Name: Fluorescentie en Bioluminescentie beeldvorming van Subcellulaire Ca 2+ In Aged hippocampus Neuronen (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 24 s
Description: Leer fluorescerende en bioluminescente beeldvorming van cytosolische en mitochondriale calcium in langdurige culturen van rattenhippocampusneuronen. Deze methode helpt onderzoekers calciumremodellering en excitotoxiciteit in verouderende neuronen te bestuderen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Dit werk werd ondersteund door Ministerio de Economía y Competitividad (BFU2012-37146) en Junta de Castilla y León (BIO103/VA45/11, VA145U13 en BIO/VA33/13), Spanje. MCR werd ondersteund door Junta de Castilla y León (Spanje) en het Europees Sociaal Fonds. We danken de overleden Dr. Philippe Brélet (1947-2013) voor het mitochondriale GFP Aequorin plasmid.

Ethiek Verklaring: Procedure waarbij proefdieren zijn behandeld in het kader van protocollen door de Valladolid University stallen faciliteit goedgekeurd in overeenstemming met de Europese Conventie 123 / Raad van Europa en Richtlijn 86/609 / EEG. 1. korte en lange termijn Cultuur van Rat hippocampus Neuronen <ol><li> Bereiding van poly-D-lysine beklede, 12 mm dekglaasjes. <ol><li> Steriliseren 12 mm diameter glazen dekglaasjes in ethanol gedurende tenminste 24 uur. Laat ze drogen onder steriele omstandigheden. </li><li> Verdeel de dekglaasjes op een strook van parafilm in een petrischaal. Bedek het oppervlak van elk dekglaasje met 200 ui 1 mg / ml poly-D-lysine. Laat behandelen O / N. </li><li> De volgende dag was de dekglaasjes met dubbel gedestilleerd steriel water om de 15 minuten gedurende 90 min onder steriele omstandigheden. </li><li> Vul een vier-goed multidish plaat met 500 ul van Neurobasal Cultuur Medium per putje. Neurobasal Cultuur Medium moet worden aangevuld met10% foetaal runderserum, 2% B27, 1 ug / ml gentamicine en 2 mM L-glutamine. </li><li> Plaats de dekglaasjes in de multidish plaat. Handhaaf ze in een bevochtigde 37 ° C en 5% CO 2-incubator tot gebruik. </li></ol></li><li> Isolatie van hippocampale neuronen van neonatale ratten. <ol><li> Bereid 1,8 ml papaïne oplossing (rechtstreeks aangekocht) in een flesje (20 ul / ml) onder steriele omstandigheden: Aan een uiteindelijke concentratie van 20 ul vinden / ml ongeveer 40 ul papaïne voeg in 1,8 ml Hank&#39;s plus 0,6% BSA (pi worden berekend afhankelijk van de leverancier omstandigheden). Hank&#39;s 0,6% BSA wordt bereid door 85 ml HBSS medium met 15 ml van 4% runderserumalbumine (BSA, bereid oplossen van 4 g BSA in 100 ml HBSS). Bereid in een steriele kap. </li><li> Incubeer de papaïne in Hank plus 0,6% BSA gedurende 30 minuten bij 37 ° C vóór gebruik. Filtreer de oplossing met behulp van een 0,22 urn filter vóór gebruik. </li><li> Bereid Ham&#39;s F-12 medium door toevoeging van Dulbecco&#39;sGemodificeerd Eagle&#39;s Medium poeder (13,5 g per L) in 900 ml dubbel gedestilleerd steriel water. Voeg dan 6 g HEPES en 336 mg NaHCO3 en de pH op 7,42 met behulp NaOH 4 N. Voeg steriel water om een 1 L oplossing te verkrijgen en filteren met behulp van een 0,20 um polyethersulfon (PES) dop filter. Draag deze werkwijze in een steriele kap. Tenslotte verzadigen van de oplossing met CO 2 onder steriele omstandigheden vóór gebruik. Store-oplossingen bij 4 ºC en gebruik ze gekoeld. </li><li> Euthanaseren pasgeboren (P0) pups rat door onthoofding en was het hoofd in steriele HBS medium. Open de schedel met de hulp van een steriele schaar. Pak de hersenen met een spatel en al snel was het in Ham&#39;s F-12 medium. </li><li> Voeg een diagonale snede met behulp van een scalpel in elk halfrond (Figuur 1B), en dragen een petrischaal met Ham&#39;s F-12 medium. </li><li> Teruggooi hersenvliezen voorzichtig met de hulp van dissectie pincet en onder een vergrootglas. </li> &lt;li&gt; Identificeer de hippocampus in een karakteristiek concave locatie over de cortex met behulp van vergrootglas. Dan scheiden de hippocampus van de cortex door voorzichtig te trekken van de ene grens en te verwijderen uit zijn positie met het oog schaar. </li><li> Breng de hippocampus weefsel van een 4-wells plaat gevuld met steriele Hank&#39;s medium zonder Ca2 + en Mg2 + plus 0,6% BSA en wassen hippocampus weefsel. Zonder het verwijderen van de media snijden het weefsel in kleine stukjes (ongeveer 2 x 2 mm) met dezelfde oog schaar. </li><li> Overdracht hippocampus stukken aan een flesje dat 1,8 ml pre-gefiltreerde papaïne oplossing. Broeden ze dan bij 37 ° C met af en toe, zacht schudden. 15 min later, voeg 90 ul DNase I-oplossing (50 ug / ml eind) en incubeer gedurende 15 extra minuten. </li><li> Breng het weefsel een 10 ml centrifugebuis en was de fragmenten vers Neurobasal kweekmedium. Verkrijgen celsuspensie door het passeren van weefsel fragmenten door een 5 ml plastic pipette. </li><li> Centrifugeer celsuspensie bij 160 xg gedurende 5 min. Verwijder het supernatant met een plastic steriele Pasteur pipet en zorgvuldig schorsen pellet met 1 ml geautomatiseerd pipet in 1 ml Neurobasal kweekmedium. </li><li> Meet celdichtheid met behulp van een Neubauer telkamer. Zet het glas dekglaasje over de Neubauer kamer. Voeg 10 ul celsuspensie. Zorg ervoor dat de cel schorsing komt de kamer gelijkmatig en maken geen bubbels. Tel het aantal cellen onder de microscoop en de bijbehorende berekeningen een geschikte druppel 40-80 gl bevattende 30 x 10 3 cellen te verkrijgen. Het totale aantal cellen zal afhangen van het aantal gebruikte dieren. </li></ol></li><li> Op korte termijn en op lange termijn de cultuur van de rat hippocampale neuronen. <ol><li> In de vier-well multidish plaat met 500 pl kweekmedium Neurobasal toegericht en in de incubator, plaat bleef ongeveer 30 x 10 3 cellen in een daling van ongeveer 50 pi aan elkputje van de multidish plaat met een poly-D-lysine-gecoate, 12 mm diameter glazen dekglaasje. </li><li> Handhaaf primaire hippocampale cellen in een bevochtigde 37 ° C en 5% CO2 incubator gedurende 2-5 dagen in vitro (DIV korte termijn, jonge culturen) of&gt; 15 DIV (lange termijn, leeftijd kweken) voor experimenten zonder de kweek media. </li></ol></li></ol> 2. Fluorescentie Imaging van cytosolische Ca 2+ Concentratie <ol><li> Bereiding van de testoplossingen voor fluorescentiebeeldvorming. <ol><li> Bereid een externe HEPES-gebufferde zoutoplossing (HBS) oplossing die in mM: NaCl 145, KCl 5, MgCl2 1, CaCl2 1, 10 glucose, natrium-HEPES 10 (pH 7,42). </li><li> Bereid een externe, Mg2 + -vrij, HEPES-gebufferde zoutoplossing (HBS) oplossing die in mM: NaCl 146, KCl 5, CaCl2 1, glucose 10 en 10 HEPES (pH 7,42). </li><li> Los NMDA in Mg 2+ -vrij, HEPES-gebufferde zoutoplossing (HBS) bij een final concentratie van 100 uM en aan te vullen met 10 uM glycine. </li><li> Bereid een HBS oplossing van KCl in plaats van NaCl door het oplossen (in mM) KCl 145, MgCl2 1, CaCl2 1, glucose 10 en 10 HEPES (pH 7,42). </li></ol></li><li> Laden van hippocampus cellen met fluorescerende calcium probe fura2 / AM. <ol><li> Neem de celkweek met dekglaasjes van de incubator en was ze met HBS medium bij RT door ze naar een nieuwe vier-en multidish plaat met 500 ul HBS per putje. </li><li> Incubeer de cellen met fura2 / AM 4 uM (bereid op dezelfde HBS medium) gedurende 60 min bij kamertemperatuur (25 ° C) op een donkere plaats. </li><li> Na 60 min, wassen dekglaasjes met verse HBS medium. </li></ol></li><li> Het opnemen van fluorescentie beelden van cytosolisch [Ca 2+] in gekweekte cellen. <ol><li> Zet de lamp, microscoop, perfusie-systeem, fluorescentie camera en computer. </li><li> Plaats de dekglaasjes in een thermostaat platform vooropenen 12 mm dekglaasjes op het stadium van het omgekeerde microscoop en selecteer een microscopisch veld met een 40x objectief (olie, NA: 1,3). Perfuseren cellen continu met voorverwarmde (37 ºC) HBS medium in afwezigheid of aanwezigheid van teststoffen. Handhaaf de stroom bij een snelheid van ongeveer 5-10 ml / min. Opmerking: Cel perfusie systeem voor levende cellen wordt in een thermostaat platform voor de open 12 mm dekglaasjes gemonteerd. 8-lijnen zwaartekracht aangedreven perfusie systeem uitgerust met een klep controller wordt gebruikt om de oplossingen te perfuseren. Een vacuümpomp is verantwoordelijk voor het verwijderen van overtollige medium. Oplossingen worden verwarmd met behulp van een in-buis verwarmingssysteem. </li><li> Leg een achtergrondafbeelding met de sluiter gesloten beide golflengten. </li><li> Epi-verlichten cellen afwisselend bij 340 en 380 nm. Neem uitgestraalde licht bij 520 nm elke 5-10 seconden met een fluorescentie camera, welke werd gefiltreerd door een Fura-2 dichroïsche spiegel. </li><li> Wanneer de opname periode is voltooid, slaan de volledige sequentie of images geëmitteerd bij 520 nm in de computer voor verdere analyse. </li></ol></li><li> Analyse van de geregistreerde fluorescente afbeeldingen. <ol><li> Open het experiment bestand. Met behulp van de aquacosmos software, klik op &#39;Ratio&#39; en kies de gewenste verhouding bereik. Bereken de pixel voor pixel verhouding in de beelden teneinde een reeks van afbeeldingen verhouding te verkrijgen. </li><li> Aftrekken achtergrond door het aanpassen van de &#39;achtergrond eliminatie&#39;. Druk op &#39;start berekening&#39;. </li><li> Druk op &#39;allen tijde volgorde&#39; knop en wissen van de oude regio&#39;s van belang (ROI). Voor de kwantitatieve analyse van individuele cellen, vestigen nieuwe gebieden van belang of ROI overeenkomt met individuele neuronen. Gemiddelde verhouding alle waarden in elke pixel overeenkomt met elke ROI en elk beeld een registratie van verhouding fluorescentiewaarden individuele ROI (cellen) te verkrijgen. </li><li> Aan de individuele opnames grafiek de verhouding fluorescentie waarden overeenkomen met elke ROI te exporteren naar een grafische progreen M. </li><li> Maak de overeenkomstige berekening voor het schatten van de omvang van de stijging van de verhouding fluorescenties voor iedere stimulatie met een geschikte data-analyse en grafische software. </li></ol></li></ol> 3. Bioluminescentie beeldvorming van mitochondriaal Ca 2+ Concentratie <ol><li> Transfectie van gekweekte hippocampale neuronen bij de mitGAmut plasmide. Opmerking: De cellen worden eerst getransfecteerd met het plasmide dat een mitGAmut-mitochondriën gerichte gemuteerde sequentie en een aequorine ontbreekt een Ca2 + bindingsplaats gefuseerd met het green fluorescent protein (GFP). Deze constructie detecteert grote stijging van mitochondriale Ca2 + opname en maakt de identificatie van getransfecteerde cellen door de GFP fluorescentie. Het plasmide werd ontwikkeld en vriendelijk verschaft door P. Brulet en medewerkers 18 (CNRS, Parijs). <ol><li> Bereid Neurobasal TF, met Neurobasal Cultuur Medium, ontbreekt foetaal runderserum, B27, gentamicin en 2 mM L-glutamine. </li><li> Bereid 50 pi Neurobasal TF plus 2,5 ul transfectie reagens in een flesje (oplossing A). Bereid 50 pi Neurobasal TF plus 4 ug plasmide mitGAmut in een flesje (oplossing B). Voeg voorzichtig oplossing B over oplossing A. Laat het mengen gedurende 20 min, zonder schudden. </li><li> Breng de dekglaasjes met hippocampale neuronen nieuwe multidish platen die 200 pl vers Neurobasal TF. </li><li> Druppel voor druppel toe te voegen 100 ul oplossing A + B over elke dekglaasje. Incubeer gedurende 30 min. Verwijder het medium. Eenmaal cellen met verse Neurobasal TF wassen. Zet de dekglaasjes naar de oorspronkelijke Neurobasaal kweekmedium. </li><li> Culture neuronen nog eens 24 uur bij 37 ° C en 5% CO 2 na transfectie efficiënte expressie en richten van de probe mogelijk maken. </li></ol></li><li> Bereiding van testoplossingen voor bioluminescentie beeldvorming. <ol><li> Bereid HBS oplossingen bevattende 100 pM NMDA of 145 mM KCl alshierboven (stap 2,1). Bereid HBS oplossing die 10 mM Ca2 + plus 100 pM digitonine. </li></ol></li><li> Reconstructie van mitochondriën gerichte aequorine met coelenterazine n. <ol><li> Overdracht dekglaasjes die getransfecteerde hippocampale neuronen vier-wells plaat met 200 ul HBS. </li><li> Voeg 4 pi coelenterazine n (200 uM) aan 200 gl HBS voor een eindconcentratie van 4 uM en meng voorzichtig. Incubeer 2 uur bij kamertemperatuur (25 ° C) en in het donker. </li></ol></li><li> Het opnemen van bioluminescentie beelden van mitochondriaal [Ca 2+]. <ol><li> Schakel de microscoop, de lamp, het perfusie systeem, bioluminescentie camera en computer. </li><li> Transfer opgelost dekglaasjes een thermostaat is (37 ºC) perfusie kamer en perfuseren continu met voorverwarmd HBS oplossing met een snelheid van 5-10 ml / min. </li><li> Met behulp van een 40X objectief (olie, NA: 1,3), selecteer een microscopisch veld bevat cellen die het eenpoaequorins zoals blijkt uit fluorescentie-emissie geassocieerd met expressie van groen fluorescent eiwit (GFP) met de FITC filters. Een typisch veld kan 1-2 getransfecteerde cellen bevatten. Leg beeld GFP fluorescentie, met behulp van een CCD-camera. </li><li> Schakel de microscoop licht. Verwijder de-dichroïsch met doos in het licht pad. Schakel het excitatielicht en sluit het donker-doos voor volledige duisternis. </li><li> Perfuseren cellen bij 5-10 ml / min met HBS medium met of zonder testoplossingen voorverwarmd op 37 ° C. </li><li> Leg fotonische emissie beelden elke 10 seconden met een foton-tellende camera behandeld met een beeldprocessor. </li><li> Aan het einde van elk experiment permeabilize cellen met 0,1 mM digitonine in 10 mM CaCl 2 in HBS om alle resterende fotonische stoffen afgeven. Opmerking: Deze fotonische emissies worden opgeteld om de totale fotonische emissies, een waarde die voor kalibratie in Ca2 + concentraties schatten &lt;./ li&gt; <li> Store bioluminescentie beelden in de computer met een afbeelding van de GFP bijbehorende fluorescentie voordat het foton tellen beeldvorming gevangen. </li></ol></li><li> Analyse van bioluminescentie beelden reflecteren mitochondriaal [Ca 2+]. <ol><li> Kwantificeren fotonische uitstoot met behulp van specifieke software. Fotonische emissies kunnen worden omgezet mitochondriale vrije Ca2 + -concentratie ([Ca2 +] mit) met de werkwijze beschreven door Brini et al. 15 algoritme. </li><li> Open het beeld dat de GFP-fluorescentie experiment. Select gebieden van belang (ROI) met behulp van specifieke software door het tekenen van de vorm van de getransfecteerde cellen volgens de fluorescentiebeelden vastgelegd aan het begin van het experiment. </li><li> Plak dezelfde ROI op elk beeld. Totaal fotonische emissies per ROI wordt berekend met specifieke software voor de luminescentie emissiewaarde (L) voor elke cel op elk punt in de tijd. </li><li> Tel alle fotonische Emissionen in de bioluminescentie beelden, met inbegrip van die verkregen na permeabilisatie digitonine, met de specifieke software voor bioluminescentie beeld met alle fotonische-emissies. </li><li> Export waarden van fotonische emissie voor elke regio van belang zijn voor een specifieke software voor de berekeningen. Om dit te doen, klikt u op &#39;Grafiek&#39; om de bioluminescentie waarden te berekenen voor elke ROI op elk tijdstip. Selecteer &#39;totale waarde&#39; en &#39;gebruik van de huidige ROI om alle beelden. Druk op &#39;berekenen&#39;. Sla de &#39;txt.file&#39; en exporteren naar een werkblad. Voor elke ROI, [Ca 2+] mit wordt berekend met het volgende algoritme: [Ca 2+] (M) = [R + (R · K TR) - 1] / [K R - (R · K R)]; waar, R = [L / (L totaal λ)] 1 / n L is de geëmitteerde luminescentie ten tijde van de meting in elk gebied van belang. L totaal isde totale resterende na toevoeging van de in het weefsel op dat moment op het tijdstip van de meting voor elk gebied van belang tellingen luminescentie. λ, TR K, K R en n constanten zijn waarvan de waarden afhankelijk combinatie van aequorine (wildtype of gemuteerd) en coelenterazin gebruikt (wild type of n-type) en de opname 16 temperatuur. Voor de combinatie gebruikt hier (gemuteerd AEQ en coelenterzine n), bij 37 ºC, gebruikten we de volgende waarden: K R = 8.47 x 10 7, K TR = 165,6 x 10 3, n = 1204 en λ = 0138. </li></ol></li><li> Maak de overeenkomstige berekening voor het schatten van de omvang van de stijging van bioluminescentie voor iedere stimulus met een geschikte data-analyse en grafische software. </li></ol>

<ol><li>Sattler, R., Tymianski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+mechanisms+of+glutamate+receptor-mediated+excitotoxic+neuronal+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Molecular mechanisms of glutamate receptor-mediated excitotoxic neuronal cell death.</a> Molecular Neurobiology. 24 (1-3), 107-129 (2001).</li>
<li>MacDermott, A. B., Mayer, M. L., Westbrook, G. L., Smith, S. J., Barker, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NMDA-receptor+activation+increases+cytoplasmic+calcium+concentration+in+cultured+spinal+cord+neurones%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">NMDA-receptor activation increases cytoplasmic calcium concentration in cultured spinal cord neurones.</a> Nature. 321 (6069), 519-522 (1986).</li>
<li>Choi, D. W., Maulucci-Gedde, M., Kriegstein, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutamate+neurotoxicity+in+cortical+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Glutamate neurotoxicity in cortical cell culture.</a> The Journal of Neuroscience. 7 (2), 357-368 (1987).</li>
<li>Kure, S., Tominaga, T., Yoshimoto, T., Tada, K., Narisawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutamate+triggers+internucleosomal+DNA+cleavage+in+neuronal+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+and+Biophysical+Research+Communications%22%5BJournal%5D)">Glutamate triggers internucleosomal DNA cleavage in neuronal cells.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 179 (1), 39-45 (1991).</li>
<li>Calvo, M., Sanz-Blasco, S., Caballero, E., Villalobos, C., Nunez, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Susceptibility+to+excitotoxicity+in+aged+hippocampal+cultures+and+neuroprotection+by+non-steroidal+anti-inflammatory+drugs%3A+role+of+mitochondrial+calcium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurochemistry%22%5BJournal%5D)">Susceptibility to excitotoxicity in aged hippocampal cultures and neuroprotection by non-steroidal anti-inflammatory drugs: role of mitochondrial calcium.</a> Journal of Neurochemistry. 132 (4), 403-417 (2015).</li>
<li>Liu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NMDA+receptor+subunits+have+differential+roles+in+mediating+excitotoxic+neuronal+death+both+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">NMDA receptor subunits have differential roles in mediating excitotoxic neuronal death both in vitro and in vivo.</a> The Journal of Neuroscience. 27 (11), 2846-2857 (2007).</li>
<li>Zhou, M., Baudry, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+changes+in+NMDA+neurotoxicity+reflect+developmental+changes+in+subunit+composition+of+NMDA+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Developmental changes in NMDA neurotoxicity reflect developmental changes in subunit composition of NMDA receptors.</a> The Journal of Neuroscience. 26 (11), 2956-2963 (2006).</li>
<li>Brewer, L. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+vulnerability+of+hippocampal+neurons+with+age+in+culture%3A+temporal+association+with+increases+in+NMDA+receptor+current%2C+NR2A+subunit+expression+and+recruitment+of+L-type+calcium+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Increased vulnerability of hippocampal neurons with age in culture: temporal association with increases in NMDA receptor current, NR2A subunit expression and recruitment of L-type calcium channels.</a> Brain Research. 1151, 20-31 (2007).</li>
<li>Berridge, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+signalling+remodelling+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+Society+Transactions%22%5BJournal%5D)">Calcium signalling remodelling and disease.</a> Biochemical Society Transactions. 40 (2), 297-309 (2012).</li>
<li>Stout, A. K., Raphael, H. M., Kanterewicz, B. I., Klann, E., Reynolds, I. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutamate-induced+neuron+death+requires+mitochondrial+calcium+uptake%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Glutamate-induced neuron death requires mitochondrial calcium uptake.</a> Nature Neuroscience. 1 (5), 366-373 (1998).</li>
<li>Pivovarova, N. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Excitotoxic+calcium+overload+in+a+subpopulation+of+mitochondria+triggers+delayed+death+in+hippocampal+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Excitotoxic calcium overload in a subpopulation of mitochondria triggers delayed death in hippocampal neurons.</a> The Journal of Neuroscience. 24 (24), 5611-5622 (2004).</li>
<li>Morris, R. G., Garrud, P., Rawlins, J. N., O'Keefe, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Place+navigation+impaired+in+rats+with+hippocampal+lesions%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions.</a> Nature. 297 (5868), 681-683 (1982).</li>
<li>Geinisman, Y., Detoledo-Morrell, L., Morrell, F., Heller, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+markers+of+age-related+memory+dysfunction%3A+behavioral%2C+electrophysiological+and+morphological+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Neurobiology%22%5BJournal%5D)">Hippocampal markers of age-related memory dysfunction: behavioral, electrophysiological and morphological perspectives.</a> Progress in Neurobiology. 45 (3), 223-252 (1995).</li>
<li>Sodero, A. O., Weissmann, C., Ledesma, M. D., Dotti, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+stress+from+excitatory+neurotransmission+contributes+to+cholesterol+loss+in+hippocampal+neurons+aging+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiology+of+Aging%22%5BJournal%5D)">Cellular stress from excitatory neurotransmission contributes to cholesterol loss in hippocampal neurons aging in vitro.</a> Neurobiology of Aging. 32 (6), 1043-1053 (2011).</li>
<li>Brini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transfected+aequorin+in+the+measurement+of+cytosolic+Ca2%2B+concentration+%28%5BCa2%2B%5Dc%29.+A+critical+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Transfected aequorin in the measurement of cytosolic Ca2+ concentration ([Ca2+]c). A critical evaluation.</a> The Journal of Biological Chemistry. 270 (17), 9896-9903 (1995).</li>
<li>Villalobos, C., Alonso, M. T., Garcìa-Sancho, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioluminescence+imaging+of+calcium+oscillations+inside+intracellular+organelles%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Bioluminescence imaging of calcium oscillations inside intracellular organelles.</a> Methods in Molecular Biology. 574, 203-214 (2009).</li>
<li>Villalobos, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Redistribution+of+Ca2%2B+among+cytosol+and+organella+during+stimulation+of+bovine+chromaffin+cells%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Redistribution of Ca2+ among cytosol and organella during stimulation of bovine chromaffin cells.</a> FASEB Journal. 16, 343-353 (2002).</li>
<li>Rogers, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+local+Ca2%2B+dynamics+with+genetically+encoded+bioluminescent+reporters%5BTitle%5D)+AND+%22The+European+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Visualization of local Ca2+ dynamics with genetically encoded bioluminescent reporters.</a> The European Journal of Neuroscience. 21 (3), 597-610 (2005).</li>
<li>Barreto-Chang, O. L., Dolmetsch, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium+imaging+of+cortical+neurons+using+Fura-2+AM%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Calcium imaging of cortical neurons using Fura-2 AM.</a> Journal of Visualized Experiments. (23), 1067(2009).</li>
</ol>

Geen van de auteurs heeft concurrerende of tegenstrijdige belangen.

De herinrichting van intracellulaire Ca2 + homeostase in het ouder wordende hersenen is gerelateerd aan cognitieve verliezen, verhoogde gevoeligheid voor ischemische schade, excitotoxiciteit en neurodegeneratie. Om deze hypothese in vitro onderzoeken, Ca 2+ beeldvormende procedures beschikbaar. Helaas, levensvatbare kweken van hippocampale neuronen oude niet betrouwbaar. Recentelijk is waargenomen dat langdurige culturen van de rat hippocampale neuronen onderhavige veel van de typische ken...

Excitotoxiciteit is een van de belangrijkste mechanismen die bijdragen aan neuronale schade en celdood in neurologische beledigingen zoals ischemie, en in sommige neurodegeneratieve ziekten zoals de ziekte van Alzheimer 1. Dit type neurotoxiciteit wordt voornamelijk gemedieerd door glutamaat handelen over Ca 2+ -doorlaatbare, ionotrope NMDA-receptoren (NMDAR) 2. Blootstelling van gekweekte neuronen glutamaat excitotoxiciteit kan tot 3, waarbij neuronale apoptose 4 veroorzaakt. Wij en anderen hebben eerder gemeld dat neuronale gevoeligheid voor NMDA-geïnduceerde apoptose kan veranderen in vitro ontwikkeling en veroudering 5-8. Het is algemeen aanvaard dat een toename van de vrije cytosolische Ca2 + -concentratie ([Ca2 +] cyt) leidt tot activatie cellen. Als dit echter aanleiding te hoog is en / of voldoende duurzame, kan celdood 9 leiden. Bovendien is voorgestelddat excitotoxiciteit vereist mitochondriale Ca2 + opname 10, aangezien het behandelen neuronen met een mitochondriale ontkoppelaar beschermd neuronen tegen door glutamaat geïnduceerde celdood 11. Indien mitochondriën te veel Ca2 +, kan de opening van de mitochondriale permeabiliteittransitieporie plaatsvinden, waardoor los van cytochroom C en andere pro-apoptotische factoren, en het induceren van apoptose. We hebben onlangs aangetoond dat mitochondriële Ca2 + opname direct gerelateerd aan de leeftijd afhankelijke gevoeligheid voor excitotoxiciteit, door direct meten van NMDA-geïnduceerde mitochondriale Ca2 + opname in enkele hippocampale neuronen 5, een werkwijze die is beschreven in dit artikel. De hippocampus, die betrokken zijn bij fysiologische processen zoals leren, geheugen en andere cognitieve processen 12, zeer gevoelig voor veroudering en neurodegeneratieve aandoeningen 13. Voorgesteld is dat, na een aantal weken in vitro gekweekthippocampale neuronen tonen een aantal typische kenmerken van oude neuronen 14. Dienovereenkomstig kan op lange termijn gekweekte hippocampale neuronen een alomvattend model Ca 2+ gemedieerde mechanismen van verbeterde excitotoxiciteit bij veroudering onderzoeken bieden. Het algemene doel van de gepresenteerde methode is dan ook aanzienlijke veranderingen in intracellulaire Ca2 + homeostase of Ca2 + remodellering in de ouder wordende hersenen onderzoeken waaronder differentiële Ca2 + responsen opgewekt door NMDA receptor agonisten op lange-termijn gekweekte hippocampale neuronen . De werkwijze bevat een gedetailleerde beschrijving van de cultuur van rat hippocampale neuronen en de controle cytosolische en mitochondriale Ca2 + concentraties van fluorescentie en bioluminescentie beeldvorming in individuele neuronen, respectievelijk. Fluorescentiebeelvorming van cytosolisch Ca2 + in gekweekte neuronen is een standaardprocedure. Deze methode is minder betrouwbaar voor subcellulaire Ca2 + metingen zoals mitochondriale Ca2 +. Redenen hiervoor zijn onder andere het ontbreken van een goede afstemming van de synthetische probes en ongepast affiniteit voor Ca 2+ concentraties die kunnen veranderen in de mitochondriën van de lage uM niveau zelfs tot het mM niveau. Het gebruik van Ca2 + probes op basis van eiwitten zoals bijvoorbeeld aequorine, kon de targeting naar subcellulaire organellen en gebruik van derivaten verschillende Ca2 + affiniteiten met verschillende coelenterazines of gemuteerde probes ontbreekt specifieke Ca2 + bindingsplaatsen 15. Op deze wijze kan bioluminescentie beeldvorming van cellen die aequorine-mitochondriën gerichte monitoring van mitochondriale Ca2 + concentraties in individuele neuronen mogelijk te maken. Toch kan deze procedure het gebruik van fotontellende camera&#39;s of ultragevoelige CCD camera&#39;s voor bioluminescentie 16-18 vereist. Deze werkwijze kan nieuwe resultaten op die in meer establ worden bevestigdished hersenen veroudering modellen als, bijvoorbeeld, de hersenen plakjes van oude dieren.

<table><tbody><tr><td>Neurobasal Culture Medium</td><td>Gibco</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>HBSS medium</td><td>Gibco</td><td>14170-088</td><td></td></tr><tr><td>Ham's F-12 medium</td><td>Gibco</td><td>31330-038</td><td></td></tr><tr><td>DNase I (van bovien pancreas)</td><td>Sigma</td><td>D5025-15KU</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Lonza</td><td>DE14-801E</td><td></td></tr><tr><td>B27</td><td>Gibco</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin</td><td>Gibco</td><td>15750</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamine</td><td>Gibco</td><td>25030-032</td><td></td></tr><tr><td>12 mm glazen deksels</td><td>Labolan</td><td>0111520/20012</td><td></td></tr><tr><td>Papaïne</td><td>Worthington</td><td>LS003127</td><td></td></tr><tr><td>4-wels multidish plakjes</td><td>Nunc</td><td>176740</td><td></td></tr><tr><td>Petri-schotels</td><td>JD Catalan s.l.</td><td>2120044T</td><td></td></tr><tr><td>Steriele pipetten</td><td>Fisher Scientific</td><td>431030</td><td></td></tr><tr><td>Fura2-AM</td><td>Life Technologies</td><td>F1201</td><td></td></tr><tr><td>Lipofectamine2000</td><td>Invitrogen</td><td>11668-027</td><td></td></tr><tr><td>Coelenterazine n</td><td>Biotium</td><td>BT-10115-2250 uG</td><td></td></tr><tr><td>Digitonine</td><td>Sigma</td><td>D5628</td><td></td></tr><tr><td>NMDA</td><td>Sigma&nbsp;</td><td>M3262</td><td></td></tr><tr><td>Glycine</td><td>Sigma</td><td>50046</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss Axiovert S100 TV microscoop</td><td>Carl Zeiss Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Xcite verlichtingssysteem</td><td>EXFO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ORCA ER fluorescentiecamera</td><td>Hamamatsu</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VIM fotontel CCD-camera</td><td>Hamamatsu</td><td></td><td></td></tr><tr><td>VC-8 klepcontroller</td><td>Warner Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SH-27B verwarmingssysteem&nbsp;</td><td>Warner Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Aquacosmos Software</td><td>Hamamatsu Photonics</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

fluorescentie en bioluminescentie beeldvorming van subcellulaire ca<sup&gt; 2+</sup&gt; in aged hippocampus neuronen

Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons

Gevoeligheid voor neuron celdood geassocieerd met neurodegeneratie en ischemie zijn zeer toegenomen in de leeftijd van hersenen, maar mechanismen die verantwoordelijk zijn slecht bekend. Excitotoxiciteit een proces zou kunnen bijdragen aan zenuwbeschadiging veroorzaakt door zowel beledigingen wordt gemedieerd door activering van glutamaatreceptoren die Ca2 + influx en mitochondriale Ca2 + overload bevordert. Een belangrijke verandering in de intracellulaire Ca 2+ homeostase of verbouwen van de intracellulaire Ca 2+ homeostase kan neuron schade in het oude neuronen bevorderen. Voor het onderzoeken van Ca 2+ remodeling bij veroudering hebben we gebruik live cell imaging op lange termijn culturen van de rat hippocampus neuronen die lijken op sommige aspecten neuronen in vivo jaar. Voor dit doel, de hippocampus cellen, op de eerste plaats, vers verspreid van nieuwe zeepaardjes geboren rat en uitgeplaat op poli-D-lysine gecoat glas dekglaasjes. Daarna kweken worden in gecontroleerde media gedurende meerdere dagen of meerdere wEeks voor het onderzoeken van jong en oud neuronen, respectievelijk. Ten tweede worden gekweekte neuronen geladen met fura2 en onderworpen aan metingen van cytosolische Ca2 + -concentratie die digitale fluorescentieverhouding imaging. Ten derde worden gekweekte neuronen getransfecteerd met plasmiden die een tandem lage affiniteit aequorine en GFP gericht op mitochondria. Na 24 uur wordt aequorine in de cellen gereconstitueerd met coelenterazine en neuronen worden blootgesteld aan bioluminescentie beeldvorming voor monitoring van mitochondriale Ca2 + -concentratie. Dit drietrapsprocedure maakt het monitoren van cytosolische en mitochondriale Ca2 + responsen op stimuli zoals bijvoorbeeld de glutamaat receptor agonist NMDA wensen of deze en andere reacties worden beïnvloed door veroudering. Deze procedure kan nieuwe inzichten opleveren over hoe veroudering beïnvloeden cytosolische en mitochondriale Ca2 + respons op geselecteerde stimuli en het testen van de geselecteerde geneesmiddelen ter voorkoming neuronenceldood in leeftijd gerelateerde ziekten.

Hier beschrijven we een eenvoudige methode om Ca2 + remodeling en de effecten van NMDA op cytosolische en mitochondriale evalueren [Ca 2,] in oude neuronen. Figuur 1 toont het schema van de werkwijze voor het isoleren en kweken van hippocampale neuronen van neonatale ratten. Voordat u begint, moeten we steriele, poly-D-lysine gecoat glas dekglaasjes bereiden en vinden ze in een 4-goed gerecht. Vervolgens worden neonatale ratten gedood en de hersenen verwijderd. Na het isoleren van ...

Intracellulair Ca2+-remodellering bij veroudering kan bijdragen aan excitotoxiciteit en neuronbeschadiging, processen gemedieerd door Ca2+-overbelasting. We wilden Ca2+-remodellering in de verouderende hersenen onderzoeken door middel van fluorescentie- en bioluminescentie-beeldvorming van cytosolisch en mitochondriaal Ca2+ in langetermijnculturen van hippocampusneuronen van ratten, een model voor neuronale veroudering.

Fluorescentie en Bioluminescentie beeldvorming van Subcellulaire Ca<sup&gt; 2+</sup&gt; In Aged hippocampus Neuronen

Susceptibility to neuron cell death associated to neurodegeneration and ischemia are exceedingly increased in the aged brain but mechanisms responsible ...

Het algemene doel van deze procedure is om calciumremodellering in het verouderende brein te onderzoeken met behulp van fluorescentie- en bioluminescentie-imaging van cytosolisch en mitochondriaal calcium in langetermijnculturen van hippocampusneuronen van ratten, wat wordt beschouwd als een model voor neuronale veroudering. Deze methode kan helpen bij het beantwoorden van kernvragen op het gebied van veroudering, zoals de wijze waarop remodellering van intracellulair calcium bijdraagt aan excitotoxiciteit en neuronale schade, beide gerelateerd aan calciumoverbelasting. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat het mogelijk is om calciumremodellering in individuele neuronen nauwgezet te volgen met behulp van culturen met verschillende DYS in vitro vanuit hetzelfde specimen. De duplicatie van deze techniek kan worden toegepast op de therapie van een beroerte of celziekten, omdat het nieuwe variabele targets onthult die gerelateerd zijn aan calciumoverbelasting bij deze ouderdomsgerelateerde aandoeningen.Na het bekijken van deze video heeft u een goed begrip van hoe u fluorescentie- en reminiscentie-imaging van cytosolisch en mitochondriaal calcium kunt uitvoeren in korte- en langetermijnculturen van ratiale hippcampale neuronen. Om deze procedure te starten, verdeelt u de dekglasjes op een strook paraform in een Petrischaal. Breng vervolgens 200 µL poly-D-lysine van 1 mg/mL aan op elk dekglasje en laat dit een nacht inwerken.Was de volgende dag de dekglasjes elke 15 minuten gedurende 90 minuten met dubbel gedestilleerd steriel water onder steriele omstandigheden. Plaats de dekglasjes in de multi-well plaat en bewaar deze in een bevochtigde incubator bij 37 °C en 5% CO2 tot gebruik. Om de hippocampale neuronen te isoleren, wordt de schedel van de pasgeboren ratpups geopend met een steriele schaar, waarna de hersenen met een spatel worden verwijderd en snel worden gewassen in Ham's F 12-medium.Maak vervolgens met het scalpel een diagonale snede in elke hemisfeer en breng deze onder de microscoop over naar de Petrischaal met hams F 12-medium. Verwijder de hersenvliezen. Identificeer zorgvuldig de hippocampus op de kenmerkende concave locatie boven de cortex.Scheid vervolgens de hippocampus van de cortex door deze voorzichtig weg te trekken en te verwijderen met oogschaartjes. Breng daarna de stukjes hippocampus over naar een flacon met 1,8 milliliters vooraf gefilterde pepane-oplossing. Incubeer deze gedurende 15 minuten bij 37 graden Celsius met af en toe voorzichtig schudden.Voeg vervolgens 90 µL van de DNA-oplossing toe. Voeg 50 µg/mL toe en incubeer deze nog eens 15 minuten. Breng het weefsel daarna over naar een centrifugebuis van 10 mL en was de fragmenten met vers neurobasaal kweekmedium.Verkrijg een celsuspensie door de weefselfragmenten door een plastic pipet van vijf milliliter te persen. Centrifugeer de celsuspensie vervolgens vijf minuten lang bij 160 G. Verwijder daarna het supernatant met een steriele plastic Pasteurpipet en resuspendeer het pellet voorzichtig in één milliliter neurobasaal kweekmedium met een automatische pipet van één milliliter.Meet vervolgens de celdichtheid met behulp van een Neubauer-telkamer. Voeg 10 µL celisuspensie toe en tel het aantal cellen onder de microscoop. Voer daarna de bijbehorende berekeningen uit om 40 tot 80 µL celisuspensie te verkrijgen, die ongeveer 30.000 cellen bevat.In de plaat met vier putjes die 500 µL neurobasaal medium bevat, werden ongeveer 30.000 cellen in elk putje met glazen dekglas geplaatst. Bewaar deze in de incubator gedurende twee tot vijf dagen in vitro voor jonge neuronen of meer dan 15 dagen in vitro voor verouderde neuronen. In deze procedure worden de cellen gedurende 60 minuten bij kamertemperatuur in het donker geïncubeerd met fewer 2:00 AM.Breng vervolgens de dekglasjes over naar de perfusiekamer. Plaats daarna de perfusiekamer met het dekglasje in de houder op de geïnverteerde microscoop. Selecteer het microscopische veld en perfuseer de cellen continu met voorverwarmd HBS.Belicht de cellen vervolgens via epifluorescentie bij 340 en 380 nanometer. Registreer vervolgens afwisselend het uitgestraalde licht bij 520 nanometer elke vijf tot 10 seconden met een fluorescentiecamera, gefilterd door een fira two diic-spiegel. Om de geregistreerde fluorescentiebeelden te analyseren, opent u eerst het experimentbestand met de Aqua Cosmos-software, klikt u op ratio en selecteert u het gewenste ratiobereik.Bereken de pixel-voor-pixel ratio in de resulterende afbeeldingen om een reeks ratio-afbeeldingen te verkrijgen. Trek vervolgens de achtergrond eraf door de knop voor achtergrondeleminatie aan te passen. Druk daarna op start berekening.Druk vervolgens op de knop voor de volledige tijdreeks en verwijder de oude ROI's voor de kwantitatieve analyse van individuele cellen. Stel nieuwe ROI's in, of de ROI's die overeenkomen met de individuele neuronen. Om de individuele opnames te grafieken, exporteert u de ratio-fluorescentiewaarden die bij elke ROI horen naar het Origin lab-programma door op 'graph' te klikken.Klik vervolgens op berekenen en sla het TXT-bestand op. Voer daarna de overeenkomstige berekening uit om de omvang van de stijging in de fluorescentieverhouding te schatten als reactie op elke stimulatie om gekweekte neuronen te transfecteren met het MIT-mutantplasmide. Bereid eerst 50 µL van oplossing A voor, bevattend transfectiereagens, in een vial.Bereid vervolgens 50 µL van oplossing B voor, met daarin het MIT ute-plasmide, in een vial. Voeg oplossing B toe aan oplossing A en incubeer dit gedurende 20 minuten. Verplaats daarna de dekglasjes met hippocampale neuronen naar nieuwe multi-dishes die 200 µL verse neurobasale TF bevatten. Voeg vervolgens 100 µL van oplossing A en B druppel voor druppel toe over elk dekglasje en incubeer gedurende 30 minuten.Verwijder na 30 minuten het medium. Was de cellen met vers Neurobasal TF. Plaats de dekglasjes vervolgens terug in het oorspronkelijke Neurobasal-kweekmedium en kweek de cellen na transfectie gedurende 24 uur om een efficiënte expressie en targeting van de probe mogelijk te maken.Voeg vervolgens vier µL van het afdichtingsmiddel TEREZIN N toe aan 200 µL HBS om een eindconcentratie van vier µM te verkrijgen. Meng voorzichtig en incubeer gedurende twee uur bij kamertemperatuur in het donker. Breng de dekglasjes na twee uur over naar de perfusiekamer en perfuseer continu met voorverwarmde HBS-oplossing.Om de bioluminescentiebeelden van de mitochondriale calciumconcentratie vast te leggen, selecteert u het microscopische veld met de cellen die APO corin tot expressie brengen, zoals aangegeven door de fluorescentie-emissie. Zet vervolgens het microscooplicht uit. Verwijder de houder met het dichroïsche filter die zich in de lichtpad bevindt.Schakel vervolgens het excitatielicht uit en sluit de donkere box voor volledige duisternis. Perfuseer de cellen met HBS-medium, met of zonder testoplossingen die vooraf zijn voorverwarmd tot 37 °C. Leg vervolgens elke 10 seconden de fotonemissiebeelden vast met een fotontellende camera die wordt aangestuurd door een beeldprocessor.Voeg vervolgens digitonine toe om alle resterende fotonen vrij te maken. Open de GFP-fluorescentieafbeelding om bioluminescente beelden te analyseren die mitochondriale calcium weerspiegelen. Selecteer individuele ROI's door kaders rond de getransfecteerde cellen te trekken.Kopieer en plak vervolgens dezelfde ROI's op elke afbeelding van de sequentie. Schermopnames. Exporteer daarna de waarden van de fotonische emissie voor elke ROI naar de specifieke software voor berekening door op grafiek te klikken.Om de waarden voor elke ROI te berekenen, selecteert u vervolgens 'total value' en gebruikt u 'current ROI to all images'. Druk daarna op 'calculate', sla het tekstbestand op en exporteer de gegevens. Voer vervolgens de bijbehorende berekeningen uit om de omvang van de stijgingen in mitochondriaal calcium te schatten als reactie op elk getoonde stimulus.Hier zijn de representatieve brightfield- en pseudokleurbeelden van kortetermijn- en langetermijnculturen van hippocampale neuronen voor en na stimulatie met 100 µM MDA; warmere kleuren weerspiegelen een verhoogde cytosolische calciumconcentratie. Deze traceringen tonen de representatieve enkelcelmetingen van de cytosolische calciumconcentratie als reactie op 100 µM MDA in kortetermijn- en langetermijnculturen van hippocampale neuronen. Let op dat de stijgingen van de cytosolische calciumconcentratie veel groter zijn in langetermijn- dan in kortetermijngecultiveerde neuronen.In dit experiment werden gecultiveerde hippocampale neuronen getransfecteerd met de mitochondriaal getargete korine met lage affiniteit gefuseerd aan GFP, geïncubeerd met vier micromolar sealant terezin, en onderworpen aan bioluminescentie-imaging van de mitochondriale calciumconcentratie. Hier worden de opnames getoond die de emissie van fotonen laten zien, welke de mitochondriale calciumconcentratie reflecteren in kort- en langetermijn gecultiveerde hippocampale neuronen. Na deze procedure veroorzaakte een MDA 100 micromolar een verhoogde mitochondriale calciumconcentratie in verouderde neuronen, maar niet in jonge gecultiveerde hippocampale neuronen.Andere methoden, zoals functionele beoordelingen, kunnen in dezelfde cellen worden gecombineerd met fluorescentie- en bioluminescentie-imaging om aanvullende vragen te beantwoorden, zoals de gevoeligheid van neuronale cellen, loodgerelateerde verouderingsneurodegeneratie en ischemie.

fluorescence-bioluminescence-imaging-subcellular-ca2-aged-hippocampal

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurowetenschap

In dit protocol, updaten we de recente vooruitgang in de beeldvorming...

Imaging Calcium Reacties in GFP-gelabelde neuronen van de hypothalamus Mouse Brain Slices

Source: Ulivi, A. F., et. al. Longitudinal Two-Photon Imaging of Dorsal Hippocampal CA1 in Live Mice. J. Vis. Exp. (2019) This video demonstrates longitudinal two-photon imaging of fluorescently-labeled pyramidal neurons in a live mouse, showcasing the preparation, cannula alignment, and imaging of dendrites and dendritic spines to study neuronal structure in the hippocampal CA1 region.

Longitudinal Two-Photon Imaging of Fluorescently Labeled Neurons in a Live Mouse Hippocampus 

Source: Calvo-Rodríguez, et al. Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons. J. Vis. Exp. (2015). This video demonstrates the use of fluorescence imaging to measure cytosolic calcium levels in short-term and long-term rat hippocampal cultures. By comparing young and aged neurons, it highlights how increased L-type voltage-gated calcium channel density and prolonged activation in aged neurons result in calcium overloading, a hallmark of neuronal aging.

In Vitro Calcium Imaging in Short-Term and Long-Term Rat Hippocampal Cultures

Source: Krishnamurthy, K. et al. Real-Time Fluorescent Measurement of Synaptic Functions in Models of Amyotrophic Lateral Sclerosis. J. Vis. Exp. (2021)This video demonstrates real-time calcium imaging to monitor synaptic activity in ALS-mutant neurons expressing a genetically encoded calcium biosensor. It outlines the steps for preparing the neurons for imaging, stimulating calcium dynamics, and recording fluorescence to measure real-time changes in intracellular calcium levels, which reflect...

Fluorescence Imaging of Synaptic Calcium Dynamics in an In Vitro Model of Amyotrophic Lateral Sclerosis

Source: Kamei, R., et. al., In Vivo Chronic Two-Photon Imaging of Microglia in the Mouse Hippocampus. J. Vis. Exp. (2022)The video demonstrates the setup and imaging process for in vivo two-photon microscopy of microglial dynamics in the hippocampal CA1 (Cornu ammonis 1) and dentate gyrus, ensuring optimal optical alignment and structural integrity assessment.

In Vivo Two-Photon Imaging of Microglial Dynamics in the Mouse Hippocampus

Hier presenteren we een nieuwe Ca 2+ -Imaging aanpak met behulp van een bioluminescente reporter. Deze benadering maakt gebruik van een gefuseerde construct GFP-aequorine dat bindt aan Ca2 + en licht emitteert, waardoor de noodzaak voor excitatie licht. Aanzienlijk deze methode maakt het mogelijk lange doorlopende beeldvorming, de toegang tot diepe hersenstructuren en hoge tijdsresolutie.

In vivo Functional Brain Imaging aanpak op basis van Bioluminescent Calcium Indicator GFP-aequorine

Presenteren we een methode geheel-cel patch-clamp opnamen en twee-foton imaging om vast te leggen van Ca2 + transiënten in neuronale dendrites in acute hersenen segmenten combineren.

Twee-foton Calcium Imaging in neuronale Dendrites in hersenen plakjes

Deze methode beschrijft een chronische voorbereiding die optische toegang tot de hippocampus van levende muizen mogelijk maakt. Deze voorbereiding kan worden gebruikt voor het uitvoeren van longitudinale optische beeldvorming van neuronale structurele plasticiteit en activiteit-opgeroepen cellulaire plasticiteit over een periode van enkele weken.

Longitudinale Two-photon beeldvorming van dorsale Hippocampal CA1 in levende muizen

Twee gerelateerde methoden worden beschreven om subcellulaire gebeurtenissen te visualiseren die nodig zijn voor synaptische transmissie. Deze protocollen maken de real-time monitoring van de dynamiek van presynaptische calciuminstroom en synaptische vesikelmembraanfusie mogelijk met behulp van live-cell imaging van in vitro gekweekte neuronen.

Real-time fluorescerende meting van synaptische functies in modellen van amyotrofische laterale sclerose

Dit artikel beschrijft een methode voor chronische in vivo observatie van de rustende microglia in de hippocampus CA1 van de muis met behulp van nauwkeurig gecontroleerde chirurgie en twee-fotonenmicroscopie.

In Vivo Chronische twee-foton beeldvorming van microglia in de hippocampus van de muis

De huidige methoden beschrijven een niet-ratiometrische benadering voor hoge resolutie, sub-compartimentale calciumbeeldvorming in vivo in Caenorhabditis elegans met behulp van direct beschikbare genetisch gecodeerde calciumindicatoren.

Subcellulaire beeldvorming van neuronale calciumbehandeling in vivo

Leer fluorescerende en bioluminescente beeldvorming van cytosolische en mitochondriale calcium in langdurige culturen van rattenhippocampusneuronen. Deze methode helpt onderzoekers calciumremodellering en excitotoxiciteit in verouderende neuronen te bestuderen.

Fluorescentie en Bioluminescentie beeldvorming van Subcellulaire Ca

Meer video's verkennen