16 december 2015
Melk is een primaire voedingsbron voor de pasgeborene. Analyse van melkcomponenten kan inzicht geven in maternale factoren die de gezondheid van het nageslacht beïnvloeden. Dit protocol beschrijft een handmatige methode voor het verzamelen van melkmonsters van de lacterende rat, die vervolgens kunnen worden gebruikt voor verdere downstream-analyse.
Het algemene doel van deze procedure is om te beschrijven hoe u melk handmatig kunt verzamelen van een lacterende rat voor laboratoriumanalyse van de melksamenstelling. Deze methode kan worden gebruikt om sleutelvragen op het gebied van moeder- en kindgezondheid te beantwoorden, zoals hoe de voeding van de moeder de melksamenstelling kan beïnvloeden. Het belangrijkste voordeel van deze techniek is dat deze kan worden uitgevoerd door een enkele onderzoeker zonder gespecialiseerde vacuüm- of zuigapparatuur.
Nr. Om te beginnen, scheidt u de dam van haar jongen gedurende minimaal vijf minuten voorafgaand aan het melken. Verzamel vervolgens alle materialen die nodig zijn voor de melprocedure zoals hier getoond. Plaats vervolgens een absorberend werkblad op een verwarmde operatietafel of gebruik een aparte verwarmingspad om warmteverlies van de dam tijdens de melprocedure te voorkomen.
Controleer vervolgens het anesthesiesysteem om ervoor te zorgen dat het systeem voldoende zuurstof en iso fluorine heeft voorafgaand aan de procedure. Bevestig vervolgens de masker die zal worden gebruikt voor de initiële anesthesie-inductie aan de machine en plaats de onderhoudsmasker in de buurt. Open de zuurstoftank en stel de stroom in op één liter per minuut.
Schakel vervolgens de stroom van isof fluorine in en stel de stroom in op 5%Eenmaal verdoofd, schakel de dam over naar de onderhoudsmasker. Bevestig een voldoende niveau van anesthesie door te controleren op het ontbreken van een peesreflex. Plaats vervolgens de dam in een rugligging op de absorberende werkblad.
Verlaag de stroom van isof fluorine tot twee tot 3%Bewaak de dam voortdurend tijdens de procedure en pas de stroom van isof fluorine aan zoals nodig is om pijn en respiratoire depressie te voorkomen. Gebruik vervolgens een steriele alcoholdoek of reinigingspad om een flesje oxytocine te desinfecteren met behulp van een een milliliter spuit uitgerust met een 25 gauge naald, trek 0,1 milliliter oxytocine op. Steek vervolgens de naald in het onderste rechterkwadrant van de buik van de dam met de naald gericht naar het hoofd onder een hoek van 15 tot 30 graden, ongeveer 0,5 centimeter diep.
Trek terug op de plunjer om negatieve druk te creëren voorafgaand aan de injectie. Als er geen vloeistof wordt aangezogen, injecteer dan de oxytocine en gooi de naald en spuit onmiddellijk in een biogevaarcontainer. Wacht ongeveer vijf tot 15 minuten tot de oxytocine de melk heeft gestimuleerd.
Laat tijdens deze tijd de tets kiezen waaruit melk wordt verzameld. Gebruik trimmers om voorzichtig het haar rond de geselecteerde tets te verwijderen, aangezien haar moeilijkheden kan veroorzaken bij het verzamelen van monsters. Reinig vervolgens de tets met lauwwarm water.
Bereid ten minste twee sites voor, aangezien meer dan één site mogelijk is vereist voor het verzamelen van melk. Zodra de melk is afgegeven, knijpt u zachtjes in de basis van de Tet om melk handmatig te verdrijven. Voor verzameling, verzamel de melkdruppels in een 50 microliter capillair buisje.
Zodra het volledig is, giet u de melk van het capillairbuisje in een steriele microcentrifugebuis door het uiteinde van de buis die werd gebruikt om melk uit de teat te trekken, aan de zijkant van de microcentrifugebuis aan te raken. Gebruik vervolgens een 18 gauge naald verbonden aan een een milliliter spuit om alle melk die niet in de buis is getrokken weg te blazen. Herhaal de melkverzameling en breng deze over in de microcentrifugebuis totdat er voldoende melk is verzameld.
Voor de gekozen analyse, probeer de totale tijd dat de dam onder anesthesie is te beperken tot minder dan een uur. Wanneer het melken voltooid is, schakel de stroom van isof fluorine en zuurstof uit en verwijder het masker van de dam. Blijf de dam controleren totdat deze voldoende bewustzijn heeft herwonnen om sternal recumbent te blijven.
Als er geen verdere analyses nodig zijn, brengt u de melk op negentig graden Celsius. Om voor te bereiden op CCR-meting, laadt u 15 tot 20 microliters melk direct vanuit de Tet in een microhematocrietbuis. Verzegeld vervolgens het uiteinde van de buis met een klei-afdichting.
Plaats de capillaire buis in de hematocriet spinner met de dichtende punt naar buiten gericht en zorg ervoor dat de centrifuge gebalanceerd is. Draai vervolgens het monster gedurende twee minuten met 13.700 keer G. Zodra het monster klaar is met draaien, verwijdert u de buis uit de centrifuge.
Observeer de monsterscheiding in een crèmelaag en een heldere laag. Meet en noteer de totale lengte van de vloeistof in de buis en de lengte van de vet- of crèmelaag met behulp van een liniaal of calliper. Gebruik deze informatie om de CCR te berekenen zoals beschreven in het bijbehorende tekstprotocol om te bepalen hoe voeding tijdens zwangerschap en lactatie de melksamenstelling beïnvloedt.
Melkmonsters werden verzameld bij het spenen van Worcester-dams die ofwel een hoog eiwit, een hoog prebiotisch vezel of een gecontroleerde voeding kregen. De melk die werd verzameld van dams op het hoog prebiotisch vezel dieet had de numeriek hoogste C hematocriet, vetconcentratie en energiewaarde. Deze verschillen waren echter niet statistisch significant als het gaat om eiwit.
Melk verzameld van de dams op het hoog eiwit dieet had echter de hoogste eiwitconcentratie. Hoewel dit verschil ook niet statistisch significant was. Eenmaal onder de knie, kan deze techniek in minder dan een uur worden uitgevoerd vanaf het begin van de verdoving van de dam als het correct wordt gedaan.
Bij het uitvoeren van deze procedure is het belangrijk om voortdurend de dam te controleren om ervoor te zorgen dat ademhalingsdepressie niet optreedt onder narcose na deze procedure. Andere methoden zoals massaspectrometrie kunnen worden gebruikt om aanvullende vragen te beantwoorden zoals de bepaling van de oligosaccharide samenstelling van de melk. Na het bekijken van deze video, zou u een goed begrip moeten hebben van hoe u de handmatige verzameling van melk van een lacterende rat kunt uit
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een eenvoudige methode voor het handmatig verzamelen van melk bij lacterende ratten, waardoor laboratoriumanalyse van de melksamenstelling mogelijk wordt. Het protocol is ontworpen om door een enkele onderzoeker te worden uitgevoerd zonder gespecialiseerde vacuüm- of zuigapparatuur en bevat een techniek voor het schatten van het melkvetgehalte met de creamatocrit-methode. Deze benaderingen vergemakkelijken studies naar hoe maternele factoren de melksamenstelling en bijgevolg de ontwikkeling van het nageslacht beïnvloeden.
Betrouwbare kwantificering van het vetgehalte in melk bij preklinische ratmodellen maakt mechanistische studies mogelijk naar de invloed van maternaal voedingspatroon en metabole interventies op de ontwikkeling van het nageslacht. Handmatige capillaire collectie en creamatocrit-analyse bieden een gestandaardiseerde, schaalbare workflow voor het evalueren van metabole verbanden tussen moeder en nageslacht in translationeel onderzoek. Deze benadering ondersteunt vroege ontdekking en target-validatie voor programma's voor moeder- en kindgezondheid in biofarmaceutische pipelines.
Deze methode is geïntegreerd in het continuüm van vroege ontdekking en preklinisch onderzoek en ondersteunt hypothesetoetsing, targetvalidatie en translationeel onderzoek naar de gezondheid van moeder en kind.