Name: Oppervlakte Potentieel Meting van Bacteriën Met behulp Kelvin Probe Force Microscopy (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 49 s
Description: Leer Kelvin probe force microscopy (KPFM) om oppervlaktepotentiaal van bacteriën te meten met nanoschaalresolutie. Deze methode onthult hoe substraatladen celmembraanlading en hechting beïnvloeden.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs danken oprecht de Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada, het Ontario Ministry of Research and Innovation en de Canada Foundation for Innovation voor het financieren van deze studie.

1. Voorbereiding van glaswerk en Culturen <ol><li> Voordat u verder gaat met dit experiment, voor te bereiden 5% schapenwol bloed agar (SBA) platen voor het kweken van MRSA. Incubeer SBA platen gedurende 24 uur bij 37 ° C. Hierna moeten centrale, goed geïsoleerde kolonies aanwezig gebruiken voor daaropvolgende entingen in vloeibare media. WINKEL strepen SBA platen met afzonderlijke kolonies bij 4 ° C gedurende 1-2 maanden. OPMERKING: Schapen agarplaten komen voorgevormde verpakkingen tussen 20-25 platen op basis van de fabrikant, en typisch uit een tryptische soja-agar aangevuld met 5% g / v bloed schapen. </li><li> Voeg 500 ml tryptische soja bouillon (TSB) aangevuld met 1% glucose en 0,1% NaCl. Na deze, te verzamelen en te reinigen 2 glazen reageerbuizen. Als autoclaveerbaar deksels zijn beschikbaar voor reageerbuizen, gebruiken aluminiumfolie als een dop. Autoclaaf TSB en reageerbuizen samen met een doos van 1 ml pipet tips. </li><li> Onder een bioveiligheid kast of in de buurt van een Bunsnl brander, pipet 5 ml van eerder geautoclaveerd TSB in geautoclaveerd reageerbuizen. Wees voorzichtig dat er voldoende tijd te waarborgen werd gegeven om te laten de TSB en reageerbuizen afkoelen tot kamertemperatuur. Van een eerder weggeschoten 5% SBA plaat, te enten een enkele kolonie in 6 ml TSB bouillon. Men zal MRSA bevatten, en de tweede reageerbuis wordt gebruikt als een negatieve controle om steriliteit te waarborgen. </li><li> Neem geïnoculeerde TSB reageerbuizen en deze in wederzijdse incubator gedurende 24 uur bij 37 ° C en bij 200 rpm. Hierna microbiële groei zichtbaar in de MRSA reageerbuis moet zijn, geen groei zou hebben plaatsgevonden in de controle reageerbuis. </li><li> Neem 1 ml van 24 uur cultuur en pipet in 6 ml vers TSB. Incubeer bij 37 ° C gedurende 6 uur bij 200 rpm. </li><li> Pipetteer 1 ml van 6 uur subcultuur in een 1,5 ml microcentrifugebuis. Centrifugeer gedurende 3 min bij 850 x g. Verwijder supernatant en resuspendeer pellet in 1 ml gedeïoniseerd H2O Centrifuge, herhalen en opnieuw op te schorten. </li></ol><ol><li> Neem roestvrij staal en goud AFM monster schijven (20 mm respectievelijk 10 mm diameter) en reinig kant met 5 ml gedeïoniseerd H2O Houd monster schijven in de dominante hand met een tang en gebruik de subdominant hand 5 ml pipet aan elke zijde van het monster schijf. Na wassen beide zijden plaats voorbeeld schijven in een bekerglas met 20 ml gedeïoniseerd H2O gevolgd door sonicatie gedurende 1 minuut. </li><li> Na sonicatie gebruik een tang om het monster schijven te verwijderen uit de beker. Plaats de schijven, zodat ze leunen op een hoek van 60 ° tegen de rand van een open Petri plaat op een papieren handdoek. Gebruik het deksel van de Petri plaat ter dekking van de droging schijven. Laat schijven volledig drogen voordat u verder gaat. 8 hr - De droogtijd kan variëren tussen 4. </li><li> Eenmaal droog, een tang om het monster schijven te plaatsen in een Petri plaat. <ol><li> Optioneel functionaliseren de oppervlakken van het monster schijven met enig materiaal (bijvoorbeeld, collageen, hyaluronzuur, zilver nanodeeltjes, etc.). </li><li> Voor dit experiment gebruikt poly-L-lysine te bekleden het substraatoppervlak. Voor poly-L-lysine functionalisering, pipet 200-400 gl 0,1% poly-L-lysine (in H2O) op monster schijven, en laat incubeer gedurende 1 uur bij kamertemperatuur in een petrischaal. </li><li> Na 1 uur tang om de sample disk houden, en was met 1 ml gedeïoniseerd H2O Laten drogen op keukenpapier zoals beschreven in stap 2.2. </li></ol></li><li> Neem 2x gewassen opnieuw gesuspendeerde cellen en plaat 200-400 pi op monster schijven in een bioveiligheid kast. Als voorbeeld schijven bekleed met poly-L-lysine, incubeer gedurende 0,5 uur bij kamertemperatuur geroerd. </li><li> Na incubatie van cellen op monster schijven, wassen monster schijven voorzichtig met 1 ml gedeïoniseerd H2O Laat schijven nacht drogen voor de beeldvorming. </li></ol> 3. KPFM Imaging OPMERKING: Voor dit experiment,Gebruik een Agilent 5500 serie ILM-AFM. <ol><li> AFM starten, schakelt u de computer unit samen met de AFM HEB en MAC III controller. Open AFM imaging software (bijvoorbeeld Agilent PicoView). Zorg ervoor dat u kiest aanvankelijk ACAFM of welke de correcte benaming is op de AFM voor de beeldvorming in intermitterende-contact-modus. </li><li> Met behulp van AFM een tang in de dominante hand, en het houden van de verende clip houder geopend met de subdominante de hand, plaats een KPFM cantilever in het hoofd-stuk. Wees voorzichtig bij het hanteren en het overbrengen van de AFM hoofd-stuk aan de AFM als dit toestel (althans op de 5500 ILM-AFM) bevat de fragiele piëzo kristal eenheid die X, Y en Z scannen directionalities controleert. OPMERKING: De KPFM uitkragingen gebruikt in dit geval waren Mikromasch geleidende DPE (low-noise) uitkragingen met gemiddeld resonante frequenties van 80 kHz en veerconstanten van 2,7 N / m. Cantilevers met deze resonantiefrequenties en veerconstanten werden gekozen vanwege hun gebruiksgemak.Cantilevers met grotere veerconstanten en hogere resonantiefrequenties kunnen ook worden gebruikt voor beeldvorming. </li><li> Vul voorzichtig hoofd-stuk in de AFM en sluit de juiste draden (in dit geval twee draden moeten worden aangesloten: laserlicht en podium lift motor). </li><li> Richt de laser op de punt van de cantilever. Sommige eenheden bevatten een camera functionaliteit die het mogelijk maakt voor eenvoudiger uitlijning. Als camera functionaliteit niet aanwezig is op de AFM, uitlijnen op de cantilever tip zoals beschreven volgende: <ol><li> Draai de front-to-back-knop naar rechts om de laser te verplaatsen overtop de cantilever chip. Wanneer de laser de chip bereikt zal worden geblokkeerd en niet meer zichtbaar zijn. Draai alleen de knop een paar keer. </li><li> Draai de front-to-back-knop tegen de klok in totdat de laser spot weer verschijnt. De laser is nu aan de rand van de chip. </li><li> Draai de links-naar-rechts knop om de laser op de cantilever te positioneren. Als de laser gaat over de cantilever het zal verdwijnen en weer verschijnen in snelle opeenvolging. De laser spot moet zichtbaar zijn in de matglazen kap waar de fotodiode-later zullen zitten zijn. </li><li> Draai de front-to-back-knop tegen de klok in naar de plek langs de cantilever te verplaatsen naar de punt tot aan de plek op het matglas verdwijnt. </li><li> Draai de front-to-back kloksgewijs slechts licht om de laser te plaatsen zodat behalve kijken op de cantilever tip. De laser spot verschijnt weer op het matglas. LET OP: Dit is de laser methode voor positiebepaling voor duikplank uitkragingen. Voor driehoekstabilisators, de uitlijning proces enigszins verschilt. </li></ol></li><li> Zodra de laser is uitgelijnd, houdt het podium lift motor in de stand &quot;open&quot; voor 10 sec om voldoende ruimte tussen de cantilever en de steekproef te waarborgen bij het bevestigen van het monster aan de AFM. </li><li> Plaats monster op de KPFM monster podium. Aard het monster met behulp van een koperen draad. Sluit de juiste draden van de AFM om het monster podium. Sluit de sTage aan de AFM. In de meeste gevallen het podium wordt op zijn plaats gehouden met behulp van magneten. </li><li> In de AFM software, tunen beginnen de cantilever en vervolgens aanpak van de cantilever tip om het monster. Ervoor zorgen dat afwikkeling van de tijd is ingesteld op niet meer dan 10 msec, en dat naderingssnelheden niet meer bedragen dan 2,0 micrometer / sec om tip schade te voorkomen. </li><li> Zodra de cantilever tip is op het monster oppervlak, selecteer een imaging venster grootte en ideaal beeldgebied. Optimaliseren I en P winsten samen met de cantilever setpunt zodat topografische beeldvorming wordt geoptimaliseerd. <ol><li> Zodra topografische beeldvorming is geoptimaliseerd, zet KPFM module (FM of AM-modus, hier gebruiken FM-modus). Opgemerkt zij dat KPFM beeldvorming is zeer uitdagend buiten 5 urn x 5 micrometer afbeeldingsvenster. Ook voor een optimale KPFM beeldvorming, gebruik een 512 x 512 resolutie met langzame scan snelheden (0,02-0,05 lijnen / sec). </li></ol></li><li> Voor FM-KPFM (instellingen die niet ACAFM), stelt u de schijf procent tussen de 5-10%. Stel de cantilever frequency tussen 1-5 kHz met een bandbreedte van 2 kHz. I en P winsten voor de FM-KPFM instellingen tot 0,3%. <ol><li> Variëren signaalbandbreedte en I en P winsten tussen monster oppervlakken. SP beeldvorming te optimaliseren, signaalbandbreedte verder aanpassen en I en P winsten tot optimale beelden te verkrijgen. Het aanbevolen bereik van I en P winsten zijn 0,22-0,35%. </li></ol></li><li> Verwerkt en geanalyseerd verzameld KPFM beelden met behulp van post-beeldbewerkingssoftware SP gegevens te verzamelen. </li></ol>

<ol><li>Seth, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+modeling+of+biofilm-infected+wounds%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Surg.+Research%22%5BJournal%5D)">In vivo modeling of biofilm-infected wounds: a review.</a> J. Surg. Research. 178 (1), 330-338 (2012).</li>
<li>Wolcott, R. D., Ehrlich, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilms+and+chronic+infections%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Biofilms and chronic infections.</a> JAMA. 299 (22), 2682-2684 (2008).</li>
<li>Hoiby, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+clinical+impact+of+bacterial+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Micro.+Infect%22%5BJournal%5D)">The clinical impact of bacterial biofilms.</a> Micro. Infect. 3 (2), 55-65 (2011).</li>
<li>Zhang, W., Hughes, J., Chen, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impacts+of+hematite+nanoparticle+exposure+on+biomechanical%2C+adhesive%2C+and+surface+electrical+properties+of+E.+coli+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Impacts of hematite nanoparticle exposure on biomechanical, adhesive, and surface electrical properties of E. coli cells.</a> Appl. Environ. Microbiol. 78 (11), 3905-3915 (2012).</li>
<li>Lorite, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+physicochemical+properties+at+the+micro+and+nano+length+scales%3A+role+on+bacterial+adhesion+and+Xylella+fastidiosa+biofilm+development%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Surface physicochemical properties at the micro and nano length scales: role on bacterial adhesion and Xylella fastidiosa biofilm development.</a> PLoS One. 8 (9), (2013).</li>
<li>Lee, I., Chung, E., Kweon, H., Yiacoumi, S., Tsouris, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scanning+surface+potential+microscopy+of+spore+adhesion+on+surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Coll.+Surf.+Biointer%22%5BJournal%5D)">Scanning surface potential microscopy of spore adhesion on surfaces.</a> Coll. Surf. Biointer. 92, 271-276 (2012).</li>
<li>Tsai, C., Hung, H., Liu, C., Chen, Y., Pan, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+plasma+membrane+surface+potential+of+PC12+cells+as+measured+by+Kelvin+probe+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Changes in plasma membrane surface potential of PC12 cells as measured by Kelvin probe force microscopy.</a> PLoS One. 7 (4), (2012).</li>
<li>Jucker, B. A., Harms, H., Zehnder, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesion+of+the+positively+charged+bacterium+Strenotrophomonas+%28Xanthomonas%29+maltophilia+70401+to+glass+and+Teflon%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriology%22%5BJournal%5D)">Adhesion of the positively charged bacterium Strenotrophomonas (Xanthomonas) maltophilia 70401 to glass and Teflon.</a> J. Bacteriology. 178 (18), 5472-5479 (1996).</li>
<li>Soon, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Different+surface+charge+of+colistin-susceptible+and+-resistant+Acinetobacter+baumannii+cells+measured+with+zeta+potential+as+a+function+of+growth+phase+and+colistin+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Anti.+Chemo%22%5BJournal%5D)">Different surface charge of colistin-susceptible and -resistant Acinetobacter baumannii cells measured with zeta potential as a function of growth phase and colistin treatment.</a> J. Anti. Chemo. 66, 126-133 (2011).</li>
<li>Tariq, M., Bruijs, C., Kok, J., Krom, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Link+between+culture+zeta+potential+homogeneity+and+Ebp+in+Enterococcus+faecalis%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Link between culture zeta potential homogeneity and Ebp in Enterococcus faecalis.</a> Appl. Environ. Microbiol. 78 (7), 2282-2288 (2012).</li>
<li>Ayala-Torres, C., Hernandez, N., Galeano, A., Novoa-Aponte, L., Soto, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zeta+potential+as+a+measure+of+the+surface+charge+of+mycobacterial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Zeta potential as a measure of the surface charge of mycobacterial cells.</a> Ann Microbiol. , (2013).</li>
<li>Allison, D. P., Mortensen, N. P., Sullivan, C. J., Doktycz, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+force+microscopy+of+biological+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomed.+Nanobiotech%22%5BJournal%5D)">Atomic force microscopy of biological samples.</a> Nanomed. Nanobiotech. 2 (6), 613-634 (2010).</li>
<li>Lindsay, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scanning+tunneling+microscopy+and+atomic+force+microscopy+studies+of+biomaterials+at+a+liquid-solid+interface%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vac.+Sci.+Technol%22%5BJournal%5D)">Scanning tunneling microscopy and atomic force microscopy studies of biomaterials at a liquid-solid interface.</a> J. Vac. Sci. Technol. 11 (4), 808-815 (1993).</li>
<li>Moores, B., Hane, F., Eng, L., Leonenko, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kelvin+probe+force+microscopy+in+application+to+biomolecular+films%3A+frequency+modulation%2C+amplitude+modulation%2C+and+lift+mode%5BTitle%5D)+AND+%22Ultramicroscopy%22%5BJournal%5D)">Kelvin probe force microscopy in application to biomolecular films: frequency modulation, amplitude modulation, and lift mode.</a> Ultramicroscopy. 110 (6), 708-711 (2010).</li>
<li>Melitz, W., Shen, J., Kummel, A. C., Kelvin Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((probe+force+microscopy+and+its+application%5BTitle%5D)+AND+%22Surf.+Sci.+Reports%22%5BJournal%5D)">probe force microscopy and its application.</a> Surf. Sci. Reports. 66 (1), 1-27 (2011).</li>
<li>Loppacher, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FM+demodulated+Kelvin+probe+force+microscopy+for+surface+photovoltage+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">FM demodulated Kelvin probe force microscopy for surface photovoltage tracking.</a> Nanotechnology. 16 (3), (2005).</li>
<li>Domanski, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kelvin+probe+force+microscopy+in+nonpolar+liquids%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Kelvin probe force microscopy in nonpolar liquids.</a> Langmuir. 28 (39), 13892-13899 (2012).</li>
<li>Collins, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+harmonic+Kelvin+probe+force+microscopy+at+the+graphene-liquid+interface%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Phys.+Letters%22%5BJournal%5D)">Dual harmonic Kelvin probe force microscopy at the graphene-liquid interface.</a> Appl. Phys. Letters. 104 (13), 133103(2014).</li>
<li>Kobayashi, N., Asakawa, H., Fukuma, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoscale+potential+measurements+in+liquid+by+frequency+modulation+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Rev.+Sci.+Instru%22%5BJournal%5D)">Nanoscale potential measurements in liquid by frequency modulation atomic force microscopy.</a> Rev. Sci. Instru. 81, (2010).</li>
<li>Collins, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+charge+screening+dynamics+and+electrochemical+processes+at+the+solid-liquid+interface+with+electrochemical+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Comm%22%5BJournal%5D)">Probing charge screening dynamics and electrochemical processes at the solid-liquid interface with electrochemical force microscopy.</a> Nature Comm. 5, 2871(2014).</li>
<li>Pastar, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+of+methicillin+resistant+Staphylococcus+aureus+USA300+and+Pseudomonas+aeruginosa+in+polymicrobial+wound+infection%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Interactions of methicillin resistant Staphylococcus aureus USA300 and Pseudomonas aeruginosa in polymicrobial wound infection.</a> PLoS One. 8 (2), (2013).</li>
<li>Brien, D. J., Gould, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Does+vancomycin+have+a+future+in+the+treatment+of+skin+infections%5BTitle%5D)+AND+%22Cur.+Opin.+Infec.+Diseas%22%5BJournal%5D)">Does vancomycin have a future in the treatment of skin infections.</a> Cur. Opin. Infec. Diseas. 27 (2), 146-154 (2014).</li>
<li>Wang, P., Kinraide, T. B., Zhou, D., Kopittke, P. M., Peijnenburg, W. J. G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+membrane+surface+potential%3A+dual+effects+upon+ion+uptake+and%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Plasma membrane surface potential: dual effects upon ion uptake and.</a> 155 (2), 808-820 (2011).</li>
<li>Gross, M., Cramton, S. E., Gotz, F., Peschel, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Key+role+of+teichoic+acid+net+charge+in+Staphylococcus+aureus+colonization+of+artificial+surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Key role of teichoic acid net charge in Staphylococcus aureus colonization of artificial surfaces.</a> Infect. Immun. 69 (5), 3423-3426 (2001).</li>
<li>Sinensky, A. M., Belcher, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Label-free+and+high-resolution+protein%2FDNA+nanoarray+analysis+using+Kelvin+probe+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Nanotechnol%22%5BJournal%5D)">Label-free and high-resolution protein/DNA nanoarray analysis using Kelvin probe force microscopy.</a> Nat. Nanotechnol. 2, 653-659 (2007).</li>
<li>Park, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+recognition+of+biomolecular+interaction+via+kelvin+probe+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+Nano%22%5BJournal%5D)">Single-molecule recognition of biomolecular interaction via kelvin probe force microscopy.</a> ACS Nano. 5 (9), 6981-6990 (2011).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

KPFM werd gebruikt als een nieuwe techniek voor het verkrijgen van elektrische oppervlakteweerstand gegevens. Het is algemeen gebruikt als een methode voor de behandeling ladingsverdeling chemie en is pas sinds kort worden voor de studie van biologische systemen micro- en nano-schaal. Uit de verzamelde gegevens bleek dat microben leek niet gemakkelijk hechten aan roestvrij staal en goud reinigen oppervlakken, zelfs na 3 uur van statische incubatie. Poly-L-lysine gefunctionaliseerde oppervlakken liet snelle microbiële he...

Biofilms geproduceerd op apparatuur oppervlakken en in huidwonden een probleem vormen voor de medische industrie als biofilms zijn recalcitrant te verwijderen en kan leiden tot een verhoogde tarieven van de overdracht van ziekten en antimicrobiële resistentie. Hechting is de eerste stap in biofilmvorming en is de meest kritische stap vanwege de omkeerbaarheid 1-3. Substraat oppervlakte-eigenschappen spelen een cruciale rol op de microbiële gehechtheid. Factoren zoals oppervlakte hardheid, porositeit, ruwheid en hydrofobiciteit is aangetoond dat bacteriële hechting te bewerkstelligen; Er is echter weinig onderzoek naar de invloed van substraatoppervlak potentiaal (SP) op microbiële adhesie gedaan 4,5. Negatief geladen oppervlakken te voorkomen de bevestiging van Bacillus thuringiensis sporen mica, silicium, goud en 6. Veranderingen in cellulaire membraanpotentiaal wijzen op veranderingen in cellulaire hechting en motiliteit 5,7. Het is waargenomen dat elektrisch homogeneous oppervlak te bevorderen microbiële adhesie 5. Karakterisering van de oppervlaktepotentiaal van bacteriën op nanoschaal kan een nieuwe manier om de hechting kinetiek van bacteriën voor verschillende ondergronden begrijpen verschaffen, en daardoor kan helpen bij de ontwikkeling van anti-biofouling strategieën. In tegenstelling tot andere methoden voor het karakteriseren van de electro kinetiek bacteriën zoals elektroforetische lichtverstrooiing, zeta potentiaal en isoelektrisch punt bepalen, Kelvin probe force microscopie (KPFM) maakt het onderzoek van individuele cellen in plaats van gehele kweken 8-11. Dit is gunstig wanneer willen vergelijken cel-cel of biofilm elektrische kenmerken met een hoge nauwkeurigheid en precisie. KPFM is een module van atomaire kracht microscopie (AFM). AFM werd ontwikkeld als een direct gevolg van de scanning tunneling microscoop (STM) 12. De eerste gepubliceerde beelden met behulp van STM werden gedaan door Gerd Binnig en Heinrich Rorhrer in 1982 12 </sup&gt;. Hun uitvinding was in staat om atoomstructuren lossen door Rasterscanning een scherpe geleidende tip over een geleidend oppervlak in de lucht. De implicaties van het bereiken van een hoge-resolutie beelden opgewonden biologen die snel geprobeerd om STM gebruiken om het beeld gedroogde monsters van DNA, eiwitten en virussen 12. STM kan ook in vloeistoffen met gespecialiseerde meetpennen 13. Dit werd aangetoond door Lindsay et al., Die STM en AFM gebruikt om beelden DNA moleculen in 10 mM HClO 4 en water, op goud elektroden 13. KPFM is aangetoond in het bepalen van de oppervlaktepotentiaal van DNA en eiwitanalyse 25 en biomoleculen interactie met liganden 26. KPFM werkt door het meten van het contact potentiaalverschil (CPD) tussen een AFM geleidende cantilever tip en een ideaal geleidende monster (Figuur 1, i) 14,15. Monsters niet noodzakelijkerwijs geleidende (dwz biologische Sampl zijnes). Imaging kan op mica, glas en silicium oppervlakken (niet geleidend), zolang de niet-geleidende oppervlak dun en er een onderliggend geleidend materiaal 6,7 uitgevoerd. De CPD is gelijk aan de oppervlaktepotentiaal spanning en kan worden omschreven als het verschil in de werkfuncties tussen de tip (φ tip) en monster (φ monster), gedeeld door de negatieve elektron lading (- e). Wanneer een geleidende AFM tip dicht wordt gebracht op een monsteroppervlak (gescheiden door afstand d), een elektrostatische kracht (F n) gegenereerd door het verschil in Fermi energie (Figuur 1, ii, a) 15. Op dit punt, het vacuüm energieën van de tip en monster (E v) in evenwicht en uitgelijnd. Bij het ​​brengen van de punt dichter bij het ​​monster oppervlak, de tip en sample oppervlak in elektrisch contact en fungeren als parallelle plaat condensatoren (Figuur 1, ii, b komen </strong&gt;) 14,15. Op het moment, de Fermi energie van de tip en monsteroppervlak gelijkgericht raken, tot een steady-state-evenwicht (figuur 1, ii, b). De tip en sample oppervlak wordt in rekening gebracht en een V CPD zal vormen als gevolg van een verschil in E v &#39;s en werkfuncties. Acts Een F es op het elektrisch contact gebied als gevolg van de gevormde V CPD. Deze kracht wordt vervolgens vernietigd door toepassing van een externe V DC aan de tip die dezelfde grootte als de gevormde V CPD heeft (figuur 1, ii, c). Dit gold gelijkspanning elimineert oppervlaktelading op het gebied van elektrisch contact, en de hoeveelheid V DC noodzakelijk de F es V CPD elimineren is gelijk aan het verschil in de werkfuncties tussen de sample oppervlak en tip 15. Opgemerkt zij dat de werkfunctie van de tip is bekend en wordt geleverd door de fabrikanten. In alle KPFM werkwijzen, een AC spanning (V AC, ongeveer 100-500 mV) wordt ook toegepast op de tip om oscillerende elektrische kracht tussen de tip en monster 14 genereren. Dit zorgt voor een betere resolutie bij het ​​meten van veranderingen in de V CPD en / of F es. In dit opzicht kunnen veranderingen in de frequentie of amplitude van de elektrische oscillatie worden gecorrigeerd door V DC en oppervlakte potentiaalkaarten kunnen worden gegenereerd. Gegevens van specifieke gebieden van deze kaarten kan verder worden geanalyseerd om de elektrische informatie over specifieke topografische kenmerken bieden. KPFM kan in drie modi: (1) lift stand (2) amplitudemodulatie (AM) modus, en (3) frequentiemodulatie (FM) modus 14,16. Lift-modus was de eerste incarnation van KPFM. Lift-modus is gebaseerd op een twee-pass-methode waarbij een kronkelende tip wordt gesleept over het oppervlak om een ​​topografische afbeelding te verkrijgen. Voor de tweede pas het topje omhoog staat een vooraf ingestelde afstand boven het monster (10-100 nm) en terug over hetzelfde gebied gescand. Door deze twee-pass-methode, lift-modus, in vergelijking met AM- en FM-KPFM, neemt de langste tijd voor het acquisitie. Het verhogen van de tip van het oppervlak zorgt ervoor dat alleen lange afstand F es gemeten. Ook wordt overspraak tussen topografie en oppervlaktepotentiaal metingen ontkoppeld ten koste van toegenomen laterale resolutie en gevoeligheid. AM-KPFM verbetert de laterale resolutie en gevoeligheid door het gebruik van dual-frequenties voor het gelijktijdig meten monster topografie en oppervlaktepotentiaal (one-pass scan) 14. In de AM-modus, wordt de cantilever mechanisch schommelde, in het algemeen 5% onder het eerste resonantiefrequentie (f 0), en elektrisch schommelde (through een V AC) bij zijn tweede resonantiefrequentie (f 1). Veranderingen in de amplitude van f 0 leidt tot het genereren van topografische gegevens, terwijl veranderingen in de amplitude van f1, door veranderingen in F es en V CPD geven oppervlaktepotentiaalmeter meetgegevens. f 0 en f 1 van de cantilever gescheiden door belangrijke frequenties en energieën signaal overspraak geminimaliseerd 14. Het hoofd elektronica doos (HEB) van de AFM scheidt de twee signalen om zowel topografische geven en oppervlakte potentiële gegevens tegelijkertijd in één scan. FM-KPFM verbetert de resolutie nog verder dan het AM-KPFM op biologische oppervlakken 14. FM-KPFM werkt anders dan de AM-KPFM in dat het meet de ontwikkeling van elektrostatische kracht hellingen in plaats van elektrostatische kracht (F n) 15. Net als de AM-modus, FM-modus maakt gebruik van dual-frequenties en formae bypass aftastmechanisme verkrijgen topografische en oppervlaktepotentiaal gegevens tegelijk 14. In de FM-modus wordt de cantilever mechanisch schommelde bij f 0 en elektrisch schommelde bij een lage gewijzigde frequentie (f mod, meestal 1-5 kHz). Bij elektrostatische interacties, f 0 en f mod mix te zijbanden f 0 ± f mod te produceren. De zijbanden zijn zeer gevoelig voor elektrostatische kracht, en kan uit f 0 gescheiden door AFM HEB. Aangezien FM-KPFM meet de ontwikkeling van elektrostatische kracht hellingen, de tips apex vorm en het onderhoud / integriteit spelen een cruciale rol in de totale oppervlakte potentieel resolutie 14, 15. Oppervlaktepotentiaal resolutie met behulp van AM en FM-modi zijn in het bereik van 1 nm zijwaarts 14 -16. Opgemerkt zij dat KPFM beeldvorming kan worden uitgevoerd in niet-polaire vloeistoffen, en meer recent is aangetoond worden gedaan low-ionische (&lt;10 mM) polaire vloeistoffen (inopen lus KPFM modes die geen vertekening terugkoppeling vereisen, waardoor het niet toepassen van een DC-bias) zoals MilliQ water; echter KPFM beeldvorming nog gebeuren op levende cellen in polaire oplossingen 17-20. Extra uitdagingen van SP beeldvorming vloeistof die oplossingen gebruikt voor het handhaven cellen (bijvoorbeeld, fosfaat gebufferde zoutoplossing) hebben hoge concentraties van mobiele ionen, hetgeen leidt tot Faraday reacties, diagonaal-geïnduceerde lading dynamiek en ionendiffusie / herverdeling 20. Zo dit experiment werden metingen genomen van gedroogd en MRSA dode cellen op poly-L-lysine gefunctionaliseerde roestvrij staal en goud oppervlakken onder omgevingsomstandigheden. Beeldvorming kan plaatsvinden onder omstandigheden lucht of vacuüm worden uitgevoerd op biologische monsters die eerder zijn gedroogd of geïmmobiliseerd op oppervlakken 20. Vochtige omstandigheden hebben ook aangetoond KPFM beeldvorming oppervlakken 6 beïnvloeden. In deze studie hebben we gebruikt FM-KPFMAFM en de rol van SP op de bevestiging van methicilline-resistente Staphylococcus aureus USA100 (MRSA) poly-L-lysine gefunctionaliseerde roestvrij staal en goud oppervlakken onderzoeken. MRSA is onlangs oogstte status als een multi-resistente (MDR) &quot;superbacterie&quot; vanwege zijn natuurlijke geselecteerde bestendigheid tegen vele β-lactam antibiotica en cefalosporinen 21. MRSA infecties zijn nu moeilijker, moeilijker en formidabele te behandelen, waardoor het gebruik van hardere antibiotica zoals vancomycine en oxazolidinonen die hogere toxiciteit bij mensen hebben, en daarom niet als langdurige behandeling 22. Roestvrij staal werd gekozen vanwege zijn medisch belang en gemeenschappelijk gebruik als materiaal in injectienaalden, ondersteken, deurkrukken, putten, enz goud werd gebruikt als vergelijkende metaal. FM-KPFM werd gebruikt om te onderzoeken of microbiële membraan SP veranderingen na bevestiging aan de substraten.

<table><tbody><tr><td>5500ILM Atomic Force Microscope</td><td>Agilent Technologies</td><td>#N9435S</td><td></td></tr><tr><td>AFM/STM Metal Specimen Discs</td><td>TED PELLA, INC.</td><td>#16219</td><td>Roestvrijstalen monsterschijven</td></tr><tr><td>DPE (Low-Noise) Conductive SPM Probes</td><td>Mikromasch</td><td>#HQ:DPE-XSC11</td><td>Er zijn 4 Pt-gecoate cantilevers per chip. We gebruikten cantilever B voor experimenten.</td></tr><tr><td>PELCO Gold Coated AFM/STM Metal Specimen Discs</td><td>TED PELLA, INC.</td><td>#16218-G</td><td>Goudkleurige monsterschijven</td></tr><tr><td>PicoView Software</td><td>Agilent Technologies</td><td>#N9797B</td><td>5500ILM Atomic Force Microscope beeldvormingssoftware</td></tr><tr><td>Pico Image Software (Pico Image Basic)</td><td>Agilent Technologies</td><td>#N9797AU-1FP</td><td>5500 ILM Atomic Force Microscope post-beeldverwerkingssoftware</td></tr><tr><td>Scilogex D3024 High Speed Micro-Centrifuge</td><td>Thomas Scientific</td><td>#91201513</td><td>Centrifuge gebruikt in celwasstaps om cellen (pellet) van media te scheiden</td></tr><tr><td>Trypticase Soy Agar with 5% Sheep Blood</td><td>BD</td><td>#221261</td><td>Voorbereide platen</td></tr><tr><td>Tryptic Soy Broth</td><td>BD</td><td>#257107</td><td>Komt als droog poeder. Instructie over hoe te maken staat op de verpakking.</td></tr></tbody></table>

oppervlakte potentieel meting van bacteriën met behulp kelvin probe force microscopy

Surface Potential Measurement of Bacteria Using Kelvin Probe Force Microscopy

Oppervlaktepotentiaal is een algemeen uitzicht fysieke eigenschap dat een dominante rol in de hechting van micro-organismen aan substraatoppervlakken speelt. Kelvin sonde kracht microscopie (KPFM) is een module van atomic force microscopie (AFM) dat het contact potentiaalverschil tussen oppervlakken op nano-schaal meet. De combinatie van KPFM AFM maakt gelijktijdige opwekking van oppervlaktepotentiaal en topografische kaarten van biologische monsters zoals bacteriële cellen. Hier maken we KPFM de effecten van de oppervlakte potentiaal op microbiële hechting op medisch relevante oppervlakken zoals roestvrij staal en goud onderzoeken. Oppervlakte potentiaalkaarten geopenbaard verschillen in oppervlaktepotentiaal microbiële membranen van verschillende materialen substraten. Een stap hoogte grafiek werd gegenereerd om het verschil in oppervlaktepotentiaal show in een grensgebied tussen het substraatoppervlak en micro-organismen. Veranderingen in cellulaire membraan oppervlaktepotentiaal zijn verbonden met overstaps in cellulaire metabolisme en motiliteit. Daarom KPFM is een krachtig instrument dat kan worden gebruikt om de veranderingen van microbiële membraanoppervlak potentieel bij hechting op diverse substraatoppervlakken onderzoeken. In deze studie demonstreren we de procedure voor de oppervlaktepotentiaal van individuele methicilline-resistente Staphylococcus aureus USA100 cellen te karakteriseren op roestvrij staal en goud met KPFM.

De mogelijkheid om SP meten met KPFM berust op het beginsel dat zowel het monsteroppervlak en cantilever tip geleidend enigszins. Roestvrij staal en goud gehandeld als geleidende oppervlakken waarop MRSA werden vastgemaakt. KPFM beelden werden genomen van 15 MRSA-cellen op beide oppervlakken met 512 x 512 resolutie, en met scan gebieden, variërend van 5 x 5 micrometer tot 10 x 10 micrometer. Scanning werd uitgevoerd met lijn snelheden variërend van 0,02 lijnen / sec tot 0,05 lijnen / sec. Daarom, met 512 datapunten verz...

Hier presenteren we een protocol dat het gebruik van Kelvin sonde krachtmicroscopie uitlegt als een hulpmiddel voor het genereren van hoge resolutie nano-schaal oppervlaktepotentiaal kaarten. Dit hulpmiddel werd toegepast om de rol van oppervlaktepotentiaal op de bindingscapaciteit van micro-organismen aan substraatoppervlakken te beoordelen.

Oppervlakte Potentieel Meting van Bacteriën Met behulp Kelvin Probe Force Microscopy

Surface potential is a commonly overlooked physical characteristic that plays a dominant role in the adhesion of microorganisms to substrate surfaces. ...

Het algemene doel van het volgende experiment is het observeren van veranderingen in de lading van het celmembraan na adhesie aan verschillende materiaalsubstraten. Dit wordt bereikt door de micro-organismen te kweken in een voedingsrijk medium om hun aantal te verhogen. Vervolgens worden de materiaaloppervlakken waaraan de micro-organismen zullen hechten, gereinigd en gefunctionaliseerd voor optimale microbiële aanhechtingspercentages.Vervolgens worden de micro-organismen op de verschillende materiaalsubstraten geplaatst om Kelvin probe force microscopy of KPFM-beeldvorming mogelijk te maken. De resultaten tonen aan dat het type materiaalsubstraat en de inherente lading ervan invloed hebben op de celactiviteit, wat blijkt uit veranderingen in de lading van het celmembraan en de celadhesie. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals elektroforetische bepaling, lichtverstrooiing en bepaling van het isoelektrisch punt, is dat KPFM de onderzoeking van de lading van individuele cellen en biofilms mogelijk maakt in plaats van volledige culturen of kolonies.Dit is gunstig wanneer men cel-tot-cel elektrische eigenschappen alsook die van biofilmen met een hoge nauwkeurigheid en precisie wil vergelijken. Bereid eerst 5% schapenbloedagarplaten, ent de MRSA-bacteriën uit op de bereide platen en incubeer deze gedurende 24 uur bij 37 °C om goed geïsoleerde enkele kolonies te verkrijgen. Maak 500 mL triptiek-sojabouillon, aangevuld met 1% glucose en 0,1% natriumchloride, en autoclaveer dit samen met twee schone glazen reageerbuisjes en één doos pipetteertips van 1 mL.Nadat het medium en de reageerbuizen zijn afgekoeld onder een veiligheidskast of nabij een brander, pipetteert u 6 mL TSB in elke reageerbuis. Inoculeer met behulp van een van de eerder bereide schapenbloedagarplaten een enkele kolonie MRSA in een van de buizen. Gebruik de tweede buis als negatieve controle om de steriliteit te waarborgen. Incubeer de buizen in een reciprocerende incubator gedurende 24 uur bij 37 °C en 200 RPM.De MRSA-buis zou groei moeten vertonen, of er zou niets gegroeid mogen zijn in de controlebuis. Maak vervolgens een subcultuur door één milliliter van de 24-uurs cultuur te gebruiken om zes milliliter verse tryptic soy broth te inoculeren en incubeer dit gedurende nog eens zes uur bij 37 °C en 200 RPM. Pipetteer daarna één milliliter van de cultuur in een centrifugebuis en centrifugeer dit gedurende drie minuten bij 850 ×g.Verwijder het supernatant en gebruik een pincet in de dominante hand om de pellet twee keer te wassen met gedeïoniseerd water. Houd een roestvrijstalen FM-monsterdisk van 20 millimeter vast en gebruik vijf milliliter gedeïoniseerd water om elke zijde te reinigen. Plaats de schone disks in een bekerglas met gedeïoniseerd water ensonicer deze gedurende één minuut.Gebruik de pincet om de monsterdiskjes uit het bekerglas te verwijderen en plaats ze onder een hoek van ongeveer 60 graden tegen de rand van een open petrischaal op een papieren handdoek. Om ze volledig te laten drogen, kan het deksel van de schaal worden gebruikt om de drogende diskjes af te dekken. Zodra ze droog zijn, wordt het diskje overgebracht naar een petrischaal om het oppervlak van het diskje te functionaliseren. Pipetteer in een veiligheidskabinet 200 tot 400 µL 0,1% polylysine op de diskjes en incubeer deze gedurende één uur bij kamertemperatuur, waarbij de pincet wordt gebruikt om de diskjes vast te houden.Gebruik gedeïoniseerd water om ze te wassen, zoals eerder in deze video is gedemonstreerd. Pipetteer vervolgens 200 tot 400 µL van de geresuspendeerde cellen, die twee keer zijn gewassen, op de gecoate monsterdiscs. Na incubatie bij kamertemperatuur gedurende 30 minuten worden de discs voorzichtig gewassen met 1 mL gedeïoniseerd water.Laat de schijven een nacht drogen voor de beeldvorming om Kelvin Probe Force microscopie-opnames te maken. Zet de computer aan samen met de atoomkrachtmicroscoop of AFM's, de HEB en de MAC three controller. Open een AFM-beeldvormingssoftware zoals Ulence P ovu overview.Selecteer A-C-A-F-M of de juiste aanduiding voor beeldvorming in intermittente contactmodus. Plaats met een FM-pincet in de dominante hand en terwijl u de veerbelaste klemhouder met de andere hand openhoudt, voorzichtig de A-K-P-F-M cantilever in het hoofdstuk. Plaats het hoofdstuk voorzichtig in de A FM en sluit de draden van het laserlicht en de motor van de tafellift aan.Richt vervolgens de laser op de punt van de cantilever. Om de laser op de punt van de cantilever uit te lijnen, draait u de knop voor achteruit een paar keer met de klok mee om de laser bovenop de cantilever-chip te positioneren.Wanneer de laser de chip bereikt, wordt deze geblokkeerd en is hij niet langer zichtbaar. Draai vervolgens aan de knop voor achterwaartse verplaatsing tegen de klok in totdat de laserstraal opnieuw verschijnt. De laser bevindt zich nu op de rand van de chip.Draai aan de knop voor de links-rechtsverplaatsing om de laser op de cantilever te positioneren. Terwijl de laser over de cantilever beweegt, zal deze in snelle opeenvolging verdwijnen en weer verschijnen. De laserstraal moet zichtbaar zijn op de matte glazen afdekplaat waar de fotodiodunit later zal worden geplaatst.Draai de knop voor-achter tegen de klok in om de spot over de cantilever naar de tip te bewegen totdat de spot op het matglas verdwijnt. Draai de knop voor-achter nu slechts een klein beetje met de klok mee om de laser zodanig te positioneren dat deze precies op de tip van de cantilever rust; de laserspot zal dan weer zichtbaar worden op het matglas. Zodra de laser is uitgelijnd, houdt u de liftmotor van de tafel 10 seconden lang in de open positie om voldoende ruimte tussen de cantilever en het monster te garanderen.Plaats bij het bevestigen van het monster aan de A FM het monster nu op de KPFM-houder. Gebruik koperdraad om het monster te aarden en verbind de juiste draden van de A FM met de monsterhouder. Verbind vervolgens de houder met de A FM in de A FM-software.Zorg ervoor dat de insteltijd niet meer dan 10 milliseconden bedraagt en dat de benaderingssnelheden twee microns per seconde niet overschrijden. Stem vervolgens de cantilever af en begin de cantilevertip naar het monster te bewegen om beschadiging van de tip te voorkomen. Zodra de cantilevertip het monsteroppervlak bereikt, selecteert u een grootte voor het beeldvenster en een ideaal beeldgebied, en optimaliseert u de I- en P-versterkingen samen met het instelpunt van de cantilever, zodat de topografische beeldvorming is geoptimaliseerd.Zodra de topografische beeldvorming is geoptimaliseerd, schakelt u de KPFM-module in FM-modus in. Stel het beeldvenster in op vijf micron bij vijf micron met een resolutie van 12 bij 12 of lage scansnelheden. Stel voor de FM KPFM-instellingen de drive in tussen 5% en 10%. Stel de drive-frequentie in tussen 1 en 5 kilohertz met een bandbreedte van 2 kilohertz.Stel de ijzer-NP-winsten voor de F-M-K-P-F-M in op 0,3%. Na het verkrijgen van de KPFM-beelden wordt software voor nabewerking gebruikt om de beelden te analyseren en om SP-gegevens te verzamelen met de instellingen die in deze video-demonstratie worden beschreven. KPFM-beelden werden genomen van 15 MRSA-cellen op zowel roestvrijstalen als gouden oppervlakken. Hier worden de verzamelde typen beelden getoond.Omdat KPFM werkt met dubbele frequenties, werden topografische beelden en elektrische gegevens van het celoppervlak gelijktijdig verzameld. Thermische filters werden toegepast op de potentiaalkaarten van het oppervlak om kleine veranderingen in het oppervlaktepotentiaal gemakkelijker te kunnen onderscheiden. In deze grafiek werden beelden geanalyseerd om het oppervlaktepotentiaal van het microbiële membraan te bepalen, om deze vervolgens te gebruiken voor een vergelijking van de groei op verschillende substraten.Oppervlaktepotentiaalscans van de onbehandelde roestvrijstalen en onbehandelde gouden substraten vertoonden over het algemeen negatieve oppervlaktepotentialen. Zowel de met polyollysine gecoate roestvrijstalen als gouden schijven vertoonden een verschuiving naar positieve oppervlaktepotentialen. De membraanpotentialen van MRSA-cellen varieerden tussen de roestvrijstalen en gouden oppervlakken.Hierbij vertoonde het roestvrij staal een aanzienlijk groter positief membraanoppervlakspotentiaal voor cellen vergeleken met MRSA-cellen op het gouden substraat, die negatieve oppervlaktepotentialen vertoonden. Om de volledige mogelijkheden van KPFM aan te tonen, is hier een voorbeeld van een staphoogtegrafiek van MRSA op roestvrij staal te zien. Dit toont het verschil in oppervlaktepotentiaal tussen het oppervlak van het substraat en het microbiële membraan.Na het bekijken van deze video zou u een goed inzicht moeten hebben in hoe Kelvin probe force microscopy kan worden gebruikt om de effecten van elektrische lading op de aanhechting en activiteit van microbiële cellen op verschillende materiaalsubstraten te onderzoeken.

surface-potential-measurement-bacteria-using-kelvin-probe-force

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

Live-Gram-negatieve en Gram-positieve bacteriën kunnen worden geïmmobiliseerd op gelatine gecoate mica en beeld gebracht in een vloeistof met behulp van Atomic Force Microscopy (AFM).

Bacteriële Immobilisatie for Imaging door Atomic Force Microscopy

Source: Wen, J., Pasman, et. al., Visualization of Germinosomes and the Inner Membrane in Bacillus subtilis Spores. J. Vis. Exp. (2019)This video demonstrates the use of structured illumination microscopy to acquire three-dimensional fluorescence images that reveal the organization of germination proteins within the bacterial spore.

Visualization of Germination Proteins in the Inner Membrane of Bacterial Spores

Source: Scheidweiler, D., et al. Combining Fluidic Devices with Microscopy and Flow Cytometry to Study Microbial Transport in Porous Media Across Spatial Scales. J. Vis. Exp. (2020).This video demonstrates the use of a microfluidic device to quantify bacterial motility through a porous matrix composed of randomly arranged pillars. Fluorescently labeled bacteria are introduced into the device, imaged via microscopy as they move through the porous matrix into the observation channel, and analyzed...

Assessing Bacterial Motility Using a Microfluidic Device

Source: Chetrit, D., et al. Applying Live Cell Imaging and Cryo-Electron Tomography to Resolve Spatiotemporal Features of the Legionella pneumophila Dot/Icm Secretion System. J. Vis. Exp. (2020).This video demonstrates the preparation and imaging of fluorescently labeled pathogenic bacteria. Agarose pads are first prepared and positioned within an adhesive frame. A suspension of genetically modified bacteria expressing a fluorescent protein is applied to the pad to immobilize the cells. The...

Sample Preparation and Imaging of Fluorescently Labeled Bacteria

Dit document toont een originele methode gebaseerd op de afstandsbedieningsinrichting van magnetische deeltjes geënt in een bacteriële biofilm en de ontwikkeling van specifieke magnetische pincet meten in situ lokale mechanische eigenschappen van het complex levend materiaal gebouwd door micro-organismen aan grensvlakken.

Remote Magnetische Aansturing van Micrometrische Probes voor<em&gt; In situ</em&gt; 3D Mapping van bacteriële biofilm Fysische eigenschappen

Een eenvoudige methode voor het meten en karakteriseren van bacteriële hechting op planten, met name wortels en spruiten, wordt in dit artikel beschreven.

Hechting van bacteriën te planten oppervlakken gemeten in het laboratorium

Hier, detail we de experimentele technieken gebruikt om te evalueren van de uitsteeksel krachten die podosomes van toepassing op een compatibele film, vanaf de voorbereiding van de film naar de geautomatiseerde analyse van topografische beelden.

Uitsteeksel Force microscopie: Een methode om te kwantificeren krachten ontwikkeld door cel uitsteeksels

Dit werk presenteert een microscopiemethode die live beeldvorming van een enkele cel Escherichia coli mogelijk maakt voor analyse en kwantificering van het stochastische gedrag van synthetische gencircuits.

Continue meting van biologische ruis in Escherichia Coli met behulp van time-lapse microscopie

Dit live-bacteriële celbeeldvormingsprotocol maakt visualisatie mogelijk van interacties tussen meerdere bacteriële soorten op het eencellige niveau in de tijd. Time-lapse imaging maakt het mogelijk om elke bacteriesoort in monocultuur of cocultuur te observeren om interspecies interacties te ondervragen in bacteriële gemeenschappen met meerdere soorten, waaronder individuele celmotiliteit en levensvatbaarheid.

Kinetische visualisatie van single-cell interspecies bacteriële interacties

Atomic Force Microscopy-Infrared Spectroscopy (AFM-IR) biedt een krachtig platform voor bacteriële studies, waardoor resolutie op nanoschaal kan worden bereikt. Zowel het in kaart brengen van subcellulaire veranderingen (bijvoorbeeld bij celdeling) als vergelijkende studies van de chemische samenstelling (bijvoorbeeld als gevolg van medicijnresistentie) kunnen worden uitgevoerd op een enkel celniveau in bacteriën.

Atomic Force Microscopie gecombineerd met infraroodspectroscopie als hulpmiddel om single bacterium chemistry te onderzoeken

Kelvin probe force microscopie (KPFM) meet oppervlaktetopografie en verschillen in oppervlaktepotentiaal, terwijl scanning elektronenmicroscopie (SEM) en bijbehorende spectroscopieën oppervlaktemorfologie, samenstelling, kristalliniteit en kristallografische oriëntatie kunnen ophelderen. Dienovereenkomstig kan de co-lokalisatie van SEM met KPFM inzicht geven in de effecten van nanoschaalsamenstelling en oppervlaktestructuur op corrosie.

Co-lokalisatie kelvin probe force microscopie met andere microscopieën en spectroscopieën: geselecteerde toepassingen in corrosiekarakterisering van legeringen

Leer Kelvin probe force microscopy (KPFM) om oppervlaktepotentiaal van bacteriën te meten met nanoschaalresolutie. Deze methode onthult hoe substraatladen celmembraanlading en hechting beïnvloeden.

Oppervlakte Potentieel Meting van Bacteriën Met behulp Kelvin Probe Force Microscopy

Meer video's verkennen