Name: Gebruik van Chironomidae (Diptera)-Surface Drijvende Pupal Exuviae als Rapid Protocol Bioassessment voor Water Bodies (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-24T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 27 s
Description: Leer efficiënte technieken voor het verzamelen en verwerken van Chironomidae-oppervlak-drijvende poppenexuviae voor waterkwaliteitsbeoordeling. Deze methode is economisch en toepasbaar in vrijwel alle aquatische omgevingen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

De financiering voor het samenstellen en publiceren van dit artikel werd verstrekt door meerdere subsidies en contracten aan de Chironomidae Research Group (LC Ferrington, Jr., PI) in de afdeling Entomologie aan de Universiteit van Minnesota. Met dank aan Nathan Roberts voor het delen van foto&#39;s veldwerk gebruikt als cijfers in de video geassocieerd met dit manuscript.

1. Voorbereiding van het veld Collection Supplies <ol><li> Bepaal het aantal SFPE monsters die op basis van de studie ontwerp moet worden verzameld en het verwerven van één monster pot (bv 60 ml) voor elk monster. </li><li> Bereid twee datum en plaats etiketten voor elk monster pot. Plaats een aan de binnenzijde en bevestig de andere naar de buitenzijde van de pot. Zorg ervoor dat elke datum en plaats label bevat de volgende informatie: land, staat, provincie, stad, water lichaam, GPS-coördinaten, datum en naam van de persoon (s) het verzamelen van het monster. </li><li> Verzamel andere specifieke materialen en apparatuur (zie Tabel van specifieke materialen / Equipment). </li></ol> 2. Het gebied Collection <ol><li> Houd een larvale dienblad in één hand en een zeef in de andere. Dompel de larvale lade in het water waar SFPE accumuleren (bijvoorbeeld, schuim ophopingen, haken en ogen, opkomende vegetatie, puin, rug draaikolken, en langs bank randen) (Figuur 2A), laat wateh, exuviae, en puin op de larvale lade te voeren, en giet dit materiaal door de zeef. Bij bemonstering in een macrofyten systeem beginnen bij het ​​stroomafwaartse einde van de sample bereik en werken upstream (figuur 2B). Als bemonstering in een LENTIC systeem, beginnen op de wind mee kustlijn. <ol><li> Herhaal stap 2.1 voor 10 min (of zoals anders gedefinieerd voor een specifieke regeling bemonstering) binnen elke vooraf gedefinieerde sample bereik (typisch 100-200 m voor monsters verzameld uit beken, maar afhankelijk van de totale oppervlakte van het water toezicht op site); bewegen tussen SFPE accumulatie gebieden aangewezen. </li></ol></li><li> Concentreer puin in een gebied van de zeef met behulp van een spuitfles gevuld met water uit het monster plaats voorzichtig overbrengen SFPE monster gelabelde monster pot met behulp van forceps en een stroom van ethanol uit een spuitfles. Vul monster pot met ethanol. </li><li> Herhaal stap 2,1-2,2 voor alle monsters. </li></ol> 3. Steekproef Picking NB: De rest van dit protocol heeft betrekking op een 300 SFPE subgroep en moet mogelijk worden aangepast voor andere submonster maten. Zie Bouchard en Ferrington&#39;s 9 subsampling en bemonsteringsfrequentie richtlijnen voor tailoring SFPE methoden om te studeren-specifieke doelen en middelen te voldoen. <ol><li> Wijs een 1-dram flesje voor elk SFPE monster; bereiden een datum en plaats label te plaatsen in elk flesje en vul de flacon ¾ vol met ethanol. </li><li> Verwijder het deksel van het overeenkomstige monster pot en controleer bevestigd pupal exuviae. Voorzichtig Spoel de inhoud van de deksel op een petrischaal met behulp van een spuit fles gevuld met ethanol. Zoek en verwijder het etiket van de binnenkant van het monster pot met behulp van een tang en voorzichtig spoel de inhoud van de label op de petrischaal. Stel label opzij. </li><li> Breng de inhoud van de pot in een monster larvale lade spoelen met ethanol zodat er geen SFPE blijven het monster pot. Overdracht van een deel van de pupal exuviae, Resiverschuldigd, en ethanol uit de lade naar de petrischaal. Zorg ervoor dat het monster is bedekt met ethanol. </li><li> Plaats de petrischaal onder een stereo-microscoop. Systematisch scannen van de inhoud van de petrischaal voor pupal exuviae. Pak alle pupal exuviae van het gerecht met behulp van een tang en plaats in de flacon. Heeft exemplaren die zijn gebroken niet halen (dat wil zeggen, niet ten minste de helft van het kopborststuk en de buik), gedroogd, of gecomprimeerd om later identificatie problemen te voorkomen. OPMERKING: identificatie species vereist vaak dat het gehele specimen aanwezig is, hoewel in sommige gevallen, kan genus niveau identificatie mogelijk met gedeeltelijke specimens. <ol><li> Swirl schotel en scannen extra pupal larvenhuidje, inclusief die kunnen worden geplakt wanden van de capsule, evenals eventuele kleine en doorzichtige monsters die niet zijn aanvankelijk gedetecteerd. Herhaal dit tot twee opeenvolgende scans laten geen extra pupal exuviae. </li></ol></li><li> Herhaal stap 3.3 en3.4 totdat alle of 300 pupal exuviae zijn geplukt. Bij 300 pupal exuviae zijn geplukt, de terugkeer van de residu van de petrischaal op de larvale lade en spoel de petrischaal met ethanol. Vervolgens overdracht van de residu van de larvale lade om de lege monster pot, voeg de datum en plaats label, en doe de deksel op de pot. Behoudt of van residuen volgens de project-specifieke protocollen. </li></ol> 4. Steekproef sorteren <ol><li> Giet al geplukt pupal exuviae van de gelabelde flacon in een petrischaal gevuld met voldoende ethanol om gewoon exemplaren dekken. </li><li> Onder een stereomicroscoop, aparte specimens in verschillende morfologische groepen (dwz morphotaxa) en plaats elke morphotaxon in afzonderlijk een gelabelde flesjes gevuld 3/4 ste vol met ethanol. <ol><li> Gebruik maken van externe morfologische kenmerken te chironomid morphotaxa scheiden. Bijvoorbeeld, de cephalothorax gebruikt verschillen bij aanwezigheid, grootte, vorm, enverkleuring van de Cephalic tuberkels, frontale wratten, frontale setae, en thoracale hoorn. Uit de buik, gebruikt stekels, hookrows, chagrijnleer, setae en uitlopers van de buiksegmenten, naast de anale lobben voor morphotaxa scheiden (Figuur 4A). Zie Ferrington, et al. 5, Sæther 26, Pinder en Reiss 27 voor bijkomende omschrijvingen en figuren van morfologische kenmerken. </li><li> Gebruik extra ethanol als specimens beginnen te drogen. </li></ol></li></ol> 5. Schuif Montage <ol><li> Vul een putje van een plaat met meerdere holtes voor elk morphotaxon met 95% ethanol. <ol><li> Plaats meerdere representaties (bijvoorbeeld 25% van het totaal) van elk morphotaxon te glijden aangebracht in afzonderlijke putjes van de plaat. Laat exemplaren om goed te zitten voor ten minste 10 minuten voldoende uitdrogen. </li></ol></li><li> Label dia&#39;s met de juiste site, verzamelen, en de identificatie information (Figuur 3). </li><li> Plaats dia op de stereo-microscoop. Opmerking: Een model van de schuif met plakband aan de fase is nuttig voor consistente plaatsing. </li><li> Plaats een druppel Euparal op de dia; verspreid het Euparal zodat benadert de grootte van het dekglaasje. Gebruik een goede ventilatie bij het werken met Euparal. OPMERKING: Gebruik een goede ventilatie bij het werken met Euparal. </li><li> Insluiten een vertegenwoordiger van de eerste morphotaxon in de Euparal behulp van een tang. OPMERKING: Om overtollige ethanol vervallen van het monster, met behulp van een tang, tik monster op laboratorium doekjes voorafgaand aan de inbedding in Euparal. </li><li> Scheid de kopborststuk van de buik met behulp van fijne punt tang en / of dissectie sondes (Figuur 4A). <ol><li> Splits het kopborststuk langs de ecdysial hechtdraad (Figuur 4B) en open het kopborststuk, zodat de hechtdraad randen aan weerszijden (Figuur 4C). </li><li> Richt de cephalothorax zodat de buikzijde naar boven (Figuur 4C). </li><li> Plaats de buik dorsale kant naar boven; plaats direct onder de cephalothorax (Figuur 4C). </li></ol></li><li> Plaats een dekglaasje op het monster. Houd dekglaasje op een hoek, met een rand aanraken van de glijbaan, en dan langzaam lager en laat de dekglaasje om de vorming luchtbel te verminderen. Druk lichtjes op het dekglaasje om het monster af te vlakken. </li><li> Herhaal stap 5.3 tot 5.7 voor alle gedroogde exemplaren. </li></ol> 6. Genus Identification <ol><li> Bepaal geslacht van-slide gemonteerde exemplaren met behulp van een samengestelde microscoop. Identificeer exemplaren tot het genus met de toetsen en diagnoses in Wiederholm 28 en Ferrington, et al. 5. Indien nodig, bevestigt familie-niveau identificatie met behulp Ferrington, et al. 5. OPMERKING: Er zijn tal van generieke omschrijvingen en revisies sinds Wiederholm 28 en Ferrington geweest,et al. 5 derhalve deze toetsen en diagnoses onvolledig en moeten worden aangevuld met primaire literatuur. </li></ol>

<ol><li>Southerland, M. T., Stribling, J. B. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSoutherland%2C+MT+%22Biological+Assessment+and+Criteria%3A+Tools+for+Water+Resource+Planning+and+Decision+Making%22">Biological Assessment and Criteria: Tools for Water Resource Planning and Decision Making</a>. Davis, W. S., Simon, T. P. , Lewis Publishers. 81-96 (1995).</li>
<li>Merritt, R. W., Cummins, K. W., Resh, V. H., Batzer, D. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMerritt%2C+RW+%22An+Introduction+to+the+Aquatic+Insects+of+North+America%22">An Introduction to the Aquatic Insects of North America</a>. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. , 4th edition, Kendall/Hunt Publishing Company. 15-37 (2008).</li>
<li>Ferrington, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFerrington%2C+LC+%22Sediment+and+Stream+Water+Quality+in+a+Changing+Environment%3A+Trends+and+Explanation%22">Sediment and Stream Water Quality in a Changing Environment: Trends and Explanation</a>. , International Association of Hydrological Sciences Press. 181-190 (1991).</li>
<li>Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFerrington%2C+LC+%22Freshwater+Animal+Diversity+Assessment+in+Hydrobiology%22">Freshwater Animal Diversity Assessment in Hydrobiology</a>. Balian, E. V., Lévêque, C., Segers, H., Martens, K. , Springer. Netherlands. 447-455 (2008).</li>
<li>Ferrington, L. C., Berg, M. B., Coffman, W. P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFerrington%2C+LC+%22An+Introduction+to+the+Aquatic+Insects+of+North+America%22">An Introduction to the Aquatic Insects of North America</a>. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. , 4th ed, Kendall/Hunt Publishing Company. 847-989 (2008).</li>
<li>Armitage, P. D., Cranston, P. S., Pinder, L. C. V. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aArmitage%2C+PD+%22The+Chironomidae%3A+Biology+and+Ecology+of+Non-Biting+Midges%22">The Chironomidae: Biology and Ecology of Non-Biting Midges</a>. 572, Chapman & Hall. (1995).</li>
<li>Coffman, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Energy+Flow+in+a+Woodland+Stream+Ecosystem%3A+II.+The+Taxonomic+Composition+of+the+Chironomidae+as+Determined+by+the+Collection+of+Pupal+Exuviae%5BTitle%5D)+AND+%22Archiv+fur+Hydrobiologie%22%5BJournal%5D)">Energy Flow in a Woodland Stream Ecosystem: II. The Taxonomic Composition of the Chironomidae as Determined by the Collection of Pupal Exuviae.</a> Archiv fur Hydrobiologie. 71, 281-322 (1973).</li>
<li>Anderson, A. M., Ferrington, L. C. Proceedings of 18th International Symposium on Chironomidae on Fauna norvegica. Ekrem, T., Stur, E., Aagaard, K. 31, (2011).</li>
<li>Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Effects+of+Subsampling+and+Sampling+Frequency+on+the+Use+of+Surface-Floating+Pupal+Exuviae+to+Measure+Chironomidae+%28Diptera%29+Communities+in+Wadeable+Temperate+Streams%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Monitoring+and+Assessment%22%5BJournal%5D)">The Effects of Subsampling and Sampling Frequency on the Use of Surface-Floating Pupal Exuviae to Measure Chironomidae (Diptera) Communities in Wadeable Temperate Streams.</a> Environmental Monitoring and Assessment. 181, 205-223 (2011).</li>
<li>Wilson, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+the+Effect+of+Sewage+Effluent+on+the+Oxford+Canal+Using+Chironomid+Pupal+Exuviae%5BTitle%5D)+AND+%22Water+and+Environment+Journal%22%5BJournal%5D)">Monitoring the Effect of Sewage Effluent on the Oxford Canal Using Chironomid Pupal Exuviae.</a> Water and Environment Journal. 8, 171-182 (1994).</li>
<li>Wentsel, R., McIntosh, A., McCafferty, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emergence+of+the+Midge+Chironomus+tentans+when+Exposed+to+Heavy+Metal+Contaminated+Sediment%5BTitle%5D)+AND+%22Hydrobiologia%22%5BJournal%5D)">Emergence of the Midge Chironomus tentans when Exposed to Heavy Metal Contaminated Sediment.</a> Hydrobiologia. 57, 195-196 (1978).</li>
<li>Thienemann, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Das+Sammeln+von+Puppenh%C3%A4uten+der+Chironomiden.+Eine+Bitte+um+Mitarbeit%5BTitle%5D)+AND+%22Archiv+fur+Hydrobiologie%22%5BJournal%5D)">Das Sammeln von Puppenhäuten der Chironomiden. Eine Bitte um Mitarbeit.</a> Archiv fur Hydrobiologie. 6, 213-214 (1910).</li>
<li>Anderson, A. M., Kranzfelder, P., Egan, A. T., Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survey+of+Neotropical+Chironomidae+%28Diptera%29+on+San+Salvador+Island%2C+Bahamas%5BTitle%5D)+AND+%22Florida+Entomologist%22%5BJournal%5D)">Survey of Neotropical Chironomidae (Diptera) on San Salvador Island, Bahamas.</a> Florida Entomologist. 97, 304-308 (2014).</li>
<li>Coffman, W. P., de la Rosa, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taxonomic+Composition+and+Temporal+Organization+of+Tropical+and+Temperate+Assemblages+of+Lotic+Chironomidae%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Kansas+Entomological+Society%22%5BJournal%5D)">Taxonomic Composition and Temporal Organization of Tropical and Temperate Assemblages of Lotic Chironomidae.</a> Journal of the Kansas Entomological Society. 71, 388-406 (1998).</li>
<li>Brundin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transantarctic+Relationships+and+their+Significance%2C+as+Evidenced+by+Chironomid+Midges.+With+a+Monograph+of+the+Subfamilies+Podonominae+and+Aphroteniinae+and+the+Austral+Heptagyiae%5BTitle%5D)+AND+%22+Svenska+Vetenskapsakademiens+Handlingar%22%5BJournal%5D)">Transantarctic Relationships and their Significance, as Evidenced by Chironomid Midges. With a Monograph of the Subfamilies Podonominae and Aphroteniinae and the Austral Heptagyiae.</a> Svenska Vetenskapsakademiens Handlingar. 11, 1-472 (1966).</li>
<li>Anderson, A. M., Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+and+Resilience+of+Winter-Emerging+Chironomidae+%28Diptera%29+to+a+Flood+Event%3A+Implications+for+Minnesota+Trout+Streams%5BTitle%5D)+AND+%22Hydrobiologia%22%5BJournal%5D)">Resistance and Resilience of Winter-Emerging Chironomidae (Diptera) to a Flood Event: Implications for Minnesota Trout Streams.</a> Hydrobiologia. 707, 59-71 (2012).</li>
<li>Anderson, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFerrington%2C+LC+%22Contributions+to+the+Systematics+and+Ecology+of+Aquatic+Diptera-A+Tribute+to+Ole+A.+Saether%22">Contributions to the Systematics and Ecology of Aquatic Diptera-A Tribute to Ole A. Saether</a>. , Caddis Press. 99-105 (2007).</li>
<li>Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Winter+Growth%2C+Development%2C+and+Emergence+of+Diamesa+mendotae+%28Diptera%3A+Chironomidae%29+in+Minnesota+Streams%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Entomology%22%5BJournal%5D)">Winter Growth, Development, and Emergence of Diamesa mendotae (Diptera: Chironomidae) in Minnesota Streams.</a> Environmental Entomology. 38, 250-259 (2009).</li>
<li>Hardwick, R. A., Cooper, P. D., Cranston, P. S., Humphrey, C. L., Dostine, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+and+Temporal+Distribution+Pattens+of+Drifting+Pupal+Exuviae+of+Chironomidae+%28Diptera%29+in+Streams+of+Tropical+Northern+Australia.+%5BTitle%5D)+AND+%22Freshwater+Biology%22%5BJournal%5D)">Spatial and Temporal Distribution Pattens of Drifting Pupal Exuviae of Chironomidae (Diptera) in Streams of Tropical Northern Australia. </a> Freshwater Biology. 34, 569-578 (1995).</li>
<li>Wilson, R. S., Bright, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Use+of+Chironomid+Pupal+Exuviae+for+Characterizing+Streams%5BTitle%5D)+AND+%22Freshwater+Biology%22%5BJournal%5D)">The Use of Chironomid Pupal Exuviae for Characterizing Streams.</a> Freshwater Biology. 3, 283-302 (1973).</li>
<li>Raunio, J., Paavola, R., Muotka, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Emergence+Phenology%2C+Taxa+Tolerances+and+Taxonomic+Resolution+on+the+Use+of+the+Chironomid+Pupal+Exuvial+Technique+in+River+Biomonitoring%5BTitle%5D)+AND+%22Freshwater+Biology%22%5BJournal%5D)">Effects of Emergence Phenology, Taxa Tolerances and Taxonomic Resolution on the Use of the Chironomid Pupal Exuvial Technique in River Biomonitoring.</a> Freshwater Biology. 52, 165-176 (2007).</li>
<li>Ruse, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lake+Acidification+Assessed+using+Chironomid+Pupal+Exuviae%5BTitle%5D)+AND+%22Fundamental+and+Applied+Limnology%22%5BJournal%5D)">Lake Acidification Assessed using Chironomid Pupal Exuviae.</a> Fundamental and Applied Limnology. 178, 267-286 (2011).</li>
<li>Rufer, M. R., Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sampling+Frequency+Required+for+Chironomid+Community+Resolution+in+Urban+Lakes+with+Contrasting+Trophic+States%5BTitle%5D)+AND+%22Boletim+do+Museu+Municipal+do+Funchal+%28Hist%C3%B3ria+Natural%29+Supplement%22%5BJournal%5D)">Sampling Frequency Required for Chironomid Community Resolution in Urban Lakes with Contrasting Trophic States.</a> Boletim do Museu Municipal do Funchal (História Natural) Supplement. 13, 77-84 (2008).</li>
<li>CEN. 15196, European Committee for Standardization. Brussels. 1-13 (2006).</li>
<li>Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collection+and+Identification+of+Surface+Floating+Pupal+Exuviae+of+Chironomidae+for+Use+in+Studies+of+Surface+Water+Quality%5BTitle%5D)+AND+%22Standard+Operating+Procedure+No.+FW+130A%22%5BJournal%5D)">Collection and Identification of Surface Floating Pupal Exuviae of Chironomidae for Use in Studies of Surface Water Quality.</a> Standard Operating Procedure No. FW 130A. , (1987).</li>
<li>Saither, O. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glossary+of+Chironomid+Morphology+Terminology+%28Chironomidae+Diptera%29%5BTitle%5D)+AND+%22Entomologica+Scandinavica+Supplement%22%5BJournal%5D)">Glossary of Chironomid Morphology Terminology (Chironomidae Diptera).</a> Entomologica Scandinavica Supplement. 14, 51(1980).</li>
<li>Pinder, L. C. V., Reiss, F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPinder%2C+LCV+%22Chironomidae+of+the+Holarctic+region.+Keys+and+Diagnoses+Part+2.+Pupa%22">Chironomidae of the Holarctic region. Keys and Diagnoses Part 2. Pupa</a>. Wiederholm, T. 28, Entomologica Scandinavica Supplement. 299-456 (1986).</li>
<li>Wiederholm, T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWiederholm%2C+T+%22Chironomidae+of+the+Holarctic+region+-+Keys+and+Diagnoses%2C+Part+2%2C+Pupae%22">Chironomidae of the Holarctic region - Keys and Diagnoses, Part 2, Pupae</a>. 28, Entomologica Scandinavica Supplement. (1989).</li>
<li>Merritt, R. W., Webb, D. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMerritt%2C+RW+%22An+Introduction+to+the+Aquatic+Insects+of+North+America%22">An Introduction to the Aquatic Insects of North America</a>. , 4th edition, Kendall/Hunt Publishing Company. (2008).</li>
<li>Wilson, R. S., Ruse, L. P., Sutcliffe, D. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWilson%2C+RS+%22A+Guide+to+the+Identification+of+Genera+of+Chironomid+Pupal+Exuviae+Occurring+in+Britain+and+Ireland+%28including+Common+Genera+from+Northern+Europe%29+and+Their+Use+in+Monitoring+Lotic+and+Lentic+Fresh+Waters%22">A Guide to the Identification of Genera of Chironomid Pupal Exuviae Occurring in Britain and Ireland (including Common Genera from Northern Europe) and Their Use in Monitoring Lotic and Lentic Fresh Waters</a>. , Freshwater Biological Association. (2005).</li>
<li>Egan, A. T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Communities+in+Freshwater+Coastal+Rock+Pools+of+Lake+Superior%2C+with+a+Focus+on+Chironomidae+%28Diptera%29%22">Communities in Freshwater Coastal Rock Pools of Lake Superior, with a Focus on Chironomidae (Diptera)</a>. , University of Minnesota. (2014).</li>
<li>Raunio, J., Heino, J., Paasivirta, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Non-Biting+Midges+in+Biodiversity+Conservation+and+Environmental+Assessment%3A+Findings+from+Boreal+Freshwater+Ecosystems%5BTitle%5D)+AND+%22Ecological+Indicators%22%5BJournal%5D)">Non-Biting Midges in Biodiversity Conservation and Environmental Assessment: Findings from Boreal Freshwater Ecosystems.</a> Ecological Indicators. 11, 1057-1064 (2011).</li>
<li>Kavanaugh, R. G., Egan, A. T., Ferrington, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+affecting+decomposition+rates+of+chironomid+%28Diptera%29+pupal+exuviae%5BTitle%5D)+AND+%22Chironomus%3A+Newsletter+on+Chironomidae+Research%22%5BJournal%5D)">Factors affecting decomposition rates of chironomid (Diptera) pupal exuviae.</a> Chironomus: Newsletter on Chironomidae Research. 27, 16-24 (2014).</li>
<li>Anderson, A. M., Stur, E., Ekrem, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+and+Morphological+Methods+Reveal+Cryptic+Diversity+and+Three+New+Species+of+Nearctic+Micropsectra+%28Diptera%3A+Chironomidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Freshwater+Science%22%5BJournal%5D)">Molecular and Morphological Methods Reveal Cryptic Diversity and Three New Species of Nearctic Micropsectra (Diptera: Chironomidae).</a> Freshwater Science. 32, 892-921 (2013).</li>
<li>Ekrem, T., Willassen, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+Tanytarsini+Relationships+%28Diptera%3A+Chironomidae%29+using+Mitochondrial+COII+Gene+Sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Systematics+%26+Evolution%22%5BJournal%5D)">Exploring Tanytarsini Relationships (Diptera: Chironomidae) using Mitochondrial COII Gene Sequences.</a> Insect Systematics & Evolution. 35, 263-276 (2004).</li>
<li>Ekrem, T., Willassen, E., Stur, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Comprehensive+DNA+Sequence+Library+is+Essential+for+Identification+with+DNA+Barcodes%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Phylogenetics+and+Evolution%22%5BJournal%5D)">A Comprehensive DNA Sequence Library is Essential for Identification with DNA Barcodes.</a> Molecular Phylogenetics and Evolution. 43, 530-542 (2007).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat ze geen concurrerende financiële belangen.

De meest kritische stappen voor een succesvolle SFPE monstername, het plukken, sorteren, glijbaan montage, en de identificatie zijn: (1) het lokaliseren van gebieden met een hoge SFPE accumulatie binnen het studiegebied tijdens veld verzameling (Figuur 2A); (2) langzaam scannen van de inhoud van de petrischaal voor detectie van alle SFPE tijdens monster picking; (3) ontwikkeling van de nodige handvaardigheid de kopborststuk van de buik ontleden tijdens slide bevestiging (figuur 4A); en ...

Biologische monitoring programma&#39;s, die levende organismen gebruiken om milieu en gezondheid te evalueren, worden vaak gebruikt om de waterkwaliteit te beoordelen of monitor succes van het ecosysteem restauratie programma. Rapid bioassessment protocollen (RBP) met behulp van macro-invertebraat levensgemeenschappen bodemdieren assemblages zijn populair onder water staat resource agentschappen sinds 1989 1. De traditionele methoden van bemonstering benthische macroinvertebraten voor RBPs, zoals de dip-net, Surber sampler en Hess sampler 2, kunnen worden tijd- consumeren, dure, en mag alleen assemblages te meten van een bepaalde microhabitat 3. Een efficiënte, alternatieve RBP voor het genereren van biologische informatie over een bepaald waterlichaam gaat collectie Chironomidae oppervlak zwevende pupal exuviae (SFPE) 3. De Chironomidae (Insecta: Diptera), algemeen bekend als non-bijten midges, zijn holometabolous vliegen die typisch voorkomen in het aquatisch milieu vóór opkomst als volwassenen<html> 60, op het oppervlak van het water. De chironomid familie rijk zijn aan soorten, met ongeveer 5.000 soorten wereldwijd beschreven; worden echter wel 20.000 soorten schatting bestaan ​​4. Chironomiden zijn nuttig in het documenteren van het water en de habitat kwaliteit in vele aquatische ecosystemen vanwege hun hoge diversiteit en variabele tolerantie vervuiling niveau 5. Bovendien zijn ze vaak de meest voorkomende en wijdverbreide bentische macrofauna in aquatische systemen, doorgaans goed voor 50% of meer van de soorten in de gemeenschap 5,6. Na de opkomst van de aardse volwassene, de pupal exuviae (pupal huid te brengen) blijft drijven op het oppervlak van het water (figuur 1). Pupal exuviae ophopen langs banken of achter obstakels door de werking van wind of water stroom en kan gemakkelijk en snel worden verzameld om een uitgebreide steekproef van chironomid soorten die tijdens de vorige 24-48 uur 7 naar voren zijn gekomen geven. ntent &quot;&gt; De relatieve overvloed en taxonomische samenstelling van de verzamelde SFPE weerspiegelt waterkwaliteit, gezien het feit dat sommige soorten zijn erg tolerant vervuiling, terwijl anderen heel gevoelig 5 De SFPE methode heeft veel voordelen ten opzichte van traditionele larvale chironomid sampling technieken, waaronder:. (1) minimale , indien van toepassing, habitat verstoring optreedt bij een sampling gebied, (2) monsters niet gericht op het verzamelen van levende organismen, maar de niet-levende huid, zodat het traject van de gemeenschap dynamiek wordt niet beïnvloed, (3) de identificatie naar geslacht, en vaak species, is relatief eenvoudig gegeven betreffende toetsen en beschrijvingen van 3; (4) het verzamelen, verwerken, en het identificeren van monsters is efficiënt en economisch in vergelijking met de traditionele steekproefmethoden 3,8,9; (5) geaccumuleerde exuviae vertegenwoordigen taxa die zijn ontstaan ​​uit een breed scala van microhabitats 10; (6) de methode is toepasbaar in bijna alle aquatische milieu, met inbegrip van beken en rivieren, estuaria, lakes, vijvers, rock zwembaden, en wetlands; en (7) SFPE misschien een meer gevoelige indicator van de gezondheid van het ecosysteem, omdat ze individuen dat alle onvolwassen stadia hebben voltooid en met succes naar voren als volwassenen 11 vertegenwoordigen. De SFPE methode is niet een nieuwe aanpak voor het verzamelen van informatie over chironomid gemeenschappen. Gebruik van SFPE werd voor het eerst voorgesteld door Thienemann 12 in het begin van 1900. Een verscheidenheid van studies hebben SFPE gebruikt voor taxonomische enquêtes (bv 13-15), biodiversiteit en ecologische studies (bv 7,16-19), en biologische evaluaties (bijvoorbeeld, 20-22). Daarnaast hebben sommige studies gericht verschillende aspecten van het monster ontwerp, steekproefomvang, en het aantal van het monster gebeurtenissen die nodig zijn voor het bereiken van verschillende niveaus detectie van soorten of genera (bijv, 8,9,23). Deze studies geven aan dat relatief hoge percentages soorten of genera kunnen worden gedetecteerd met matige effort of kosten in verband met het monster verwerking. Bijvoorbeeld, Anderson en Ferrington 8 bepaald dat op basis van een 100-count subgroep, werd 1/3 rd minder tijd nodig om SFPE monsters in vergelijking met dip-net samples halen. Een andere studie vastgesteld dat 3-4 SFPE monsters kunnen worden gesorteerd en geïdentificeerd voor elke dip-net monster en dat SFPE monsters waren efficiënter dan dip-net monsters bij het ​​opsporen van soorten als soortenrijkdom gestegen 3. Bijvoorbeeld, in inrichtingen met soortenrijkdom waarden van 15-16 species, de gemiddelde dip-net efficiency was 45,7%, terwijl SFPE monsters waren 97,8% efficiënt 3. Belangrijk is dat de werkwijze SFPE gestandaardiseerd in de Europese Unie 24 (zogenaamde chironomiden pupal larvenhuidje techniek (CPET)) en Noord-Amerika 25 ecologische beoordeling, maar de werkwijze is niet in detail beschreven. Een toepassing van de SFPE methode beschreven door Ferrington, et al. <sup&gt; 3; De primaire focus van deze studie was om de efficiëntie, de doeltreffendheid en de economie van de werkwijze SFPE evalueren. Het doel van dit werk is om alle stappen van de SFPE methode in detail beschrijven, met inbegrip van monstername, laboratorium verwerken, glijbaan montage en geslacht identificatie. De doelgroep omvat studenten, onderzoekers en professionals die geïnteresseerd zijn in het uitbreiden van de traditionele inspanningen monitoring van de waterkwaliteit in hun studies.

<table><tbody><tr><td>Ethanol</td><td>Fisher Scientific</td><td>S25309B&nbsp;</td><td>70-95%</td></tr><tr><td>Plastic wash bottles</td><td>Fisher Scientific</td><td>0340923B</td><td></td></tr><tr><td>Sample jar</td><td>Fisher Scientific</td><td>0333510B</td><td>Glas of plastic, 60-mL aanbevolen</td></tr><tr><td>Testing sieve</td><td>Advantech</td><td>120SS12F</td><td>125-micron maaswijdte</td></tr><tr><td>Larval tray</td><td>BioQuip</td><td>5524</td><td>Wit</td></tr><tr><td>Stereo microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glass shell vials</td><td>Fisher Scientific</td><td>0333926B</td><td>1-dram grootte</td></tr><tr><td>Plastic dropper</td><td>Thermo Scientific</td><td>1371110</td><td>30 tot 35 druppels/mL</td></tr><tr><td>Fine forceps</td><td>BioQuip</td><td>4524</td><td>#5</td></tr><tr><td>Petri dish</td><td>Carolina</td><td>741158</td><td>Glas of plastic</td></tr><tr><td>Multi-well plate</td><td>Thermo Scientific</td><td>144530</td><td>Glas of plastic</td></tr><tr><td>Glass microslides</td><td>Thermo Scientific</td><td>3010002</td><td>3 x 1 inch</td></tr><tr><td>Glass cover slips</td><td>Thermo Scientific</td><td>12-519-21G</td><td>Circulair of vierkant</td></tr><tr><td>Euparal mounting medium&nbsp;</td><td>BioQuip</td><td>6372B</td><td></td></tr><tr><td>Pigma pen</td><td>BioQuip</td><td>1154F</td><td>Zwart</td></tr><tr><td>Probe</td><td>BioQuip</td><td>4751</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark Professional&trade;</td><td>34120</td><td></td></tr></tbody></table>

gebruik van chironomidae (diptera)-surface drijvende pupal exuviae als rapid protocol bioassessment voor water bodies

Use of Chironomidae (Diptera) Surface-Floating Pupal Exuviae as a Rapid Bioassessment Protocol for Water Bodies

Snelle protocollen bioassessment met benthische macro-invertebraat levensgemeenschappen assemblages zijn met succes gebruikt om de menselijke invloed op de waterkwaliteit te beoordelen. Helaas, traditionele benthonische larvale bemonsteringsmethoden, zoals de dip-net kan tijdrovend en duur. Een alternatief protocol gaat collectie Chironomidae oppervlak zwevende pupal exuviae (SFPE). Chironomidae is een soortenrijke familie van vliegen (Diptera), waarvan de onvolwassen stadia typisch voorkomen in aquatische habitats. Adult chironomiden komen uit het water, het verlaten van hun pupal skins, of exuviae, drijvend op het wateroppervlak. Larvenhuidje accumuleren vaak langs de oevers of achter obstakels door de werking van de wind of stroming, waar ze kunnen worden verzameld om de diversiteit en rijkdom chironomid beoordelen. Chironomiden kan als belangrijke biologische indicatoren, aangezien sommige soorten beter bestand tegen vervuiling dan andere. Daarom is de relatieve overvloed en soortensamenstelling van verzamelde SFPE weerspiegelenveranderingen in de kwaliteit van het water. Hier werkwijzen geassocieerd met dataverzamelauto, laboratorium verwerken, glijbaan montage en identificatie van chironomiden SFPE worden beschreven. Voordelen van de SFPE methode omvatten minimale verstoring op een sampling gebied, efficiënt en economisch monstername en laboratorium verwerken, het gemak van identificatie, toepasbaarheid in bijna alle aquatische milieu, en een potentieel gevoeliger maatstaf van ecosysteem stress. Beperkingen zijn onder andere het onvermogen om larvale microhabitat gebruik en het onvermogen te bepalen pupal exuviae identificeren soorten, als zij zijn niet geassocieerd met volwassen mannen.

Figuur 1 illustreert de chironomid levenscyclus; onvolwassen stadia (ei, larve, pop) neemt doorgaans plaats in, of nauw verbonden met een aquatisch milieu. Na voltooiing van de larvale levensfase, de larve construeert een slangvormig shelter en hecht zich met zijden afscheidingen op de omringende substraat en verpopping plaatsvindt. Nadat de ontwikkeling van volwassen gerijpt, de pop losmaakt en zwemt naar de oppervlakte van het water waarin de volwassene kan voortkomen uit het popstadium exuviae. De la...

Snelle biobeoordelingsprotocollen met behulp van benthische macro-invertebraten worden vaak gebruikt om de waterkwaliteit te controleren en te beoordelen. Een efficiënt protocol omvat het verzamelen van Chironomidae oppervlaktedrijvende poppenhuiden (SFPE). Hier worden technieken beschreven voor het verzamelen in het veld, laboratoriumverwerking, het monteren op dia's en de identificatie van Chironomidae SFPE.

Gebruik van Chironomidae (Diptera)-Surface Drijvende Pupal Exuviae als Rapid Protocol Bioassessment voor Water Bodies

Rapid bioassessment protocols using benthic macroinvertebrate assemblages have been successfully used to assess human impacts on water quality. ...

Het algemene doel van deze procedure is het beschrijven van de technieken voor het verzamelen en verwerken van chiro nominee, aan het oppervlak drijvende pupil ex-monsters voor de beoordeling van de waterkwaliteit. Dit wordt bereikt door eerst veldmonsters van Chiron pupil ex te verzamelen uit aquatische omgevingen. In de tweede stap wordt uit elk veldmonster een submonster van 300 exemplaren geselecteerd, waarna de monsters worden gescheiden in verschillende morfologische groepen.In de laatste stap worden meerdere representanten van elke groep op glazen microscopiepreparaten gemonteerd. Uiteindelijk worden de specimens geïdentificeerd tot op genus- of soortniveau om de waterkwaliteitsomstandigheden te evalueren. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals traditionele bemonstering van benthische macro-invertebraten, is dat het verzamelen en verwerken van de monsters efficiënt, economisch en toepasbaar is in bijna alle aquatische omgevingen.Het gebruik van deze techniek levert waardevolle informatie op voor biologische monitoringstudies en kan inzicht bieden in hoe locaties in de loop van de tijd veranderen als gevolg van verstoringen, vervuilingsincidenten of klimaatverandering. Hoewel we ons concentreren op hoe deze techniek kan worden toegepast in een beekhabitat, kan deze eenvoudig worden toegepast op andere aquatische systemen zoals rivieren, meren, vijvers, estuaria, kreken of getijdenpoeltjes. Plaats vóór het veldwerk één datum- en locatieetiket aan de binnenzijde en één etiket aan de buitenzijde van een monsterpot voor elk te verzamelen monster.Houd vervolgens voor elk monster een larvenbakje in de ene hand en een zeef in de andere, en dompel het larvenbakje in het water waar het pupenexudaat zich ophoopt, totdat het pupenexudaat en het detritus in het larvenbakje of via de zeef in het monster zijn gekomen. Gebruik na 10 minuten verzamelen een fles gevuld met water uit de monsterlocatie om al het detritus in één gebied van de zeef te concentreren. Breng vervolgens met een pincet en een stroom ethanol het pupenexudaat zorgvuldig over naar de juiste vooraf gelabelde monsterpot en vul de pot met ethanol.Om te beginnen met het verzamelen van monsters, plaatst u het juiste datum- en locatieetiket in een one Dr Vial voor elk monster van pupil-exudaat en vult u het flesje voor driekwart met ethanol. Verwijder vervolgens het deksel van de overeenkomstige monsterpot en controleer of er pupil-ex aan het deksel kleeft. Spoel de inhoud van het deksel voorzichtig met een knijpfles ethanol af in een Petrischaal.Verwijder vervolgens het label aan de binnenzijde van de monsterpot. Spoel de inhoud van het label voorzichtig af in de Petrischaal en leg het label opzij. Breng daarna de inhoud van de monsterpot over in een witte larvenschaal en spoel de pot met ethanol om er zeker van te zijn dat er geen pupil-exudaat in de pot achterblijft.Overbreng een hoeveelheid van het residu van het pupil-exudaat en ethanol van de larvenbak naar de Petrischaal. Zorg ervoor dat het monster bedekt is met ethanol. Plaats de Petrischaal vervolgens onder een stereomicroscoop en scan de schaal systematisch op de organismen.Gebruik vervolgens een pincet om het pupileksudaat vanuit de schaal over te brengen naar het bijbehorende flacon. Probeer te voorkomen dat pupileksudaat dat gebroken of uitgedroogd is wordt geselecteerd, om latere identificatieproblemen te vermijden. Wanneer al het zichtbare pupileksudaat is overgebracht, wordt de schaal nog drie keer rondgedraaid en gescand op aanvullende monsters, inclusief monsters die aan de wanden van de schaal kunnen zijn blijven kleven.Wanneer 300 pupil exe zijn geselecteerd, brengt u het residu uit de Petrischaal terug naar de larvenbak en spoelt u de Petrischaal af met ethanol. Draag vervolgens het residu van de larvenbak over naar de lege monsterpot. Voeg het label met datum en locatie toe aan de pot en plaats het deksel op de pot om de monsters te sorteren.Giet het pupil exus uit het gelabelde flacon in een Petrischaal die gevuld is met voldoende ethanol om de specimens net te bedekken. Gebruik vervolgens, onder een stereomicroscoop, de externe morfologische kenmerken van de Chiron Pub ex om de specimens te scheiden in morph axa, en breng de verschillende morph Axa over naar afzonderlijk gelabelde flacons. Deze moeten voor driekwart gevuld zijn met ethanol. Gebruik bijvoorbeeld bij classificatie op basis van de Celi thax verschillen in de aanwezigheid, grootte, vorm en kleur van de thoracale hoorn om de specimens te onderscheiden.Indien er wordt geclassificeerd op basis van het abdomen, gebruik dan de stekels, haren en sporen van de abdominale segmenten en de anale lob voor de morfologische scheiding. Vul na het sorteren voor elk morfotaxon één putje van een multi-wellplaat met 95% ethanol en plaats meerdere representaties van elk morfotaxon gedurende ten minste 10 minuten in individuele putjes van de plaat om voldoende desiccatie mogelijk te maken. Label vervolgens, terwijl de monsters drogen, de objectglazen met de juiste informatie over de verzamelplaats en identificatie om de exemplaren te monteren.Plak een mal van het preparaatglas op de tafel van een microscoop en plaats een objectglas bovenop deze mal. Verspreid vervolgens een druppel URL op het objectglas zodat deze ongeveer de grootte van een dekglas benadert en gebruik een pincet om een representatief exemplaar van de eerste morph axon voorzichtig op een laboratoriumdoekje te tikken om overtollige ethanol te verwijderen. Bedrijf nu het specimen in de URL en gebruik fijne pincetten en een dissectienaald om de sepha thax van het abdomen te scheiden.Het moeilijkste aspect van deze procedure is het ontwikkelen van de nodige handvaardigheid om het cephalothorax van het abdomen te scheiden tijdens het monteren op het objectglas. Om een succesvolle dissectie te garanderen, gebruikt u fijne pincetten of dissectie naalden om de verbinding tussen de cephalothorax en het eerste abdominale segment te verbreken. Splits de cephalothorax langs de dorsale naad, zoals gedemonstreerd.Open vervolgens de cephalische thorax zodat de hechtingsranden aan tegenovergestelde zijden liggen, en oriënteer deze zodanig dat de ventrale zijde naar boven is gericht. Positioneer het abdomen met de dorsale zijde naar boven en plaats het direct onder de cephalische thorax. Houd vervolgens een dekglas onder een hoek vast met één rand raakend aan het preparaatglas, en laat het dekglas langzaam zakken om de vorming van luchtbellen te beperken.Druk tot slot lichtjes op het dekglas om het preparaat plat te drukken en gebruik een lichtmicroscoop om het geslacht van het op het objectglas gemonteerde preparaat te bepalen. In deze grafieken worden taxonomische accumulatiecurven getoond voor pupale monsters verzameld uit 16 stedelijke meren in Minnesota om het algemene aantal soorten binnen elk meer te bepalen. Elke datalijn vertegenwoordigt één van de meren en elk datapunt vertegenwoordigt een maandelijks monster verzameld van april tot oktober 2005, wat aantoont dat de afname van vier monsters per meer het grootste deel van de Chiron-gemeenschap heeft herwonnen en eventuele belangrijke seizoensvariaties binnen de meren heeft gedetecteerd. Langetermijnmonitoringsstudies van chirons kunnen worden gebruikt om klimaatverandering in meren in heel Minnesota te beoordelen, aangezien veranderingen in omgevingsvariabelen zoals merdiepte en fosforconcentratie van invloed kunnen zijn op het cumulatieve aantal gedetecteerde soorten over een gradiënt van merenmet verschillende chemische samenstellingen.Zoals deze grafiek illustreert, neemt het cumulatieve aantal aangetroffen soorten toe naarmate de verhouding tussen de gemiddelde fosforconcentratie en de gemiddelde diepte toeneemt. De meest kritische stap voor een succesvolle verzameling van pupil-exudaten is het lokaliseren van gebieden met een hoge exudaataccumulatie binnen het studiegebied. Bij het starten van de monsters in het laboratorium is het belangrijk om de inhoud van de Petrischaal langzaam te scannen, aangezien sommige exemplaren licht gepigmenteerd kunnen zijn en aan de wand van de schaal kunnen kleven.Na het bekijken van deze video zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u omie-oppervlaktedrijvende pupil ex-monsters verzamelt en verwerkt voor projecten die gericht zijn op het monitoren en beoordelen van de waterkwaliteit.

use-chironomidae-diptera-surface-floating-pupal-exuviae-as-rapid

Research

JoVE Journal

Environment

Milieu

In this video, we describe the larval contact assay to evaluate the toxicity of the dopamine receptor antagonist amitriptyline on the third instar stage larvae of mosquitoes, known vectors of several human infectious diseases. Assessing the larval mortality upon incubation with different amitriptyline concentrations over different time intervals helps determine its lethal concentration 50.

Larval Contact Assay: A Procedure to Evaluate Mosquito Larval Mortality following Direct Contact with Test Larvicidal Compound

We introduceren de VacuSIP, een eenvoudige, niet-invasieve en betrouwbare methode voor schoon en nauwkeurig puntsampling van water. Het systeem werd ontwikkeld en geëvalueerd voor de gelijktijdige verzameling van het water dat wordt ingeademd en uitgeademd door benthische suspensie-voeders in situ, om de verwijdering en uitscheiding van deeltjes en opgeloste verbindingen schoon op te meten.

VacuSIP, een verbeterde INEX Methode voor het<em&gt; In Situ</em&gt; Meten van Particulate en opgeloste componenten verwerkt door Active Suspension Voeders

Dit protocol beschrijft het gebruik van sump swabs en slib analyse van zebravis systemen, die tot verhoogde detectie in vergelijking met het exclusieve gebruik van sentinels leidt te detecteren ziekteverwekkers zoals Aeromonas hydrophila, Mycobacterium spp. en  Pseudocapillaria tomentosa. Een systeem om te controleren van P. tomentosa eieren in quarantaine wordt ook voorgesteld.

Milieu Screening van Aeromonas hydrophila, Mycobacterium spp. en Pseudocapillaria tomentosa in Zebrafish systemen

In dit artikel wordt een samenvatting gemaakt van de ontwerpkenmerken en de effectiviteit van behandelingssystemen die de afvoer van stedelijke stormwater en landbouw irrigatie behandelen om pesticiden en andere verontreinigingen die verband houden met aquatische toxiciteit te verwijderen.

Plantaardige Behandeling Systemen voor het verwijderen van verontreinigingen geassocieerd met oppervlaktewater toxiciteit in Landbouw en Urban Runoff

De mogelijkheid om nauwkeurig detecteren afschriften of eiwitten in Drosophila weefsels is essentieel voor de studie van hun overvloed en localisatie gerelateerde aan het ontwikkelingsproces. Hier is de beschrijving van een eenvoudige procedure om te ontleden pop vleugels. Deze vleugels kunnen worden gebruikt als de monsters in verschillende technieken (PCR assay, immunohistochemistry, enz.).

Een snelle en doeltreffende methode om te ontleden pop vleugels van Drosophila geschikt voor Immunodetections of PCR-testen

Meest voorkomende analyses van de inhoud van de darm van macroinvertebrates zijn visueel. Waarbij intensieve kennis over morfologische diversiteit van organismen van de prooi, ze missen zachte lijf prooi en, als gevolg van de sterke trimventilatoren van de prooi, zijn bijna onmogelijk voor sommige organismen, met inbegrip van vlokreeftjes. Wij bieden gedetailleerde, roman genetische methoden voor macroinvertebrate ten prooi identificatie in het dieet van vlokreeftjes.

Laboratorium Protocol voor genetische Analyses van de inhoud van de Gut van aquatische Macroinvertebrates gebruiken groepsspecifieke rDNA Primers

In situ bioindications inschakelen bepaling van de geschiktheid van een omgeving voor bedreigde Mossel soorten. Beschrijven we twee methoden op basis van de jonge Gasbedwelming met behulp van zoetwater parel mosselen in kooien oligotrofe rivierhabitats. Beide methoden zijn geïmplementeerd in de varianten voor open water en hyporheic water omgevingen.

Bioindication testen van Stream milieu geschiktheid voor jonge zoetwater parel van mosselen met behulp van In Situ blootstelling methoden

Hier presenteren we een protocol voor het onderzoek naar de voorkeur van de verpopt van volwassen larven van Ectropis grisescens in reactie op de bodem factoren (e.g., substraat type en vocht inhoud) met behulp van bioassays keuze. Wij presenteren ook een protocol van neen-keuze bioassays om te bepalen van de factoren die invloed hebben op het gedrag van de verpopt en nabestaanden van E. grisescens.

Keuze en nee-keuze Bioassays te bestuderen de verpopt voorkeur en het succes van de opkomst van Ectropis grisescens

Dit protocol presenteert een methode voor het beoordelen van de voedingssnelheid van het houtborende schaaldier Limnoria door de productie van fecale pellets te meten. Deze methode is ontworpen voor gebruik in niet-gespecialiseerde laboratoria en heeft potentieel voor opname in standaard testprotocollen, om verbeterde houtduurzaamheid onder maritieme omstandigheden te evalueren.

Snel testen van de weerstand van hout tegen biologische afbraak door mariene houtborende schaaldieren

Het artikel is gebaseerd op de creatie van een aangepast protocol voor het scannen, detecteren, sorteren en identificeren van gedigitaliseerde objecten die overeenkomen met benthische riviermabrieren met behulp van een semi-automatische beeldvormingsprocedure. Deze procedure maakt het mogelijk om de individuele grootteverdelingen en groottemetingen van een macro-ongewervelde gemeenschap in ongeveer 1 uur te verwerven.

Automatische beeldverwerking om de gemeenschapsgroottestructuur van riverine macro-ongewervelde dieren te bepalen

Leer efficiënte technieken voor het verzamelen en verwerken van Chironomidae-oppervlak-drijvende poppenexuviae voor waterkwaliteitsbeoordeling. Deze methode is economisch en toepasbaar in vrijwel alle aquatische omgevingen.

Gebruik van Chironomidae (Diptera)-Surface Drijvende Pupal Exuviae als Rapid Protocol Bioassessment voor Water Bodies

Meer video's verkennen