8 januari 2015
Prion-achtige verspreiding van eiwitaggregaten is recent naar voren gekomen als een factor die bij veel neurodegeneratieve ziekten betrokken is. Het doel van dit protocol is om te beschrijven hoe de rondworm C. elegans als modelsysteem kan worden gebruikt om eiwitverspreiding te volgen en prion-achtige fenomenen te onderzoeken.
Het algemene doel van de volgende experimenten is om de verspreiding en complexe toxiciteit van PreOn-achtige eiwitten te onderzoeken met behulp van het metazoaanse modelorganisme C elegans. Dit wordt bereikt door het intra- en intercellulaire transport van blaasjes die het PreOn-achtige eiwit bevatten te volgen met behulp van time-lapse fluorescentiemicroscopie. Vervolgens worden weefselspecifieke vouwensensoren en ubikwitisch tot expressie gebrachte stress.
Reporters gebruikt om celautonome en niet-celautonome effecten op cellulaire fitheid te evalueren. Vervolgens wordt een genoombreed RNAi-screen uitgevoerd om nieuwe modificatoren van PreOn-geïnduceerde toxiciteit te identificeren. Het screen wordt uitgevoerd in vloeibare cultuur met gebruik van thrashing als afleeswaarde voor toxiciteit.
Ten slotte wordt worm tracker, een plugin voor image J, gebruikt om de beweging van C elegans in combinatie te kwantificeren. Deze methoden maken het mogelijk om genetische paden te onderscheiden die betrokken zijn bij de intercellulaire beweging van PreOn-achtige eiwitten en hun niet-celautonome toxiciteit. Na het voorbereiden van gesynchroniseerde zee-elegans controle en PreOn-domein transgene lijnen en 10% agros pads, volgens het bijbehorende tekstprotocol, pipet drie microliter van 100 nanogram polystyreenkralen en drie microliter van vier millimolair limassol in de agros pad.
Gebruik een platinadraad om wormen op de gewenste leeftijd van een plaat in de oplossing te brengen en gebruik een dekglas om de wormen te bedekken om de wormen op subcellulair niveau af te beelden. Plaats een dia in de dia-houder van een confocale microscoop en gebruik een 63 x of 100 x 1.4 NA olie-objectief. Open vervolgens METAMORPH en selecteer multidimensionale acquisitie.
En onder het hoofdtabblad, vink de vakjes aan voor time lapse en voer tijdschriften uit. Onder het tabblad opslaan, selecteer of maak de mapmap voor het opslaan van bestanden en geef een naam aan het bestand. Onder het tabblad golflengte, gebruik Yoko quad rood of een equivalent van MRFP-beeldvorming en pas de belichting aan tussen 100 en 300 milliseconden en de cameraversterking tussen 100 en 300. Vervolgens, onder het tabblad time lapse, stel de tijdsinterval in op één seconde, duur op vijf minuten en het aantal tijdstippen op 301.
Onder het tabblad tijdschriften. Selecteer voor het tijdschrift een FC-set, Z-houder en een FC-terugkeer naar Z-houder voor type selecteer speciaal twee keer en voor het beginpunt, selecteer start van tijdstip en einde van tijdstip. Wanneer de setup klaar is, drukt u op verwerven. Volgend deze procedure, kunnen andere methoden zoals deeltjestraceringstoepassingen worden gebruikt om de dynamische eigenschappen van dis cus te meten.
Na het synchroniseren van priondomein transgene en while-type nematoden en het kopiëren van de inger RNAI-bibliotheekplaten volgens het tekstprotocol, incubeer gedupliceerde RNAi-platen bij 37 graden Celsius en 300 RPM om HT one 15 E coli-bacteriën met de lege vector L 4 4 4 0 als controle te gebruiken. Kweek het afzonderlijk in een kweekbuis en gebruik vervolgens een multikanaals pipette om 65 microliter van de kweek in een kwart van de putjes van 2 96. Welplaten met een geautomatiseerde werkstation met een multikanaals hoofd gedispenseerd.
10 microliter van vijf, millimolair van verdunde IPTG in elk putje van de RNAi-bacteriën en controleplaten. Verzegeld ze opnieuw voordat je ze gedurende drie uur incubeert terwijl de bacteriën incuberen. Meng gesynchroniseerde wilde type controle en transgene L een larven en M negen buffer goed en pipet vijf tot 10 microliter op een glazen microscoop.
Tel de wormen op de dia en bereken het aantal wormen per microliter. Na de drie uur durende bacteriële incubatie, verwijder de platen uit de incubator en laat ze komen tot kamertemperatuur om warmtestress van de wormen te voorkomen. Vervolgens supplementeer de M negen buffer met IPTG cholesterol en antibiotica volgens het tekstprotocol.
En voeg het geschikte volume van PreOn-domein transgene wormoplossing toe aan een eindconcentratie van 15 wormen per microliter mix om gelijkmatig te verdelen. Vervolgens geeft u 50 microliter in elk putje van de RNAi-platen en de putjes van een van de lege vector controleplaten. Geef wilde type wormoplossing in de tweede controleplaat.
Laat vervolgens alle platen onafgesloten om aëratie toe te staan en om te voorkomen dat de vloeibare kweek uitdroogt door vier tot vijf platen samen te stapelen, ze te omwikkelen met een vochtige papieren handdoek gevolgd door aluminiumfolie. Incubeer de platen bij 20 graden Celsius en 200 RPM gedurende vier dagen. Gebruik voor de platen een Falcon four M 60-camera verbonden met een computer met een monitor om visueel te screenen op verhoogde thrashing vergeleken met controle behandelde PreOn-domein transgene dieren.
Het belangrijkste voordeel van het gebruik van een geautomatiseerd werkstation voor vloeistofbehartiging om de wormen in de R RNAi-platen te verdelen, is dat het de variabiliteit en het aantal wormen per putje aanzienlijk vermindert. Om een mobiliteitstest op vaste platen uit te voeren en kandidaat-RNAi-klonen te valideren, kweek RNAi-bacteriën overnacht volgens het tekstprotocol. Gebruik vervolgens een millimolair IPTG om de expressie van DS RNA gedurende drie uur te induceren.
Gebruik 150 microliter van elke RNAi-bacterieklonen om eerder voorbereide NGM-platen te zaaien die zich verspreiden in een dunne laag. Laat de bacteriën twee dagen drogen bij kamertemperatuur in het donker onder een stereomicroscoop. Bepaal de hoeveelheid gesynchroniseerde wormen en suspensie zoals eerder beschreven en voeg 25 tot 30 L een larven toe aan elke experimentele plaat.
Incubeer de nematoden bij 20 graden Celsius gedurende vier dagen tot de wormen zijn. De tweede dag van volwassenheid om wormmobiliteit te kwantificeren, zet de camera en de eenvoudige PCI-beeldvormingssoftware aan. Klik op het camerapictogram om aanpassing van de beeldvormingscondities mogelijk te maken.
Stel vervolgens de beeldvormingscondities in zoals hieronder. Stel de versterking in op nul lichtmodus naar hoge snelheid index naar é
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit onderzoek onderzoekt de prion-achtige propagatie van eiwitaggregaten met gebruik van de nematode C. elegans als modelsysteem. Het onderzoek richt zich op het monitoren van de verspreiding van eiwitten en het beoordelen van de daarmee gepaard gaande toxiciteit van PreOn-achtige eiwitten.
Deze studie vestigt een metazoaal model in C. elegans om de verspreiding van prion-achtige eiwitten en de daarmee gepaard gaande toxiciteit te onderzoeken, waarmee een kritieke opening in het onderzoek naar neurodegeneratieve ziekten wordt opgevuld. Door directe monitoring van fluorescentie-gemerkte priondomeinen in levende dieren mogelijk te maken en genetische screens te faciliteren, ondersteunt deze benadering de validatie van targets en het mechanistisch verminderen van risico's voor therapeutische ontwikkeling. Het model biedt een ziekte-relevant systeem voor het evalueren van intercellulaire transmissie en de verstoring van proteostase, wat bijdraagt aan vroege ontdekkingsbeslissingen voor eiwitaggregatiestoornissen.
De methode is geïntegreerd in het ontdekkingscontinuüm, van targetvalidatie tot leadidentificatie, ter ondersteuning van hypothesetesten en het verduidelijken van signaalpaden in programma's voor neurodegeneratieve ziekten.