Name: Isolatie van primaire humane Colon tumorcellen uit Chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor Traction Cytometry (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 28 s
Description: Leer primaire humane colon tumorcellen isoleren uit chirurgisch weefsel en kweken op zachte elastische substraten. Deze methode maakt tractiecytometrie mogelijk voor onderzoek naar celcontractiliteit en tumorbiologie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit project werd gefinancierd door de National Science Foundation ECCS-subsidie 10-02165 en het Interdisciplinaire Innovatie-initiatief, Universiteit van Illinois-subsidie 12035. M.Y. A. werd gefinancierd aan UIUC door NIH National Cancer Institute Alliance for Nanotechnology in Cancer ‘Midwest Cancer Nanotechnology Training Center’ Grant R25 CA154015A. Immnunoskleuring en confocale microscopiebeelden werden uitgevoerd bij het Institute for Genomic Biology (IGB), UIUC. M.Y.A. erkent de discussies met B. J. Williams van UIUC met betrekking tot de isolatie-experimenten. M.Y.A. erkent C. Nemeh en Abdul Bhuiya van UIUC voor hun hulp bij het opstellen van schematisch en materiaallijst.

De hieronder beschreven protocol volgt de richtlijnen van UIUC menselijk onderzoek ethische commissie. 1. Verzameling en de spijsvertering van Surgical weefselmonster <ol><li> Verzamel de tumorweefsel monster direct na colon resectie (figuur 1A en 1B). Verzamel weefsel van een aangrenzende gezonde site ook. </li><li> Breng het weefsel onmiddellijk naar een 15 ml flesje met 12 ml HBSS oplossing. Houd de flacon op het ijs in een geïsoleerde schuim doos. </li><li> Vervoeren het weefsel met flacon een weefselkweek kap voor verdere verwerking binnen 45 min. Houd de flacon op een ijsblok in de kap. </li><li> Giet de meegeleverde weefsel in een 6-wells plaat met 6-7 ml van HBSS oplossing met behulp van een pipet. Let op: Bedrag van weefsel per put is niet kritisch in deze spoelen stap. </li><li> Houd de 6 wells plaat op een ijsblok. Spoel het weefsel in HBSS oplossing tweemaal. </li><li> Snijd weefsel netjes in gescheiden secties met steriele GCBsor. Gehakt weefsel in kleinere secties niet groter dan 1-2 mm3 in grootte met een steriele scalpel. </li><li> Weeg een gemerkt 0,1% trypsine injectieflacon (met 1 ml van 0,1% trypsine oplossing) alvorens het weefsel. Overdracht ~ 20 mg weefsel in elk van de 0,1% trypsine flesjes met een pipet. </li><li> Probeer de overdracht van HBSS in de trypsine flacon minimaliseren verdere verdunning van trypsine te voorkomen. </li><li> Weeg de trypsine flesjes na weefsel overdracht; documenteren van het verschil als de massa weefsel. </li><li> Giet ~ 20 mg weefsel en 1 ml trypsine in elk putje van een 24 putjesplaat. </li><li> Plaats de 24 wells plaat op schudder in koelkast bij 4 ° C gedurende 16-20 uur. Tijdens deze wachttijd of op een eerder tijdstip, bereiden polyacrylamidegel substraten en functionaliseren ze met ECM-eiwitten zoals beschreven in paragraaf 3. </li></ol> 2. Enzymatische dissociatie van weefselmonster in enkele celsuspensie en kweken van geïsoleerde cellen op ECM Gefunctionaliseerde Elastic Substrates en Rigid polystyreen Gerechten <ol><li> Na 16-20 uur incubatie in zowel trypsine bij 4 ° C op schudinrichting overbrengen weefsel van 4 ° C trypsine tot 4 ° C compleet groeimedium injectieflacon (die 2-3 ml compleet kweekmedium) met een pipet. Zorg voor een minimale overdracht van trypsine in groeimedia. Opmerking: de volledige groeimedia formulering als volgt: RPMI 1640 basismedium gesupplementeerd met paardenserum tot een eindconcentratie van 10% en penicilline-streptomycine tot 1% van de totale oplossing. </li><li> Plaats het weefsel bevattende media flacon in een warmwaterbad bij 37 ° C gedurende 12-15 min. </li><li> Overdracht van het weefsel aan een 15 ml flacon met HBSS oplossing met behulp van een pipet, schud voorzichtig. </li><li> Herhaal 2.3. </li><li> Verwijder weefsel uit HBSS oplossing en transfer naar 0,1% collagenase oplossing (in HBSS) injectieflacon met 1 ml oplossing. Incubeer gedurende 45 minuten bij 37 ° C en 5% CO2 in een bevochtigde omgeving celkweek incubator. Tijdens de wachttijd, warm growth media in een 15 ml flesje bij 37 ° C in een waterbad. </li><li> Trek alle weefsel fragmenten in pipet minimaliseren collagenase overdracht. Werp gewoon het weefsel fragmenten in voorverwarmde kweekmedia flacons. </li><li> Plaats een 40 micrometer goed insert filter in elk putje van een 6-wells plaat. Bevochtig het filter met 1 ml celcultuur media. </li><li> Vermaal weefsel in de media met een 10 ml glazen pipet meerdere keren totdat het weefsel volledig is gescheiden. </li><li> Handhaaf de pipetpunt zo dicht mogelijk bij de bodem van de flacon. </li><li> Stort de oplossing op het filter om vuil en ongedissocieerde onderdelen te verwijderen. </li><li> Centrifugeer gefilterd celsuspensie in media bij 150 xg gedurende 5 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Verwijder de bovenstaande vloeistof achteraf en resuspendeer celpellet met 2 ml vers kweekmedium. </li><li> Tel de cellen met een hemocytometer (indien nodig). Geïsoleerd zaad primaire cellen aan de extracellulaire matrix (ECM) gefunctionaliseerd gels en polystyreen gerechten op de gewenste concentratie.</li></ol> 3. Voorbereiding en functionalisering van andere stijfheid Polyacrylamide (PA) Gels en polystyreen Substrates Opmerking: Voor visuele demonstratie van hoofdstuk 3, de kijkers / lezers worden verwezen naar een recente Journal of Visualized Experiments (Jupiter) artikel 17. <ol><li> Vaststelling gepubliceerde protocollen 18, 19, activeer 12 mm 2 glazen dekglaasjes chemisch covalente binding van de hydrogel te waarborgen. <ol><li> Ten eerste behandelen glazen dekglaasjes met 3- Aminopropyltrymethoxysilane (ATS) gedurende 7 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Verwijder de ATS volledig met DI-water spoelen en te behandelen dekglaasjes met 0,5% Glutaraldehyde (verdund in PBS van 70% Glutaraldehyde voorraad oplossing) oplossing voor 30 min. </li></ol></li><li> Verkrijgen 2 kPa gel oplossingen door mengen 5% g / v acrylamide-oplossing en 0,05% N, N&#39;-methylenebisacrylamide (bis) oplossing in 10 mM HEPES-gebufferde zoutoplossing 20. Met 8% w / v acrylamide en 0,13% N, N&#39;-methylenebisacrylamide (bis) oplossing in 10 mM HEPES-gebufferde zoutoplossing 10 kPa gel 20. <ol><li> In beide gevallen gebruikt 1: 200 ammoniumpersulfaat (10% w / v) en 1: 2000 N, N, N &#39;, N&#39;-tetramethylethyleendiamine (TEMED) als initiator en katalysator voor de polymerisatie resp. </li><li> Ook, voeg 100 ul fluorescerende kralen 2 kPa geloplossing als fiduciaire markers 21, 22. </li></ol></li><li> Stort een daling van 20 pi pre-polymeer PA gel oplossing op de 12 mm 2 geactiveerd glas dekglas. Leg nog eens 12 mm 2 standaard glazen deksel slip op de drop. Zorg ervoor dat de daling zich verspreidt tussen de dekglaasjes als gevolg van capillaire werking. Inverteer de sandwich van 2 kPa gels zodat de meeste van de korrels naderen de celkweek oppervlak. </li><li> Hard de PA gel gedurende 45 minuten bij kamertemperatuur. </li><li> Trek het deksel slip met behulp van een enkele rand scheermes. Opmerking: Tijdens het schillen, onthechting voortkomt uit een randvan de sandwich. De gel blijft hechtend aan de geactiveerde glasplaatje. </li><li> Bewaar de gels in PBS oplossing voor gebruik. </li><li> Functionaliseren PA gels en glas met ECM-moleculen, menselijke fibronectine in een concentratie van 50 ug / ml volgens gepubliceerde werkwijzen 23. <ol><li> In het kort, incubeer substraten met 2 ml pure hydrazinehydraat O / N. </li><li> Verwijder hydrazinehydraat en spoel de substraten grondig met DI water. </li><li> Was de substraten met 5% azijnzuur gedurende 30 min. </li><li> Verwijder azijnzuur en spoel de substraten grondig met DI water. </li><li> Houd de substraten ondergedompeld in DI-water gedurende 30 min. </li><li> Incubeer de substraten met geoxideerde fibronectine gedurende 35 min bij een concentratie van 50 ug / ml. </li><li> Spoel de substraten met PBS op schudinrichting bij lage rpm gedurende 10 min. </li><li> Incubeer alle substraten bij 37 ° C in 2-3 ml kweekmedium gedurende 30 min voor het uitplaten van de cellen. Opmerking: Plaat cellen in een dun populated manier (1000-3000 cellen / cm 2). Elke gel bedekte glas slip moet worden opgenomen in een 35 mm petrischaal. Laat cellen volledig hechten voordat microscopie (ten minste O / N). </li></ol></li></ol> 4. Traction Force Microscopy en immunofluorescentiemicroscopie Testen <ol><li> Traction Force Microscopy Assay <ol><li> Warm 0,25% trypsine-EDTA / 10% SDS-oplossing bij 37 ° C in een waterbad gedurende 10 minuten voor tractie experimenten beginnen. </li><li> Verwijder een gel uit de celkweek incubator op een tijd en plaats van de fluorescentie microscoop omgekeerde fase (32x vergroting). </li><li> Een cel in gezichtsveld. Verwijder de petrischaal deksel. </li><li> Neem een fase contrast beeld van de cel (bijvoorbeeld figuur 3). </li><li> Schakel de imaging-modus om fluorescentie en selecteer de gewenste filter. Verplaats de microscoop podium of monster gedurende deze tijd. </li><li> Neem een ​​beeld van de fluorescerende kralen displaced door cellulaire tractie (Figuur 4C). </li><li> Voeg 1 ml trypsine / SDS oplossing petrischaal de cel gel los. Verplaats de microscoop podium of monster gedurende deze tijd. Ook een controle beeld van de cel te nemen om volledige verwijdering van de gel te waarborgen. </li><li> Neem een ​​referentie (null kracht) beeld van de kralen nadat de cel wordt verwijderd. </li><li> Herhaal de stappen 4.1.2-4.1.8 voor alle andere gels. </li><li> Maak een image stack met ImageJ van de twee beelden verworven in stap 4.1.6 en 4.1.8 voor elk geval. Om de afbeelding stapel genereren, gebruiken volgende reeks commando&#39;s in ImageJ na het openen van de afbeeldingen: Afbeelding → Stacks → Afbeeldingen te stapelen. </li><li> Om het veld verplaatsing en de tractie te krijgen, gebruiken ImageJ plugins volgende gepubliceerde methoden 21, 22 verkrijgen codes en gedetailleerde tutorials voor deze plugins via de volgende link:. <a href="https://sites.google.com/site/qingzongtseng/imagejplugins">https://sites.google.com/site/qingzongtseng/ima</a>gejplugins. <ol><li> Lijn de beelden in de stapel met behulp van de &#39;Template Matching&#39; plugin. Gebruik volgende reeks commando&#39;s in ImageJ na het openen van het beeld stack gegenereerd in stap 4.1.10: Plugins → Template Matching → Align Slices in Stack → OK. Sla de afbeelding stapel dus. Met deze nieuwe afbeelding stapel in de volgende stappen. </li><li> Verkrijgen van het veld verplaatsing met de PIV (Particle Image Velocimetry) plugin (figuur 4D). Gebruik volgende reeks commando&#39;s na het openen van de afbeelding stapel opgeslagen in stap 4.1.11.1: Plugins → PIV → Iterative PIV (Basic) → OK → Accepteer deze PIV en output → Ok. Sla de PIV output in dezelfde map als in het originele beeld stack. Gebruik dit als input in de volgende stap. </li><li> Eindelijk gebruik maken van de FTTC (Fourier-transformatie tractie cytometrie) plugin om de tractie kaart (Figuur 4E) te verkrijgen. Gebruik volgende reeks commando&#39;s: Plugins → FTTC → Insert eigenschappen van het materiaal, dat wil zeggen, Young&#39;s modulus en de verhouding van de PA gel → OK → Poisson&#39;s Kies het PIV output bestand opgeslagen in stap 4.1.11.2 → OK. Save FTTC resulteert in dezelfde map als in het beeld stack en PIV output. </li></ol></li></ol></li><li> Immunofluorescentiemicroscopie Assays <ol><li> Neem de substraten te immunostained aan de laminaire kap en verwijder het kweekmedium. </li><li> Spoel de substraten met PBS en bevestig de cellen met 4% paraformaldehyde in PBS gedurende 20 min bij kamertemperatuur. </li><li> Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer). Bijgevolg incubeer de substraten met 500 gl signaal versterker gedurende 30 min en spoel met PBS. </li><li> Incubeer de cellen met monoklonale anti-vinculin antilichaam bij een 1: 250 verdunning in PBS gedurende 45 min bij kamertemperatuur. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer). </li><li> Incubeer de monsters met secundaire antilichaam Alexa Fluor 488 geit anti-muis IgG bij een 1: 200 verdunningin PBS bij kamertemperatuur gedurende 30 min. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer). </li><li> Om de F-actine structuur visualiseren, incubeer cellen met TRITC falloïdine conjugaten bij een concentratie van 50 ug / ml gedurende 45 minuten bij kamertemperatuur. Was de substraten met PBS gedurende 3 maal (5 min per keer). </li><li> Afbeelding van de monsters met behulp van confocale laser scanning microscoop (Figuur 5A - 5D). </li></ol></li></ol>

<ol><li>Ingber, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Can+cancer+be+reversed+by+engineering+the+tumor+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Semin.+Cancer+Biol%22%5BJournal%5D)">Can cancer be reversed by engineering the tumor microenvironment.</a> Semin. Cancer Biol. 18, 356-364 (2008).</li>
<li>Kumar, S., Weaver, V. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics%2C+malignancy%2C+metastasis%3A+the+force+journey+of+a+tumor+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Metastasis+Rev%22%5BJournal%5D)">Mechanics, malignancy, metastasis: the force journey of a tumor cell.</a> Cancer Metastasis Rev. 28, 113-127 (2009).</li>
<li>Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+elasticity+directs+stem+cell+lineage+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Matrix elasticity directs stem cell lineage specification.</a> Cell. 126, 677-689 (2006).</li>
<li>Yeung, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+substrate+stiffness+on+cell+morphology%2C+cytoskeletal+structure%2C+and+adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Motil.+Cytoskeleton%22%5BJournal%5D)">Effects of substrate stiffness on cell morphology, cytoskeletal structure, and adhesion.</a> Cell Motil. Cytoskeleton. 60, 24-34 (2005).</li>
<li>Pelham, R. J., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+locomotion+and+focal+adhesions+are+regulated+by+substrate+%EF%AC%82exibility%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Cell locomotion and focal adhesions are regulated by substrate ﬂexibility.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 94 (25), 3661-3665 (1997).</li>
<li>Solon, J., Levental, I., Sengupta, K., Georges, P. C., Janmey, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+adaptation+and+stiffness+matching+to+soft+elastic+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Fibroblast adaptation and stiffness matching to soft elastic substrates.</a> Biophys. J. 93, 4453-4461 (2007).</li>
<li>Wang, H. B., Dembo, M., Wang, Y. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate+flexibility+regulates+growth+and+apoptosis+of+normal+but+not+transformed+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Cell.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Substrate flexibility regulates growth and apoptosis of normal but not transformed cells.</a> Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 279, 1345-1350 (2000).</li>
<li>Paszek, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tensional+homeostasis+and+the+malignant+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Tensional homeostasis and the malignant phenotype.</a> Cancer Cell. 8, 241-254 (2005).</li>
<li>Levental, K. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+crosslinking+forces+tumor+progression+by+enhancing+integrin+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Matrix crosslinking forces tumor progression by enhancing integrin signaling.</a> Cell. 139, 891-906 (2009).</li>
<li>Tang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+force+affects+expression+of+an+in+vitro+metastasis-like+phenotype+in+HCT-8+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Mechanical force affects expression of an in vitro metastasis-like phenotype in HCT-8 cells.</a> Biophys. J. 99, 2460-2469 (2010).</li>
<li>Ali, M. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate+Stiffness+Mediated+Metastasis+Like+Phenotype+of+Colon+Cancer+Cells+is+Independent+of+Cell+to+Gel+Adhesion%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Mol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Substrate Stiffness Mediated Metastasis Like Phenotype of Colon Cancer Cells is Independent of Cell to Gel Adhesion.</a> Cell. Mol. Bioeng. , (2014).</li>
<li>Ali, M. Y., Chuang, C. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+cellular+phenotype+by+soft+collagen+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">Reprogramming cellular phenotype by soft collagen gels.</a> Soft Matter. , (2014).</li>
<li>Kraning-Rush, C. M., Califano, J. P., Reinhart-King, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+traction+stresses+increase+with+increasing+metastatic+potential%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Cellular traction stresses increase with increasing metastatic potential.</a> PLoS ONE. 7 (2), e32572(2012).</li>
<li>Indra, I., Undyala, V., Kandow, C., Thirumurthi, U., Dembo, M., Beningo, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro+correlation+of+mechanical+forces+and+metastatic+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Phys.+Biol%22%5BJournal%5D)">An in vitro correlation of mechanical forces and metastatic capacity.</a> Phys. Biol. 8 (1), (2011).</li>
<li>Alge, C. S., Hauck, S. M., Priglinger, S. G., Kampik, A., Ueffing, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+protein+profiling+of+primary+versus+immortalized+human+RPE+cells+identifies+expression+patterns+associated+with+cytoskeletal+remodeling+and+cell+survival%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Proteome+Res%22%5BJournal%5D)">Differential protein profiling of primary versus immortalized human RPE cells identifies expression patterns associated with cytoskeletal remodeling and cell survival.</a> J. Proteome Res. 5 (4), 862-878 (2006).</li>
<li>Oikonomou, E., Kothonidis, K., Zografos, G., Nasioulas, G., Andera, L., Pintzas, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Newly+established+tumourigenic+primary+human+colon+cancer+cell+lines+are+sensitive+to+TRAIL-induced+apoptosis+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Cancer%22%5BJournal%5D)">Newly established tumourigenic primary human colon cancer cell lines are sensitive to TRAIL-induced apoptosis in vitro and in vivo.</a> Br. J. Cancer. 97 (1), 73-84 (2007).</li>
<li>Knoll, S. G., Ali, M. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+localizing+reporter+fluorescent+beads+near+the+cell+culture+surface+for+traction+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A novel method for localizing reporter fluorescent beads near the cell culture surface for traction force microscopy.</a> J. Vis. Exp. (91), (2014).</li>
<li>Wang, Y. L., Pelham, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+a+flexible%2C+porous+polyacrylamide+substrate+for+mechanical+studies+of+cultured+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Preparation of a flexible, porous polyacrylamide substrate for mechanical studies of cultured cells.</a> Methods in Enzymology. 298, 489-496 (1998).</li>
<li>Tang, X., Ali, M. Y., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+technique+for+micro-patterning+proteins+and+cells+on+polyacrylamide+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Soft+Matter%22%5BJournal%5D)">A novel technique for micro-patterning proteins and cells on polyacrylamide gels.</a> Soft Matter. 8, 3197-3206 (2012).</li>
<li>Tse, J. R., Engler, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+hydrogel+substrates+with+tunable+mechanical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Preparation of hydrogel substrates with tunable mechanical properties.</a> Current Protocols in Cell Biology. , 10-16 (2010).</li>
<li>Tseng, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+organization+of+the+extracellular+matrix+regulates+cell%E2%80%93cell+junction+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Spatial organization of the extracellular matrix regulates cell–cell junction positioning.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 109 (5), 1506-1511 (2012).</li>
<li>Chopra, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Augmentation+of+integrin-mediated+mechanotransduction+by+hyaluronic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Augmentation of integrin-mediated mechanotransduction by hyaluronic acid.</a> Biomaterials. 35 (1), 71-82 (2014).</li>
<li>Damljanovic, V., Lagerholm, B. C., Jacobson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bulk+and+micropatterned+conjugation+of+extracellular+matrix+proteins+to+characterized+polyacrylamide+substrates+for+cell+mechanotransduction+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Bulk and micropatterned conjugation of extracellular matrix proteins to characterized polyacrylamide substrates for cell mechanotransduction assays.</a> Biotechniques. 39 (6), 847-851 (2005).</li>
<li>Tilghman, R. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Matrix+rigidity+regulates+cancer+cell+growth+and+cellular+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Matrix rigidity regulates cancer cell growth and cellular phenotype.</a> PLoS ONE. 5 (9), e12905(2010).</li>
<li>Ulrich, T. A., de Juan Pardo, E. M., Kumar, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mechanical+rigidity+of+the+extracellular+matrix+regulates+the+structure%2C+motility%2C+and+proliferation+of+glioma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">The mechanical rigidity of the extracellular matrix regulates the structure, motility, and proliferation of glioma cells.</a> Cancer Res. 69, 4167-4174 (2009).</li>
<li>Williams, B. J., Anand, S. V., Rajagopalan, J., Saif, M. T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+self-propelled+biohybrid+swimmer+at+low+Reynolds+number%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">A self-propelled biohybrid swimmer at low Reynolds number.</a> Nat. Commun. 5, (2014).</li>
</ol>

De auteurs hebben niets te onthullen.

Cellular tractie spanning is onlangs naar voren gekomen als een potentiële biofysische indicator van metastatische staat 13. Echter, geen experimentele tractie gegevens met primaire tumorcellen bestaat in de literatuur tot nu toe. Ook wordt direct kweken geïsoleerde primaire colon cellen op verschillende stijfheid polyacrylamidegelen nog niet gemeld. Vandaar dit een optimale primaire colon celkweekomstandigheden op gels en polystyreen (figuur 2) vast. Fluorescerende microbolletjes inkapseling...

De laatste jaren is het steeds duidelijker geworden dat de mechanische micro-omgeving, naast biochemische factoren, speelt een belangrijke rol bij het reguleren cel functionaliteiten. Cellen kunnen detecteren en reageren op de stijfheid substraat waarop zij worden nageleefd (zoals in 2D kweek) en omringd door (zoals in 3D kweek) 3-7. Hierdoor kunnen cellen hun differentiatie 3, morfologie 4, migratie / motiliteit 5, biofysische eigenschappen 6, 7 groei, en andere processen moduleren. Kankercellen ook reageren op de 2D- en 3D-matrix stijfheid met behulp van een gecoördineerde, hiërarchische mechanisch-chemische combinatie van adhesie receptoren en bijbehorende signaaltransductie membraaneiwitten, het cytoskelet architectuur en moleculaire motoren 1, 2. Bijvoorbeeld, borstklier epitheelcellen (MEC) vormen normale acinaire parenchym wanneer gekweekt op 150 Pa substraten die vergelijkbaar is met de stijfheidgezonde borstklierweefsel. Interessant is dat ze de kenmerken van een zich ontwikkelende tumor, zowel structureel als transcriptie, indien gekweekt op stijver substraten (&gt; 5000 Pa), die de stijfheid van een tumor stroma 8 nabootsen. Bovendien, een ander experiment toont aan dat borst tumorigenese gepaard gaat met collageen verknoping en ECM verstijving 9. Recente experimenten tonen dat humane colon carcinoma (HCT-8) cellen vertonen metastase fenotype (MLP) wanneer zij gekweekt op 2D substraten met fysiologisch relevante stijfheid (20-47 kPa), maar niet op zeer stijf (3,6 GPa) substraten 10- 12 .Deze cellen eerste vorm tumorachtige celclusters en dissociëren van elkaar, vanaf de periferie. Aangezien dit epitheliale naar afgeronde morfologische (E R overgang) verandering optreedt, ze vermenigvuldigen, te verminderen cel-cel en cel-ECM adhesie, en word trekvogels. HCT-8 cellen gekweekt op heel hard polystyreen substraten zijn deze niet vertonenkwaadaardige trekken. Dus het is de hypothese dat HCT-8 cellen uitgezaaide vanwege hun blootstelling aan geschikte micro-omgeving. Vermeldenswaard is dat deze experimenten uitgevoerd met geïmmortaliseerde kankercellijnen of muizen afgeleide primaire cellen, niet met primaire humane kankercellen worden uitgevoerd. Een recent onderzoek stelt aangevulde cellulaire traction stress, kunnen worden toegepast als een mogelijke biofysische signatuur voor metastatische cellen 13 .De studie omvat het meten trekkracht voor verschillende humane kankercellijnen op polyacrylamide gels. Het blijkt dat metastatische kankercellen significant hoger traction stress kan uitoefenen in vergelijking met niet-metastatische cellen in alle gevallen 13. Echter, deze resultaten direct in tegenspraak met de eerder gepubliceerde bevindingen muizen afgeleide borstkankercellijnen 14. Ook een recent onderzoek ook opvallende verschillen tussen geïmmortaliseerde en primaire humane cellen in het cytoskelet remodeling proeiwit profilering en overleving van de cel eiwit expressie 15. Daarom is het belangrijk voor veel van de biofysische analyses inclusief tractie voor primaire humane kankercellen opnieuw. Dit zal de vraag te beantwoorden of de primaire cellen recapituleren geïmmortaliseerde kanker cellijnen tractie trend. De hier beschreven protocol geoptimaliseerd voor isolatie van primaire humane colon cellen (zowel gezonde en kanker), en ze te kweken op zachte substraten (polyacrylamide hydrogels) en op petrischalen. Het protocol is gebaseerd op de spijsvertering en de daaruit voortvloeiende enzymatische dissociatie van chirurgische weefselmonster in enkele celsuspensie 16. Voor zover wij weten is dit de eerste demonstratie van het kweken geïsoleerde primaire colon tumor en normale cellen direct op zachte hydrogel substraten met ingebedde fluorescente microkraaltjes tractie cytometrie. Transparante gel substraten immunokleuring ook mogelijk. Deze test toonde verschillen in F-actine organisatiefocale adhesies in primaire menselijke dikke darm cellen als substraat stijfheid veranderingen. Dit celcultuur platform opent de mogelijkheid van het verkennen van de verschillende biofysische eigenschappen van primaire menselijke cellen zoals mobiele stijfheid en tractie als parameters voor kanker prognostiek.

<table><tbody><tr><td colspan="4">Reagents</td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Life technologies</td><td>14175-095</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Lonza</td><td>17-516F</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin</td><td>Worthington</td><td>LS003736</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase</td><td>Worthington</td><td>LS004176</td><td></td></tr><tr><td>3- Aminopropyltriethoxysilane (ATS)&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>281778</td><td></td></tr><tr><td>Glutaraldehyde</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>01201-5</td><td></td></tr><tr><td>Acrylamide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4058</td><td></td></tr><tr><td>N-methyleenbisacrylamide (bis)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1533</td><td></td></tr><tr><td>HEPES bufferoplossing</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>83264</td><td></td></tr><tr><td>Ammoniumpersulfaat</td><td>Bio-Rad</td><td>161-0700</td><td></td></tr><tr><td>Human fibronectine</td><td>BD biosciences</td><td>354008</td><td></td></tr><tr><td>Hydrazinehydraat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>18412</td><td>Gevaarlijk</td></tr><tr><td>Azijnzuur</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A6283</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehyde&nbsp;</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>RT15710</td><td></td></tr><tr><td>Signaalversterker</td><td>Life technologies</td><td>I36933</td><td></td></tr><tr><td>Monoklonaal anti-vinculine-antilichaam&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>V9131</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 geit anti-muis IgG</td><td>Life technologies</td><td>A11001</td><td></td></tr><tr><td>TRITC phalloidine-conjugaten&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1951</td><td></td></tr><tr><td>0.1 &micro;m fluorescerende bolletjes</td><td>Life technologies</td><td>F8801</td><td></td></tr><tr><td>0.25% Trypsin-EDTA</td><td>Life technologies</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Materialen</td></tr><tr><td>12 mm2 glas dekglasjes</td><td>Corning</td><td>2865-12</td><td></td></tr></tbody></table>

isolatie van primaire humane colon tumorcellen uit chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor traction cytometry

Isolation of Primary Human Colon Tumor Cells from Surgical Tissues and Culturing Them Directly on Soft Elastic Substrates for Traction Cytometry

Kankercellen reageren op mechanische stijfheid matrix op een complexe wijze met een gecoördineerde hiërarchische mechanisch-chemisch systeem bestaande uit adhesiereceptoren en geassocieerde signaaltransductie membraaneiwitten, het cytoskelet architectuur en moleculaire motors 1, 2. Mechanische gevoeligheid van verschillende kankercellen in vitro voornamelijk onderzocht met onsterfelijk gemaakte cellijnen of primaire cellen van muizen afgeleide, niet met primaire humane kankercellen. Derhalve is er weinig bekend over de mechanische gevoeligheid van primaire humane colon kankercellen in vitro. Hier, wordt een geoptimaliseerd protocol ontwikkeld die de isolatie van primaire humane colon van gezonde cellen en kankercellen chirurgische menselijke weefselmonsters beschreven. Geïsoleerd colon cellen worden vervolgens met succes gekweekt op zachte (2 kPa stijfheid) en stijf (10 kPa stijfheid) polyacrylamide hydrogels en stijve polystyreen (~ 3,6 GPa stijfheid) substraten gefunctionaliseerd door een extracellulaire matrix (fibronectinein dit geval). Fluorescerende microbolletjes zijn ingebed in zachte gels in de buurt van de celkweek oppervlak, en tractie test wordt uitgevoerd om cellulaire samentrekkende spanningen met behulp van gratis open toegang software te beoordelen. Bovendien immunofluorescentie microscopie van verschillende stijfheid substraten nuttige informatie over primaire celmorfologie, cytoskelet organisatie en vinculin met focale adhesies als functie van substraat stijfheid.

De bovenbeschreven protocol met succes toegepast voor meerdere weefselmonsters (n = 12) vanaf vier patiënten onder richtlijnen van het Institutional Review Board. Figuur 1A illustreert een representatieve colorectale tumor direct na operatie waaruit de weefselcoupes van celcultures verkregen. Een typische weefselsectie in HBSS oplossing na overdracht aan de laminaire kap voor verdere verwerking getoond in figuur 1B. Een schema van enzymatische digestie en dissociatie van chirurgische we...

Er wordt een protocol beschreven om primaire humane cellen te extraheren uit chirurgische colontumor- en normale weefsels. De geïsoleerde cellen worden vervolgens gekweekt op zachte elastische substraten (polyacrylamide-hydrogels) die functioneel zijn gemaakt door een extracellulair matrix-eiwit en ingebed met fluorescente microbeads. Trekcytometrie wordt uitgevoerd om de cellulaire contractiele spanningen te beoordelen.

Isolatie van primaire humane Colon tumorcellen uit Chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor Traction Cytometry

Cancer cells respond to matrix mechanical stiffness in a complex manner using a coordinated, hierarchical mechano-chemical system composed of adhesion ...

Het algemene doel van deze procedure is het isoleren van primaire cellen uit chirurgische menselijke colontumoren, evenals uit normaal weefsel, om deze vervolgens direct te cultiveren op substraten met verschillende elasticiteit voor analyse. Dit wordt bereikt door eerst chirurgisch weefsel te verzamelen uit een menselijke colontumor en uit een normaal gebied. Vervolgens resulteert enzymatische dissociatie van het fijngehakte weefsel in talrijke enkelvoudige cellen.De laatste stap is het kweken van de geïsoleerde cellen op zachte polyacrylamide-hydrogels waarin fluorescerende beads op nanoschaal zijn ingebed, en op polystyreen schaaltjes. Vervolgens wordt tractiecytometrie uitgevoerd om een ruimtelijke cellulaire tractiekaart te verkrijgen, en wordt immunofluorescentiemicroscopie gebruikt om de organisatie van het cytoskelet te visualiseren. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat geïsoleerde primaire menselijke coloncellen uit chirurgische weefsels direct gekweekt kunnen worden op substraten met verschillende stijfheid voor tractiecytometrie- en immunofluorescentiemicroscopie-assays.Deze methode kan ons helpen bij het beantwoorden van de vraag of de contractiliteit van primaire tumorcellen kan worden gebruikt als een potentiële marker voor de prognose van kanker. Verzamel eerst het tumorweefselmonster zoals beschreven in het tekstprotocol. Giet het weefsel vervolgens met een pipet in een six-well plaat die zes tot zeven milliliter Hank's gebalanceerde zoutoplossing of HBSS bevat.Houd de zes-wells plaat op een ijsblok en spoel het weefsel twee keer met HBSS-oplossing. Snijd het weefsel vervolgens met een steriele schaar zorgvuldig in afzonderlijke secties. Hak het weefsel met een steriel scalpellamaasje in kleinere stukjes, niet groter dan één tot twee kubieke millimeter.Weeg een gelabeld vial met 0,1%trypsine waarin één milliliter 0,1%trypsine-oplossing zit voordat u het weefsel overbrengt. Breng vervolgens met een pipet ongeveer 20 milligram weefsel over in elk van de trypsinevials. Weeg de vials na de overdracht van het weefsel en noteer het verschil als de weefselmassa.Giet nu ongeveer 20 milligram weefsel en één milliliter trypsine in elke put van een 24-wells plaat. Plaats de 24-wells plaat op een shaker bij vier graden Celsius gedurende 16 tot 20 uur. Na 16 tot 20 uur incubatie in de trypsine wordt met een pipet het weefsel overgebracht naar twee tot drie milliliter compleet groeimedium bij vier graden Celsius.Plaats het flacon in een warm waterbad op 37 °C gedurende 12 tot 15 minuten. Draag het weefsel vervolgens over naar een flacon van 15 ml met HBSS-oplossing. Herhaal deze stap een tweede keer met behulp van een pipet en door voorzichtig te schudden.Verwijder vervolgens het weefsel uit de HBSS-oplossing en breng dit over naar een flacon met één milliliter 0,1% collagenase-oplossing. Incubeer gedurende 45 minuten bij 37 °C en in een omgeving met 5% koolstofdioxide in een bevochtigde celkweekincubator. Verwarm tijdens de wachttijd groeimedium in flacons van 15 milliliter tot 37 °C. Trek vervolgens alle weefselfragmenten met een pipetpunt op, waarbij de hoeveelheid collagenase tot een minimum wordt beperkt, en voeg uitsluitend de weefselfragmenten toe aan het voorverwarmde kweekmedium.Mediaflacons. Plaats vervolgens een filter van 40 micron in elke put van een six-well plaat en bevochtig het filter met 1 mL celkweekmedium.Herhaal het opstikken van het weefsel in het medium met een glazen pipet van 10 milliliter meerdere keren totdat het weefsel volledig is gedissocieerd. Houd de pipetpunt zo dicht mogelijk bij de bodem van het flacon. Breng de oplossing vervolgens over op het filter om debris en niet-gedissocieerde delen te verwijderen.Centrifugeer de gefilterde cel-suspensie in medium bij 150 ×g gedurende vijf minuten. Verwijder vervolgens bij kamertemperatuur het supernatant en resuspendeer de celpellet in twee milliliters vers kweekmedium. Zaai de geïsoleerde primaire cellen uit op met extracellulaire matrix of ECM gefunctionaliseerde gels en polystyreen schaaltjes tegen de gewenste concentratie.Om de tractiekrachtmicroscopie-assay uit te voeren, wordt eerst een 0,25% trips in EDTA 10% SDS-oplossing gedurende 10 minuten in een waterbad op 37 °C verwarmd. Voorafgaand aan de tractie-experimenten wordt er telkens één gel uit de celcultuurincubator gehaald en op de microscopietafel geplaatst. Nadat er een enkele cel in het gezichtsveld is gevonden, wordt het deksel van de Petrischaal verwijderd en wordt er een fasecontrastopname van de cel gemaakt.Schakel vervolgens de beeldmodus over naar fluorescentie en selecteer het juiste filter. Verplaats de microscooptafel of het monster tijdens deze tijd niet. Maak daarna een afbeelding van de fluorescente kraaltjes die zijn verplaatst door cellulaire tractie.Voeg nu één milliliter trypsin SDS-oplossing toe aan de Petrischaal om de cel van de gel los te maken. Maak een referentiebeeld van de beads. Nadat de cel is verwijderd, brengt u de substraten die immuunbehandeld moeten worden naar de laminaire flowkast en verwijdert u het cultuurmedium. Spoel de substraten vervolgens met fosfaatgebufferde zoutoplossing of PBS en fixeer de cellen gedurende 20 minuten met 4% paraformaldehyde in PBS. Was de substraten bij kamertemperatuur drie keer in totaal gedurende vijf minuten met PBS.Incubeer de substraten vervolgens gedurende 30 minuten met 500 µL signaalversterker voordat u spoelt met PBS. Incubeer de cellen daarna gedurende 45 minuten bij kamertemperatuur met monoklonaal anti-vanolin antilichaam in een verdunning van 1:250 in PBS. Was de substraten vervolgens in totaal drie keer gedurende vijf minuten met PBS.Incubeer de monsters met een secundair antilichaam LOR 4 88 geit anti-muis IgG in een verdunning van 1:200 in PBS gedurende 30 minuten bij kamertemperatuur. Was de substraten vervolgens opnieuw met PBS gedurende vijf minuten, in totaal drie keer. Om de f-actine structuur te visualiseren, worden de cellen geïncubeerd met tetraethyl-rhodamine-conjugaten in een concentratie van 50 µL/mL gedurende 45 minuten bij kamertemperatuur.Was de substraten vervolgens opnieuw zoals voorheen. Ga tenslotte over tot het afbeelden van de monsters met een confocale scanning laser microscoop; fasecontrastmicrografieën illustreren de representatieve morfologie van primaire humane colonkankercellen en normale cellen. Als functie van de substraatstijfheid is duidelijk dat primaire coloncellen zich meer verspreiden op polystyreen schaaltjes vergeleken met de polyacrylamidegels.Tractie-assays worden uitgevoerd op met ECM gecoate zachte gels van twee kilo pascal na bevestiging van invasief adenocarcinoom via pathologische hematoxyline- en eosinekleuring. Hier wordt een momentopname getoond van de fluorescerende nanodeeltjes die in de gel zijn ingebed, gebaseerd op de beelden van de verplaatste en referentiedeeltjes. De verplaatsingsvelden zijn verkregen met behulp van de ImageJ particle image velocimetry-plugin.Een representatief kraalverplaatsingsveld gegenereerd door invasieve colontumorcellen op een gel van twee kilo pascal wordt weergegeven met de verkregen tractiespanning. Hierbij is de ImageJ Fourier-transform tractiecytometrie-plugin gebruikt die correspondeert met het verplaatsingsveld. Hier worden de f-actine- en culline-bevattende focale adhesies van primaire menselijke coloncellen op zachte gels van twee kilopascal en rigide polystyreen substraten getoond.In de minder gespreide cellen op zachte gels waren geen actinevezels aanwezig. Daarnaast zijn er op zachte gels punctate cullin-bevattende focale adhesies aanwezig. Omgekeerd vertonen primaire cellen een goed gespreide morfologie, goed gedefinieerd actine en stressvezels, en discrete verlengde focale adhesies op rigide polystyreensubstraten.Na deze procedure kunnen andere methoden, zoals de meting van celstijfheid met behulp van atoomkrachtmicroscopie, worden uitgevoerd. Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u coloncellen uit chirurgisch weefsel kunt isoleren via enzymatische dissociatie, om ze vervolgens direct op polyacrylamide-hydrogels te kweken om de celcontractiliteit te beoordelen.

isolation-primary-human-colon-tumor-cells-from-surgical-tissues

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Bio-engineering

This video describes the traction force microscopy assay. The assay determines the cellular traction of human colon cancer cells on the extracellular matrix present on soft elastic hydrogel having embedded fluorescent beads. The resultant displacement of fluorescent beads is measured using an appropriate software.

Traction Cytometry Assay: A Method to Quantify Traction Force Exerted by Cancer Cells on ECM

This video describes the technique of studying the cytoskeleton and focal adhesions in primary human colon cancer cells to understand its variations depending on substrate rigidity. This culture of cancer cells on soft and hard substrates allows various downstream biophysical measurements for cancer prognosis.

Cytoskeleton and Focal Adhesion Organization Assay: An Immunofluorescence-based Method to Study Cell Adhesion and Spreading on Substrates

Een eenvoudige methode om primaire murine colon tumor organoïde stellen beschreven. Deze methode maakt gebruik van de functie die colon tumorcellen overleven en te groeien in organoids in media die beperkte groei factoren, terwijl de normale colon epitheel niet doen.

In vitro organoïde Cultuur van primaire Mouse Colon Tumoren

De myofibro is een invloedrijke stromale cellen van het maagdarmkanaal die belangrijk zijn fysiologische processen reguleert zowel in normale als ziektebeelden. We beschrijven een techniek die voor de isolatie van primaire myofibroblasten van zowel muis als humaan colon weefsel, dat kan worden gebruikt voor in vitro experimenten.

Isolatie van Primaire Myofibroblasten van Mouse and Human Colon Tissue

Moleculaire profilering van laser gemicrodissecteerde cellen en stroma van synthetische, weefselengineering darmkanker modellen vertegenwoordigt een nieuwe benadering en manipuleerbaar te karakteriseren en ontleden de kenmerkende biologie op het grensvlak tussen tumorcellen aan de voorzijde en invasieve kanker geassocieerd stromacellen.

Molecular Profiling van de invasieve tumor micro in een 3-dimensionaal model van colorectale kanker cellen en<em&gt; Ex vivo</em&gt; Fibroblasts

We beschrijven de oprichting van orthotopische colorectale tumoren via injectie van tumorcellen of organoïden in de cecum van muizen en de daaropvolgende isolatie van circulerende tumorcellen (CTC's) uit dit model.

Isolatie van circulerende tumorcellen in een orthotopische muismodel van colorectale kanker

Het volgende protocol is gericht op de oprichting van een primaire cultuur van patiënt-afgeleide weke delen Sarcoom (STS). Dit model kan ons helpen om beter inzicht in de moleculaire achtergrond en farmacologisch profiel van deze zeldzame maligniteiten en kon vertegenwoordigen een startpunt voor verder onderzoek ter verbetering van het beheer van de St.

Oprichting van een primaire cultuur van patiënt-afgeleide weke delen Sarcoom

Endotheliale cellen van de tumor zijn belangrijke determinanten van de communicatie van de tumor en het verloop van de ziekte. Hier, wordt een protocol voor de isolatie van zuiver en levensvatbare endotheliale cellen van menselijke colorectaal carcinoom en normale dikke darm moet worden gebruikt in drugsonderzoek testen en pathogenese beschreven.

Isolatie van menselijke endotheliale cellen van normale Colon en colorectaal carcinoom - een verbeterde Protocol

Het huidige protocol beschrijft het genereren van 3D-tumorcultuurmodellen van primaire kankercellen en het evalueren van hun gevoeligheid voor geneesmiddelen met behulp van cel-levensvatbaarheidstests en microscopische onderzoeken.

Het vaststellen van 3-dimensionale sferoïden uit van de patiënt afgeleide tumormonsters en het evalueren van hun gevoeligheid voor geneesmiddelen

Tumororganoïden hebben een revolutie teweeggebracht in kankeronderzoek en de benadering van gepersonaliseerde geneeskunde. Ze vertegenwoordigen een klinisch relevant tumormodel waarmee onderzoekers de tumor in de kliniek een stap voor kunnen blijven. Dit protocol stelt tumororganoïden vast uit verse weefselmonsters van pancreastumoren en van patiënten afgeleide xenotransplantaten van pancreasadenocarcinoomoorsprong.

Oprichting van van alvleesklierkanker afgeleide tumororganoïden en fibroblasten uit vers weefsel

Het protocol beschrijft een methode voor het creëren van een van patiënten afgeleid organoïdemodel voor colorectale kanker (CRC), gekweekt in co-cultuur met tumor-infiltrerende lymfocyten (TIL's) om hun interacties en therapeutisch potentieel te bestuderen. Dit model biedt een preklinisch platform om immuunresponsen in de micro-omgeving van de tumor te onderzoeken en om de werkzaamheid van op TIL gebaseerde therapie voor gepersonaliseerde CRC-behandeling te voorspellen.

Oprichting van een co-cultuursysteem van patiënt-afgeleide colorectale tumororganoïden en tumor-infiltrerende lymfocyten (TIL's)

Leer primaire humane colon tumorcellen isoleren uit chirurgisch weefsel en kweken op zachte elastische substraten. Deze methode maakt tractiecytometrie mogelijk voor onderzoek naar celcontractiliteit en tumorbiologie.

Isolatie van primaire humane Colon tumorcellen uit Chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor Traction Cytometry (Video) | JoVE Journal

Isolatie van primaire humane Colon tumorcellen uit Chirurgische weefsels en kweken ze rechtstreeks op zachte elastische substraten voor Traction Cytometry

Meer video's verkennen