Name: Facial Nerve axotomie in Muizen: een model om motoneuron Response to Injury Study (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 11 s
Description: Leer een chirurgisch protocol voor axotomie van de nervus facialis bij muizen om perifere zenuwletsels te bestuderen. Deze methode helpt onderzoekers bij het evalueren van therapeutische technieken voor zenuwherstel.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk wordt gefinancierd door NIH RO1 NS 40433 (K.J.J.).

Alle procedures uitgevoerd worden goedgekeurd door de Indiana University School of Medicine Institutional Animal Care en gebruik Comite en volg National Institute of Health richtlijnen. 1. Chirurgische Techniek <ol><li> Handhaaf aseptische techniek tijdens deze procedure door steriele handschoenen, instrumenten, en een steriel chirurgisch veld volgens NIH richtlijnen 25. Steriliseren instrumenten voor het begin van de operatie door ze te autoclaveren (zie Tabel van specifieke reagentia / Apparatuur voor de volledige lijst). Gebruik een glazen kraal sterilisator om instrumenten te steriliseren tijdens de operatie. </li></ol> 2. Anesthesie en Voorbereiding <ol><li> Verdoven de muis in een narcosebox met een mengsel van 0,9 l / min zuurstof en 2,5% isofluraan met een veterinair isofluraan vaporizer systeem. Zorg ervoor dat de muis niet reageert op veranderingen in de lichaamshouding voordat u deze uit de doos. </li><li> Toepassing oogzalf om de mouogen se&#39;s om hen te beschermen tegen uitdrogen. </li><li> Schakel de gasstroom uit de doos om de neuskegel. Plaats de muis vierkant op zijn linkerkant op een verwarmde pad bedekt met een chirurgische pad en absorberend bankje papier met haar neus en mond in de kegel. Permanent toezicht van de muis ademhalingsritme en de snelheid en isofluraan aan te passen als dat nodig is (tussen 2,5-3% isofluraan) om een ​​adequaat niveau van anesthesie te behouden en gebruik de teen knijpen reflex om totale sedatie bevestigen. </li></ol> 3. Chirurgische Aanpak <ol><li> Lijn en de focus van de stereoscoop met het chirurgische veld. Pas de neuskegel en plak beneden zodat het gepositioneerd langs de rand van het gezichtsveld. </li><li> Met de muis liggend op zijn linkerzijde, tape de rand van het rechter oor naar de neus, het blootstellen van het gebied achter het oor waar de incisie wordt gemaakt. Zorg ervoor dat de achterste auriculaire ader verplaatst zich horizontaal over het oor. Merk op dat de correcte plaatsing van tHij dier en taping van het oor zijn cruciaal om snel de gezichtszenuw. </li><li> Bevochtig de vacht op en achter het oor met 70% ethanol en scheren de chirurgische site met behulp van een scheermes of een scalpel. Pre-wetting de vacht maakt het scheren makkelijker in deze anatomische locatie. </li><li> Reinig de huid met een jodium oplossing, zoals Betadine chirurgische scrub (7,5% povidon-jood), gevolgd door 70% ethanol. Herhaal deze reiniging nog twee keer grondig ontsmet het gebied. </li><li> Om te bepalen waar de incisie te maken, op te sporen de achterste auriculaire ader uit het oor caudaal naar het gebied posterior aan het oor uitstulping. Met behulp van de lente schaar, maak een 4 mm incisie 2-3 mm achter het uitsteeksel. </li><li> Ontleden door het onderhuidse vet en fascia met behulp van stompe dissectie. Vermijd direct snijden met de schaar omdat bloedvaten of spierweefsel gemakkelijk kunnen worden beschadigd. </li><li> Als bloeden optreedt, druk uitoefenen op de chirurgische lokatie met een steriel wattenstaafjeten minste 30 sec. Als significant vochtverlies optreedt, injecteer de muis intraperitoneaal met maximaal 0,5 ml steriele 0,9% zoutoplossing met behulp van een 25 of 27 G naald. </li><li> Gebruik een aantal belangrijke monumenten, de spinale accessoire zenuw, gehoorgang, en anterieure kauw- spieren (hieronder beschreven), naar de gezichtszenuw te lokaliseren. Ontleden rond deze monumenten tot de takken van de gezichtszenuw worden gevisualiseerd. De zenuw zal verschijnen als een belangrijke stevige witte structuur wanneer het wordt geopenbaard en een laag van fascia hecht het aan de onderliggende structuren. <ol><li> Vind de spinale accessoire zenuw, die reist van het caudale deel van de schedel te innerveren de trapezius spieren, zodra het onderhuidse vet en fascia zijn ontleed. De gezichtszenuw is diep om de spinale accessoire zenuw. </li><li> Vind de kraakbeenvissen gehoorgang dat parelwitte eruit ziet en kan rostraal van de gezichtszenuw te zien. </li><li> Vind de spierbuik van de voorste kauw- spier die ligt op de top van en caudal naar de gezichtszenuw. </li></ol></li><li> Wanneer de belangrijkste takken van de gezichtszenuw worden gevisualiseerd, sporen ze dorsally hun oorsprong vinden vanaf de stylomastoid foramen. Met behulp van fijne getipt Dumont tang # 5/45 aan de operatiewond open te houden, vooraf de lente schaar tips volgt het pad van de zenuw, verplaats dan de tang dorsaal naar de nieuw geavanceerde gebied open te houden. </li><li> Visualiseer de stam van de gezichtszenuw met het jukbeen, buccale, en marginale mandibular takken op dit punt. OPMERKING: De tijdelijke vestiging zal dichter bij het foramen te vinden. De marginale onderkaak zenuw takken in zijn bovenste en onderste delen dichter bij de kaak, waardoor deze zenuw takken zal niet zichtbaar zijn op dit niveau zijn. <ol><li> Als het uitvoeren van een zenuw doorsnijding, het stabiliseren van de zenuw voorzichtig met de fijne punt tang en snijd de zenuw met de lente-schaar. Vermijd het gebruik van te veel tractie aan de zenuw met de tang om te voorkomen avulsing de zenuw van de hersenstam. Duwde stronken uit elkaar, of knippen en verwijderen van een deel van de distale zenuw om ervoor te zorgen dat er geen heraansluiting kan optreden. </li><li> Als het uitvoeren van een crush, gebruiken Dumont # 5/45 tang om de zenuw te comprimeren gedurende 30 seconden met behulp van een constante druk om alle axonen verbreken, en herhaal dit oogje op een tweede hoek loodrecht op de eerste verliefdheid website. Vermijd het gebruik van variabele hoeveelheden druk tijdens de 30 sec pletten, anders zal de schade inconsistent tussen dieren zijn. </li></ol></li></ol> 4. Sluiting and Recovery <ol><li> Herpositioneren het vet en spieren over de onderliggende structuren. </li><li> Geschatte de randen van de incisie en de wond sluiten met een 7,5 mm wond clip. Hechtingen of lijm zijn ook aanvaardbaar voor de sluiting van de wond. Postsurgical analgetica kan worden verstrekt op dit moment. </li><li> Verwijder de tape van het oor van de muis. Schakel de isofluraan stroom en laat de muis om zuivere zuurstof inademen voor 30 sec tot 1 min. Place van de muis in een lege kooi zonder strooisel om te herstellen van de anesthesie. </li><li> Wanneer de muis wordt teruggewonnen, onderzoekt het gedrag voor bevestigend tekenen van gezichtsverlamming. De snorharen zal worden verlamd en schuin terug naar de wang, zal de neus worden afgeweken, en het oog zal niet knipperen in reactie op een zuchtje lucht. </li><li> Huis dieren gezamenlijk na de operatie als ze vrouwelijke. Vermijd behuizing mannelijke muizen samen omdat ze meer agressief en vaak gedwongen wondklemmen hun cagemate, wat leidt tot infectie te verwijderen. Zorg postsurgical analgetica op dit moment, indien nodig. </li><li> Controleer de muizen eenmaal per dag gedurende enkele dagen na de operatie te voorkomen dat infectie of andere complicatie postoperatief. Verwijder wond clips 7-10 dagen na de operatie als ze niet zijn gevallen op hun eigen. </li><li> Solliciteer smeren oogzalf om het aangedane oog dagelijks naar het hoornvlies complicaties te voorkomen, hetzij tot het oog knipperreflex is rebedekt of tot euthanasie. </li></ol>

<ol><li>Kaufman, M., Bard, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaufman%2C+M+%22The+Anatomical+Basis+of+Mouse+Development%22">The Anatomical Basis of Mouse Development</a>. , Elsevier. New York, NY. (1999).</li>
<li>Ashwell, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+adult+mouse+facial+nerve+nucleus%3A+morphology+and+musculotopic+organization%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Anatomy%22%5BJournal%5D)">The adult mouse facial nerve nucleus: morphology and musculotopic organization.</a> Journal of Anatomy. 135, 531-538 (1982).</li>
<li>Sunderland, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+classification+of+peripheral+nerve+injuries+producing+loss+of+function%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+%3A+A+Journal+Of+Neurology%22%5BJournal%5D)">A classification of peripheral nerve injuries producing loss of function.</a> Brain : A Journal Of Neurology. 74, 491-516 (1951).</li>
<li>Beahrs, T., Tanzer, L., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+recovery+and+facial+motoneuron+survival+are+influenced+by+immunodeficiency+in+crush-axotomized+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Neurology%22%5BJournal%5D)">Functional recovery and facial motoneuron survival are influenced by immunodeficiency in crush-axotomized mice.</a> Experimental Neurology. 221, 225-230 (2010).</li>
<li>Mesnard, N. A., Haulcomb, M. M., Tanzer, L., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Delayed+functional+recovery+in+presymptomatic+mSOD1G93A+mice+following+facial+nerve+crush+axotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurodegeneration+%26+Regeneration%22%5BJournal%5D)">Delayed functional recovery in presymptomatic mSOD1G93A mice following facial nerve crush axotomy.</a> Journal of Neurodegeneration & Regeneration. 4, 21-25 (2013).</li>
<li>Komiyama, M., Shibata, H., Suzuki, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Somatotopic+representation+of+facial+muscles+within+the+facial+nucleus+of+the+mouse.+A+study+using+the+retrograde+horseradish+peroxidase+and+cell+degeneration+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Behav+Evol%22%5BJournal%5D)">Somatotopic representation of facial muscles within the facial nucleus of the mouse. A study using the retrograde horseradish peroxidase and cell degeneration techniques.</a> Brain Behav Evol. 24, 144-151 (1984).</li>
<li>Canh, M. Y., Serpe, C. J., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD4%28%2B%29+T+cell-mediated+facial+motoneuron+survival+after+injury%3A+Distribution+pattern+of+cell+death+and+rescue+throughout+the+extent+of+the+facial+motor+nucleus%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroimmunology%22%5BJournal%5D)">CD4(+) T cell-mediated facial motoneuron survival after injury: Distribution pattern of cell death and rescue throughout the extent of the facial motor nucleus.</a> Journal of Neuroimmunology. 181, 93-99 (2006).</li>
<li>Isokawa-Akesson, M., Komisaruk, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Difference+in+projections+to+the+lateral+and+medial+facial+nucleus%3A+anatomically+separate+pathways+for+rhythmical+vibrissa+movement+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Difference in projections to the lateral and medial facial nucleus: anatomically separate pathways for rhythmical vibrissa movement in rats.</a> Exp Brain Res. 65, 385-398 (1987).</li>
<li>Streit, W., Kreutzberg, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+of+endogenous+glial+cells+to+motor+neuron+degeneration+induced+by+toxic+ricin%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Response of endogenous glial cells to motor neuron degeneration induced by toxic ricin.</a> The Journal of Comparative Neurology. 268, 248-263 (1988).</li>
<li>Serpe, C. J., Tetzlaff, J. E., Coers, S., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+recovery+after+facial+nerve+crush+is+delayed+in+severe+combined+immunodeficient+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%2C+Behavior%2C+And+Immunity%22%5BJournal%5D)">Functional recovery after facial nerve crush is delayed in severe combined immunodeficient mice.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 16, 808-812 (2002).</li>
<li>Lal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+stimulation+facilitates+rat+facial+nerve+recovery+from+a+crush+injury.+Otolaryngology--Head+And+Neck+Surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Official+Journal+Of+American+Academy+Of+Otolaryngology-Head+And+Neck+Surgery%22%5BJournal%5D)">Electrical stimulation facilitates rat facial nerve recovery from a crush injury. Otolaryngology--Head And Neck Surgery.</a> Official Journal Of American Academy Of Otolaryngology-Head And Neck Surgery. 139, 68-73 (2008).</li>
<li>Tomov, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+Example+of+Neural+Plasticity+Evoked+by+Putative+Behavioral+Demand+and+Early+Use+of+Vibrissal+Hairs+after+Facial+Nerve+Transection%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Neurology%22%5BJournal%5D)">An Example of Neural Plasticity Evoked by Putative Behavioral Demand and Early Use of Vibrissal Hairs after Facial Nerve Transection.</a> Experimental Neurology. 178, 207-218 (2002).</li>
<li>Skouras, E., Angelov, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+studies+on+post-transectional+facial+nerve+regrowth+and+functional+recovery+of+paralyzed+muscles+of+the+face+in+rats+and+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Anatomy+%28International+Journal+of+Experimental+and+Clinical+Anatomy%29%22%5BJournal%5D)">Experimental studies on post-transectional facial nerve regrowth and functional recovery of paralyzed muscles of the face in rats and mice.</a> Anatomy (International Journal of Experimental and Clinical Anatomy). 4, 1-27 (2010).</li>
<li>Xin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IL-10+within+the+CNS+is+necessary+for+CD4%2B+T+cells+to+mediate+neuroprotection%29%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%2C+Behavior%2C+And+Immunity%22%5BJournal%5D)">IL-10 within the CNS is necessary for CD4+ T cells to mediate neuroprotection).</a> Brain, Behavior, And Immunity. 25, 820-829 (2011).</li>
<li>Mesnard, N. A., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+gene+expression+in+the+axotomized+facial+motor+nucleus+of+presymptomatic+SOD1+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Differential gene expression in the axotomized facial motor nucleus of presymptomatic SOD1 mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. 519, 3488-3506 (2011).</li>
<li>Mesnard, N. A., Alexander, T. D., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+laser+microdissection+in+the+investigation+of+facial+motoneuron+and+neuropil+molecular+phenotypes+after+peripheral+axotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Neurology%22%5BJournal%5D)">Use of laser microdissection in the investigation of facial motoneuron and neuropil molecular phenotypes after peripheral axotomy.</a> Experimental Neurology. 225, 94-103 (2010).</li>
<li>Franchi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changes+in+motor+representation+related+to+facial+nerve+damage+and+regeneration+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Changes in motor representation related to facial nerve damage and regeneration in adult rats.</a> Experimental Brain Research. 135, 53-65 (2000).</li>
<li>Munera, A., Cuestas, D. M., Troncoso, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peripheral+facial+nerve+lesions+induce+changes+in+the+firing+properties+of+primary+motor+cortex+layer+5+pyramidal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Peripheral facial nerve lesions induce changes in the firing properties of primary motor cortex layer 5 pyramidal cells.</a> Neuroscience. 223, 140-151 (2012).</li>
<li>Liu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hereditary+absence+of+complement+C5+in+adult+mice+influences+Wallerian+degeneration%2C+but+not+retrograde+responses%2C+following+injury+to+peripheral+nerve%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Peripheral+Nervous+System%22%5BJournal%5D)">Hereditary absence of complement C5 in adult mice influences Wallerian degeneration, but not retrograde responses, following injury to peripheral nerve.</a> Journal of the Peripheral Nervous System. 4, 123-133 (1999).</li>
<li>Ferri, C., Moore, F., Bisby, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+facial+nerve+injury+on+mouse+motoneurons+lacking+the+p75+low-affinity+neurotrophin+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Effects of facial nerve injury on mouse motoneurons lacking the p75 low-affinity neurotrophin receptor.</a> Journal of Neurobiology. 34, 1-9 (1997).</li>
<li>Zhou, R. Y., Xu, J., Chi, F. L., Chen, L. H., Li, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+sensitivity+to+rocuronium+among+orbicularis+oris+muscles+innervated+by+normal+or+damaged+facial+nerves+and+gastrocnemius+muscle+innervated+by+somatic+nerve+in+rats%3A+combined+morphological+and+functional+analyses%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Differences in sensitivity to rocuronium among orbicularis oris muscles innervated by normal or damaged facial nerves and gastrocnemius muscle innervated by somatic nerve in rats: combined morphological and functional analyses.</a> The Laryngoscope. 122, 1831-1837 (2012).</li>
<li>Jinno, S., Yamada, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+comparative+anatomy+in+the+axotomy+model+to+identify+distinct+roles+for+microglia+and+astrocytes+in+synaptic+stripping%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron+Glia+Biology%22%5BJournal%5D)">Using comparative anatomy in the axotomy model to identify distinct roles for microglia and astrocytes in synaptic stripping.</a> Neuron Glia Biology. 7, 55-66 (2011).</li>
<li>Jones, K. J., Serpe, C. J., Byram, S. C., Deboy, C. A., Sanders, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+the+immune+system+in+the+maintenance+of+mouse+facial+motoneuron+viability+after+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%2C+Behavior%2C+And+Immunity%22%5BJournal%5D)">Role of the immune system in the maintenance of mouse facial motoneuron viability after nerve injury.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 19, 12-19 (2005).</li>
<li>Moran, L. B., Graeber, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+facial+nerve+axotomy+model%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+research.+Brain+research%22%5BJournal%5D)">The facial nerve axotomy model.</a> Brain research. Brain research. 44, 154-178 (2004).</li>
<li>Council, N. R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCouncil%2C+NR+%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%3A+Eighth+Edition%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals: Eighth Edition</a>. , The National Academies Press. New York, NY. (2011).</li>
<li>Serpe, C. J., Kohm, A. P., Huppenbauer, C. B., Sanders, V., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exacerbation+of+Facial+Motoneuron+Loss+after+facial+nerve+transection+in+severe+combined+immunodeficient+%28scid%29+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Exacerbation of Facial Motoneuron Loss after facial nerve transection in severe combined immunodeficient (scid) mice.</a> Neuroscience. 19, (1999).</li>
<li>Mesnard-Hoaglin, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SOD1%28G93A%29+transgenic+mouse+CD4%28%2B%29+T+cells+mediate+neuroprotection+after+facial+nerve+axotomy+when+removed+from+a+suppressive+peripheral+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%2C+Behavior%2C+And+Immunity%22%5BJournal%5D)">SOD1(G93A) transgenic mouse CD4(+) T cells mediate neuroprotection after facial nerve axotomy when removed from a suppressive peripheral microenvironment.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 40, 55-60 (2014).</li>
<li>Wang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+and+assessment+of+the+perinatal+mouse+facial+nerve+axotomy+model+via+a+subauricular+incision+approach%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Biology+And+Medicine%22%5BJournal%5D)">Establishment and assessment of the perinatal mouse facial nerve axotomy model via a subauricular incision approach.</a> Experimental Biology And Medicine. 237, 1249-1255 (2012).</li>
<li>Sharma, N., Moeller, C. W., Marzo, S. J., Jones, K. J., Foecking, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combinatorial+treatments+enhance+recovery+following+facial+nerve+crush%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Combinatorial treatments enhance recovery following facial nerve crush.</a> The Laryngoscope. 120, 1523-1530 (2010).</li>
<li>Lieberman, D. M., Jan, T. A., Ahmad, S. O., Most, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+corticosteroids+on+functional+recovery+and+neuron+survival+after+facial+nerve+injury+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Facial+Plastic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Effects of corticosteroids on functional recovery and neuron survival after facial nerve injury in mice.</a> Archives of Facial Plastic Surgery. 13, 117-124 (2011).</li>
<li>Serpe, C. J., Coers, S., Sanders, V. M., Jones, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CD4%2B+T%2C+but+not+CD8%2B+or+B%2C+lymphocytes+mediate+facial+motoneuron+survival+after+facial+nerve+transection%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%2C+Behavior%2C+And+Immunity%22%5BJournal%5D)">CD4+ T, but not CD8+ or B, lymphocytes mediate facial motoneuron survival after facial nerve transection.</a> Brain, Behavior, And Immunity. 17, 393-402 (2003).</li>
<li>Haulcomb, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axotomy-induced+target+disconnection+promotes+an+additional+death+mechanism+involved+in+motoneuron+degeneration+in+ALS+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Axotomy-induced target disconnection promotes an additional death mechanism involved in motoneuron degeneration in ALS transgenic mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. , (2014).</li>
<li>Bauder, A. R., Ferguson, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducible+mouse+sciatic+nerve+crush+and+subsequent+assessment+of+regeneration+by+whole+mount+muscle+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Reproducible mouse sciatic nerve crush and subsequent assessment of regeneration by whole mount muscle analysis.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (60), (2012).</li>
<li>Richner, M., Bjerrum, O. J., Nykjaer, A., Vaegter, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+spared+nerve+injury+%28SNI%29+model+of+induced+mechanical+allodynia+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">The spared nerve injury (SNI) model of induced mechanical allodynia in mice.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (54), (2011).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

De kritieke stap voor dit protocol is het correct positioneren van de muis voordat de operatie wordt begonnen. Als de muis niet plat op zijn zij ligt, het oor niet op de juiste hoek is vastgeplakt of de incisie op een verkeerde locatie wordt gemaakt, dan wordt het vinden van de aangezichtszenuw veel moeilijker. Wanneer deze techniek onder de knie is, duurt een operatie slechts enkele minuten per muis. 
Het sluiten van de wond kan met hechtingen, lijm of wondclips. Wondclips worden het meest ge...

Veel perifere zenuwbeschadiging modellen bestaan, maar wel een die opvalt voor de studie van motoneuronen is de gezichtszenuw axotomy model. De gezichtszenuw, ook wel bekend als hersenzenuw VII, zijn oorsprong in de pons en innerveert de spieren van gezichtsuitdrukking 1,2. In deze chirurgische protocol, wordt de gezichtszenuw blootgesteld aan zijn vertrek uit de stylomastoid foramen en ofwel gesneden of geplet. De ernst van het zenuwletsel kan worden ingedeeld naar aanleiding van de Sunderland 3 classificaties, die de schade op basis van de intactheid van de axonen, endoneurium, perineurium en epineurium onderscheidt, die bindweefsel lagen die sequentieel wikkel rond het axon bundels zijn. In de crush (axonotmesis), worden de axonen doorgesneden, maar de perineurium en epineurium worden bewaard. Volledig functionele herstel van gezichtszenuw verpletteren komt voor bij ongeveer 11 dagen, omdat de intacte zenuwschede functioneert als kanaal waarbinnen de axonen teruggroeien 4,5. Op deandere kant, in de cut letsel (neurotmesis), de axonen en alle 3 bindweefsel lagen worden gescheiden, en de gehele distale zenuw moet teruggroeien naar musculatuur innervatie herstellen. Chirurgische heraansluiting van de epineurium wordt vaak uitgevoerd in menselijke patiënten met een zenuw doorsnijding blessures, maar het herstel uitkomsten zijn zelden optimaal. Nader onderzoek is nodig om te begrijpen waarom de zenuw niet teruggroeien naar zijn doel en welke therapieën kunnen worden gebruikt om te verbeteren en versnellen van de regeneratieve proces. Er zijn veel voordelen aan het bestuderen van zenuwletsel met behulp van de gezichtszenuw axotomy model. Ten eerste, de gezichtszenuw axotomy procedure is snel, eenvoudig en zeer reproduceerbaar; en het resulterende verlamming van de gezichtsspieren geen vitale functies beïnvloeden en wordt goed verdragen door het dier. Want dit is een hersenzenuw letsel model, het bestuderen van de motoneuron cellichamen wordt vereenvoudigd omdat de motorische zenuwcellen in een relatief homogene bevolking in th wonene gezichtsbehandeling motor kern in de pons. De bevolking verschilt op basis van de subnucleaire patroon binnen het gezicht motor kern, want er zijn zeven subnuclei elk specifiek zijn voor een specifieke groep van spieren innerveren, dus subnucleaire verschillen in reactie op axotomy kan beïnvloeden resultaten 2,6,7. Een groot voordeel van de gezichtszenuw letsel model is dat de unaxotomized kant kan dienen als een gekoppelde interne controle, omdat de zenuw innervatie is zeer symmetrisch en er is geen overspraak tussen de gezichtsbehandeling motorische kernen 8. Een ander voordeel van deze chirurgische werkwijze is het gebrek aan directe trauma aan het CNS of verstoring van de bloed-hersenbarrière 9. Complicaties zoals overmatig bloeden en infecties zijn zeldzaam met deze procedure. Een verscheidenheid van analyses kunnen worden uitgevoerd om de fysiologische respons op zenuwletsel beoordelen. Het herstel van het oog knipperreflex en whisker activiteit kan worden gebruikt als een gedragsmaatregel van functioneel herstel 10,11. Video-opname van vibrissae activiteit is momenteel de meest krachtige methode voor het opsporen van het herstel van de gezichtszenuw innervatie 12,13. Na euthanasie kunnen histologische analyse van de hersenstam worden uitgevoerd op het motoneuron cellichamen in het gezicht motor nucleus. De gezichtsbehandeling motor nucleus is onderverdeeld in zeven subnuclei, elk specifiek voor bepaalde gezichtsspieren, waardoor voor differentiële onderzoek van reacties op letsel 2,6. Facial motoneuronen worden gerekend celoverleving kwantificeren of immunohistochemie kan worden gebruikt om biomarkers en specifieke celpopulaties 14 identificeren. De gezichtsbehandeling motor nucleus kan nauwkeurig worden gemicrodissecteerde met behulp van laser capture voor moleculaire analyse van de cellulaire respons op zenuwletsel 15,16. Effecten van de gezichtszenuw axotomy kan worden geanalyseerd in de motorische cortex 17,18. Ook kan de zenuw worden ontleed om Wallerian degeneratie studeren 19 ofaxon regeneratie 20 en de spieren worden verwijderd neuromusculaire verbindingen 21 te bestuderen. Het gezicht axotomie kan ook worden gebruikt om de bijbehorende centrale en perifere gliacellen 22 bestuderen richten spieren 21 en het immuunsysteem 23. Hoewel er veel is bereikt in het bestuderen van de gezichtszenuw axotomy model 24, is verder onderzoek van perifeer zenuwletsel nodig omdat zenuwbeschadiging is een groot probleem voor de patiënten en de huidige behandelingen niet om optimale resultaten te produceren. Dit model is een krachtig hulpmiddel voor de behandeling van de fysiologische reactie op zenuwbeschadiging en de doeltreffendheid van het zenuwregeneratie therapieën.

<table><tbody><tr><td>Stereo microscope</td><td>Leica</td><td>M60</td><td></td></tr><tr><td>Labeling tape</td><td>Fisher Scientific</td><td>15-952</td><td></td></tr><tr><td>Vannas-T&uuml;bingen spring scissors - straight/sharp/8.5 cm/5 mm cutting edge</td><td>Fine Science Tools</td><td>15003-08</td><td>Steriliseer voor gebruik</td></tr><tr><td>Dumont #5/45 forceps - standard tips/angled 45&deg;/Dumoxel/11 cm</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-35</td><td>Steriliseer voor gebruik</td></tr><tr><td>Michel suture clips - 7.5 mm x 1.75 mm</td><td>Fine Science Tools</td><td>12040-01</td><td>Omschreven als "wondclip" in protocol, steriliseer voor gebruik</td></tr><tr><td>Hagenbarth cross action wound clip applier 5"</td><td>George Tiemann &amp; Co</td><td>160-910</td><td>Gebruikt om wondclip aan te brengen, steriliseer voor gebruik</td></tr><tr><td>Michel suture clip applicator &amp; remover - For 7.5 mm clips</td><td>Fine Science Tools</td><td>12029-12</td><td>Gebruikt om wondclip te verwijderen</td></tr><tr><td>0.9% Sodium chloride injection, USP</td><td>Hospira</td><td>0409-4888-10</td><td></td></tr><tr><td>Betadine, 16 oz, with dispenser</td><td>Fisher Scientific</td><td>19-027132</td><td></td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glass bead sterilizer</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

facial nerve axotomie in muizen: een model om motoneuron response to injury study

Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

Het doel van deze chirurgische protocol is om de gezichtszenuw, die de gezichtsmusculatuur innervates, naar eigen afslag bloot uit de stylomastoid foramen en ofwel snijden of pletten aan perifere zenuwbeschadiging veroorzaken. Voordelen van deze operatie zijn de eenvoud, hoge reproduceerbaarheid, en het gebrek aan effect op de vitale functies of mobiliteit van de daaropvolgende gezichtsverlamming, resulterend in een relatief milde chirurgische ook vergeleken met andere zenuwbeschadiging modellen. Een belangrijk voordeel van een craniale zenuw letsel model is dat de motoneuronen verblijft in een relatief homogene populatie in het gezicht motor nucleus in de pons, vereenvoudiging van de studie van de motoneuron cellichamen. Door de symmetrische aard van de gezichtszenuw innervatie en het ontbreken van overspraak tussen het gezicht motor kernen, kan de werking eenzijdig worden uitgevoerd met de unaxotomized kant dient als gepaarde interne controle. Een verscheidenheid van analyses kunnen worden uitgevoerd om postoperatief ezelss de fysiologische respons, waarvan de details vallen buiten het bestek van dit artikel. Bijvoorbeeld, kan herstel van spierfunctie dienen als marker voor gedrags reinnervation of de motoneuronen te kwantificeren celoverleving meten. Daarnaast kan de motoneuronen nauwkeurig worden vastgelegd met behulp van lasermicrodissectie voor moleculaire analyse. Omdat het gezicht axotomie is minimaal invasief en goed verdragen kan worden toegepast op een grote verscheidenheid van genetisch gemodificeerde muizen. Ook kan deze ingreep model worden gebruikt om de effectiviteit van perifere zenuwbeschadiging behandelingen analyseren. Gezichtszenuw letsel verschaft een middel voor het onderzoeken van niet alleen motoneuronen, maar ook reacties van het centrale en perifere gliale micro, immuunsysteem en doel spiermassa. De gezichtsbehandeling zenuwletsel model is een algemeen aanvaarde perifere zenuwletsel model dat dient als een krachtige tool voor het bestuderen van zenuwbeschadiging en regeneratie.

Na de gezichtszenuw axotomy wordt uitgevoerd, motorneuron optreedt als gevolg van de verwonding. Motoneuron overleving na letsel is afhankelijk van vele variabelen, zoals geslacht, dier leeftijd op het moment van de operatie, en het tijdstip waarop de motoneuron tellingen worden gedaan, en de Moran en Graeber beoordeling 24 en Jinno en Yamada beoordeling 22 zowel vatten motoneuron survival data. Typisch, ongeveer 86% van de motoneuronen overleven 28 dagen na axotomy 14,15,26. Kinetiek va...

We presenteren een chirurgisch protocol dat beschrijft hoe een snij- of verpletteringsaxotomie op de aangezichtszenuw bij de muis moet worden uitgevoerd. De axotomie van de aangezichtszenuw kan worden gebruikt om de fysiologische reactie op zenuwbeschadiging te bestuderen en therapeutische technieken te testen.

Facial Nerve axotomie in Muizen: een model om motoneuron Response to Injury Study

The goal of this surgical protocol is to expose the facial nerve, which innervates the facial musculature, at its exit from the stylomastoid foramen and ...

Het algemene doel van deze procedure is om de facialiszenuw vrij te leggen om perifere zenuwbeschadiging te bestuderen. De facialiszenuw ontspringt in de pons van de hersenstam en verlaat de schedel via het foramen stylomastoideum, waarna de zenuw zich opsplitst in zijn belangrijkste componenten.Zodra de zenuw is blootgelegd, wordt deze geautotomiseerd bij de uitgang van het foramen stylomastoideum. Twee belangrijke oriëntatiepunten helpen bij het lokaliseren van de facialiszenuw. De eerste is de gehoorgang, die is opgebouwd uit parelmoerwitte kraakbeenplaten die met een dun membraan zijn verbonden.De andere is de anterieure buik van de m. digastricus, die bovenop de zenuw en de uitgang uit het foramen stylomastoideum ligt. Nadat de nervus facialis is beschadigd, kan de wetenschapper meerdere factoren bestuderen, zoals motorneuroonsterfte of genexpressie. Het model voor beschadiging van de nervus facialis is een van de best gekarakteriseerde modellen voor perifere zenuwschade.De voordelen van deze techniek zijn de eenvoud, de hoge reproduceerbaarheid en het uitblijven van effecten op vitale functies als gevolg van de daaropvolgende gezichtsparalyse. Bovendien kan, vanwege de zeer symmetrische aard van het zenuwstelsel, de niet-geblesseerde zijde dienen als gepaarde interne controle voor uw experimenten. Om gedurende deze procedure het gebruik van aseptische technieken te waarborgen, dient u ervoor te zorgen dat alle instrumenten geautoclaveerd zijn en dat een glaskraalsterilisator gereedstaat om de instrumenten tussen de handelingen door te steriliseren.Bereid de operatietafel voor door een absorberend matje op een warmtematje te plaatsen, de microscoop op te stellen en de neuskegel vast te plakken zodat deze is uitgelijnd met de rand van het gezichtsveld. Controleer na het anesthetiseren van de muis of de muis geen fysieke reactie vertoont op manipulaties, waaronder een knijptest bij de teen. Verplaats vervolgens de gasstroom van de anesthesiekamer naar de neuskegel en breng off thalamic zalf aan.Plaats de muis op de linkerzijde op chirurgische pads met daaronder een warmtemat. Controleer voortdurend de ademhaling van het dier en pas de isofluraanstroom indien nodig aan om de anesthesie in stand te houden. Plak vervolgens het rechteroor aan de neuskegel om de chirurgische plek bloot te leggen.De vena auricularis posterior moet zichtbaar zijn terwijl deze over het oor loopt. Maak vervolgens de vacht nat met 70% ethanol en scheer de plek. Nadat de vacht is verwijderd, wordt de huid gereinigd met drie afwisselende schrobbeurten met jodium en 70% ethanol, totdat de plek grondig is gereinigd.Ga over tot de chirurgische ingreep. Zorg ervoor dat de bek recht op zijn zij wordt gepositioneerd, waarbij de oorader horizontaal loopt. Dit maakt het lokaliseren van de gezichtszenuw veel eenvoudiger.Om de locatie van de eerste incisie te bepalen, volgt u de vena auricularis posterior vanaf het oor zorgvuldig naar het gebied achter de ooruitstulping. Maak vervolgens met veerschaar een incisie van 4 mm, twee tot drie millimeter posterior van de uitstulping voor educatieve doeleinden. Deze incisie wordt vervolgens vergroot om de onderliggende anatomie bloot te leggen.Voer nu een botte dissectie van het subcutane vet en het fascia uit. Bloedvaten en spieren kunnen gemakkelijk beschadigd raken door scharen. Indien er sprake is van bloedingen.Oefen gedurende ten minste 30 seconden druk uit met een steriel wattenstaafje. Indien er sprake is van aanzienlijk vochtverlies, injecteer dan tot een halve milliliter saline intraperitoneaal met een naald van 25 of 27 gauge. Lokaliseer nu de facialiszenuw aan de hand van de belangrijkste oriëntatiepunten.De nervus accessorius is oppervlakkiger gelegen dan de nervus facialis en is zichtbaar terwijl deze vanuit het condylaire deel van de schedel loopt. Om de musculus trapezius te innerveren, moet de kraakbenige gehoorgang worden geïdentificeerd. Deze is parelwit van kleur en bevindt zich rostraal van de nervus facialis.De facialiszenuw loopt rond het caudale deel van de gehoorgang. Identificeer vervolgens de spierbuik van de musculus digastricus anterior die bovenop en caudaal ten opzichte van de facialiszenuw ligt. Disseceer onder deze structuur om de facialiszenuw bloot te leggen.Het is een stevige witte structuur, gehecht aan een onderliggende laag fascia. Identificeer de hoofdtakken van de nervus facialis. Volg deze dorsaal terug naar hun oorsprong vanuit het foramen stylomastoideum.Gebruik een fijne pincet om de plek open te houden, terwijl u met de punt van de veerschaar langs het verloop van de nervus facialis dissekeert. De benige mastoïd van Raymond kan met de pincet worden gevoeld. Identificeer nu de stam van de nervus facialis om de zenuw te verbrijzelen.Comprimeer het gedurende 30 seconden met de fijne pincet onder constante druk. Dit zal alle axonen doorsnijden. Herhaal vervolgens de compressie onder een loodrechte hoek gedurende nog eens 30 seconden.Houd de druk consistent tussen de experimenten. Nu de relevante anatomische oriëntatiepunten zijn geïdentificeerd, demonstreer ik de meer verfijnde chirurgische techniek. Maak een kleinere incisie, volg de vena auricularis posterior vanaf het oor voorzichtig naar het gebied achter de ooruitstulping en maak een incisie van 4 mm, twee tot drie mm posterior van de uitstulping.Ontleed nu direct door het subcutane vet en het fascia aan de hand van de drie referentiepunten: de nervus accessorius, de gehoorgang en de anterieure buik van de musculus digastricus. Leg de nervus facialis vrij. Volg de nervus facialis terug in de richting van het foramen stylomastoideum om de stam van de nervus facialis te bereiken; stabiliseer de zenuw voorzichtig met een fijne pincet en transecteer deze met een schaar.Voorkom dat er te veel tractie op de zenuw wordt uitgeoefend, anders kan deze uit de hersenstam worden getrokken. Beweeg vervolgens de zenuwuiteinden uit elkaar of verwijder een segment van de zenuw om te voorkomen dat er een herverbinding plaatsvindt. Inspecteer ten slotte de zenuw zorgvuldig en bevestig dat deze volledig is doorgesneden.Na de exsomie worden al het vet en de spieren teruggeplaatst in hun oorspronkelijke posities. Sluit vervolgens de wond met wondhechtingen van 7,5 millimeter of cyanoacrylaatlijm. Dien indien nodig op dit moment analgetica toe, schakel de anesthesie uit en plaats de muis terug in een lege kooi zonder strooisel.Terwijl het dier herstelt, moet het worden onderzocht op tekenen van gezichtslameid; de snorharen zijn dan verlamd. Als ze naar achteren richting de wang zijn gebogen, zal de neus afwijkend lijken en zal het oog niet knipperen als reactie op een luchtstoot. Als het dier een vrouwtje is, moet zij vervolgens samen met een ander vrouwtje worden gehuisvest.Houd het mannelijke dier echter apart tot de oogknipperfunctie is teruggekeerd en breng dagelijks oftalmische zalf aan om corneale complicaties te voorkomen. Houd de muis ondertussen in de gaten op tekenen van infectie of andere complicaties totdat de chirurgische wond is genezen. Er is een aanzienlijke variatie in het verlies van motorische neuronen na enucleatie, afhankelijk van de leeftijd en de genetische achtergrond van de muizen in wild-type dieren die op acht weken leeftijd een transectie van de nervus facialis ondergaan.Ongeveer 86% van de motorneuronen overleeft na 28 dagen na de axotomie. Er werd significant meer celverlies waargenomen in het SOD1-muismodel voor amyotrofische laterale sclerose, alsof in de immuundeficiënte recombination activating gene two-knockout muis laser capture.Microdissectie werd gebruikt om materiaal uit de facialiskern te isoleren. De gehele facialiskern kon worden vastgelegd. Alternatief konden de subnuclei afzonderlijk worden verzameld.De techniek is zeer nauwkeurig. Motorneuronen kunnen individueel worden gevangen en de resterende neuro-pellet kan achteraf ook worden verzameld voor analyse. Kwantitatieve PCR werd gebruikt om de genexpressie in de subnucleaire monsters van de ventromediale subnucleus, weergegeven door de stippellijn, en de ventrolaterale subnucleus, weergegeven door de doorgetrokken lijn, te onderzoeken. De expressie van vier genen die geassocieerd zijn met de zenuwregeneratierespons werd gemeten.Er werden enkele verschillen gevonden tussen de subnuclei hiervan. De expressie van Gap 43 vertoonde het grootste verschil tussen de subnuclei. Zodra deze techniek onder de knie is, kan de chirurgische ingreep in slechts enkele minuten worden voltooid.Het is belangrijk om eraan te denken het dier correct te positioneren, de incisie op de juiste plaats te maken en de anatomische oriëntatiepunten te gebruiken om de nervus facialis te lokaliseren. Het is gemakkelijk om gedesoriënteerd te raken in de regio van de kop en nek; als u het overzicht verliest, lokaliseer dan simpelweg de kraakbenige gehoorgang en volg deze posterieur om de nervus facialis te vinden.

facial-nerve-axotomy-mice-model-to-study-motoneuron-response-to

Research

JoVE Journal

Medicine

Geneeskunde

De Gespaard zenuwletsel diermodel is hier beschreven als een muis model van perifere neuropathische pijn na een gedeeltelijke denervatie van de nervus ischiadicus door lesioning het scheenbeen en de gemeenschappelijke peroneus takken, waardoor de resterende Sural zenuw intact. Gedragsverandering als gevolg van mechanische allodynie wordt gekwantificeerd door von Frey filamenten.

De Gespaard Nerve Injury (SNI) Model van Induced mechanische allodynie in Muizen

This video demonstrates a surgical protocol on a rat model, detailing steps from anesthesia preparation to facial nerve injury induction. This protocol is useful for studying nerve regeneration and surgical techniques in medical research.

Inducing a Facial Nerve Injury in a Rat Model

Source: Olmstead, D. N., et al., Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury. J. Vis. Exp. (2015).This video demonstrates the facial nerve crush procedure in a mouse, where blunt dissection through key landmarks exposes the facial nerve trunk at the stylomastoid foramen. Forceps are then used to compress the nerve trunk, inducing axonal damage and disrupting neuronal signal transmission.

Performing Crush Axotomy on the Facial Nerve in a Mouse Model

Source: Dalkin, W., et al. The Fibular Nerve Injury Method: A Reliable Assay to Identify and Test Factors That Repair Neuromuscular Junctions. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates a surgical procedure to induce fibular nerve injury in a mouse to study neuromuscular junction (NMJ) regeneration. The procedure involves exposing the fibular nerve, applying controlled pressure to induce injury, and ensuring the epineurium remains intact to support axonal regeneration. Over time, macrophages...

Inducing Fibular Nerve Injury in a Mouse to Study Neuromuscular Junction Regeneration

De scheenbeenzenuw doorsnijding model is een goed verdragen, gevalideerde en reproduceerbaar model van de skeletspier atrofie. Het model chirurgische protocol wordt beschreven en gedemonstreerd in C57Black6 muizen.

Scheenbeen Nerve doorsnijding - Een gestandaardiseerd model voor denervatie-geïnduceerde Skeletal Muscle Atrofie in Muizen

Dit protocol beschrijft een reproduceerbare benadering van gezichtszenuwchirurgie in het rattenmodel, inclusief beschrijvingen van verschillende induceerbare patronen van letsel.

Facial Nerve Surgery in the Rat Model to Study Axonal Inhibition and Regeneration

Het doel van dit protocol is om een orofaciale spierfibrosemodel op te stellen. Vergelijking van de histologie tussen muizenkauwspier en tibialis anterieure spier na bevriezingsletsel bevestigde fibrose van de kauwspier. Dit model zal verder onderzoek naar het mechanisme dat ten grondslag ligt aan orofaciale spierfibrose vergemakkelijken.

Bevriezingsletsel in de Masseter-spier van de muis om een orofaciale spierfibrosemodel vast te stellen

Hier presenteren we een protocol dat in vivo elektroporatie en denervatie van de craniale levator auris longus (LAL) spier combineert. Deze procedure maakt het mogelijk om de mogelijke rol van spiereiwitten bij de regeneratie van de neuromusculaire synaps te bestuderen.

Gecombineerde in vivo elektroporatie en kortdurende reïnnervatie van de skeletspier van de craniale levator Auris longus

Een muismodel voor de ventilator geïnduceerde longschade is een belangrijk instrument om een ​​acute longbeschadiging...

Druk gecontroleerde ventilatie te Acute Lung Injury in Muizen Braken

Respiratoir falen is de belangrijkste doodsoorzaak na een cervicale dwarslaesie. Met een reproduceerbare, kwantificeerbaar en betrouwbaar preklinische diermodel van ademhalingsfalen veroorzaakt door een gedeeltelijke cervicale letsels zullen helpen om de volgende respiratoire als niet-respiratoire neuroplasticiteit begrijpen en kan getest vermoedelijke reparatiestrategieën.

Een muizenmodel van cervicale Spinal Cord Injury Study Post-letsels Respiratory Neuroplasticity

Leer een chirurgisch protocol voor axotomie van de nervus facialis bij muizen om perifere zenuwletsels te bestuderen. Deze methode helpt onderzoekers bij het evalueren van therapeutische technieken voor zenuwherstel.

Facial Nerve axotomie in Muizen: een model om motoneuron Response to Injury Study

Meer video's verkennen