7 juli 2015
Hier maken we een glazen pipette met twee functies: remming van diepe hersenstructuren door micro-injecties van geneesmiddelen en real-time monitoring van hun effecten door gelijktijdige elektrofysiologische opnames.
Het algemene doel van deze procedure is om een betaalbaar injectiekanaal te construeren om neurotransmitters te micro-injecteren in de superieure colliculus van de rat, terwijl de multi-unit neuronale activiteit wordt gemonitord. Dit wordt bereikt door eerst een glazen pipet te maken met behulp van een glazen capillair en een verticale micropipettrekker. De tweede stap is het inbrengen van een zilverdraad in het capillair met een gedeelte van de draad dat uit het niet-versmallende uiteinde steekt.
Vervolgens wordt lijm gebruikt om een strakke afdichting te maken tussen de glazen pipet en een hypodermische naald. De laatste stappen zijn het vullen van de pipet met een Chicago sky blue gekleurde GABA-oplossing, die is bevestigd aan een microspuit gevuld met minerale olie en vastgemaakt aan een micro-injector. Uiteindelijk kan deze constructie van een injectie met toegankelijke en betaalbare onderdelen worden gebruikt om diepe hersenstructuren te inactiveren terwijl de neuronale activiteit van het geïnactiveerde gebied wordt opgenomen vóór, tijdens en na het injecteren van een medicijn.
Er zijn enkele voordelen van deze techniek ten opzichte van andere bestaande methoden, zoals gas-gebaseerde drukpulsen en fotische injectiesystemen. Een voordeel is dat het een kosteneffectieve methode is die functie-gebaseerde controle over de medicijnafgifte mogelijk maakt, wat de weefselschade die wordt veroorzaakt door overmatig injecteren beperkt. Een ander voordeel dat dit systeem biedt, is een gecombineerde opnamemogelijkheid, die efficiënte controle over de temporele component van neurale deactivatie mogelijk maakt.
Om de opname-injectiepipetten voor te bereiden, trekt u eerst een capillair van zeven centimeter met een buitendiameter van één millimeter voor een cop verticale model. Zeven 20 of soortgelijke eenheid. Stel de verwarmer in op 18 en de solenoïde op één, draag vervolgens handschoenen en breek handmatig de punt om een opening te maken en verifieer onder een microscoop dat de binnendiameter tussen 30 en 40 micrometer ligt.
Meet dit met de zoeker-regel. Het zal een relatief lage impedantie van 0,3 tot 0,6 mega ohm produceren. Voer vervolgens vanaf het niet-versmallende uiteinde een zilverdraad in de pipet in, ongeveer zeven centimeter lang, en laat een tot twee centimeter uit de pipet steken.
Buigdeze overtollige draad orthogonaal aan de capillair. Neem vervolgens een hypodermische naald van 30 gauge en breng flexibele plastic lijm aan op de schacht. Steek vervolgens langzaam de naald in de pipet.
Zo ver mogelijk. Voeg meer lijm toe om een afdichting te maken op de verbinding tussen de pipet en de naald. Laat de assemblage met de pipettip omhoog ongeveer 12 uur drogen.
Na het anesthetiseren en het plaatsen van de rat in een stereotactische frame, brengt u oogzalf aan en scheert u zijn hoofd schoon. Na het aanbrengen van een lokaal anestheticum en het bevestigen van een chirurgisch anesthesieniveau, gaat u verder met het insnijden van de hoofdhuid langs de mediane met een scalpelblad nummer 10. Dit zal de coronale en sagittale naden blootleggen.
Gebruik vervolgens een chirurgische spatel om de Lambda en bgma anatomische referenties te identificeren. Pas de positie van het hoofd aan zodat deze landmarks zich in hetzelfde horizontale vlak bevinden. Zet vervolgens een fijne stijve wijzer, zoals een glazen buis, op de bgma.
Pas vervolgens de positie van de buis aan op een locatie van belang met behulp van coördinaten vanaf de bgma. Gebruik de Sharpie om een vierkant te tekenen rond het doelgebied voor de craniotomie. Verwijder nu met de chirurgisch gesteriliseerde boor langzaam het bot langs de markeringen.
Begin met zo weinig mogelijk druk te gebruiken en houd de boor in beweging om weefselschade door wrijving te voorkomen wanneer het bot dun is geworden. Verwijder voorzichtig de vierkante sectie met een pincet. De Dora MA hoeft niet te worden verwijderd, aangezien de injectie het naar voren zal penetreren. Houd de blootgestelde cortex geïrrigeerd met hersenvocht.
Bereid de injectie voor door eerst een spuit van vijf tot 10 microliter te vullen met minerale olie. Bereid vervolgens het gewenste medicijn met een kleurstof in fysiologische zoutoplossing voor. Hier wordt 0,5% Chicago sky blue gemengd met 300 micromolar gaba.
Vul nu de injectiepipet door eerst een spuit van één milliliter te laden met een bereide oplossing en vervolgens de spuit te gebruiken om de pipet te laden. Houd bij het verwijderen van de spuit lichte druk op de zuiger, zodat een vacuüm geen oplossing uit het injectiekanaal verwijdert. Controleer op ontsnappende vloeistof op mogelijke lekkagepunten.
Dekvloeistof verwijderen met een wattenstaafje en opnieuw controleren op lekkage. Bevestig vervolgens de microspuit met minerale olie aan het injectiekanaal. Veeg vervolgens eventuele overtollige oplossing weg.
Controleer met gaas de injectietip. Het zou mogelijk moeten zijn om kleine druppels oplossing erdoorheen te laten stromen, anders is deze geblokkeerd of monteer nu de injector veilig op een micropompsysteem.
Vervolgens beweegt u de positie van het injectiekanaal naar de doelcoördinaten en laat u de elektrode zakken naar de superieure colus, die kan worden geïdentificeerd door de opname van visueel geëvokeerd potentieel. Terwijl de elektrode wordt verlaagd, brengt u een kleine positieve druk aan door een lage injectiesnelheid toe te passen om verstopping te voorkomen. Onderbreek de injectie wanneer de structuur is bereikt.
Na het inbrengen van de injectie bedekt u de blootgestelde cortex met warme agar om uitdroging te voorkomen. Wacht na de definitieve plaatsing van de elektrode 30 minuten om de stabilisatie van het weefsel rond de elektrode mogelijk te maken. Injecteer vervolgens 400 tot 800 nanoliter oplossing met een snelheid van 40 nanoliter per minuut totdat een activering van neuronale activiteit in de superieure colus wordt gezien, de elektrode zou een vermindering in spikes moeten vertonen tijdens de injectie van de remmende oplossing.
Visueel geëvokeerd potentieel werd verkregen in de superieure colus. Na een flits van 300 millisecond
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft de constructie van een glazen pipet die is ontworpen voor twee doeleinden: het toedienen van geneesmiddelen om diepe hersenstructuren te remmen en het bewaken van neuronale activiteit door middel van elektrofysiologische opnames.
This method enables real-time functional validation of drug effects on neuronal circuits, supporting target de-risking in early neuropharmacology discovery. By combining microinjection with electrophysiological readout, it provides mechanistic confidence for inhibitory compound screening. The approach offers a low-cost, adaptable platform for probing brain region-specific pharmacodynamics prior to lead optimization.
The method fits within early discovery workflows where target engagement and functional consequence must be established before compound advancement.