2 oktober 2015
Er wordt een methode beschreven voor het implanteren van elektroden in de subthalamische nucleus (STN) van ratten. Betere lokalisatie van de STN werd bereikt door het gebruik van een micro-opnamesysteem. Verder wordt een stimulatie-opstelling gepresenteerd die wordt gekenmerkt door langdurige verbindingen tussen het hoofd van het dier en de stimulator.
Het algemene doel van deze procedure is om een opnamegeleide implantatie van micro-elektroden in de nucleus subthalamicus van ratten uit te voeren, en vervolgens een langdurige stimulatie van deze nucleus. Dit wordt bereikt door eerst een elektrodegat te boren door de blootgestelde schedel. De tweede stap is om de elektrode door het elektrodegat in de hersenen te brengen, en tegelijkertijd de elektrische activiteit in verschillende hersengebieden op te nemen totdat de specifieke activiteit van de STN detecteerbaar is.
Vervolgens wordt de elektrode gefixeerd door tandheelkundig cement rond de elektrodestang aan te brengen, en wordt de hoofdplug aan de elektrodepen bevestigd. De laatste stap is om de plug met tandheelkundig cement te fixeren en deze te verbinden met de draad die naar de stimulator leidt. Uiteindelijk wordt de geoogste hersenen in stukjes van acht micrometer dik gesneden en gekleurd met hemat, toin en eoin om te laten zien dat de punt van de elektrode in de nucleus subthalamicus is geplaatst.
Het belangrijkste voordeel van deze techniek ten opzichte van bestaande methoden zoals een blinde elektrode-implantatie, is dat de opnamegeleide implantatie van micro-elektroden de targeting van de nucleus subthalamicus met hoge nauwkeurigheid verbetert. Dierproeven werden goedgekeurd door de Universiteit van Burg en de wettelijke overheidsinstanties en werden uitgevoerd volgens de aanbevelingen voor onderzoek in experimentele beroertestudies en de huidige dierproefverslagen van in vivo-experimenten. De richtlijnen beginnen met het verdoven van de rat in een inductiekamer met lucht die met twee liter per minuut wordt afgegeven en isoflurine met 3,5%. Verwijder de rat uit de inductiekamer en scheer het gebied tussen de oren en de ogen. Gebruik een wattenstaafje gedrenkt in antiseptische oplossing om het geschoren gebied te deppen.
Om eventueel loszittend haar te verwijderen, schakel de luchtstroom over naar de neuskoker en pas de anesthesie aan op 2,5% Isoflurine met een stroomsnelheid van één liter per minuut. Plaats de rat op de neuskoker en plaats deze in het stereotactische frame. Controleer het niveau van anesthesie door in het interdigitale gebied te knijpen.
Als de rat voldoende verdoofd is, worden de verdedigingsreflexen afgeschaft. Breng vetzalf aan op de ogen om uitdroging tijdens de anesthesie te voorkomen. Monitor en houd de lichaamstemperatuur van de rat op 37 graden Celsius.
Injecteer 0,2 milliliter mepivacaïne subcutaan in het midden van het geschoren gebied om het chirurgische gebied te verdoven en zorg ervoor dat vanaf dit punt de steriliteit wordt gehandhaafd. Gebruik een scalpel om een middenlijnsnede te maken die begint tussen de oren en zich voorwaarts uitstrekt voor ongeveer twee centimeter. Zorg ervoor dat het periosteum ook wordt ingesneden en leg vervolgens de schedel bloot met vier klemmen.
Gebruik een wattenstaafje om voorzichtig het periosteum te verwijderen totdat de coronale en sagittale suturen zichtbaar zijn. Stam eventueel bloed met wattenwol. Bevestig een naald op een sondehouder en markeer vervolgens het puntje van de naald met een zwarte viltstift.
Gebruik de anterieure achterste midline laterale en dorso-ventrale aandrijfschroeven. Plaats het puntje van de naald direct boven bgma. Neem de AP en ML veneerschaal metingen.
Trek 3,6 millimeter af van de AP-meting en 2,5 millimeter van de ML-meting voor elektrode-implantatie in de rechter STN. Laat het puntje van de naald zakken tot het oppervlak van de schedel om de injectieplaats te markeren met de kleurstof van de viltstift, klemp de tandboor op de grote sondehouder van het stereotactische instrument. Verplaats de tandboor naar het gemarkeerde punt op de schedel en boreer terwijl u door de microscoop kijkt een gat van ongeveer één millimeter diameter door de schedel tot de dura zichtbaar wordt.
Dit is het gat voor de elektrode. Trek de dura terug met microdissectietang of een steriele naald, omdat de dura sterk genoeg is om het puntje van de elektrode te vernietigen. Boor een gat met de tandboor in elk frontaal squama en in het pariëtale squama tegenover het gat voor de elektrode.
Daarna boor een gat in elk interpariëtaal squama. Schroef een botschroef in elk van de vijf gaten. Vermijd het schroeven te diep, wat druk op de hersenen zal uitoefenen.
Het aantal omwentelingen hangt af van de draadstap van de schroef. Hier worden twee tot drie omwentelingen van elke schroef gebruikt. Ontkoppel de sondehouder van het stereotactische instrument en klemp de sondehouder met de elektrode in de micromanipulator.
Gebruik de AP ML en DV aandrijfschroeven om de sondehouder met de elektrode te verplaatsen totdat het puntje bijna Breg ma raakt. Noteer de AP ML en DV veneerschaal metingen bij breg ma. Vervolgens heft u de elektrode enkele millimeters op om te voorkomen dat de elektrode het schedeloppervlak bekrast tijdens beweging.
Om de coördinaten van de positie te bepalen waar de elektrode in het gat moet worden geplaatst, voegt u 3,6 millimeter toe aan de AP-meting en voegt u 2,5 millimeter toe aan de ML-meting. Gebruik de AP en ML aandrijfschroeven om de elektrode naar de berekende positie te verplaatsen. Op dit punt moet het puntje van de elektrode zich direct boven het geboord elektrodegat bevinden.
Kijk vervolgens door de microscoop en laat de elektrode zakken tot het niveau van de dura. Noteer dit als nul in de DV-richting. Breng vervolgens voorzichtig het puntje van de elektrode in de hersenen in.
Kijk terwijl door de microscoop en verbind de elektrodepen met de connector van het opnamesysteem. Aard het stereotactische instrument met de tegengewicht van de kamer. Plaats vervolgens een Faraday-kooi over de rat in het stereotactische instrument in plaats van een Faraday-kooi.
Je kunt ook aluminiumfolie gebruiken zoals hier getoond, omdat het effect hetzelfde is als dat van een Faraday-kooi. Start het opnamesysteem indien beschikbaar. Gebruik een luidspreker om een akoestisch signaal van ontladingen van enkele eenheden te verkrijgen
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel beschrijft een methode voor het implanteren van elektroden in de nucleus subthalamicus (STN) van ratten, waarbij een micro-registratiesysteem wordt gebruikt voor een betere lokalisatie. De procedure maakt langdurige stimulatie van de STN mogelijk na een nauwkeurige plaatsing van de elektroden.
Precieze targeting van diepe hersenkernen is cruciaal voor mechanistische studies in neuromodulatieonderzoek. Deze methode maakt een nauwkeurige plaatsing van elektroden in de nucleus subthalamicus van ratten mogelijk, ter ondersteuning van langetermijnstimulatiestudies die bijdragen aan targetvalidatie en circuitinterrogatie in preklinische modellen van bewegingsstoornissen. De aanpak verhoogt het voorspellende vertrouwen door off-target effecten te verminderen en de reproduceerbaarheid bij onderzoeken naar het werkingsmechanisme van DBS te verbeteren.
De methode past binnen het ontdekkingscontinuüm van targetidentificatie via mechanistische validatie tot preklinische efficiëntietesten, in het bijzonder voor neuromodulatiebenaderingen die gericht zijn op motorische circuits.