7 maart 2016
Dit manuscript beschrijft hoe je vloeistofbionchips bereidt met epitheelcellen van de kieuwen van regenbooforen voor gebruik in een draagbare elektrische cel-substraat impedantiesensor in het veld. Het protocol voor het uitvoeren van een snelle drinkwatertoxiciteitstest met de sensor wordt ook beschreven.
Het algemene doel van deze procedure is om aan te tonen hoe een biosensor kan worden gebruikt om de toxiciteit van drinkwatermonsters te evalueren. Dit wordt bereikt door biochips te maken die een monolaag van regenboogforellenkieuwcellen bevatten en deze vervolgens te gebruiken als onderdeel van een op impedantie gebaseerde biosensor. Deze procedure biedt een manier om chemische toxiciteit in drinkwatervoorraden snel te detecteren op niveaus die relevant zijn voor de menselijke gezondheid.
De belangrijkste voordelen van deze techniek zijn dat de biochips onder veldcondities kunnen worden gebruikt, ze kunnen worden bewaard in de kou gedurende maximaal negen maanden zonder enige zorg of onderhoud van de cellen, en dat ze in gereedheid zijn voor testen en op elk moment kunnen worden gebruikt na verwijdering uit de koelkast. Jordan McNairn, een bachelorstudent uit ons laboratorium, zal deze procedure demonstreren. De dag voor het zaaien van cellen, verwijder de biochips uit hun verpakking en plaats ze in gesteriliseerde plastic instrumentenkoffers.
Bevestig een van de slangassemblages aan de spuit en trek een 20%bleach-oplossing op in een 20 milliliter spuit. Injecteer twee milliliter van de oplossing in elk kanaal van de biochip. Laat de biochips na voltooiing een uur staan met de bleekvloeistofoplossing.
Gebruik na een uur een steriele 1 milliliter spuit voorzien van een mannelijke slip luer-assemblage die is bevestigd aan een vacuümlijn om de bleekvloeistofoplossing uit beide kanalen te aspireren. Nadat de bleekvloeistof uit de biochip is geaspireerd, bevestigt u een steriele slangassemblage met mannelijke slip luers aan beide uiteinden aan de biochip om deze te gebruiken als afvoer tijdens het spoelen van de biochips. Trek vervolgens steriele water op in een 20 milliliter spuit en spoel elk kanaal van de chip met vijf milliliter water.
Aspireer het water zoals hiervoor. Plaats de biochips terug in de plastic instrumentenkoffers. Laat de biochips in de bioveiligheidskap tot de volgende dag staan.
Een uur voor het zaaien van de biochips, injecteer twee milliliter van een 10 microgram per milliliter fibronectine-oplossing in elk kanaal van de biochip. Incubeer de biochips in de bioveiligheidskap gedurende 60 minuten en aspireer vervolgens de fibronectine-oplossing. Plaats ten slotte twee steriele biochip-slangassemblages op de poorten van de biochips en zet de biochips opzij totdat de cellen klaar zijn voor zaaien.
Verwijder één confluente T-175 fles met regenboogforellenkieuw epitheelcellen uit de incubator en plaats deze in de bioveiligheidskap. Eén confluente T-175 fles kan ongeveer 16 biochips zaaien. Aas de media van de cellen af.
Spoel ze met PBS en aspireer PBS af. Voeg vervolgens zes milliliter Trypsin-EDTA-oplossing toe aan de cellayaer. Incubeer de fles op kamertemperatuur gedurende ongeveer vijf minuten.
Voeg vervolgens 15 milliliter compleet L-15 celkweekmedium toe aan elke fles om de trypsine te deactiveren. Neem een kleine aliquot van de celsuspensie en gebruik een hemocytometer om de concentratie van de cellen te meten. Bekijk de cellen met behulp van een lichtveldmicroscoop uitgerust met een 10x objectief.
Bereken vervolgens de huidige celconcentratie en pas de celsuspensie aan tot een concentratie van een kwart miljoen cellen per milliliter. Gebruik vervolgens een steriele 20 milliliter spuit om 2,5 milliliter van de celsuspensie in de buitenste poort van elk kanaal van de biochip te injecteren. Laat de extra celsuspensie uit de slang in een afvalinische stromen.
Maak vervolgens een gesloten lus voor elk kanaal van de biochip door het vrije uiteinde van de slang met een luer-fitting in de buitenste poort van elk kanaal te steken. Bevochtig vervolgens een papieren handdoek met 70%ethanol en gebruik deze om eventuele overtollige media van de gesloten lussen te vegen. Plaats vervolgens de biochips terug in een plastic doos.
Verwijder op dag vier en zeven de biochips uit de incubator. En verander de media in de biochips met temperatuuraangepaste compleet L-15 celkweekmedium. Verwijder na de voeding op dag zeven en gooi de slangen van de chips en steek de autoclaafafvoerpluggen in de biochips.
Plaats de biochips in een doos in een incubator van zes graden Celsius totdat ze worden gebruikt voor testen. Verwijder de ECIS-testlezer en benodigdheden uit de draagtas en zet vervolgens de lezer aan. Neem ook een van de voorbereide biochips uit de incubator van zes graden Celsius en plaats deze op een papieren handdoek.
Gebruik een 10 milliliter spuit om 10 milliliter controlewater te doseren in een gelabelde 0,5-ounce heldere plastic controlepot. Zorg ervoor dat u luchtbellen verwijdert voor een nauwkeurige meting. Gebruik vervolgens een afzonderlijke spuit en doseer 10 milliliter van het testmonster in een 0,5 ounce heldere plastic testpot.
Verwijder vervolgens twee poedermedia flacons. Open een van de poedermedia flacons en giet de hele inhoud van één flacon in de pot met het controlewater, waarbij u de volledige flacon in oplossing laat vallen. Herhaal deze procedure met de testpot.
Dek vervolgens af en schud de potten om ervoor te zorgen dat het poeder volledig is opgelost. Vul de blauwe 10 milliliter spuit met negen milliliter van de controleoplossing. En de rode 10 milliliter spuit met negen milliliter van de testoplossing uit hun respectievelijke flacons.
Verwijder eventuele bestaande luchtbellen uit de spuiten. Verwijder vervolgens de pluggen uit de biochip-poorten en bevestig de afvoer. Plaats de biochip in de verwijderbare plastic lade in de ECIS-lezer, sluit het deksel en bevestig vervolgens de gevulde spuiten aan de buitenste biochip-poorten.
Bevestig tenslotte de zuigers van de spuiten. Selecteer vanaf het hoofdscherm van de lezer Volgende om de voortest te starten. De software zal vervolgens de initiële impedanties controleren.
Als de impedanties binnen het bereik liggen, registreert het scherm "Cartridge is geslaagd" en geeft het de gebruiker opdracht om Volgende te selecteren. Voer vervolgens monsterinformatie in met behul
Dit manuscript beschrijft een methode voor het bereiden van fluïdische biochips met behulp van kieuwithelcellen van de regenboogforel, welke worden gebruikt in een draagbare elektrische cel-substraat-impedantiesensor voor snelle toxiciteitstesten van drinkwater.
Deze op impedantie gebaseerde biosensor maakt snelle, in het veld inzetbare toxiciteitscreening van drinkwater mogelijk met behulp van een biologisch relevant celmodel, wat vroege identificatie van gevaren in programma's voor milieumonitoring ondersteunt. Door kwantitatieve impedantiewaarden binnen één uur te leveren, faciliteert het tijdige go/no-go beslissingen voor beoordelingen van de waterveiligheid, waardoor de afhankelijkheid van tragere laboratoriumgebaseerde methoden wordt verminderd. De compatibiliteit van het systeem met gekoelde, gebruiksklare biochips vergroot de operationele flexibiliteit voor gedecentraliseerde testlocaties, waaronder militaire en gemeentelijke watersurveillance.
Deze methode past binnen vroege discovery-workflows als een functionele screeningstool voor cytotoxiciteit, gepositioneerd na de synthese van verbindingen en vóór gedetailleerde mechanistische profilering, om verbindingen te prioriteren op basis van biologische activiteit.