12 februari 2016
Er is een innovatieve biofabricagetechniek ontwikkeld om driedimensionale constructies te engineeren die lijken op de architecturale kenmerken, componenten en mechanische eigenschappen van in vivo weefsel. Deze techniek beschikt over een nieuw ontwikkeld opofferbaar materiaal, BSA-rubber, dat gedetailleerde ruimtelijke kenmerken overdraagt en de in vivo architectuur van een grote verscheidenheid aan weefsels reproduceert.
Het algemene doel van dit protocol is om driedimensionale collageenschalen te ontwerpen die de architectonische kenmerken, samenstelling en mechanische eigenschappen van in-vivo weefsel kunnen nadoen. Deze methode kan helpen om belangrijke vragen op het gebied van weefselengineering te beantwoorden, zoals ECM-celinteracties, de invloed van architectonische kenmerken bij het creëren van geëngend weefsel en de ontwikkeling van weefselvervangingen, onder andere. Het grote voordeel van deze techniek is dat het een haalbare procedure biedt om de microgeometrie van interne stroomkanalen en paden met hoge nauwkeurigheid na te bootsen in een biologisch afbreekbaar materiaal.
Het uitvoeren van de procedure zal worden gedemonstreerd door Veronica Rodriguez-Rivera, een post-doctoraal medewerker in mijn laboratorium. De materialen die worden gebruikt om de BSA-rubber voor te bereiden, moeten worden bewaard en koud worden gehouden totdat ze klaar zijn voor gebruik, zodat de BSA-rubber niet voortijdig hard wordt. Steriliteit is ook erg belangrijk voor deze procedure.
Steriliseer eerst de dispenser. Leg in een niet-celcultuurkap de O-ringen, de spuit, het dopje, de mixtip en de vier-naar-één dispenser. Steriliseer deze materialen gedurende 30 minuten met UV.
Schroef eerst de twee roestvrijstalen malstukken aan elkaar en bevestig de Luer-lock. Voordat de dispenser wordt geassembleerd, spuit pipetten en reagentia voorafgaand aan het introduceren in de kap met 70% ethanol. Bevestig eerst de tipcap op de oplossingshouder.
Laad vervolgens de 30% BSA-oplossing in de grotere kamer zonder de andere kamer te besmetten. Laat genoeg ruimte over om de O-ring te bevestigen. Laad vervolgens de kleinere dispenserkamer met drie procent glutaaraldehyde en bevestig een andere O-ring.
Bevestig nu de spuit aan de dispenser. Kantel vervolgens de assemblage zodat de dop bovenaan staat en vervang de dop door een mengingstip. Tik vervolgens zachtjes op de zijden om de luchtbellen omhoog te laten reizen.
Plaats vervolgens de dispenser in een geautoclaveerde zak om de uitlaatvloeistof te bevatten. Spuit in de zak, met de dispenser rechtop, een kleine hoeveelheid oplossing om alle lucht uit de spuit te verwijderen. Het verwijderen van lucht is erg belangrijk.
Verbind vervolgens snel de Luer-lock van de roestvrijstalen Y-mal met de spuittip. Met de mal in uw niet-dominante hand, wissel het uitzetten van oplossing in de linker en rechter uitlaat van de uitstroomkanalen af. Druk op de uitlaat en vul zo de interne holten met oplossing.
Plaats vervolgens de mal horizontaal en injecteer deze met meer oplossing totdat de helft van het dispenservolume is gebruikt. De mal moet nu in een schaal worden geplaatst, in parafilm worden gewikkeld en een nacht bij vier graden Celsius worden bewaard. Deze procedure is geschaald naar vier gram geacidificeerd collageen.
Bewaar het gekoeld totdat het wordt gebruikt. Nadat het collageen is gewogen, gaat u verder met het steriliseren van de oplossing door middel van gammastraling. Maak ter voorbereiding verse 0,2 normale HEPES-oplossing in water.
Breng vervolgens de inhoud over in een conische buis van 50 milliliter. Pas de pH aan op negen met behulp van geconcentreerd natriumhydroxide. Zorg ervoor dat u de kap met UV steriliseert en de forceps, spatel en scalpel autoclaveert.
Meng in de kap 1,5 milliliter van de HEPES-oplossing met 1,5 milliliter van 10x MEM. Bewaar deze mix op ijs. Koel ook een 12-putjesplaat en een 20 milliliter spuit gedurende 10 minuten in de vriezer.
Voor extra steriliteit spuit u de betrokken buizen en platen in met 70% ethanol voordat u ze in de kap plaatst. Spuit de malplaat in en plaats deze in de kap. Verwijder vervolgens de BSA-rubber mallen met forceps.
Snijd vervolgens de uitlaatkanalen van de mal af met een scalpel. Vortex vervolgens kort de HEPES-MEM mix en voeg een milliliter toe aan het collageen. Meng vervolgens de oplossing grondig met een steriele spatel.
Volg met een korte vortex en breng de oplossing snel over naar de koude 20 milliliter spuit. Terwijl u de BSA-rubber in de put vastzet, giet u de helft van de collageenhydrogeloplossing in de putbodem. Gebruik vervolgens pincetten om de mal te positioneren zodat de rubberen in- en uitlaatuiteinden de wanden van de put raken.
Bedek vervolgens de mal met collageenhydrogel. Verzegeld nu de put met parafilm en laad de plaat in een incubator van 37 graden Celsius. Laat een uur staan om het collageen te laten polymeriseren.
Zorg er tijdens deze tijd voor dat het UV-licht in de kap aan staat. Stel ook het UV-crosslinkingapparaat in om 630.000 microjoule per vierkante centimeter af te geven. Spuit vervolgens uw behandschoende handen af met 70% ethanol en laad de plaat met de met collageen bedekte mallen in de crosslinker en start het bestralingsproces.
Na de bestraling, spuit u uw handschoenen opnieuw en ontlaadt u de plaat uit de crosslinker. Verwijder vervolgens met een steriele spatel het gel uit de put, draai het om en crosslink de onderkant van het hydrogel. Na de laatste crosslinkingcyclus, gaat u verder met de enzymdigestie.
Gebruik steriele 0,25% trypsin-oplossing bij pH 7,8 om de BSA-rubber te verwijderen zonder het collageenschaal te verstoren en pers deze door een 0,20 micron filter. Breng voldoende gefilterde trypsin-oplossing over in een nieuwe conische buis van 50 milliliter. Breng vervolgens het collageenhydrogel over in de conische buis die de enzymoplossing bevat.
Zorg ervoor dat het hydrogel volledig bedekt is met de oplossing. Sluit de buis met parafilm en vortex het zachtjes gedurende ongeveer een minuut. Incubeer vervolgens de buis bij 30 graden Celsius en laat de digestie 15 tot 24 uur doorgaan.
Verwijder de buis gedurende de eerste vier uur elke 15 tot 30 minuten en vortex deze voorzichtig om de BSA-rubber digestie te helpen voltooien. De volgende dag wordt de digestie als voltooid beschouwd wanneer er geen rubber in de oplossing drijft of er geen afgebroken stukken rubber in het hydrogel zijn.
Bekijk het volledige transcript en krijg toegang tot duizenden wetenschappelijke video's
Dit artikel presenteert een innovatieve biofabricatietechniek voor het ontwikkelen van driedimensionale collageenscans die de architecturale kenmerken en mechanische eigenschappen van in vivo weefsel nabootsen. De methode maakt gebruik van een nieuw ontwikkeld offermateriaal, BSA-rubber, om de microgeometrie van diverse weefsels nauwkeurig te reproduceren.
Deze biofabricatietechniek maakt een nauwkeurige replicatie van de weefselmicroarchitectuur in collageenhydrogels mogelijk, waarmee een kritisch hiaat in de getrouwheid van preklinische modellen wordt opgevuld. Door een schaalbare methode te bieden voor het engineeren van gedefinieerde kanalen op micro- en macroschaal, ondersteunt het de mechanistische risicoreductie bij de ontwikkeling van weefselgerichte therapieën. De aanpak verhoogt de voorspellende betrouwbaarheid bij het evalueren van interacties tussen geneesmiddelen en weefsels binnen fysiologisch relevante 3D-omgevingen.
De methode integreert in vroege ontdekkingsworkflows door instelbare, biologisch afbreekbare scaffolds te bieden die een brug slaan tussen eenvoudige 2D-modellen en complexe organoïden, ter ondersteuning van hypothese-gedreven targetvalidatie.