de voorgestelde invasieve procedure. Leverperfusie niet worden verkregen non-invasively. Echter, er zijn alternatieven voor de overname van de systemische bloeddruk. Monitoring technieken zoals de staart manchet techniek 8 zijn gebruikt voor het verkrijgen van de bloeddruk bij ratten en muizen. De staart manchet techniek kan worden toegepast in conscilende dieren. Bij het meten van de bloeddruk, het dier moet worden geplaatst en bevestigd in een bepaald oncomfortabele positie. In de handleiding van de staart-cuff-apparaat, de fabrikant stelt dat muizen zenuwachtig kunnen worden en benadrukt die de circulatie in de staart kan afnemen. Onder deze omstandigheid kan de perifere bloeddruk verkregen in de staart veel lager dan de centrale bloeddruk. De volledige controle procedure werd uitgevoerd met een geïntegreerde meerkanaals monitor met behulp van een reeks sensoren voor data-acquisitie. De bloeddruk werd verkregen door het inbrengen van een katheter in het betreffende vat na zorgvuldige microchirurgische dissectie en blootstelling onder de microscoop. De stroomsnelheid werd gemeten door een transsone stromingsonde rond elk verblijf. We hebben al een soortgelijke intraoperatieve bewaking procedure beschreven voor ratten resulteert in een uitgebreide reeks van fysiologische hemodynamische data te vergelijken met SINGLe gerapporteerde gegevens van andere groepen 7. Daarom overwogen we deze procedure om een ​​goede basis vormen voor de aanpassing aan de muis, een soort 10-voudig kleiner dan de rat. Het belangrijkste verschil met de procedure rat is het gebruik van Millar katheters voor het verkrijgen bloeddruk gegevens in plaats van een vloeistof op basis kathetersysteem. Flow gegevens werden ook verkregen met transsone stroom sondes, maar veel kleinere dan voor de overeenkomstige schepen rat. Door de kleine grootte van het dier, instrumentatie van muizen is technisch uitdagend, maar haalbaar. Zodra instrumentatie is voltooid, data acquisitie en primaire leven hierbij zijn eenvoudig, omdat een voorinstelling bestand kan worden gebruikt. De instelling bestand eenmaal worden vastgesteld bij het begin van een serie experimenten en kunnen worden opgeslagen om alle volgende experimenten. Tot nu toe hebben we deze procedure gebruikt om de lever hemodynamische effecten in acute experimenten te evalueren. We maten CAP en PVP voor en direct na 70% gedeeltelijke hepatectomie (PH) en klemmend / klemmen-de experimenten. We geklemd de hepato-duodenale ligament van de rechter kwab die 20% van de lever massa gevolgd door korte (5 min) klemmen van de mediaan en linker laterale lob die totaal 90% van de massa lever. De-klemmen begon met het vrijgeven van de klem van de rechter kwab, gevolgd door het vrijmaken van de mediaan en linker laterale kwab. Maximale klemming moment onder 10 min.

<table><tbody><tr><td>PowerLab 16/30&nbsp;</td><td>ADInstruments</td><td>PL3516</td><td></td></tr><tr><td>Quad Bridge Amp</td><td>ADInstruments</td><td>FE224</td><td>Bridge versterker&nbsp;</td></tr><tr><td>Animal Bio Amp</td><td>ADInstruments</td><td>FE136</td><td></td></tr><tr><td>Naaldelektroden voor FE136 (3 pk)</td><td>ADInstruments</td><td>MLA1213</td><td></td></tr><tr><td>Perivasculair Flowmetermodule</td><td>Transonic</td><td>TS420</td><td></td></tr><tr><td>Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB</td><td>Transonic</td><td>MA0.5PSB/MA1PSB</td><td></td></tr><tr><td>SPR-1000 Muisdrukkatheter</td><td>Millar instruments</td><td>841-0001</td><td></td></tr><tr><td>met vloeistof gevulde katheter&nbsp;</td><td>Terumo</td><td>SR+DU2619PX</td><td>26G, 0.64&times;19mm</td></tr><tr><td>micro schaar</td><td>F&middot;S&middot;L</td><td>Nr. 14058-09</td><td></td></tr><tr><td>micro klemmen</td><td>F&middot;S&middot;L</td><td>Nr.18055-05</td><td></td></tr><tr><td>Microklemmen applicator</td><td>F&middot;S&middot;L</td><td>Nr. 18057-14</td><td></td></tr><tr><td>rechte microforceps</td><td>F&middot;S&middot;L</td><td>Nr. 00632-11</td><td></td></tr><tr><td>gebogen microforceps</td><td>F&middot;S&middot;L</td><td>Nr. 00649-11</td><td></td></tr><tr><td>naaldhouder</td><td>F&middot;S&middot;L</td><td>Nr. 12061-01</td><td></td></tr><tr><td>6-0 zijden</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0 proleen</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7-0 proleen</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10-0 proleen</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Staart afsnijapparaat&nbsp;</td><td>Kent Scientific</td><td></td><td>www.kentscientific.com</td></tr><tr><td>LabChart7</td><td>ADInstruments</td><td></td><td>data&nbsp; analysesoftware&nbsp;</td></tr></tbody></table>

monitoring van systemische en lever hemodynamische parameters in muizen

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

Het gebruik van muismodellen experimenteel onderzoek is van groot belang voor de studie van hepatische fysiologie en pathofysiologische verstoringen. Echter, vanwege de kleine omvang van de muis, technische details van de intraoperatieve controleprocedure geschikt voor de muis werden zelden beschreven. Eerder hebben we een controleprocedure op hemodynamische parameters te verkrijgen voor ratten gemeld. Nu, we passen de procedure om systemische en lever hemodynamische parameters te verwerven in muizen, een soort tien keer kleiner dan ratten. Deze film toont de instrumentatie van de dieren en de data acquisitie toegepast waarbij systemische hemodynamica en hepatische beoordelen muizen. Vitale parameters, waaronder de lichaamstemperatuur, ademhaling en hartslag werden geregistreerd gedurende de gehele procedure. Systemische hemodynamische parameters bestaan ​​uit halsslagader druk (GLB) en de centrale veneuze druk (CVP). Leverperfusie parameters omvatten portal vEin druk (PVP), goed stroomsnelheid en de stroomsnelheid van het gemeenschappelijk leverslagader (tabel 1). Instrumentatie en data-acquisitie op te nemen van de normale waarden is binnen 1,5 uur afgerond. Systemische en lever hemodynamische parameters bleven binnen de normale grenzen tijdens deze procedure. Deze procedure is uitdagend, maar haalbaar. We hebben al deze procedure toegepast hepatische hemodynamica beoordelen normale muizen en bij 70% gedeeltelijke hepatectomie en leverkwab klemmen experimenten. Gemiddelde PVP na resectie (n = 20) was 11,41 ± 2,94 cm H 2 O die aanzienlijk hoger was (P &lt;0,05) dan voor resectie (6,87 ± 2,39 cm H 2 O). De resultaten van de lever kwab klemmen experiment gaf aan dat deze monitoring procedure is gevoelig en geschikt voor het detecteren van kleine veranderingen in de portale druk en portal debiet. Tot slot, deze procedure is betrouwbaar in de handen van een ervaren micro-chirurg, maar moet worden beperkt tot experiments waar muizen zijn absoluut noodzakelijk.

Vital parameters van de muizen zoals ademhaling en hartslag zijn natuurlijk veel hoger dan in ratten. Gemiddelde systemische bloeddruk en halsader druk zijn vergelijkbaar met waarden rat en zelfs vergelijkbaar met de menselijke data. Hepatische hemodynamische gegevens duidelijk verschillend. We verkregen normale waarden van 8 muizen. Portal bloedstroom in normale muizen varieerde tussen 1,6-2,3 ml / min. Stroming in de gemeenschappelijke leverslagader varieerde 0,10-0,35 ml / min. Poortader ...

Deze film laat zien hoe systemische en lever hemodynamiek bij muizen te verwerven. De gehele controle omvat verkrijging van vitale parameters, systemische bloeddruk, centrale veneuze druk, gemeenschappelijk leverslagader stroomsnelheid en poortader druk en het portaal debiet in muizen.

Monitoring van Systemische en lever hemodynamische parameters in Muizen

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

In deze film wordt de procedure van het monitoren van systemische en hepatische hemodynamica en muizen gedemonstreerd. Monitoring omvat het verkrijgen van vitale parameters, systemische bloeddruk, centrale veneuze druk, portale veneuze druk, evenals de portale stroomsnelheid bij muizen. Wat nodig is voor de volledige bewakingsprocedure is een computer met lab chart zeven, een stereomicroscoop en anesthesieapparaat en een DI-systeem.Componenten Een DI-systeem. Componenten omvatten transittijd, perivascular, flowmeter, power lab en quad bridge. Voor dataverwerving hebben we ook temperatuur- en ECG-signaalconditioner nodig voor opname, richtinggevende temperatuur en hartslag.Hier zijn de instrumenten die we nodig hebben. Het sutuurmateriaal dat we nodig hebben is zes nulzijde zijde zes nulzijde proline zeven nulzijde proline, 10 nulzijde proline. Dit is de temperatuursensor, ECG-sensor en ademhalingssensor.Dit is de bloedstroomsonde, MA één PSB voor het meten van de stroomsnelheid van de portale ader. Dit is de bloedstroomsonde, MA 0,5 PSB voor het meten van de stroomsnelheid van de gemeenschappelijke he-lichaamsslagader, halsslagader en uug-vene. Dit is de Milli C Theater, een zeer gevoelige druktransducer voor het meten van de bloeddruk.Milli C theater kalibratie. Verbind een Miller-sensor met de Miller-tweekanaals, die is ingesteld voor het verkrijgen van portale veneuze druk. Plaats de tip van de Miller-sensor in een waterkolom millimeter.Stel eerst de waarde van de waterkolom in op nul centimeter water in het lab chart zeven-venster. Kies bridge versterken en nul It.Voer de voortgang uit en stop dan. En op die manier kunnen we de basislijnwaarde tot nul centimeter water krijgen.Stel vervolgens de waarde van de waterkolom in op 20 centimeter water. Voer de voortgang uit en stop dan hier. De basislijn van 20 centimeter waterkolom wordt weergegeven.Kies eenheden in het venster. Stel de basislijn van nul en 20 centimeter water in op de overeenkomstige spanningswaarde. Pas de eenheid aan om de bloedstroomsonde kalibratie in centimeter water te regelen.Doe de sonde in gedeïoniseerd water. Verbind de sonde met transonisch flow sonde systeem en lab chard-venster. Kies input versterken om de flow sonde op nul te zetten.Pas de eenheden aan. Druk op de knop om het kanaal te testen om het signaal te verzamelen. Als het signaal drie tot vier balken heeft, betekent dit dat het signaal goed is.In het geval een goed signaal wordt verkregen, kunnen we verder gaan. Druk op de knop om de weg kanaal en schaal kanaal te zien om te zien of de waarde is gekalibreerd of niet. Druk op de knop om het kanaal te meten voor later meten en ize de muis met 2% ISO fluorine en 0,3 milliliter per minuut zuurstof.Bevestig de muis op de operatietafel met een opwarmpad. Plaats een gaaskussen onder de nek voor optimale blootstelling van het operatieveld. Plaats de ECG-naalden subcutaan in de pauze.Plaats de ademhalingssensor onder de rug van de muis. Plaats de temperatuurprobe in de endeldarm van de muis. Neem muis temperatuur ECG en ademhalingsfrequentie op in lab.Chart zeven nekoperatie voor systemische cardiovasculaire monitoring. Desinfecteer de nek van de muis. Identificeer de middellijn van de nek, het middelpunt van het sleutelbeen, de hoek van de onderkaak.Maak een longitudinale incisie van twee centimeter van de hoek van de onderkaak tot het middelpunt van het sleutelbeen ongeveer 0,5 centimeter aan de linkerkant van de middellijn. Deze animatie zal de anatomie van de nek demonstreren. We kunnen de submandibulaire klier onmiddellijk identificeren na het openen van de incisie.Nadat we de submandibulaire klier hebben omgedraaid, kunnen we de externe ulavene en zijn takken identificeren. Onder de ulavene kunnen we de spierlaag zien, inclusief de sterno-latomastoide spier, de superieure buik van de omohyoïde en de sterno-hyoïde spier. Nadat we deze spieren naar de zijkant hebben getrokken, kunnen we de halsslagader identificeren, met speciale aandacht voor de halsslagader en de externe ulavene.Deze twee vaten zijn nodig voor de invoegingen van de ceds. Hier zullen we de chirurgische procedure demonstreren. Eerst, Disseceer de subklier, draai hem om en bedek hem met gaas gedrenkt in zoutoplossing.We kunnen de externe eulavene identificeren. Disseceer onmiddellijk de uglavene en plaats 3 6 0 zijde naden, één voor ligatie en de andere twee voor fixatie. Maak de vaatwand vrij door het vetweefsel op het oppervlak van de ader af te knippen.Zorg ervoor dat u de vaatwand niet beschadigt, anders zal dit ernstige bloedingen veroorzaken. Scheid vervolgens de sterno-platomastoide spier, superieure buik van de omohyoïde en sternoïde spier. Trek de sternomastoide spier met een retractor naar de zijkant.Vervolgens kunnen we de halsslagader identificeren. Disseceer de halsslagader en plaats drie naden voor fixatie en ligatie met zes nulzijde zijde halsslagader bloedstroomsnelheidsmeting. Plaats de transonische sonde MA 0,5 PSB rond de halsslagader.Houd het stabiel. Optimaliseer het contact met behulp van ultragel of zoutoplossing. Neem de bloedstroomsnelheid van de halsslagader op zoals aangegeven op het kleine scherm van het transonische apparaat.Gebruik lab chart zeven, verwijder de sonde na het voltooien van de meting. Halsslagader drukmeting, ligieer het distale uiteinde van de halsslagader klem. Zijn proximale uiteinde.Bind de fixatie-naden los voor later. Bevestig de Millia Theater Plaats één hefnaad met 10 nulzijde proline op de voorwand. Om het openen van de incisie te vergemakkelijken, maak een kleine incisie op de voorwand van het vaat.Voer de Millia Theater in en fixeer het. Laat de klem los. Neem de halsslagaderdruk op met behulp van linker chart zeven ulo veneuze bloedstroommeting.Meet de ulo veneuze bloedstroom met behulp van Transonic flow rope MA 0,5 P sb. Neem

monitoring-of-systemic-and-hepatic-hemodynamic-parameters-in-mice

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

Transthoracale echocardiografie biedt een niet-invasieve methode voor de evaluatie van de hartfunctie bij muizen. Een combinatie van echografie en Doppler beeldvormende technieken kan worden gebruikt voor dimensionele metingen van het hart en intracardiale bloedstroom, die samen zorgen voor een evaluatie van cardiale systolische en diastolische prestaties te verkrijgen.

Transthoracale echocardiografie in Muizen

Het doel van dit protocol is om de systemische bloeddruk te beoordelen bij bewuste, vrij bewegende muizen met behulp van implanteerbare radio-telemetrie-apparaten.

Langdurige Bloeddruk meten in vrij bewegende muizen met behulp van telemetrie

Ongecontroleerde bloeding, een belangrijke oorzaak van sterfte onder traumapatiënten, kan gemodelleerd worden met behulp van een standaard leverlaceratie in een muizen model. Dit model resulteert in consistent bloedverlies, overleving, en maakt het mogelijk om hemostatische stoffen te testen. Dit artikel geeft de stap voor stap het uitvoeren van dit waardevolle model.

Ongecontroleerde hemorragische shock, gemodificeerd via leverlakeratie in muizen met realtime hemodynamische monitoring

Hier beschrijven we een gedetailleerd protocol voor invasieve meting van hemodynamische parameters, met inbegrip van portal druk, splanchnic doorbloeding en systemische hemodynamica teneinde het karakteriseren van de portal hypertensieve syndroom bij ratten.

Invasieve hemodynamische karakterisering van de Portal-hypertensieve syndroom bij Cirrhotic ratten

Hier beschrijven en vergelijken we twee posities voor het verkrijgen van de apicale vier kamer weergave in muizen. Deze posities maken de kwantificering van de rechter ventriculaire functie mogelijk, bieden vergelijkbare resultaten en kunnen door elkaar worden gebruikt.

ECHO cardiografische meting van rechter ventriculaire diastolische parameters in muis

Hier presenteren we een protocol voor het uitvoeren van een invasieve hemodynamische beoordeling van de rechter ventrikel en longslagader bij muizen met behulp van een open-borstchirurgie aanpak.

Invasieve hemodynamische beoordeling voor het rechter ventrikel systeem en hypoxie-geïnduceerde pulmonale arteriële hypertensie bij muizen

Dit protocol biedt een stapsgewijze procedure voor het uitvoeren van meervoudige intraveneuze toediening van bolusdoses en invasieve hemodynamische monitoring bij muizen. Onderzoekers kunnen dit protocol gebruiken voor toekomstige screening van therapeutische verbindingen voor hypertensie van de longslagader.

Meervoudige intraveneuze bolusdosering en invasieve hemodynamische beoordeling in een door hypoxie geïnduceerd model voor hypertensie van de longslagader van muizen

De pulsatiliteit van luteïniserend hormoon (LH) is een kenmerk van de voortplantingsfunctie. We beschrijven een protocol voor het op afstand activeren van specifieke neuronale populaties gekoppeld aan seriële geautomatiseerde bloedafname. Deze techniek maakt getimede hormonale modulatie, multiplexing en het minimaliseren van manipulatie-effecten op LH-niveaus mogelijk bij bewuste, vrij bewegende en ongestoorde dieren.

Neuronale activering op afstand in combinatie met geautomatiseerde bloedafname om circulerend luteïniserend hormoon bij muizen te induceren en te meten

Ultrasnelle Doppler-echografie (UFUS) met een hoge ruimtelijke resolutie (100 μm) en gevoeligheid is een geschikte niet-invasieve beeldvormingsmodaliteit voor het verkrijgen van een uitgebreid kwalitatief overzicht van de levervasculatuur. UFUS faciliteert ook kwantitatieve metingen van de microvasculatuur, met als doel ons begrip van vaatziektemechanismen te vergroten.

Beeldvorming en kwantificering van het levervaatstelsel van muizen met behulp van ultrasnelle Doppler-echografie

Verlies van de oprichtende reflex heeft lang gediend als een standaard gedrags surrogaat voor bewusteloosheid, ook wel hypnose, bij proefdieren. Veranderingen in vluchtige anesthetische gevoeligheid door farmacologische middelen kunnen worden gedetecteerd met een zorgvuldig geregelde high-throughput beoordelingssysteem, dat kan worden aangepast voor levering van elke geïnhaleerde therapeutische.

Het beoordelen van Veranderingen in Volatile narcose gevoeligheid van muizen na lokale of systemische farmacologische interventie

Leer de procedure voor het monitoren van systemische en leverhemodynamiek bij muizen. Deze methode meet bloeddruk, veneuze druk en portale doorbloeding voor nauwkeurig fysiologisch onderzoek.

Monitoring van Systemische en lever hemodynamische parameters in Muizen

Meer video's verkennen