Name: Verven Insecten for Behavioral Testen: het paargedrag van verdoofde Drosophila (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 13 s
Description: Leer een niet-invasieve kleurtechniek om Drosophila te identificeren in gedragsexperimenten. Deze methode gebruikt voedselkleurstof en is sneller dan CO2-anesthesie.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

We willen graag Alex Hitchen en Meg Booth bedanken voor hun hulp bij de paring proeven. Dit werk werd ondersteund door NERC subsidie ​​NE / H015604 / 1 tot TP.

1. Voorbereiding van Fly met Food Coloring <ol><li> Neem een standaard Drosophila flacon met ongeveer 20 ml van voedsel in de bodem (figuur 1). Gebruik het volgende recept voor voedsel mix met behulp van 1 liter kokend water: 10 g agar, 85 g dextrose, 60 g maïsmeel, 40 g gist en roer gedurende 5 min sudderen. Voeg 25 ml 10% nipagen nadat het mengsel is afgekoeld tot 75 ° C. </li><li> Nadat de voeding is afgekoeld en gestold twee druppels (ongeveer 0,5-1 ml) blauwe kleurstof aan de bovenkant van het voedsel en verspreid over het gehele oppervlak van de flacon (figuur 1). Gebruik een andere kleur kleurstof indien gewenst. </li><li> Laat het voedsel gedurende twee dagen in de koelkast, zodat de kleurstof wordt geabsorbeerd door de bovenste laag van levensmiddelen; dit voorkomt overmatig vocht schade aan het vliegen tijdens de rijpingsperiode. Voeg een klein stukje weefsel papier als overmatig vocht is nog steeds een probleem te deppen extra vocht en dan vervolgensverwijder het. </li><li> Transfer vliegt naar het voedsel, zowel individueel als in groep. Opmerking: Vliegen zal intestinale kleuring krijgen binnen 1 dag op het voedsel geproduceerd. Alternatief volledig volwassen vliegen op de geverfde voeding voorafgaand aan het experiment (verhoogde mortaliteit gedurende de rijpingsperiode werd niet waargenomen van blootstelling aan voedselkleurstof). </li><li> Controleer dat de geverfde vliegen gemakkelijk van de niet geverfde vliegen zijn. Als ze niet kunnen worden onderscheiden Herhaal stap 1,1-1,4 met ofwel een hogere concentratie van kleurstof of een andere kleurstof. </li></ol> 2. Twee mannetje mating Trials behulp Kleuring van het voedsel <ol><li> Voor het produceren van nageslacht, het opzetten van meerdere flesjes met paren van vrouwelijke en mannelijke vliegen (kleine groepen van mannen en vrouwen zijn ook geschikt, hoewel verzorgen van het verzamelen van larven te voorkomen). Laat de vrouwtjes om eieren te leggen en verplaatsen de vliegen om nieuwe flesjes elke 5-7 dagen. Bewaren flesjes bij een geschikte temperatuur voor de soort van belang (22 ° C fof D. pseudoobscura en D. subobscura en 25 ° C naar D. melanogaster). </li><li> Voor het verzamelen van experimentele vliegen verwijder alle vliegen uit het verzamelen van flesjes op een vast tijdstip voor het verzamelen van mannen en vrouwen te zorgen dat ze zullen zijn maagden (D. melanogaster - 6 uur bij 25 ° C, D. pseudoobscura - 18 uur bij 22 ° C, en D. subobscura - 24 uur bij 22 ° C). Opmerking: Als vliegen zijn niet maagd zal dit vooroordeel hun gedrag in paring trials 15. <ol><li> Store en volwassen mannelijke individueel in standaard 75 x 20 mm plastic flesjes (met ~ 20 ml van voedsel). Dit voorkomt de negatieve effecten op de mannelijke paargedrag en fitness gezien bij sommige soorten wanneer de mannetjes in groepen worden gehouden 16. </li><li> Expose helft van de mannetjes de gewenste behandeling (CO2 verdoving in dit geval). Gebruik een CO 2 mat of tik op om de vliegen bloot te leggen voor de vereiste tijd. Store helft van de males in elke behandeling op gekleurd voedsel tot de paring plaatsvindt. Dit zal hen visueel te onderscheiden tijdens het paarseizoen proeven te maken. </li><li> Voor het overbrengen van vliegen gebruik maken van een aspirator 17. Label elke flacon zowel de behandeling en de kleur status van de mannelijke identificeren. Hier gebruiken vier behandelingen (anesthesie, niet-gekleurde = G-NC, anesthesie, gekleurd = GC, geen verdoving, niet-gekleurd, NG-NC, en geen verdoving, gekleurd, NG-C). </li></ol></li><li> Transfer nieuw opgedoken vrouwtjes in vers voedsel flesjes om te rijpen als groepen van 10. </li><li> Laat vliegt rijpen tot de paring leeftijd (D. melanogaster - 3 dagen, D. pseudoobscura - 5 dagen, D. subobscura - 7 dagen 18 Bewaren vliegt bij een geschikte temperatuur voor de soort bestudeerd (bijvoorbeeld 22 ° C D. . pseudoobscura en D. subobscura en 25 ° C naar D. melanogaster). </li><li> Verplaats vrouwtjes individuele flacons (containing ~ 20 ml van voedsel) 1 dag vóór de paring proef voor acclimatisatie aan de paring flacon. Worden deze met flesjes, zodat flacons kan worden gedifferentieerd. Pas het experiment blind met neutrale labeling (bijvoorbeeld 1 - 150), is het niet mogelijk om de identiteit van de vliegen raden in ieder flesje. Opmerking: De persoon die de vliegen plaatst in elk flesje zal hebben om de identiteit van de vliegen geplaatst in elke flacon als ze noteren welke behandeling werd gekleurd weten. Echter, de waarnemer die de dekking kijkt niet hun identiteit. Om dit te doen ten minste twee onderzoekers nodig zal zijn, één op te zetten en één om te observeren. </li><li> Begin de paring proeven tussen 10 - 12 AM of op een tijdstip dat samenvalt met het licht komt op in het licht / donker cyclus de vliegen worden blootgesteld aan (&quot;dageraad&quot; voor de vliegen). Voeg twee mannelijke vliegen naar elke paring flacon (met een enkele vrouwelijke vlieg) met behulp van een afzuiger. Zorg ervoor dat de twee mannetjes zijn van verschillende behandelingen (anesthesie ofcontrole) en dat men intestinale kleuring om het mogelijk te onderscheiden van elkaar, en noteren welke mannelijke vuil. </li><li> Als ze copuleren, noteer de positie van de man die mates (hetzij gekleurd of niet - gekleurd). Als proeven laatste 2 uur, neem het vrouwtje zal niet paren. Opmerking: 2 uur is geschikt voor deze soorten, maar ook andere Drosophila kan meer of minder tijd nodig. </li></ol> 3. Single Mannen paring Trials <ol><li> Voor enkele mannelijke proeven, herhaal Protocol 2 met twee wijzigingen: <ol><li> In stap 2.3 niet mannetjes op gekleurd voedsel te houden. </li><li> In stap 2.7, voegt slechts een enkele man aan elk flesje. </li></ol></li><li> In stap 2.8, om de tijd de vlieg wordt toegevoegd aan de flacon, de tijd de dekking begint en de tijd de dekking voltooid moet worden geregistreerd. Uit deze waarden berekenen paarsucces, latentie en duur. </li></ol> 4. Data Analyse <ol><li> Gebruik geschikte statistieken pakket voor analysis. Als de gegevens zijn normaal en slechts twee behandelingen, t-toetsen of gelijkwaardig Generalized Linear Model (GLM) gebruiken. Voor twee mannelijke experimenten, gebruiken binomiale tests of een binomiale GLM die beschikbaar zijn in elke basisstatistieken pakket. Opmerking: Voor het voorbeeld van gegevens, alle analyses werden uitgevoerd in R versie 3.0.3 19 uitgevoerd. </li><li> Controleer de paring latentie en paren duurgegevens normaliteit, door het uitzetten frequentiehistogrammen van latentie en duur voor elke behandeling 20 en door een test op normaliteit zoals Shapiro-Wilk. Als het is niet normaal, te transformeren, of gebruik maken van niet-parametrische gelijkwaardig statistieken 20. Opmerking: Voor het voorbeeld gegevens van de enkele mannelijke experimenten log transformatie voldaan aan de eisen van normaliteit en gelijke varianties. </li><li> Als de gegevens genormaliseerd kunnen worden, gebruik t-testen om de verschillen tussen de paring latency en duur in de enkele mannelijke paring trials onderzocht bij het ​​gebruik van twee behandelingen 21. Als meerdere behandelingen worden gebruikt,probeer een variantie-analyse (ANOVA) 20. Als de gegevens niet kunnen worden genormaliseerd, probeer dan vergelijkbare niet-parametrische testen 21. </li><li> Gebruik binomiale testen te testen voor een effect van zowel kleurstof of CO2 verdoving op de paarsucces van concurrerende mannetjes 20. Als meerdere behandelingen worden gebruikt, zoals bij de voorbeeldgegevens gebruiken GLM met binominale fout structuur 21. </li><li> Voor de twee mannelijke proeven in de voorbeeld data, gebruiken GLMS met binomiale fout structuren. Een GLM onderzocht kleur als responsvariabele (gekleurd = 0 en niet-gekleurde = 1) met soorten, de status van gas, en gas behandeling voorzien als verklarende variables.One GLM onderzocht CO 2 als responsvariabele (vergast = 0 en niet-vergast = 1) met soorten, kleur status, en gasbehandeling gemonteerd. In beide gevallen produceren de maximale model en uitvoeren model vereenvoudiging basis AIC 20. </li></ol>

<ol><li>Parker, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sperm+competition+and+its+consequences+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Reviews%22%5BJournal%5D)">Sperm competition and its consequences in insects.</a> Biological Reviews. 45, 525-567 (1970).</li>
<li>Hosken, D. J., Stockley, P., Tregenza, T., Wedell, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monogamy+and+the+battle+of+the+sexes%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Monogamy and the battle of the sexes.</a> Annual Review of Entomology. 54, 361-378 (2009).</li>
<li>Chapman, T., Liddle, L., John, K., Wolfner, M., Partridge, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Female+cost+of+mating+caused+by+males+accessory+gland+fluids%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Female cost of mating caused by males accessory gland fluids.</a> Nature. 373, 241-244 (1995).</li>
<li>Avent, T. D., Price, T. A. R., Wedell, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-based+female+preference+in+the+fruit+fly+Drosophila+pseudoobscura%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Behaviour%22%5BJournal%5D)">Age-based female preference in the fruit fly Drosophila pseudoobscura.</a> Animal Behaviour. 75, 1413-1421 (2008).</li>
<li>Barron, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthetising+Drosophila.+for+behavioural+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Anaesthetising Drosophila. for behavioural studies.</a> Journal of Insect Physiology. 46, 439-442 (2000).</li>
<li>Moeers, A. O., Rundle, H. D., Whitlock, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+selection+and+bottlenecks+on+male+mating+success+in+peripheral+isolates%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Naturalist%22%5BJournal%5D)">The effects of selection and bottlenecks on male mating success in peripheral isolates.</a> The American Naturalist. 153, 437-444 (1999).</li>
<li>Ashburner, M., Thompson, J. N. The laboratory culture of Drosophila. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAshburner%2C+M+%22The+Genetics+and+Biology+of+Drosophila%22">The Genetics and Biology of Drosophila</a>. Ashburner, M., Wright, T. R. F. 2a, Academic Press. London. 1-109 (1978).</li>
<li>Powell, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPowell%2C+J+%22Progress+and+Prospects+in+Evolutionary+Biology%3A+The+Drosophila+Model%22">Progress and Prospects in Evolutionary Biology: The Drosophila Model</a>. , Oxford University Press. Oxford. (1997).</li>
<li>Moore, A. J., Moore, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Balancing+sexual+selection+through+opposing+mate+choice+and+male+competition%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+of+London%2C+series+B-Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Balancing sexual selection through opposing mate choice and male competition.</a> Proceedings of the Royal Society of London, series B-Biological Sciences. 266, 711-716 (1999).</li>
<li>Hollocher, H., Ting, C., Pollack, F., Wu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Incipient+speciation+by+sexual+isolation+in+Drosophila+melanogaster.%3A+Variation+in+Mating+preference+and+Correlation+between+sexes%5BTitle%5D)+AND+%22Evolution%22%5BJournal%5D)">Incipient speciation by sexual isolation in Drosophila melanogaster.: Variation in Mating preference and Correlation between sexes.</a> Evolution. 51, 1175-1181 (1997).</li>
<li>Perron, J. M., Huot, L., Corrivault, G. W., Chawla, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+carbon+dioxide+anaesthesia+on+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Effects of carbon dioxide anaesthesia on Drosophila melanogaster.</a> Journal of Insect Physiology. 18, 1869-1874 (1972).</li>
<li>Wu, C. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sexual+isolation+in+Drosophila+melanogaster+%3A+A+possible+case+of+incipient+speciation%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+academy+of+sciences%22%5BJournal%5D)">Sexual isolation in Drosophila melanogaster : A possible case of incipient speciation.</a> Proceedings of the National academy of sciences. 92, 2519-2523 (1995).</li>
<li>Melcher, C., Pankratz, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Candidate+gustatory+interneurons+modulating+feeding+behaviour+in+the+Drosophila+brain%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biology%22%5BJournal%5D)">Candidate gustatory interneurons modulating feeding behaviour in the Drosophila brain.</a> PLoS Biology. 3, e305(2005).</li>
<li>Kalaw, V., Drapeau, M. D., Long, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+food+coloring+on+longevity+and+viability+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Dros.+Inf.+Serv%22%5BJournal%5D)">Effects of food coloring on longevity and viability of Drosophila melanogaster.</a> Dros. Inf. Serv. 85, 128-129 (2002).</li>
<li>Friberg, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Male+perception+of+female+mating+status%3A+its+effect+on+copulation+duration%2C+sperm+defence+and+female+fitness%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Behaviour%22%5BJournal%5D)">Male perception of female mating status: its effect on copulation duration, sperm defence and female fitness.</a> Animal Behaviour. 72, 1259-1268 (2006).</li>
<li>Lizé, A., Price, T. A. R., Heys, C., Lewis, Z., Hurst, G. D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extreme+cost+of+rivalry+in+a+monandrous+species+male+%E2%88%92+male+interactions+result+in+failure+to+acquire+mates+and+reduced+longevity%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+of+London%2C+series+B-Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">Extreme cost of rivalry in a monandrous species male − male interactions result in failure to acquire mates and reduced longevity.</a> Proceedings of the Royal Society of London, series B-Biological Sciences. 281, 20140631(2014).</li>
<li>Yeh, S. -D., Chan, C., Ranz, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+differences+in+sperm+competitive+ability+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Assessing differences in sperm competitive ability in Drosophila.</a> Journal of Visualized Experiments. (78), e50547(2013).</li>
<li>Holman, L., Freckleton, R. P., Snook, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+use+is+an+infertile+sperm%3F+A+comparative+study+of+sperm-heteromorphic+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Evolution%22%5BJournal%5D)">What use is an infertile sperm? A comparative study of sperm-heteromorphic Drosophila.</a> Evolution. 62, 374-385 (2008).</li>
<li>R: A Language and Environment for Statistical Computing. , R Foundation for Statistical Computing. (2011).</li>
<li>Crawley, M. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCrawley%2C+MJ+%22Statistics%3A+An+introduction+using+R%22">Statistics: An introduction using R</a>. , Wiley-Blackwell. Oxford, UK. (2005).</li>
<li>Dytham, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDytham%2C+C+%22Choosing+and+Using+Statistics%3A+A+Biologist%27s+Guide%22">Choosing and Using Statistics: A Biologist's Guide</a>. , Wiley-Blackwell, Oxford, UK. (2010).</li>
<li>Kaiser, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+anaesthesia+by+carbon+dioxide+on+hatching+time+and+weight+at+eclosion+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Drosophila+Information+Service%22%5BJournal%5D)">Influence of anaesthesia by carbon dioxide on hatching time and weight at eclosion in Drosophila melanogaster.</a> Drosophila Information Service. 76, 92-93 (1995).</li>
<li>Rera, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+longevity+and+tissue+homeostasis+by+the+Drosophila.+PGC-1+homolog%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Metabolism%22%5BJournal%5D)">Modulation of longevity and tissue homeostasis by the Drosophila. PGC-1 homolog.</a> Cell Metabolism. 14, 623-634 (2011).</li>
<li>Crumpacker, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+micronized+fluorescent+dusts+to+mark+adult+Drosophila+pseudoobscura%5BTitle%5D)+AND+%22American+Midland+Naturalist%22%5BJournal%5D)">The use of micronized fluorescent dusts to mark adult Drosophila pseudoobscura.</a> American Midland Naturalist. 91, 118-129 (1974).</li>
<li>Jallon, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+few+chemical+words+exchanged+by+Drosophila+during+courtship+and+mating%5BTitle%5D)+AND+%22Behaviour+genetics%22%5BJournal%5D)">A few chemical words exchanged by Drosophila during courtship and mating.</a> Behaviour genetics. 14, 441-478 (1984).</li>
<li>Liimatainen, J. O., Jallon, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+cuticular+hydrocarbons+and+their+effect+on+courtship+in+Drosophila+virilis+and+D.+lummei%5BTitle%5D)+AND+%22Behaviour+Genetics%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of cuticular hydrocarbons and their effect on courtship in Drosophila virilis and D. lummei.</a> Behaviour Genetics. 37, 713-725 (2007).</li>
</ol>

De auteurs verklaren dat zij geen concurrerende financiële belangen.

Deze gegevens tonen aan dat de impact van CO 2 anesthesie is inconsistent tussen soorten, met twee van de drie soorten met weinig impact. Onze resultaten suggereren etikettering met voedsel kleurstof had een lagere impact op de mannelijke paarsucces dan CO 2 anesthesie voor D. melanogaster. Deze experimenten tonen dat kleurstoffen gemakkelijk en goedkoop kan worden gebruikt om label vliegen te paren assays met meerdere mannetjes. Van de drie model Drosophila soorten onderzocht, alleen D. melanogaster toonde een effect van CO 2 narcose op het paargedrag in een competitieve situatie. Integendeel, geen van de soorten vertoonde een effect van collectie gas in enkele paring studies qua paring latentie tegenstelling tot eerdere resultaten voor D. melanogaster 5. Het effect van de concurrentie zou dus kunnen wijzen op meer subtiele fitness effecten van CO 2 anesthesie, die slechts detecteerbaaronder situaties waar sprake is van man-man competitie. Blootstelling aan een vroege collectie en één dag voorafgaand aan de proef hebben een negatief effect op het vermogen van de mannetjes van D. melanogaster een paring krijgen. Blootstelling twee dagen voorafgaand aan de proef echter geen invloed aan te tonen. Beide D. pseudoobscura en D. subobscura had geen effect van blootstelling aan gas in elk van de proeven vertonen. Een verklaring is dat D. melanogaster was kwetsbaar voor vroege blootstelling aan CO 2, omdat het eerder in het leven moeten worden verzameld (0-6 uur oud) dan de andere soorten te verzekeren mannetjes zijn maagd. Vandaar mannelijke D. melanogaster van deze leeftijd gevoeliger als de cuticula van de vlieg nog harden, in vergelijking met de andere soorten die langer hun cuticula uitharden had. In het algemeen is dit ondersteunt het idee dat de effecten van CO 2 anesthesie zijn soortspecifiek en onderzoekers moeten naar behoren de gevolgen in hun doelsoorten te testen. Currently, het merendeel van het werk op het effect van CO2 verdoving is uitgevoerd op Drosophila melanogaster 5,11,22 uitgevoerd en daarom niet geschikt voor toepassing op andere verwante soorten. De alternatieve niet-invasieve methode gepresenteerd om vliegen te onderscheiden is voedsel kleurstof. Resultaten suggereren deze behandeling geen effect in in alle soorten onderzocht had. Hoewel het gebruik succesvol in het verschaffen van een goedkope en goed zichtbare marker voor het onderscheid tussen individuen was zij opgemerkt dat de kleurstof gemakkelijker te onderscheiden D. pseudoobscura en D. subobscura dan in D. melanogaster. Vorige auteurs hebben verschillende kleuren (rood, groen en blauw) 4,6 gebruikt. Wij vonden blauwe kleurstof om de gemakkelijkste om onderscheid te maken in alle soorten, vooral D. pseudoobscura en D. subobscura. Het gebruik van verschillende kleuren zou in potentie meer complexe experimenten met veel individueel gemerkte flie toestaans. Echter, de voorafgaande proeven van verschillende kleurstoffen zijn van essentieel belang, zoals sommige kleurstoffen voor levensmiddelen niet aan de vliegen te kleuren, mogelijk wordt verteerd wanneer verbruikt. Andere kleurstoffen kunnen toxische effecten en vermindering overleving van de vliegen, en moet worden vermeden 14). Alternatieve kleurstof methoden waarbij duurder vlekken zijn ook gebruikt voor de behandeling van intestinale integriteit D. melanogaster 23. Deze kunnen een alternatief, hoewel duurder, verfwerkwijze 23. De kleurstof methode is zo snel als de CO 2 vleugel knippen als vliegen kan worden opgeslagen op geverfd voedsel uit de collectie. Opname van het eten snel (~ 3 uur), dus opslag O / N op gekleurde eten zou ook voldoende vliegen markeren, zoals in andere studies 6. De duur van de kleuring is relatief kort (~ 4-5 uur) vergeleken vleugel clipping (permanent) of fluorescente stof markering (10 - 12 dagen) 24. Zoals Drosophila soortenanders uitzien, worden verschillende kleurstoffen meer of minder effectief voor verschillende soorten zijn, en zoals sommige stammen (bijvoorbeeld knock-out mutanten) kunnen gevoelig voor veranderingen in dieet, het gebruik van kleurstof vereist een voorafgaande proef van de doeltreffendheid bijzonder bij langere termijn blootstelling aan kleurstoffen kunnen giftige 14 zijn. In tegenstelling tot de studie van Kalaw et al. 14, vonden we geen significante mortaliteit na opslag gedurende meerdere dagen op gekleurde levensmiddelen voor D. melanogaster (3 dagen), D. pseudoobscura (5 dagen) of D. subobscura (7 dagen), waarschijnlijk te wijten aan het verschil in gebruikte kleurstof. De kritische stap voor succesvol gebruik van de kleurstof techniek is stap 1.5, valideren dat de gekozen kleurstof werkt goed met de soort en stam te worden gebruikt. Een andere techniek omvat het aanbrengen van gekleurde stof aan de buitenkant van de vlieg vóór gebruik in veldexperimenten 24. Deze methode werd gebruikt voor het bijhouden individuen in het veld door to de duur van het merken en het gemak van massa markering 24 vliegt. Hoewel we niet expliciet getest deze methode paring studies zou het belangrijk zijn om eventuele effecten die stof kan hebben op de zintuigen belangrijke paring, vooral in Drosophila 25, 26 onderzocht. In species, echter dat intestinale verven niet mogelijk, deze methoden zouden geschikt kunnen zijn. Tot slot vonden we dat in twee van de drie geteste soorten (D. pseudoobscura en D. subobscura) was er geen effect gevonden van een van beide CO 2 verdoving of kleurstof op de paring vermogen van mannetjes. Voor D. melanogaster een negatief effect van CO2 anesthesie gedetecteerd, maar kleurstof heeft geen invloed paring succes in deze soort. Kortom, de kleurstof werkwijze een eenvoudige en goedkope niet-invasieve werkwijze voor het identificeren van individuele Drosophila die gelijkwaardig of beter dan methoden die CO2 verdoving. Hetwordt waarschijnlijk deze methode zou werken in een heel scala van soorten.

In de afgelopen decennia is er steeds meer interesse in hoe seksuele selectie en competitie tussen mannetjes impact op de evolutie 1,2. Experimenten op paringsgedrag hebben een belangrijke rol in het ontwikkelen en testen van theorieën over seksuele selectie 3,4 gespeeld. Vooral onderzoek met species van het geslacht Drosophila, heeft sterk bijgedragen tot het begrijpen van seksuele selectie en gedrag. Het is echter van belang te onderzoeken of gebruikelijke technieken kunstmatig kan vertekening van de resultaten van standaard paring experimenten 5,6. Anesthesie wordt vaak gebruikt voor het behandelen en identificatie in experimenten 7. Zo worden bijvoorbeeld vliegen vaak verzameld voor het dekken, of gesorteerd in genotypen of experimentele behandelingen met behulp van kooldioxide (CO 2) verdoving. In experimenten waarbij twee of meer individuen moeten worden onderscheiden, is het gebruikelijk om de fl verdovenies en clip een deel van de vleugel af aan elk individu of groep die behandeld 5,8 identificeren. Het is van vitaal belang, echter, om te begrijpen hoe de CO 2 behandeling gedrag zal beïnvloeden. Het effect van CO 2 anesthesie werd in Drosophila melanogaster onderzocht waarin mannetjes blootgesteld aan CO 2 aanzienlijk duurde langer om te paren en over het algemeen hadden lagere paarsucces dan niet verdoofd mannen of mannen verdoofd met behulp van blootstelling aan koude 5. Dit effect werd waargenomen zowel bij anesthesie werd op de dag van het experiment en wanneer vliegen kregen een dag te herstellen. Echter, werd deze studie beperkt in alleen het onderzoeken van studies, waarbij een enkele man werd uitgereikt aan elke vrouwelijke 5. Een meer realistisch scenario is voor een vrouw tegenkomen meerdere mannetjes 9,10, waardoor de concurrentie tussen de mannen, die de detectie van meer subtiele verlies van mannelijke fitness vanwege anesthesie zou kunnen stellen. Het gebruik van CO2 verdoving ooken gevonden om vruchtbaarheid en levensduur van volwassen D. verminderen melanogaster wanneer ze kort worden blootgesteld na verpopping, zoals gebruikelijk is bij het ​​verzamelen van maagdelijke vliegt 11. Een alternatief voor 2 anesthesie CO is om vliegen te markeren door ze voedsel gekleurd met kleurstof 4,6,10,12,13. Deze kleurstof gaat de ingewanden van de vlieg en is zichtbaar door de buik, waardoor gekleurde vliegen te onderscheiden van gekleurd vliegen, of tegen vliegen gemerkt met een andere kleur. Werkwijzen verschillen hoe dit kan worden toegepast: rechtstreeks toegevoegd aan het voedsel 12, via geverfd aanvullende gistpasta 6, of door blootstelling aan een nieuw geverfd voedselsubstraat 13. Deze markering technieken lijken geen effect op het paargedrag 4,6 tonen. Echter, een papieren direct onderzoek naar de effecten van dezelfde kleurstof op volwassen D. melanogaster vond een sterke vermindering van de levensduur 14. Vorige werk is ook gericht almost volledig op D. melanogaster, zowel wat de effecten van CO 2 anesthesie 5,11 en kleurstof 14 methoden. Momenteel bestaat er weinig informatie over CO2 anesthesie of het gebruik van intestinale kleuring invloed op het paringsgedrag andere Drosophila. De volgende studie evalueert het effect van CO2 narcose op het paringsgedrag drie soorten Drosophila (D. melanogaster, D. pseudoobscura en D. subobscura). Het effect van het verzamelen van vliegen op de CO 2 werd onderzocht in zowel single en twee mannelijke paring proeven. Het effect van CO2 is ook gevonden te variëren in D. melanogaster 5 en zo verschillende periodes latentietijd tussen blootstelling aan CO 2 en paring werden getest. Een alternatieve wijze van merken op anesthesie en vleugel knippen: het gebruik van kleurstoffen voor levensmiddelen aan de vliegen vlek is ook geëvalueerd.

<table><tbody><tr><td>Kunststof buisjes</td><td>Fisher Scientific</td><td>TWT-200-061G</td><td>Ander buismateriaal kan ook geschikt zijn, maar moet in een 1ml pipette tip passen.</td></tr><tr><td>Fijn gaas</td><td>Elke stoffenwinkel</td><td>-</td><td>Fijn gordijngaas is geschikt</td></tr><tr><td>1 ml pipette tips</td><td>VWR</td><td>83007-376</td><td>Er zijn verschillende merken pipette tips geschikt</td></tr><tr><td>Kunststof Vials</td><td>Sarstedt</td><td>58.49</td><td>Grotere vials of flessen kunnen ook gebruikt worden.</td></tr><tr><td>Wattenbolletjes</td><td>Lewis Medical Solutions</td><td>28170</td><td>De grootte van de watten varieert afhankelijk van de grootte van de gebruikte vials</td></tr><tr><td>Blauwe voedselkleurstof</td><td>Thesugarcraftcompany</td><td>-</td><td>Andere kleur- en merken kleuren kunnen variabele resultaten hebben.</td></tr><tr><td>CO2 Tank</td><td>BOC</td><td>BOC 40VK</td><td></td></tr><tr><td>Sharpie Markers</td><td>Steadtler</td><td>Lumocolor 313 S</td><td>Er kunnen verschillende kleuren gebruikt worden, maar Lumocolor S geeft een uitstekende combinatie van duurzaamheid en fijnheid</td></tr><tr><td>Stopwatch</td><td>Salter</td><td>SL3920</td><td>Elke stopwatch met een goede digitale weergave zou prima zijn</td></tr></tbody></table>

verven insecten for behavioral testen: het paargedrag van verdoofde<em&gt; drosophila</em

Dyeing Insects for Behavioral Assays: the Mating Behavior of Anesthetized Drosophila

Paring experimenten met behulp van Drosophila hebben sterk bijgedragen aan het begrip van seksuele selectie en gedrag. Experimenten vereisen vaak eenvoudig, gemakkelijk en goedkope methoden om onderscheid te maken tussen individuen in een proces. Een standaard techniek hiervoor is de CO 2 anesthesie en vervolgens labelen of vleugel knippen elke vlieg. Dit is echter invasief en is aangetoond dat het gedrag beïnvloeden. Andere technieken gebruikt kleuring vliegen identificeren. Dit artikel presenteert een eenvoudige en niet-invasieve methode voor het labelen van Drosophila waarmee ze individueel worden geïdentificeerd binnen de experimenten, met behulp van kleurstof. Deze methode wordt toegepast bij onderzoeken waarin twee mannetjes concurreren om te paren met een vrouwtje. Verven toegestaan ​​snelle en gemakkelijke identificatie. Er is echter een verschil in de kracht van de interferentie tussen de drie geteste soorten. Gegevens worden gepresenteerd met de kleurstof heeft een lagere impact op het paringsgedrag dan CO 2 in Drosophila melanogaster. Het effect van CO2 anesthesie wordt afhankelijk van de soort van Drosophila, met D. pseudoobscura en D. subobscura toont geen effect, terwijl D. melanogaster mannetjes had paarsucces verminderd. De kleurstof gepresenteerde methode is toepasbaar op een groot aantal experimentele modellen.

Twee mannelijke paring trials - Het effect van CO 2 narcose op paargedrag Het beste model blijkt de variatie verklaren het effect van CO2 verdoving bevatte gewassen, factor (met D. pseudoobscura en D. subobscura gefuseerd zij geen verschillen tussen elkaar zien). In D. pseudoobscura en D. subobscura was er geen significant effect van CO 2 anesthesie op de paring succes in twee mannelijke trials (Z 1589 = 0,087, p = 0,931). Voor D. melanogaster, mannetjes blootgesteld aan 2 anesthesie CO hadden significant lagere paarsucces (Z1,589 = 2,467, p = 0,014). Er was ook een significante interactie tussen soorten en behandeling (χ 2 1589 = 6,83; p = 0,009) met een groter effect wordt gezien als D. melanogaster werden blootgesteld aan gas verzamelen of 1 dag voor proeven (tabel 1). Howeveh, D. melanogaster mannetjes blootgesteld tot CO2 twee dagen voor de experimentele studie werd geen effect van CO2 tonen. Twee mannelijke paring trials - Het effect van intestinale kleuren op paargedrag Model vereenvoudiging toonde geen significant effect kleurstof wordt gevonden voor elk van de drie species (P&gt; 0,1). Wanneer de behandeling of de status van gas werden opgenomen in de analyse van deze waren ook niet significant (p&gt; 0,1). De verhoudingen van succesvolle paringen voor gekleurde vliegen in behandeling zijn weergegeven in Tabel 2. Het verschil in kleur tussen vliegen op gekleurde en ongekleurde voedsel kan worden gezien in figuur 1. De intensiteit van de intestinale kleurstof was significanter D. bewaard pseudoobscura en D. subobscura dan in D. melanogaster. Single paring trials - Het effect van het gebruik van CO 2 narcose op mAting gedrag Er was geen verschil in paring latentie voor elk van de drie soorten bij CO2 anesthesie werd onlangs verzamelen ontstaan ​​volwassenen. Een effect werd gevonden voor de paring duur in D. subobscura toen het werd blootgesteld aan CO 2 twee dagen voor het dekken onderzoeken (figuur 2 en 3, tabel 2). <img alt="Figuur 1" src="/files/ftp_upload/52645/52645fig1.jpg" /> Figuur 1. Foto die Flesjes Gekleurde en Non Gekleurde Fly Food (A) en de kracht van de Intestinale Coloration in Man D. Subobscura (B). <img alt="Figuur 2" src="/files/ftp_upload/52645/52645fig2.jpg" /> Figuur 2. Het gemiddelde en 95% betrouwbaarheidsintervallen voor Copulation Wachttijd voor de drie onderzochte species in Single Mannen Trials, Toen Mannetjes waren Algemene Chirurgied (lichtbalken) of niet verdoofd (donkere balken) wanneer Verzamelde als Maagden voordat geslachtsrijp. <img alt="Figuur 3" src="/files/ftp_upload/52645/52645fig3.jpg" /> Figuur 3. Het gemiddelde en 95% betrouwbaarheidsintervallen voor Copulation Duur voor de Drie diersoort waarmee onderzoek in Single Mannen Trials, toen Mannetjes werden verdoofd (lichtbalken) of niet verdoofd (donkere balken) wanneer Verzamelde als Maagden voordat geslachtsrijp. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Behandeling </td><td> Species </td><td> Nee trials </td><td> Nee vliegen gekleurd dat paarde </td><td> p-waarde </td><td> Nee vliegen vergast dat paarde </td><td> p-waarde </td></tr><tr><td rowspan="3"> Collectie op CO 2 </td><td> D. mel </td><td> 73 </td><td> 36 </td><td> 1 </td><td> 27 </td><td> 0,0344 </td></tr><tr><td> D. PSE </td><td>79 </td><td> 41 </td><td> 0,8221 </td><td> 44 </td><td> 0,3682 </td></tr><tr><td> D. sub </td><td> 71 </td><td> 40 </td><td> 0,3425 </td><td> 33 </td><td> 0,6353 </td></tr><tr><td rowspan="3"> Blootgesteld aan 2 18 uur CO voorafgaand </td><td> D. mel </td><td> 57 </td><td> 28 </td><td> 1 </td><td> 19 </td><td> 0,0163 </td></tr><tr><td> D. PSE </td><td> 65 </td><td> 32 </td><td> 1 </td><td> 31 </td><td> 0,8043 </td></tr><tr><td> D. sub </td><td> 68 </td><td> 38 </td><td> 0,3961 </td><td> 35 </td><td> 0,9036 </td></tr><tr><td rowspan="3"> Blootgesteld aan 2 2days co. </td><td> D. mel </td><td> 56 </td><td> 19 </td><td> 0,0222 </td><td> 32 </td><td> 0,3497 </td></tr><tr><td> D. PSE </td><td> 70 </td><td> 32 </td><td> 0,5504 </td><td> 33 </td><td> 0,7202 </td></tr><tr><td> D. sub </td><td> 56 </td><td> 29 </td><td> 0,8939 </td><td> 26 </td><td> 0,6889 &lt;/ Td&gt; </tr></tbody></table> Tabel 1. Resultaten van Two Man keuze-experimenten in alle soorten en behandelingen onderzocht. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Species </td><td> Karaktertrek </td><td> df </td><td> t-waarde </td><td> p-waarde </td></tr><tr><td rowspan="2"> D. melanogaster </td><td> Latency </td><td> 58 </td><td> 1.379 </td><td> 0,174 </td></tr><tr><td> Duur </td><td> 58 </td><td> 1.243 </td><td> 0,221 </td></tr><tr><td rowspan="2"> D. pseudoobscura </td><td> Latency </td><td> 109 </td><td> 0,419 </td><td> 0,676 </td></tr><tr><td> Duur </td><td> 109 </td><td> 0,436 </td><td> 0,664 </td></tr><tr><td rowspan="2"> D. subobscura </td><td> Latency </td><td> 83 </td><td> 0,098 </td><td> 0,922 </td></tr><tr><td> Duur </td><td> 83 </td><td> 1.767 </td><td> 0.081 </td></tr></tbody></table> Tabel 2. Resultaten van Single paring Experimenten om het effect van de collectie op de CO 2 Anesthesie op de paring Latency en duur. De tests werden uitgevoerd op drie soorten van Drosophila (D. melanogaster, D. pseudoobscura en D. subobscura) uitgevoerd.

Dit protocol beschrijft een eenvoudige, kosteneffectieve manier om individueel Drosophila of andere insecten te identificeren. Demonstratiegegevens die het succes van het paren onderzoeken over drie soorten Drosophila laten zien dat deze methode vergelijkbaar of beter is dan het gebruik van CO2 anesthesie.

Verven Insecten for Behavioral Testen: het paargedrag van verdoofde<em&gt; Drosophila</em

Mating experiments using Drosophila have contributed greatly to the understanding of sexual selection and behavior. Experiments often require simple, easy ...

Het algemene doel van deze procedure is om insecten op een niet-invasieve manier zichtbaar van elkaar te onderscheiden voor hun identificatie in gedragsexperimenten. Dit wordt bereikt door eerst het oppervlak van normaal drosophila-voedsel in een standaard vliegenbuisje zichtbaar te kleuren met enkele druppels voedingskleurstof. Vervolgens worden de vliegen gedurende drie uur aan het buisje toegevoegd, waarna de drosophila een sterke kleuring van het abdomen zouden moeten vertonen.Paringsexperimenten kunnen worden uitgevoerd om bijvoorbeeld te observeren of vrouwtjes mannetjes die in een specifieke kleur zijn geverfd aantrekkelijker vinden. Uiteindelijk is deze verftechniek een snelle, eenvoudige en niet-invasieve manier om insecten te labelen voor eenvoudige experimentele identificatie. Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden, zoals het verwijderen van een deel van de vleugel van de vlieg, is dat het sneller is, minder invasief is en minder waarschijnlijk is dat het invloed heeft op het daaropvolgende gedrag.Deze methode kan nuttig zijn in een breed scala aan experimenten waarbij het belangrijk is om individuen of klassen vliegen te identificeren. Het is bovendien eenvoudig genoeg om te worden gebruikt in eenvoudige experimenten op scholen of hogescholen. Deze techniek wordt gedemonstreerd door Rudy Verse Bo en Chloe Hayes, beiden promovendi hier aan de University of Liverpool. Nadat het voedsel is gegoten en gestold, begint u met het toevoegen van 0,5 tot 1 milliliter blauwe voedingskleurstof bovenop het voedsel; verdeel de kleurstof over het gehele oppervlak van het vial.Bewaar het voer vervolgens twee dagen bij vier graden Celsius zodat het dieet door de bovenste laag van het voer kan worden geabsorbeerd. Breng daarna de vliegen over naar het voer, afhankelijk van de behoeften van het experiment. Binnen één dag kunnen de gekleurde vliegen gemakkelijk worden onderscheiden van de niet-gekleurde vliegen om een paringsproef met de gekleurde vliegen uit te voeren.Gebruik een aspirator om individuele maagdelijke mannetjes over te brengen naar standaard plastic vials van 75 bij 20 millimeter die 20 milliliters voedsel bevatten. Indien een paringsproef met twee mannetjes wordt uitgevoerd, moeten de helft van de mannetjes in elke behandelingsgroep in vials met gekleurd voedsel worden geplaatst. Breng vervolgens pas uitgekomen vrouwtjes in groepen van 10 over naar vials met vers voedsel.Laat nu beide geslachten rijpen tot de paringsleeftijd bij de voor de soort geschikte temperatuur. Wanneer de drosophila klaar zijn, stelt u de experimentele mannetjes bloot aan de gewenste behandeling. Zo worden de andere vliegen bijvoorbeeld onder narcose gebracht met koolstofdioxide; label de vials om zowel de behandeling als de kleurstatus van de vliegen te identificeren op de dag vóór de proef.Verplaats de vrouwtjes naar individuele vials met 20 milliliters voeding om de vliegen te laten acclimatiseren aan de paringsvials, en label de vials met neutrale labels om het experiment te blinderen. Voeg vervolgens, indien passend, één of twee mannetjes toe aan elke paringsvial met één vrouwtjesvlieg.Start de paringstest gelijktijdig met het inschakelen van de lichten in de incubator voor twee mannelijke paringstesten. Zorg ervoor dat elke mannelijke vlieg uit een andere behandelgroep komt en dat één vlieg abdominale kleuring vertoont. Noteer de behandeling en de kleuring van elke mannelijke vlieg.Als de copulatie binnen twee uur plaatsvindt, wordt bij individuele paringsproeven met mannetjes de status van de dobbelsteen van het parende mannetje genoteerd. Noteer het tijdstip waarop de paring begint en eindigt. Bereken vervolgens de latentietijd voor het paringssucces en de duur van de paring voor de proef.Het beste model dat is gevonden om de variatie in het effect van koolstofdioxidenarcose te verklaren, bevat soorten als factor. In deze representatieve experimenten vertoonde koolstofdioxidenarcose bijvoorbeeld geen significant effect op het paringssucces van drosophila.Pseudo obscura en Drosophila subobscura vliegen in twee mannelijke proeven voor Drosophila melanogaster; er werd echter een significant lager paringsucces waargenomen bij mannetjes die waren blootgesteld aan koolstofdioxidenarcose, met een nog groter effect wanneer Drosophila melanogaster waren blootgesteld aan het gas tijdens de verzameling of één dag voor de proeven. Er werden geen significante verschillen in paring waargenomen bij voedselgekleurde vliegen voor 어느 van de drie soorten, noch had het opnemen van de behandeling in de analyse of de paringsstatus van de insecten in enkelvoudige paringsproeven een effect. Geen verschil in paring.Er werd latentie waargenomen bij alle drie de soorten wanneer koolstofdioxide-anesthesie werd gebruikt om onlangs uitgekomen volwassenen te verzamelen. Een effect op de paringsduur werd alleen vertoond door drosophila sub obscure vliegen wanneer zij twee dagen voor de paringstesten aan koolstofdioxide waren blootgesteld. Na het bekijken van deze video zou u een goed beeld moeten hebben van hoe u darmkleuring kunt gebruiken als een niet-invasieve techniek om uw vliegen tijdens uw experimenten te labelen.Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om elk effect van de betreffende kleurstof op de focussoort te testen. Sommige kleurstoffen kunnen toxisch zijn en bepaalde kleuren kunnen het paringssucces direct beïnvloeden. Zo kan rode voedingskleurstof bij sommige soorten een voorkeur oproepen.Hier hebben we deze kleuringstechniek gebruikt om vliegen te onderscheiden in competitieve paringsproeven. Deze methode kan echter ook worden toegepast in diverse andere experimenten waarbij vliegen individueel geïdentificeerd moeten worden, zoals assays om agressie, territoriumverdediging, voedselvoorkeur, activiteit of sociaal gedrag te evalueren.

dyeing-insects-for-behavioral-assays-mating-behavior-anesthetized

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

Drosophila melanogaster is een genetisch en gedragsmatig soepel model systeem dat is gebruikt om de moleculaire en cellulaire basis van een groot aantal belangrijke biologische processen meer dan een eeuw een begrip. Drosophila goed is benut om inzicht te krijgen in de genetische basis van vlieg gedrag.

Methoden om Assay Drosophila Gedrag

In deze video artikel beschrijven we een geautomatiseerde test om het effect van honger of verzadiging op olfactorische afhankelijke voedsel zoekgedrag meten de volwassen fruitvlieg Drosophila melanogaster.

A Single-fly test voor foerageergedrag in Drosophila

Hier presenteren we een protocol om de vermijding van gestreste individuen te kwantificeren. Dit paradigma is krachtig maar gebruiksvriendelijk en kan worden gebruikt om de invloed van genen en omgeving op een soort sociale interactie bij Drosophila melanogaster te beoordelen.

Ongecompliceerd Assay voor de kwantificering van Sociale Avoidance in Drosophila melanogaster

Dit protocol beschrijft een schaalbare individuele grooming assay techniek in Drosophila die robuuste, kwantitatieve data levert om grooming gedrag te meten. De methode is gebaseerd op het vergelijken van het verschil in ophoping van de kleurstof op de lichamen van niet-verzorgde versus geklede dieren over een bepaalde periode.

Kwantificering van Drosophila Grooming Gedrag

Dit artikel beschrijft een gedrags-test die mannetje mating drive in Drosophila melanogaste r om de motivatie te bestuderen gebruikt. Met deze methode kunnen onderzoekers gebruiken geavanceerde fly neurogenetische technieken om de genetische, moleculaire en cellulaire mechanismen die ten grondslag liggen aan deze motivatie ontdekken.

Het meten en de wijziging van Mating Drive in Male<em&gt; Drosophila melanogaster</em

We analyseren een analyse om de milieu- en genetische signalen te analyseren die invloed hebben op paringsgedrag in de vruchtvlieg Drosophila melanogaster .

Een methode om het effect van milieueisen op paring gedrag in te testen<em&gt; Drosophila melanogaster</em

Dit protocol beschrijft een Drosophila- leer- en geheugenassessie, genaamd courtship conditioning. Deze klassieke test is gebaseerd op een vermindering van mannelijk hofgedrag na seksuele afwijzing door een non-receptive premated female. Deze natuurlijke vorm van gedragsplasticiteit kan worden gebruikt om leer, kortlopend geheugen en langdurig geheugen te testen.

Drosophila Courtship Conditioning als een maat van leren en geheugen

Dit protocol beschrijft hoe een eenvoudige volwassen Drosophila-gedragsobservatiekamer te maken en hoe high-definition foto's / video's van de morfologie of het gedrag van verschillende soorten fruitvliegen in de observatiekamer te maken door middel van relatief eenvoudige en betaalbare methoden.

Een aanpasbaar high-definition beeldvormingssysteem voor gedragsstudies van drosophila-volwassenen

Autisme Spectrum Stoornis (ASS) wordt geassocieerd met verminderd sociaal en communicatief gedrag en het ontstaan van repetitief gedrag. Voor het bestuderen van de onderlinge relatie tussen ASS-genen en gedragsstoornissen in het Drosophila-model , worden in dit artikel vijf gedragsparadigma's beschreven voor het bepalen van sociale afstand, agressie, verkering, verzorging en gewenningsgedrag.

Paradigma's voor gedragsbeoordeling in het Drosophila-model van autismespectrumstoornis

Dit artikel presenteert methoden voor optogenetische manipulatie in Drosophila melanogaster, waarbij CsChrimson en GtACR2 worden gebruikt om specifieke neuronen te activeren en tot zwijgen te brengen. Er worden vier experimenten beschreven om optogenetica te gebruiken om thermotactisch en smaakgedrag te onderzoeken, en inzicht te geven in de onderliggende neurale mechanismen die deze processen beheersen.

Gedragstesten voor optogenetische manipulatie van neurale circuits in Drosophila melanogaster

Het protocol presenteert een high-throughput, kosteneffectieve methode voor het beoordelen van neurotoxiciteit in de fruitvlieg door middel van de kwantificering van locomotorische disfunctie als alternatief voor traditionele zoogdiermodellen. Het heeft tot doel de neurotoxische effecten van farmaceutische verbindingen, milieuagentia of genetische modificaties te evalueren met behulp van een gevoelig, reproduceerbaar en ethisch gunstig model.

Gedragsanalyse van locomotorische disfunctie bij Drosophila melanogaster als uitlezing voor neurotoxiciteit

Leer een niet-invasieve kleurtechniek om Drosophila te identificeren in gedragsexperimenten. Deze methode gebruikt voedselkleurstof en is sneller dan CO2-anesthesie.

Verven Insecten for Behavioral Testen: het paargedrag van verdoofde

Meer video's verkennen