Name: Onderzoekt Single Molecule Hechting van Atomic Force Spectroscopie (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 48 s
Description: Leer hoe je enkele polymeren koppelt aan AFM-cantilevertips voor spectroscopische oppervlakte-desorptie-experimenten. Deze methode met polyethyleenglycol-linkers verbetert de nauwkeurigheid van adhesiekrachtmetingen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De auteurs danken de DFG (Hu 997/2-2) voor de financiële steun. FS erkent de Hanns-Seidel-Stiftung (HSS). SKr werd ondersteund door het Elitenetzwerk Bayern in het kader van het doctoraatsprogramma Materiaalwetenschap van Complexe Interfaces. SKi bedankt de SFB 863 voor de financiële steun.

OPMERKING: Zie figuur 2 voor een overzicht van de procesflow bestaande uit de voorbereiding, de data-acquisitie en data-analyse stappen. 1. Reagens Setup OPMERKING: Alle chemicaliën moeten met zorg worden behandeld, en dus een lab jas, handschoenen en een bescherming voor de ogen zou moeten worden gebruikt. Alle bewerkingen moeten worden uitgevoerd in een laboratorium kap. In het bijzonder moet handschoenen te dragen bij chloroform gebruikt. <ol><li> Gebruik chemische stoffen met een laag watergehalte zoals droge chloroform snel en op te slaan droog, maar niet langer dan een week. Bewaar beide stoffen bij -20 ° C onder stikstof of argon gas omdat APTES ((3-aminopropyl) triethoxysilan) (zie tabel 1) en PEG (polyethyleenglycol) zijn hygroscopisch en PEG is onderworpen aan oxidatie in lucht. </li><li> Frequente blootstelling van de voorraad aan zuurstof in de lucht en vocht te voorkomen, bereiden kleinere porties, idealiter binnen een dashboardkastje systeem met een stikstof atmosphere. </li></ol> 2. Apparatuur Setup OPMERKING: Om mogelijke kruisbesmetting te vermijden, gebruiken verse en schone schepen voor elke stap. <ol><li> Schoon glaswerk en pincet reinigingsoplossing gedurende 30 minuten in een ultrasoon bad bij 60 ° C. </li><li> Spoel en ultrasone trillingen apparatuur uit stap 2.1 twee keer grondig met ultrapuur water. </li><li> Warmte machines van stap 2.1 in RCA-oplossing (ultrazuiver water, waterstofperoxide en ammoniak (5: 1: 1)) tot 75 ° C in een oven gedurende 45 min en vervolgens spoelen met ultrapuur water. </li><li> Tenslotte wordt het glaswerk en pincet onder een stroom van droge stikstof of in een oven (100 ° C, 3 uur). </li></ol> 3. Tip Functionalisering OPMERKING: pincet, schepen, etc. gemaakt van roestvrij staal, PTFE, glas of elk ander materiaal dat chemisch stabiel in organische oplossingen als toepasselijk. Tenzij anders vermeld, het uitvoeren van alle stappen op RT. De hoeveelheid incubatieoplossing nodig afhankelijk van het aantal cantilever chips. Zorg ervoor dat de uitkragingen worden ondergedompeld in de respectieve oplossingen te allen tijde. OPMERKING: Gebruik een kap om inademing van organische dampen te voorkomen. <ol><li> Vorming van OH-groepen op cantilever oppervlak (&#39;activering&#39;) (ongeveer 0,5 uur): <ol><li> Gebruik een pincet om verse cantilever chips plaatsen (materiaal: zonde, veerconstante: 10-100 pN / nm) op een schoon glasplaatje en leg ze in een plasma kamer (100 W). </li><li> Evacueren kamer (~ 0,1 mbar). </li><li> Overstroming kamer met zuurstofgas en evacueren opnieuw. </li><li> Activeer de plasma-proces (power: 20%, duur: 15 min, proces druk: 0,25 mbar). </li></ol></li><li> Amino-silanisatie van cantilevers (ongeveer 1 uur): <ol><li> Bereid de 2,5 ml APTES oplossing (zie tabel 1) in een glazen petrischaal - doe dit ideaal tijdens het plasma proces. </li><li> Immediately na het plasma proces, dompel elke cantilever voor 1 sec in aceton en leg ze direct daarna in de APTES oplossing. </li><li> Incubeer gedurende 15 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Spoel voorzichtig de cantilever chips tweemaal in 10 ml aceton en eenmaal in 10 ml chloroform. </li><li> Optioneel laatste stap: Plaats cantilever chips uit de vorige stap op een schoon glasplaatje en bak ze gedurende 30 minuten bij 70 ° C. Merk op dat er ook alternatieve strategieën voor oppervlakte-activering, bijvoorbeeld, UV-behandeling 12. </li></ol></li><li> PEGylatie (ongeveer 2 uur): OPMERKING: Voer de stappen 3.3.1-3.3.4 tijdens amino-silanisatie. NHS en maleïmide groepen onderworpen aan hydrolyse in waterige milieus en PEG op zich aan oxidatie in lucht. Daarom timing (vooral tussen de stappen) is een kritische parameter. Zie 13 voor meer informatie. <ol><li> Bereid de chloroformoplossing (zie tabel 1). </li><li> Om condensatie te voorkomen, Warme PEG poeders tot RT vóór het openen van de hoeveelheid en het gewicht van de juiste hoeveelheid. </li><li> Voor de koppeling van polymeren of lipiden met aminogroepen, afzonderlijk oplossen NHS-PEG-NHS (6 kDa) en methyl-PEG-NHS (5 kDa) in chloroform oplossing door vortexen totdat ze volledig zijn opgelost. Zie tabel 1 voor de concentraties. <ol><li> Als alternatief. voor de koppeling van polymeren met thiolgroepen afzonderlijk oplossen Mal-NHS- PEG en methyl-PEG-NHS in de chloroformoplossing. </li></ol></li><li> Meng de oplossingen zoals vereist om een ​​bepaald aantal verhouding tussen de NHS- of maleimide- en methyl beëindigde PEG-moleculen (gewoonlijk 1: 500) aan te passen. Merk op dat de ideale verhouding moet iteratief worden bepaald in een reeks preparaat-experiment cycli. </li><li> Incubeer cantilever chips in de PEG-oplossing gedurende 1 uur in een verzadigde atmosfeer chloroform verdamping van het chloroform voorkomen. </li></ol></li><li> Probemolecuul vervoeging(&gt; 1 uur): Opmerking: In de volgende 3.4.1-3.4.3 worden drie voorbeelden van de covalente koppeling van verschillende probe-moleculen de AFM tip beschreven. Voor elk molecuul het protocol moet worden aangepast. Merk verder op, dat in voorbeeld 1 en 3 NHS-chemie wordt gebruikt terwijl in voorbeeld 2 de thiol gefunctionaliseerde polymeer PI g-PS is gekoppeld met de PEG via maleïmide-chemie. Voor details zie 14. <ol><li> Voor poly (aminozuur) poly-D-tyrosine (40-100 kDa) <ol><li> Los de polytyrosine geconjugeerd probemolecuul in 1 M NaOH. Stel de concentratie 1 mg / ml. </li><li> Wisselen de NaOH voor natriumboraatbuffer (pH 8,1) gebruik makend van spin ontzouten kolommen (7 kDa MWCO) onmiddellijk vóór de functionalisering </li><li> Spoel de cantilevers eerst met 5 ml chloroform, gevolgd door 5 ml ethanol en tenslotte met 5 ml boraatbuffer. </li><li> Incubeer de cantilever chips voor 1 uur in de polytyrosine boraatbufferoplossing en spoel na met boraatbufferen ultrapuur water. Opslaan in ultrapuur water totdat de meting. </li></ol></li><li> Voor polymeren met een lineaire hoofdketen (polyisopreen, 119 kDa) met geënte zijketens (polystyreen, 88 kDa) 14 <ol><li> Ontbinding van de PI-g -PS in droge chloroform. Stel de concentratie van de conjugatie oplossing van 4 mg / ml. </li><li> Spoel de cantilevers met 5 ml chloroform en incubeer gedurende ten minste 1 uur in de conjugatie oplossing. </li><li> Spoel opnieuw in 5 ml chloroform en opslaan in chloroform in een chloroform-verzadigde omgeving tot de meting (chloroform verdamping te voorkomen). </li></ol></li><li> Voor de lipide POPE <ol><li> Ontbinden PAUS in droge chloroform. Stel de concentratie 20 mM. </li><li> Spoel de cantilevers met 5 ml ethanol en 5 ml ultrazuiver water voor de incubatie van de cantilevers gedurende 1 uur in de lipideoplossing. </li><li> Na incubatie, spoelen cantilevers met 5 ml chloroform, 5 ml ethanol en 5 ml warm, ultrapuur water (in deze volgorde) om ongebonden probemoleculen te verwijderen en om zich te ontdoen van chloroform resten te krijgen. Gebruik gefunctionaliseerde tips onmiddellijk. Als alternatief, bewaar ze in chloroform totdat het nodig is. </li></ol></li></ol></li></ol><img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/52456/52456fig1.jpg" /> Figuur 1. (A) Schematische tentoonstelling het topje functionalizering proces met behulp van het voorbeeld van de NHS chemie. (B) Chemische binding gebruikt om een sonde molecuul aan de tip hechten via een aminogroep. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52456/52456fig1large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.</a> 4. Voorbereiding van de oppervlakte <ol><li> Zelf-geassembleerde monolaag (SAM) OPMERKING: oppervlak voor het eerste voorbeeld, werd een zelf samengestelde monolaag gekozen. Verwijzen naar literatuur 15 </sup&gt; voor meer informatie. <ol><li> Schoon objectglaasjes met een reinigingsmiddel en vervolgens tweemaal in ultrazuiver water in een ultrasoon bad gedurende 30 minuten elk. Dan, als een extra reinigingsstap, plaats ze in de RCA-oplossing (zie stap 2.3) bij 75 ° C gedurende 15 min. </li><li> De vacht van de dia&#39;s met 10 nm chroom nikkel en 100 nm goud in een vacuüm coater. Bewaar vervolgens in de koelkast en schoon weer de RCA oplossing onmiddellijk voor de volgende stap. </li><li> Incubeer de glaasjes van de voorgaande stap in 2 mM 1-dodecanthiol / ethanol oplossing gedurende 12 uur. De thiolgroepen binden aan het gouden oppervlak en een hydrofobe monolaag zelf assembleert. De dia&#39;s met ethanol en ultrapuur water en daarna droog te spoelen door een stroom van stikstofgas. Bevestig de hydrofobiciteit van het voorbereide oppervlak met statische contacthoek metingen in een goniometer met een CCD-camera 10. </li></ol></li><li> Waterstof beëindigd diamant OPMERKING: als oppervlak voor het tweede voorbeeld werd een waterstof beëindigd diamant gekozen. De voorbehandeling werd uitgevoerd zoals eerder 16 beschreven. </li><li> Ondersteunde lipide dubbellaag Opmerking: In het laatste voorbeeld een oppervlak ondersteunde lipide dubbellaag (SLB) werd gebruikt als een oppervlak. Om zo&#39;n oppervlak te verkrijgen, een oplossing (0,1 mg / ml) van grote unilamellaire vesicles (LUV), bestaande uit het fosfolipide POPC werden gevormd door de extrusiewerkwijze. Dan 50 ul van de LUV oplossing werd op een vers gekliefd micablad (A = 1 cm²) gebracht en gedurende 30 min. Tenslotte wordt de oplossing werd gespoeld met 20 ml ultrazuiver water. Zie 17,18 voor een uitgebreide beschrijving van de voorbereiding van SLBs. </li></ol> 5. Data Acquisition OPMERKING: Voor de experimenten, gebruik een AFM, die de mogelijkheid om te meten in vloeistoffen biedt. De data-acquisitie en data-analyse procedures zijn van toepassing ongeacht de AFM gebruikte model. Voorts zijn op experimenten is het voordelig om de mogelijkheid om de temperatuur te regelene in de vloeistof cel. Cantilever doorbuiging werd ontdekt via de laserstraal doorbuiging methode 19. Veerconstanten werden bepaald met de thermische ruis methode 20. <ol><li> Plaats de gefunctionaliseerde cantilever in een AFM cantilever houder die geschikt is voor het meten in fluïda. </li><li> Zet het oppervlak (bereiding zie hierboven) te bemonsteren in de AFM en bedek het met vloeistof. Beide, cantilever en oppervlak moet nu worden ondergedompeld in de vloeistof met de cantilever tip wees naar het oppervlak. Merk op dat in veel gevallen een druppel vloeistof voldoende. In elk geval verdamping van de vloeistof moet worden vermeden, bijvoorbeeld door het gebruik van een gesloten fluïdumcel. </li><li> Indien van toepassing, de gewenste temperatuur op de controller. </li><li> Laat het systeem in evenwicht komen voor ten minste een half uur. </li><li> Neem een ​​thermische ruis spectrum van de cantilever met cantilever ver van het vlak zodat elk oppervlak demping sluiten. Merk op dat gewoonlijk 10 of meer spectra moeten worden verzameld om een ​​voldoende signaal-ruisverhouding te verkrijgen. </li><li> Benader het oppervlak. Merk op dat om tipgeometrie en tip functionalisering instandhouding aanpak proces moet zorgvuldig worden uitgevoerd. Dit kan worden bereikt door bijvoorbeeld benaderen intermitterende contact mode. </li><li> Bepaal de inverse optische hendel gevoeligheid (InvOLS) gemeten in nm / volt. Doe dit door op de cantilever tip tegen een hard oppervlak. <ol><li> Bepaal de InvOLS door meting van de helling van de piëzo reisafstand versus verandering fotodiode spanning. Breng een lijn naar het gedeelte van de kracht-afstand curve waar de cantilever tip in contact is met het oppervlak. In experimenten met een zachte ondergrond, zoals lipidendubbellagen uitvoeren van deze stap op gebieden die niet zijn bedekt met een lipide dubbellaag (&#39;defect spots&#39;). </li></ol></li><li> Bepaal de veerconstante (PN / nm) door het aanbrengen van een harmonische oscillator naar de thermische ruis spectrum. Gebruikgeautomatiseerde software-functie voor veerconstante bepalen; literatuur 20 anders te raadplegen. </li><li> Start het experiment. <ol><li> Record tal van kracht-afstand curves bij elke experimentele conditie. Typisch, gebruikt u de volgende waarden voor de experimentele parameters: sampling rate van 5 kHz, tip snelheid van 1 um / sec, intrekken afstand van 1 micrometer. OPMERKING: Soms, afhankelijk van de dynamiek van de onderzochte experiment, kan het nodig zijn om een ​​bepaalde tijd wacht met de punt in contact met het oppervlak (&#39;dwell time). OPMERKING: Het experiment specifieke parameters kunnen aanzienlijk afwijken van de hierboven gegeven waarden. </li><li> Bij langdurige metingen op nul laser positie op de fotodiode van tijd tot tijd door herpositionering van de fotodiode. </li><li> Optioneel: Na elke kracht curve, verplaats de AFM-tip naar een andere xy positie. </li><li> Aan het einde van het experiment, bepalen de gevoeligheid en de veer CONSTAnt nogmaals te controleren op consistentie en stabiliteit van het systeem. Opmerking: Het vergelijken van de veerconstante en de gevoeligheid voor en na het experiment ook worden gewaarborgd dat de eigenschappen van het systeem en de eigenschappen van de punt bleef onveranderd in de loop van het experiment. Als het verschil van de veerconstanten niet te groot (&lt;= 15%), kunnen zij worden gemiddeld aangezien de intrinsieke onzekerheid van veerconstante bepaling is ongeveer 15%. Voor grotere verschillen, is het raadzaam om eerst vinden en het probleem op de veranderende schijnbare veerconstante daarna door met verdere experimenten. </li></ol></li></ol> 6. Gegevens Voorbereiding Opmerking: In deze sectie algemene gegevens bereidingsstappen die kenmerkend worden uitgevoerd onafhankelijk van het specifieke type experiment eenheden omschakelen Newton en nanometer alsmede corrigeren gegevens worden beschreven. Het experiment specifieke data analyses zijn briefly hieronder verder beschreven in de desbetreffende vertegenwoordiger voorbeeldsectie. <ol><li> Gewoonlijk voert alle data en analyse stappen automatisch een huis geschreven algoritme, bijvoorbeeld op basis van de software IGOR Pro 6. </li><li> Zetten de rauwe doorbuiging signaal (Defl) [V] in werking door deze te vermenigvuldigen met de InvOLS [nm / V] en de veerconstante [nN / nm]. </li><li> Offset de kracht zodanig dat de kracht op de cantilever voldoende afstand van het oppervlak (ongeladen cantilever) wordt 0 nN. </li><li> Bereken de actuele positie uiteinde (ook wel scheiding gemeten ten opzichte van het oppervlak) z *, die het buigen van de vrijdragende rekening houdt: <img alt="Vergelijking 1" fo:content-width="2in" src="/files/ftp_upload/52456/52456eq1.jpg" /></li><li> Offset z * zodanig dat z * = 0 overeenkomt met de Z-positie van het oppervlak. LET OP: Hier, F is de kracht die inwerkt op de punt en dus bochts de cantilever (vastgesteld in punt 6.2.), z is de gemeten z-sensor positie (rechtstreeks gegeven door het instrument) en k staat voor de veerconstante (vastgesteld in punt 5.8). </li></ol><img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/52456/52456fig2.jpg" /> Figuur 2. Proces stroomdiagram waarop het monster voorbereiding, de data-acquisitie en data-analyse. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52456/52456fig2large.jpg" target="_blank">Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.</a>

<ol><li>Scheuring, S., Sapra, K., Müller, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+Single+Membrane+Proteins+by+Atomic+Force+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Handbook+of+Single-Molecule+Biophysics%22%5BJournal%5D)">Probing Single Membrane Proteins by Atomic Force Microscopy.</a> Handbook of Single-Molecule Biophysics. , 449-485 (2009).</li>
<li>Kodera, N., Yamamoto, D., Ishikawa, R., Ando, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Video+imaging+of+walking+myosin+V+by+high-speed+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Video imaging of walking myosin V by high-speed atomic force microscopy.</a> Nature. 468 (7320), 72-76 (2010).</li>
<li>Magonov, S. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+Force+Microscopy+in+Analysis+of+Polymers%5BTitle%5D)+AND+%22Encyclopedia+of+Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Atomic Force Microscopy in Analysis of Polymers.</a> Encyclopedia of Analytical Chemistry. , (2006).</li>
<li>Rief, M., Clausen-Schaumann, H., Gaub, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sequence-dependent+mechanics+of+single+DNA+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Structural+Biology%22%5BJournal%5D)">Sequence-dependent mechanics of single DNA molecules.</a> Nature Structural Biology. 6 (4), 346-349 (1999).</li>
<li>Li, H., Linke, W. a, et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reverse+engineering+of+the+giant+muscle+protein+titin%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Reverse engineering of the giant muscle protein titin.</a> Nature. 418 (6901), 998-1002 (2002).</li>
<li>Bustamante, C., Smith, S. B., Liphardt, J., Smith, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-molecule+studies+of+DNA+mechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Current+opinion+in+structural+biology%22%5BJournal%5D)">Single-molecule studies of DNA mechanics.</a> Current opinion in structural biology. 10 (3), 279-285 (2000).</li>
<li>Zhang, W., Zhang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+molecule+mechanochemistry+of+macromolecules%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Polymer+Science%22%5BJournal%5D)">Single molecule mechanochemistry of macromolecules.</a> Progress in Polymer Science. 28 (8), 1271-1295 (2003).</li>
<li>Hugel, T., Rief, M., Seitz, M., Gaub, H., Netz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+Stretched+Single+Polymers%3A+Atomic-Force-Microscope+Experiments+Versus+Ab-Initio+Theory%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Review+Letters%22%5BJournal%5D)">Highly Stretched Single Polymers: Atomic-Force-Microscope Experiments Versus Ab-Initio Theory.</a> Physical Review Letters. 94 (4), 048301(2005).</li>
<li>Stetter, F. W. S., Cwiklik, L., Jungwirth, P., Hugel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+Lipid+Extraction+-+The+Anchoring+Strength+of+Cholesterol+in+Liquid+Ordered+and+Liquid+Disordered+Phases%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Single Lipid Extraction - The Anchoring Strength of Cholesterol in Liquid Ordered and Liquid Disordered Phases.</a> Biophysical journal. 107 (5), (2014).</li>
<li>Pirzer, T., Hugel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adsorption+mechanism+of+polypeptides+and+their+location+at+hydrophobic+interfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Chemphyschem%22%5BJournal%5D)">Adsorption mechanism of polypeptides and their location at hydrophobic interfaces.</a> Chemphyschem. 10 (16), 2795-2799 (2009).</li>
<li>Butt, H. -J., Cappella, B., Kappl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Force+measurements+with+the+atomic+force+microscope%3A+Technique%2C+interpretation+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Surface+Science+Reports%22%5BJournal%5D)">Force measurements with the atomic force microscope: Technique, interpretation and applications.</a> Surface Science Reports. 59 (1-6), 1-152 (2005).</li>
<li>Nash, M. A., Gaub, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-Molecule+Adhesion+of+a+Copolymer+to+Gold%5BTitle%5D)+AND+%22ACS+NANO%22%5BJournal%5D)">Single-Molecule Adhesion of a Copolymer to Gold.</a> ACS NANO. 6 (12), 10735-10742 (2012).</li>
<li>Hermanson, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHermanson%2C+G+%22Bioconjugate+Techniques%22">Bioconjugate Techniques</a>. , Academic Press. New York. (1996).</li>
<li>Kienle, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+molecular+architecture+on+single+polymer+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir+the+ACS+journal+of+surfaces+and+colloids%22%5BJournal%5D)">Effect of molecular architecture on single polymer adhesion.</a> Langmuir the ACS journal of surfaces and colloids. 30 (15), 4351-4357 (2014).</li>
<li>Folkers, J. P., Laibinis, P. E., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-assembled+monolayers+of+alkanethiols+on+gold%3A+comparisons+of+monolayers+containing+mixtures+of+short-+and+long-chain+constituents+with+methyl+and+hydroxymethyl+terminal+groups%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Self-assembled monolayers of alkanethiols on gold: comparisons of monolayers containing mixtures of short- and long-chain constituents with methyl and hydroxymethyl terminal groups.</a> Langmuir. 8 (5), 1330-1341 (1995).</li>
<li>Dankerl, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diamond+Transistor+Array+for+Extracellular+Recording+From+Electrogenic+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Functional+Materials%22%5BJournal%5D)">Diamond Transistor Array for Extracellular Recording From Electrogenic Cells.</a> Advanced Functional Materials. 19 (18), 2915-2923 (2009).</li>
<li>Leonenko, Z. V., Carnini, A., Cramb, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Supported+planar+bilayer+formation+by+vesicle+fusion%3A+the+interaction+of+phospholipid+vesicles+with+surfaces+and+the+effect+of+gramicidin+on+bilayer+properties+using+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+biophysica+acta%22%5BJournal%5D)">Supported planar bilayer formation by vesicle fusion: the interaction of phospholipid vesicles with surfaces and the effect of gramicidin on bilayer properties using atomic force microscopy.</a> Biochimica et biophysica acta. 1509 (1-2), 131-147 (2000).</li>
<li>Stetter, F. W. S., Hugel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Nanomechanical+Properties+of+Lipid+Membranes+are+Significantly+Influenced+by+the+Presence+of+Ethanol%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">The Nanomechanical Properties of Lipid Membranes are Significantly Influenced by the Presence of Ethanol.</a> Biophysical Journal. 104 (5), 1049-1055 (2013).</li>
<li>Putman, C. A. J., De Grooth, B. G., Hulst, N. F., Greve, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+detailed+analysis+of+the+optical+beam+deflection+technique+for+use+in+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physics%22%5BJournal%5D)">A detailed analysis of the optical beam deflection technique for use in atomic force microscopy.</a> Journal of Applied Physics. 72 (1), 6-12 (1992).</li>
<li>Hutter, J. L., Bechhoefer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calibration+of+atomic-force+microscope+tips%5BTitle%5D)+AND+%22Review+of+Scientific+Instruments%22%5BJournal%5D)">Calibration of atomic-force microscope tips.</a> Review of Scientific Instruments. 64 (7), 1868(1993).</li>
<li>Krysiak, S., Liese, S., Netz, R. R., Hugel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peptide+desorption+kinetics+from+single+molecule+force+spectroscopy+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Peptide desorption kinetics from single molecule force spectroscopy studies.</a> Journal of the American Chemical Society. 136 (2), 688-697 (2014).</li>
<li>Li, I. T. S., Walker, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interfacial+free+energy+governs+single+polystyrene+chain+collapse+in+water+and+aqueous+solutions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Chemical+Society%22%5BJournal%5D)">Interfacial free energy governs single polystyrene chain collapse in water and aqueous solutions.</a> Journal of the American Chemical Society. 132 (18), 6530-6540 (2010).</li>
<li>Dudko, O. K., Hummer, G., Szabo, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Theory%2C+analysis%2C+and+interpretation+of+single-molecule+force+spectroscopy+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Theory, analysis, and interpretation of single-molecule force spectroscopy experiments.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (41), 15755-15760 (2008).</li>
<li>Stetter, F. W. S., Cwiklik, L., Jungwirth, P., Hugel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+Lipid+Extraction%3A+The+Anchoring+Strength+of+Cholesterol+in+Liquid-Ordered+and+Liquid-Disordered+Phases%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Single Lipid Extraction: The Anchoring Strength of Cholesterol in Liquid-Ordered and Liquid-Disordered Phases.</a> Biophysical Journal. 107 (5), 1167-1175 (2014).</li>
<li>Horinek, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peptide+adsorption+on+a+hydrophobic+surface+results+from+an+interplay+of+solvation%2C+surface%2C+and+intrapeptide+forces%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Peptide adsorption on a hydrophobic surface results from an interplay of solvation, surface, and intrapeptide forces.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (8), 2842-2847 (2008).</li>
<li>Ebner, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functionalization+of+probe+tips+and+supports+for+single-molecule+recognition+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Topics+in+current+chemistry%22%5BJournal%5D)">Functionalization of probe tips and supports for single-molecule recognition force microscopy.</a> Topics in current chemistry. 285 (April), 29-76 (2008).</li>
<li>Geisler, M., Balzer, B. N., Hugel, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymer+Adhesion+at+the+Solid-Liquid+Interface+Probed+by+a+Single-Molecule+Force+Sensor%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Polymer Adhesion at the Solid-Liquid Interface Probed by a Single-Molecule Force Sensor.</a> Small. 5 (24), 2864-2869 (2009).</li>
<li>Morfill, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Affinity-matured+recombinant+antibody+fragments+analyzed+by+single-molecule+force+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+journal%22%5BJournal%5D)">Affinity-matured recombinant antibody fragments analyzed by single-molecule force spectroscopy.</a> Biophysical journal. 93 (10), 3583-3590 (2007).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat zij geen concurrerende financiële belangen hebben.

Tijdens de laatste decennia hebben enkel molecuul experimenten ongekende inzichten in de moleculaire mechanismen en bleek een aanpak van onschatbare waarde in de life science en daarbuiten. Om een ​​goede en zinvolle statistieken van SMF experimenten idealiter een en hetzelfde molecuul wordt gebruikt over de gehele loop van het experiment te bereiken. In tegenstelling tot experimenten met ensembles van moleculen, SMF&#39;s experimenten zijn in staat om zeldzame gebeurtenissen en verborgen moleculaire toestanden te detec...

In de afgelopen 30 jaar heeft atomic force microscopie (AFM) bleek een waardevolle beeldvormingstechniek bestuderen biologische 1,2 en 3 synthetische materialen en oppervlakken aangezien het voorziet moleculaire ruimtelijke resolutie in alle drie dimensies en kan op verscheidene oplosmiddel worden bediend omgevingen. Daarnaast AFM-single molecule kracht spectroscopie (SMF) in staat stelt om de krachten variërend van de PN-regime μN meten en heeft ongekend inzicht bijvoorbeeld in eiwitvouwing 4,5, polymeerfysica 6 gegeven - 8, en single molecule-oppervlak interactie 9 - 12 .De gedachte achter het bestuderen van enkele moleculen in plaats van een ensemble van moleculen is om te voorkomen dat een gemiddelde effecten die vaak maskeren zeldzame gebeurtenissen of verborgen moleculaire toestanden. Bovendien kan een veelheid aan moleculaire parameters zoals het contour lengte, de lengte Kuhn, de hechting vrije energie, etc. zijnverkregen. Dit wordt in onderstaande voorbeelden. In een typische AFM-SMF experiment wordt de probe molecuul gekoppeld aan een zeer scherpe punt via een linker-molecule. De tip zelf is gelegen aan het einde van een buigzame cantilever. Als de punt in contact met het oppervlak wordt gebracht de probe molecuul interactie met dit oppervlak. Door het observeren van de doorbuiging van de cantilever bij het terugtrekken van de tip, de kracht en daardoor de vrije energie, aan het molecuul los te maken van het oppervlak worden bepaald. Om zinvolle statistiek, een groot aantal zogenaamde kracht-afstand curves moeten worden verworven. Bovendien true single molecule experimenten (bijv via een en dezelfde probe molecuul gedurende de duur van het gehele experiment) het probe-molecuul dient covalent gekoppeld aan de AFM tip bevatten. Hier wordt een experimenteel protocol voor cantilever functionalisering met een enkel molecuul via een covalente binding gepresenteerd. De single molecule kan ofwel gekoppeld via een amino- of thiol groep aan de AFM tip. De conjugatie werkwijze kan worden uitgevoerd in een grote verscheidenheid van oplosmiddelen (organisch en waterig) overeenkomt met het solvatatie eigenschappen van de gebruikte polymeren. In het eerste deel, een algemeen protocol covalent een enkel molecuul (&quot;probe molecule&quot;) te bevestigen via een linker-molecuul aan een AFM tip wordt beschreven. Hiertoe wordt organisch NHS- of maleïmide-chemie gebruikt 13. Samen met het protocol voor drie bijvoorbeeld moleculen, worden de data-acquisitie en data-analyse processen beschreven en referenties voor verdere lectuur zijn aanwezig. Het voorbeeld moleculen zijn: de (lineaire) polymeren tyrosine, het entpolymeer PI- g-PS en het lipide POPE. Dit omvat kleine variaties van het protocol, bijvoorbeeld om covalent cysteïnen. Daarnaast wordt een gedeelte gewijd aan de bereiding van diverse oppervlakken zoals een diamant oppervlak, een CH3--Self monolaag en lipide dubbellagen. Deze interfaces hebben proven zijn goede referenties en voorbeelden.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Materialen</td></tr><tr><td>Hellmanex III alkalisch vloeibaar concentraat (detergensoplossing)</td><td>Hellma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RCA (ultrapuur water, waterstofperoxide (35%), ammoniak (32%); 5:1:1(v/v/v))</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vectabond reagens / APTES (3-Aminopropyl)triethoxysilaan</td><td>Vectorlabs</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drooggeaceton (&lt; 50 ppm H2O)</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Droogge chloroform (> 99,9%)</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triethylamine</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultrapuur water</td><td>Biochrom, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dinatriumtetraboraat (>&nbsp;99,5%)</td><td>Biochrom, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Boorzuur</td><td>Biochrom, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Monofunctioneel &alpha;-methoxy-&omega;-NHS PEG, 5 kDa, &ldquo;methyl-PEG-NHS&rdquo;</td><td>Rapp, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heterobifunctioneel &alpha;,&omega;-bis-NHS PEG, 6&nbsp;kDa, &ldquo;NHS-PEG-NHS&rdquo;</td><td>Rapp, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heterobifunctioneel &alpha;-maleimidohexaanzuur- &omega;-NHS PEG, 5 kDa, &ldquo;Mal-PEG-NHS&rdquo;</td><td>Rapp, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Probe molecuul (polymeer, lipide, etc.)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Apparatuur</td></tr><tr><td>Voldoende glaskristallisatie schaaltjes met uitloop (10&nbsp;ml), glas Petri schoteltjes (500 &micro;l) en glazen deksels</td><td>VWR International GmbH, Duitsland</td><td></td><td> &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>Laboratoriumoven model UF30</td><td>Memmert, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Temperatuur gecontroleerde sonicator</td><td>VWR International GmbH, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plasma systeem "Femto", 100 W</td><td>Diener, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Een aparte glazen spuit voor elk organisch oplosmiddel</td><td>VWR International GmbH, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vortexmixer</td><td>VWR International GmbH, Duitsland</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifugebuisjes (0,5 ml of 1,5 ml)</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipetten: 10-100 &micro;l, 50-200 &micro;l en 100-1.000&nbsp;&micro;l</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>AFM met temperatuur gecontroleerde vloeistofcel (bv. MFP-3D met BioHeater)</td><td>Asylulm Research, Santa Barbara</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Zachte SiN cantilevers, typisch gemaakt van siliciumnitride (SiN) (veerconstante minder dan 100 pN/nm, bv. MLCT)</td><td>Bruker AXS, Santa Barbara</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

onderzoekt single molecule hechting van atomic force spectroscopie

Investigating Single Molecule Adhesion by Atomic Force Spectroscopy

Atomic force spectroscopie is een ideaal hulpmiddel om moleculen aan oppervlakken en interfaces te bestuderen. Een experimentele protocol te koppelen een grote verscheidenheid van afzonderlijke moleculen covalent op een AFM tip wordt gepresenteerd. Tegelijkertijd de AFM tip gepassiveerd om aspecifieke interacties tussen de tip en het substraat, hetgeen een vereiste om enkele moleculen aan de AFM tip bestuderen voorkomen. Analyses om de hechting van kracht, de hechting lengte, en de vrije energie van deze moleculen op vaste oppervlakken en bio-interfaces worden binnenkort gepresenteerd en externe verwijzingen voor verdere lectuur worden verricht. Voorbeeld moleculen zijn de poly (aminozuur) polytyrosine, het entpolymeer PI- g-PS en het fosfolipide POPE (1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-fosfoethanolamine). Deze moleculen gedesorbeerd van verschillende oppervlakken, zoals CH3 -SAMs, waterstof beëindigd diamant en ondersteund lipide dubbellagen onder verschillende omstandigheden oplosmiddel. Ten slottevoordelen kracht spectroscopische single molecule experimenten besproken middelen omvat om te beslissen of werkelijk een enkel molecuul is onderzocht in het experiment.

Hieronder zijn de resultaten voor de bovengenoemde voorbeeld moleculen, namelijk de polymeren poly (aminozuur) polytyrosine, het entpolymeer PI- g-PS en het fosfolipide POPE, gepresenteerd. Eerst voor elk voorbeeld, experimenteren specifieke details voor de data-acquisitie en data voorbereiding zijn aanwezig. Vervolgens de illustratieve resultaten voor experimenten waarbij deze moleculen werden gedesorbeerd uit verschillende oppervlakken (CH3 -SAMs, waterstof beëindigd diamant en lipide dubbellagen) ...

Er wordt een protocol gepresenteerd om een grote verscheidenheid aan enkele moleculen covalent aan een AFM-tip te koppelen. Procedures en voorbeelden om de adhesiekracht en vrije energie van deze moleculen op vaste ondergronden en bio-interfaces te bepalen, worden gegeven.

Onderzoekt Single Molecule Hechting van Atomic Force Spectroscopie

Atomic force spectroscopy is an ideal tool to study molecules at surfaces and interfaces. An experimental protocol to couple a large variety of single ...

Het algemene doel van deze procedure is om een enkel polymeer te koppelen aan een AFM-cantilevertip, zodat er vier spectroscopische oppervlaktedesorptie-experimenten kunnen worden uitgevoerd met meerdere keren dezelfde moleculen. Dit wordt bereikt door in eerste instantie het oppervlak van de tip plasma-te activeren om hydroxylgroepen te vormen, gevolgd door een tweede stap. De cantilevertip wordt amino-gesilozeerd met een testoplossing, waardoor aminogroepen op het tipoppervlak ontstaan.De derde stap is het koppelen van polyethyleenglycolmoleculen aan de aminogroepen. Deze voorkomen aspecifieke interacties tussen de tip en het substraat en dienen als linkermoleculen voor de polymeren. Ten slotte worden polymeren geconjugeerd aan de polyethyleenglycolmoleculen om een probe te vormen.Metingen suggereren dat deze procedure het inderdaad mogelijk maakt om één en dezelfde polymere krachtsonde te gebruiken voor een volledige experimentele set, of op dezelfde wijze, voor honderden kracht-afstandscurves. Het belangrijkste voordeel van experimenten met enkelvoudige moleculen ten opzichte van ensemblemethoden is dat zeldzame conformaties en infrequent voorkomende toestanden kunnen worden bestudeerd, die anders verborgen zouden blijven in het ensemblegemiddelde. Vanwege hun geringe omvang kunnen deze experimenten direct worden vergeleken met moleculaire dynamica-simulaties.De eerste stap is het covalent bevestigen van sonde-moleculen aan de tip van de cantilever. Gebruik nieuwe siliconnitride cantileverchips met een veerconstante van 10 tot 100 piconewton per nanometer.Gebruik een pincet om ze op een schone glazen objectglas of Petri-schaal te plaatsen. Plaats vervolgens het objectglas met de chips in een plasma-kamer van 100 watt, nadat de kamer is vacuümgetrokken en is gespoeld met zuurstof bij 0,25 millibar en 20 watt gedurende 15 minuten. Gebruik in de volgende stappen een zuurkast om inademing van organische dampen tijdens de plasmabehandeling te voorkomen.Bereid de amino-silanisatie van de cantilevers voor in een glazen petrischaal waarin 2,5 milliliters van de testoplossing is geplaatst. Daarnaast dient een vat met aceton gereed te staan. Haal de cantilevers onmiddellijk uit de plasmaprocesstap zodra deze is voltooid.Doop elke cantilever gedurende één seconde in aceton en plaats deze vervolgens in de Optus-oplossing. Incubeer de cantilevers 15 minuten bij kamertemperatuur voordat u verdergaat. Terwijl de cantilevers incuberen, begint u met de voorbereiding voor pegylering om de effecten van water en lucht op de componenten te minimaliseren.Begin met eerder voorbereide eph-buisjes, waarvan de ene m-peg en NHS bevat en de andere kleurstof. NHS-Peg. Bepaal het gewicht van de inhoud van elk buisje.Werk vervolgens met de buis die EG NHS bevat en bereid de toevoeging van chloroform voor. Giet de chloroform erbij om een uiteindelijke concentratie van 25 millimolair te bereiken en een voldoende hoeveelheid oplossing te verkrijgen om de cantilevers in de volgende stappen te bedekken. Plaats de buis op een vortexmixer om ervoor te zorgen dat het poeder oplost.Zet de buis met EG NHS apart om met het dieet te kunnen werken. NHS peg. Voeg chloroform toe tot een eindconcentratie van 0,25 millimolair is bereikt.Gebruik een vortexmixer om ervoor te zorgen dat het poeder is opgelost. Meng vervolgens de oplossingen om de verhouding tussen de diet NHS peg en de methyl peg NHS-moleculen aan te passen. Deze verhouding is doorgaans één op 500.Neem een kleine glazen Petrischaal met een deksel om verdamping te beperken en vul deze met het mengsel als de cantilevers. Voltooi de incubatie. Zorg dat er in de APT-testoplossing twee containers met ongeveer 10 milliliters aceton en één met chloroform klaarstaan om ze te spoelen.Dip elk van hen tweemaal in het aceton en eenmaal in chloroform en plaats ze in de polyethyleenglycoloplossing. Dek de schaal af en houd de cantilevers in de oplossing. Bereid gedurende één uur de covalente koppeling van een probe-molecuul voor, in dit geval poly-aminozuur poly-de-tyrosine.Begin met een volume één molair natriumhydroxide en los hierin het probe-molecuul op tot een concentratie van 1 mg/mL. Voor poly-D-tyrosine dient natriumhydroxide onmiddellijk voor functionalisering te worden vervangen door een natriumboraatbuffer met een pH van 8 tot 8,5.Terwijl de cantilevers hun incubatie in de polyethyleenglycoloplossing voltooien, bereid drie containers voor om ze te spoelen en een container met de polytyrosine-borebuffer. De buffersolutie voor het spoelen bestaat uit 5 mL chloroform, 5 mL ethanol en 5 mL borebuffer. Gebruik ongeveer 300 µL van de polytyrosine-borebuffersolutie.Haal de cantilevers eruit en dip elke eerst in chloroform, vervolgens in ethanol en daarna in de borate buffer, voordat ze in de polytyrosine borate buffer-oplossing worden geplaatst. Laat de cantilever-chips één uur incuberen. Bereid na één uur ongeveer vijf milliliter borate buffer in de ene container en vijf milliliter ultrapuur water in een andere container voor om de cantilevers te spoelen; zorg daarnaast voor 20 milliliter ultrapuur water om ze in te bewaren.Neem de cantilevers en dip elke cantilever in Boite-buffer, gevolgd door ultrapuur water om te spoelen. Dompel ze vervolgens onder in ultrapuur water voor bewaring. De cantilevers kunnen nu worden gebruikt voor data-acquisitie.Zodra de AFM-tip is gefunctionaliseerd en een oppervlak is voorbereid en gemonteerd, kunnen de stappen voor de acquisitie van FM-gegevens worden gestart. Plaats eerst de gefunctionaliseerde cantilever in een AFM-cantileverhouder die geschikt is voor metingen in vloeistoffen. Sluit vervolgens de cantileverhouder aan op de AFM-kop.Giet vervolgens water in de vloeistofcel om de cantilever en het oppervlak onder te dompelen. Laat vervolgens de AFM-kop op de vloeistofcel zakken. Laat het systeem gedurende ten minste een half uur equilibreren.Na de equilibratie wordt de cantilever ver van het oppervlak geplaatst, waarna thermische ruisspectra worden geregistreerd; er zijn 10 of meer spectra nodig om een voldoende signaal-ruisverhouding te verkrijgen om oppervlaktemodulatie-effecten uit te sluiten. Benader vervolgens voorzichtig het oppervlak om een meting van de inverse optische hefboomgevoeligheid uit te voeren.Hierbij wordt de punt van de cantilever tegen een hard oppervlak gedrukt om de kracht versus de afstand van de piëzo-verplaatsing vast te leggen. Meet de helling tijdens het contact en neem het omgekeerde hiervan om de inverse optische hefboomgevoeligheid te bepalen. Gebruik vervolgens de inverse optische hefboomgevoeligheid en de thermische ruisspectra om de veerconstante van de cantilever te bepalen door een harmonische oscillator op het thermische ruisspectrum aan te passen.Stel nu de juiste parameters voor de gegevensverzameling in. Registreer aan het einde van de gegevensverzameling talloze geforceerde afstandscurves voor elke experimentele conditie. Bepaal de gevoeligheid en de veerconstante opnieuw om de consistentie en stabiliteit van het systeem te controleren.Dit voorbeeld van een geforceerde afstandscurve in het rood is afkomstig van de terugtrekking van polytyrosine uit een methyl zelfgeassembleerde monolaag in onzuiver water. De enkelstapsdaling naar nul kracht duidt op de detachement van een enkel molecuul. De sigmoïdale fit is in het zwart weergegeven.De geëxtraheerde plateaulengte en plateau-kracht zijn met pijlen aangegeven. De extensie- en retractiesnelheid van de cantilever was 0,5 microns per seconde, en de verblijftijd op het oppervlak was één seconde. Verschillende vloeistofomgevingen voor de meting veroorzaakten veranderingen in de geëxtraheerde plateau-kracht.Deze histogrammen weerspiegelen de geëxtraheerde plateaukracht voor metingen in zuiver water en metingen in water-ethanolmengsels; voor elke oplossing zijn ten minste 300 kracht-afstandscurves opgenomen voor één en hetzelfde polymeer. Hier worden analoge histogrammen getoond voor de geëxtraheerde plateaulengte in zuiver water en in water-ethanolmengsels.De toevoeging van ethanol verzwakt de hydrofobe interactie tussen polytyrosine en het oppervlak, wat leidt tot een lagere plateaukracht en een afname van de plateau-lengte. Dit is samengevat in deze grafiek van de piekplateau-lengte tegenover de piekplateaukracht. Zodra de methode onder knie is, kan het functionalisatieprotocol in ongeveer vier uur worden uitgevoerd na de ontwikkelingsfase.Deze techniek maakte het voor onderzoekers in het veld van de natuur- en scheikunde mogelijk om de adhesie en diffractie van polymeren op interfaces te onderzoeken.

investigating-single-molecule-adhesion-by-atomic-force-spectroscopy

Research

JoVE Journal

Engineering

Techniek

Een hechting frequentie test voor het meten van receptor-ligand interactie kinetiek wanneer beide moleculen zijn verankerd op het oppervlak van de interagerende cellen is beschreven. Deze mechanisch-gebaseerde test wordt geïllustreerd met behulp van een micropipet-druk menselijke rode bloedcel als adhesie sensor en integrine αLβ2 en intercellulaire adhesie molecuul-1 als interactie-receptoren en liganden.

Hechting Frequency Assay voor In Situ Kinetiek Analyse van de Cross-junctionele moleculaire interacties in de cel-cel-interface

Cellulosomen zijn multi-enzymcomplexen die zijn ontworpen voor het verteren van cellulose. AFM-gebaseerde SMFS werd gebruikt om de mechanische eigenschappen en vouwconfiguratie van cellulosome-geassocieerde eiwitassemblages te bestuderen. We presenteren een complete workflow voor eiwit-immobilisatie, dataverzameling en data-analyse om de interacties van individuele receptor-ligandcomplexen te bestuderen die betrokken zijn bij cellulosome-assemblage.

Onderzoeken Receptor-ligand systemen van de Cellulosome met AFM-gebaseerde Single-molecule Force Spectroscopie

Colloïdale sondev-nanoscopie kan binnen verschillende velden worden gebruikt om inzicht te krijgen in de fysische stabiliteit en coagulatiesnelheid van colloïdale systemen en om medicijnontdekking en formuleringswetenschappen te ondersteunen met behulp van biologische systemen. De beschreven methode biedt een kwantitatief en kwalitatief middel om dergelijke systemen te bestuderen.

Kwantitatieve en kwalitatieve onderzoek van Particle-deeltje Interacties gebruik Colloïdaal Probe Nanoscopy

Hier presenteren we een protocol om de kracht van de interacties tussen een goed gedefinieerde anorganische oppervlak en ofwel peptiden of aminozuren door single-molecule force spectroscopy metingen te meten met behulp van een atomic force microscope (AFM). De resultaten van de meting informatie is belangrijk voor een beter begrip van het peptide-anorganisch materiaal interfase.

Inzicht in de interacties van aminozuren en peptiden met anorganische materialen met behulp van enkel-molecuul Force Spectroscopie

We beschrijven de gedetailleerde procedures en de strategieën voor het meten van de mechanische eigenschappen en mechanische ontvouwen trajecten van één eiwitmolecules met behulp van een atomic force microscope. We tonen ook representatieve resultaten als een referentie voor selectie en motivering van goed één eiwit molecuul opnames.

Kracht spectroscopie van één eiwitmolecules met behulp van een Atomic Force Microscope

Dit protocol beschrijft de covalente immobilisatie van eiwitten met een heterobifunctional silane koppelmiddel op siliciumoxide oppervlakken ontworpen voor de atomaire kracht microscopie gebaseerd enkel molecuul kracht spectroscopie die wordt geïllustreerd door de interactie van RrgA (pilus-1 tip antistoffen van S. pneumoniae) met fibronectine.

Covalente immobilisatie van eiwitten voor de enkel molecuul Force spectroscopie

Hier presenteren we een protocol om eiwitmonomeer te vervoegen door enzymen die eiwitpolymeer vormen met een gecontroleerde sequentie en het op het oppervlak immobiliseren voor spectroscopiestudies met één molecuul.

OaAEP1-Gemedeerde Enzymatische Synthese en Immobilisatie van gepolymeriseerd eiwit voor Single-Molecule Force Spectroscopie

Covalente gehechtheid van sondemoleculen aan atoomkrachtmicroscopie (AFM) cantilever tips is een essentiële techniek voor het onderzoek van hun fysieke eigenschappen. Dit stelt ons in staat om de rekkracht, desorptiekracht en lengte van polymeren te bepalen via AFM-gebaseerde single molecule force spectroscopie met een hoge reproduceerbaarheid.

Covalent Attachment of Single Molecules for AFM-based Force Spectroscopy

Ensemble force spectroscopy (EFS) is een robuuste techniek voor mechanische ontvouwing en real-time detectie van een ensemble set van biomoleculaire structuren in biofysische en biosensing velden.

Ensemble Force Spectroscopie door Shear Forces

We beschrijven de bereiding van colloïdale quantum dots met minimale hydrodynamische grootte voor single-molecule fluorescentie beeldvorming. Vergeleken met conventionele quantum dots, deze nanodeeltjes zijn vergelijkbaar in grootte met globulaire eiwitten en zijn geoptimaliseerd voor single-molecule helderheid, stabiliteit tegen afbraak en resistentie tegen specifieke binding aan eiwitten en cellen.

Compact Quantum Dots voor Single-molecule Imaging

Leer hoe je enkele polymeren koppelt aan AFM-cantilevertips voor spectroscopische oppervlakte-desorptie-experimenten. Deze methode met polyethyleenglycol-linkers verbetert de nauwkeurigheid van adhesiekrachtmetingen.

Onderzoekt Single Molecule Hechting van Atomic Force Spectroscopie

Meer video's verkennen